CZ20031659A3 - Způsob výroby heterologního proteinu - Google Patents

Způsob výroby heterologního proteinu Download PDF

Info

Publication number
CZ20031659A3
CZ20031659A3 CZ20031659A CZ20031659A CZ20031659A3 CZ 20031659 A3 CZ20031659 A3 CZ 20031659A3 CZ 20031659 A CZ20031659 A CZ 20031659A CZ 20031659 A CZ20031659 A CZ 20031659A CZ 20031659 A3 CZ20031659 A3 CZ 20031659A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
ethanol
carbon source
phase
weight
medium
Prior art date
Application number
CZ20031659A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ303983B6 (cs
Inventor
De Laar Antonius Martinus Johannes Van
Nigel Malcolm Lindner
Peter Nieuwpoort
Original Assignee
Unilever N. V.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Unilever N. V. filed Critical Unilever N. V.
Publication of CZ20031659A3 publication Critical patent/CZ20031659A3/cs
Publication of CZ303983B6 publication Critical patent/CZ303983B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Oblast techniky
Předkládaný vynález se týká způsobu výroby heterologního proteinu nebo peptidu v houbách.
Dosavadní stav techniky
Produkce hetorologního proteinu v hostiteli, jako jsou houby, je dobře známá. EP-A-481 008 předkládá výrobu heterologního proteinu v kvasinkách, pěstovaných na glukóze.
Průmyslová výroba hetorologního proteinu, tedy výroba ve velkém měřítku, hostitelským organismem v napájeném (vyživovaném) vsádkovém kvašení obecně vykazuje tři fáze.
První fází je vsádková fáze, která je definována jako fáze, při níž jsou buňky pěstovány až k dosažení požadované koncentrace. V této fázi rostou buňky exponenciálně. Modely vyjadřující vsádkovou fázi předpokládají, že buňky neumírají, že kyslík je přítomný v nadbytku a že všechny ostatní podmínky jsou takové, že může probíhat neomezený růst. To také předpokládá, že ve vsádkové fázi jsou všechny výživové požadavky plněny v dostatečném množství. Souhrnně lze říci, že vsádková fáze je fází, při níž jsou množeny buňky, zatímco produkce (heterologního) proteinu je stále nízká.
Druhou fází je fáze přísunu potravy, vyživovací fáze, která je definována jako fáze, při níž jsou zdroj uhlíku a další požadavané látky přiváděny do kvasné nádoby, fermentoru, v poměrně zahuštěném proudu tekutiny předem vypočtenou rychlostí, tedy rychlostí vyživování. V této fázi je důraz kladen na produkci proteinu • ·
- 2 pěstovanými buňkami a na buněčný růst, vedoucí k nárůstu biomasy. Substrát, který je přiváděn do kvasné nádoby, se v tomto stádiu obecně používá pro buněčný růst a syntézu produktu. Buněčný růst je řízen rychlostí vyživování tak, aby bylo dosaženo optimálního buněčného růstu a produkce heterologního proteinu.
Nakonec je dosaženo třetí fáze, která je definována jako fáze poklesu, při níž nastávají omezující podmínky. V této fázi je například koncentrace kyslíku v kvasné nádobě snížena na nulu, což v některých případech vede k vytváření ethanolu. V tomto stádii se většina buněk soustředí na své udržení, zachování a syntéza produktu je obvykle snížena. Ačkoli může být i v této fázi stále pozorován buněčný růst, růst je obecně velmi omezený a to až k nule. Buňky mohou v tomto stádiu postupně ztrácet svou životnost.
Produkce heteroiogního proteinu v médiu, které obsahuje zdroj uhlíku jako je glukóza nebo jiný zdroj uhlíku na cukerné bázi, je uspokojující do té doby, než se ke konci fáze vyživování začnou projevovat omezující podmínky. Příklady omezujících podmínek zahrnují sníženou koncentraci kyslíku, snížení množství živin jako jsou vitamíny, uhlík a dusík, a nahromadění toxických sloučenin v růstovém médiu.
Pokud jsou houby a zejména kvasinky pěstovány v médiu obsahujícím jako zdroj uhlíku glukózu, je produkce, výroba heterologního proteinu podstatně snížena hned, jakmile nastanou omezující podmínky.
U kvasinek, pěstovaných v běžném médiu, obsahujícím jako zdroj uhlíku cukr, se při vyživovaném vsádkovém kvašení projevují výše popsané fáze. Tedy jakmile je započata fáze poklesu, specifická produkce, která je definována jako množství heterologního proteinu nebo peptidu, vyprodukovaného na 1 gram biomasy, je pouze
udržována, nebo se sníží. I když je buněčná hustota vysoká, syntéza produktu je od této chvíle ve fázi poklesu nízká.
Jinou nevýhodou běžného média, které často obsahuje jako zdroj uhlíku glukózu, je velké množství substrátu, které je místo přeměny na produkt, jímž je obvykle heterologní protein v kontextu tohoto vynálezu, přeměňováno na biomasu. Z tohoto důvodu produkci velkých množství heterologního proteinu v podobných systémech nevyhnutelně doprovází poměrně velké množství biomasy.
Toto velké množství biomasy vede ke vzniku viskózního kvasného média, ve kterém snadno dochází například k omezení množství kyslíku.
Existuje tedy potřeba způsobu výroby heterologního proteinu v hostiteli jako jsou houby, který by vedl k vysokému výtěžku heteroiogního proteinu i za omezujících podmínek, při nichž by normálně došlo ke snížení a omezení specifické produkce, a při němž by zároveň byla specifická produkce růstového systému uchována nebo zvýšena ve srovnání se známými růstovými systémy.
Způsob podle předkládaného vynálezu překonává nejméně jeden z uvedených problémů.
Podstata vynálezu
Překvapivě bylo zjištěno, že houby pěstované v médiu, obsahujícím jako hlavní zdroj uhlíku ethanol a dále obsahujícím k řízení produkce (výroby) heterologního proteinu induktor jako galaktózu, vykazují vysokou specifickou produkci heterologního proteinu, přičemž specifická produkce heterologního proteinu je překvapivě vysoká dokonce i za omezujících podmínek.
Houby, pěstované podle tohoto způsobu, překvapivě nevykazují dobře známé charakteristiky poklesu růstu, se kterými se lze setkat u hub, pěstovaných v tradičních médiích na bázi glukózy. Za pokračujícího vyživování médiem, obsahujícím tento specifický zdroj uhlíku, si houby udržují nebo dokonce zvyšují absolutní a specifickou hladinu produkce heterologního proteinu.
Vynález se proto týká způsobu výroby heterologního proteinu houbami, který zahrnuje kroky, při nichž se uvedené huby pěstují v médiu obsahujícím zdroj uhlíku, přičemž 50 až 100 % hmotnostních tohoto uhlíkového zdroje představuje ethanol a médium nádavkem obsahuje induktor.
Podrobný popis vynálezu
V kontextu tohoto vynálezu termín houba či houby zahrnuje kvasinky a plísně.
Pro účely tohoto vynálezu je výraz heterologní protein zamýšlen k zahrnutí jak proteinů, tak i peptidu.
Heterologním proteinem je takový protein, který není houbou přirozeně produkován, ale je jí produkován až poté, co byla tato houba v příslušném rozsahu modifikována.
Pokud jsou uváděna hmotnostní procenta, jedná se o hmotnostní procenta vzhledem k celkové hmotnosti produktu nebo k celkové hmotnosti média, pokud však není uvedeno jinak.
Pokud je používán výraz koncentrace kyslíku, je činěn odkaz na koncentraci rozpuštěného kyslíku, která se měří způsobem, popsaným v Příkladech provedení vynálezu.
• · • · • ·
Konec vsádkové fáze se definuje jako okamžik, kdy byl spotřebován veškerý uhlíkový substrát, poskytnutý buňkám.
Indukční fáze je definována jako fáze, která začíná po vsádkové fázi od toho okamžiku, kdy začne indukce heterologního proteinu až do okamžiku, kdy je získána maximální indukce pro použitou koncentraci speciálního induktoru.
Zdroj uhlíku je definován jako substrát, který buňce poskytuje dodávání uhlíku a energie. Houby získávají svůj buněčný uhlík především z organických sloučenin. Ty běžně slouží jako zdroj uhlíku i jako zdroj energie: Jsou částečně asimilovány (vstřebány) do buněčného materiálu a částečně oxidovány k poskytnutí energie. V tomto kontextu je činěn odkaz na práci H. Schlegela v General Microbiology, Cambridge University Press, 1992, 7. vydání, strana 194.
Vynález se týká způsobu výroby heterologního proteinu houbami. K vytváření tohoto proteinu jsou houby geneticky modifikovány tak, aby byla možná řízená produkce tohoto heterologního proteinu nebo peptidu.
K takové genetické modifikaci může být použit jakýkoliv vhodný konstrukt nebo způsob transformace. Příklady vhodných konstruktů a způsobů transformace jsou uvedeny v EP-A-481 008, která je zde začleněna jako odkaz.
Obecně bude modifikovaná, pozměněná houba po modifikaci obsahovat (integrovaný) vektor, který obsahuje gen, kódující heterologní protein, pod kontrolou promotoru. Aktivita promotoru je řízena tak zvaným induktorem. Příklady promotorů zahrnují galaktózové promotory jako GAL4 či GAL7, které jsou indukovány galaktózou; methanolem indukované promotory, které jsou indukované methanolem; ethanolové
promotory, které jsou indukované ethanolem; teplotou řízené promotory, které jsou indukované změnou teploty; fosfátem (fosforečnanem) řízené promotory, které jsou indukované přítomností fosfátu a glukózou potlačitelné promotory (glucose repressible promoters), indukované nepřítomností glukózy.
Houby se pěstují v médiu, obsahujícím zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních představuje ethanol, v kombinaci s přítomností induktoru v médiu.
Ve stavu techniky se od použití ethanolu jako zdroje uhlíku obecně odrazuje, jak je doloženo příklady v níže uvedeném popisu. Souhrnně se udává, že použití ethanolu místo glukózy jako zdroje uhlíku snižuje výtěžek biomasy, vyžaduje vyšší spotřebu kyslíku a proto poskytuje nulový nebo omezený růst v podmínkách omezujících přítomnost kyslíku. Nadto může toxicita ethanolu vůči buněčným kmenům vést ke ztrátě životnosti buněk a k jejich smrti. To je například uvedeno v Tabulce 1 publikace The Yeasts, díl 13, 2. vydání, kapitola 6. Zvláštní odkaz je činěn na doplněk 1 tohoto popisu, který udává, že pro kvasinky je rychlost růstu na ethanolu 0,1 h'1 oproti rychlosti růstu 0,35 h'1 na glukóze. Tento doplněk dále udává, že v médiu s ethanolem jako zdrojem uhlíku vykazují kvasinky větší spotřebu kyslíku než v médiu, obsahujícím jako uhlíkový substrát glukózu.
Růst buněk na ethanolu jako zdroji uhlíku je dále popsáno Shibou a spoluautory (J. of Bioscience and Bioengineering 89, 426-430, 2000). Shiba objevil za použití promotoru GAL1& expresi karboxypeptidázy Y (CPY) v mutantu gal180 rodu Saccharomyces cerevisiae. Růstové médium obsahovalo jako jediný zdroj uhlíku ethanol. Během počátku dodávání ethanolu byly jak rychlost růstu, tak i produkce CPY popsány jako klesající. Tento systém nebyl pod kontrolou induktoru.
·« · I* ·· ··· ·
• ·
Nyní předkládaný vynález poskytuje postup, při němž je produkce proteinu uchovávána nebo dokonce zvyšována v přítomnosti média, obsahujícího zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % představuje ethanol, zejména pokud nastanou omezující podmínky růstu. Nadto je způsob (postup) podle nyní předkládaného vynálezu použitelný pro kterýkoli typ hub a nevyžaduje pro růst specifické mutanty gal180. Způsob podle tohoto vynálezu lze také řídit prostřednictvím indukce.
M. Saliola se spoluautory (Applied and Environmental microbiology, leden 1999, str. 53-60) předkládá použití ethanolem indukovatelného promotoru KIADH4 pro expresi heterologního genu v Kluyveromyces lactis. Tato práce udává, že optimální exprese je dosaženopři použití ethanolu jako promotoru a souběžně jako jediného zdroje uhlíku v napájeném vsádkovém systému. Tento produkční systém neumožňuje kontrolu genové exprese ve fázi přísunu výživy.
Jiným přínosem způsobu podle předkládaného vynálezu je kontrola vytváření tepla, což je důležité pro výrobu (produkci) teplotně labilních proteinů.
Přednost se dává tomu, aby médium obsahovalo zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních představuje ethanol, v kombinaci s přítomností induktoru v médiu a to ve všech fázích; bylo ovšem také zjištěno, že pokud jsou tyto nároky splněny médiem používaným ve fázi přísunu výživy, je možné použít médium, které ve vsádkové fázi tyto nároky nesplňuje.
V upřednostňovaném ztělesnění se předkládaný vynález týká způsobu výroby heterologního proteinu houbami, přičemž tento způsob zahrnuje vsádkovou fázi a fázi přísunu výživy, médium fáze přísunu výživy obsahuje zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních ·· ·«· « představuje ethanol a médium fáze přísunu výživy nádavkem obsahuje induktor.
Ve srovnání se známými růstovými systémy, které obvykle obsahují jako hlavní zdroj uhlíku glukózu nebo jiný cukr, umožňuje médium podle předkládaného vynálezu vysoké specifické hladiny produkce dokonce i za omezujících podmínek; tj. s výhodou zde nedochází k fázi poklesu.
Bylo zjištěno, že specifická produkce je dokonce vyšší ve fázi přísunu výživy za podmínek omezené přítomnosti kyslíku, zatímco u růstových systémů na bázi glukózy je nejvyšší specifická produkce obvykle nalezena ve fázi přísunu výživy, při níž je množství biomasy stále poměrně malé.
Aniž by bylo žádoucí vázat se teorií, autoři tohoto vynálezu předpokládají, že ve způsobu podle překládaného vynálezu je fáze poklesu prodloužená nebo dokonce nepřítomná v důsledku použití média, obsahujícího zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních představuje ethanol.
Ve způsobu výroby heterologního proteinu jsou podmínky přísunu výživy s výhodou optimalizovány tak, že rychlost buněčného růstu a produkce heterologního proteinu jsou optimální.
Jak bylo uvedeno výše, pokud se houby pěstují v průmyslovém měřítku, vysoce se upřednostňuje vyživovaný vsádkový systém, využívající kvasný tank (fermentor).
V jiném upřednostňovaném ztělesnění se vynález týká způsobu výroby heterologního proteinu houbami, přičemž tento způsob zahrnuje •0 0 «« • · « 0 0 ·· 0 · ·
0·«« vsádkovou fázi, indukční fázi a fázi přísunu výživy, přičemž ve zmíněné fázi vyživování
a) se buňky hub pěstují k dosažení buněčné hustoty alespoň 5 g/l v médiu obsahujícím jakýkoliv zdoj uhlíku, bez specifické volby, a následně jsou buňky hub pěstovány k dosažení buněčné hustoty větší než 5 g/l, s výhodou od 10 do 90 g/l a ještě lépe od 40 do 60 g/l, za použití média, obsahujícího induktor a zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních představuje ethanol;
b) se poté, co je dosaženo buněčné hustoty kroku (a), vytvoří podmínky omezeného růstu;
c) se poté, co se ustaví tyto omezující podmínky, buňky dále pěstují na médiu, obsahujícím zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních představuje ethanol.
V tomto upřednostňovaném způsobu se v prvním kroku buňky pěstují ve vsádkové fázi, dokud není spotřebován zdroj uhlíku a ve druhém kroku se buňky pěstují k dosažení dostatečné buněčné hustoty k umožnění produkce heterologního proteinu ve vysokých množstvích. V prvních stádiích této druhé fáze se produkce heterologního proteinu indukuje přidáním induktoru do výživového média. Doba, trvající od nulové indukce a tedy velmi nízké hladiny produkce heterologního proteinu do maximální úrovně této produkce, se nazývá indukční fáze. Tato indukční fáze představuje první stádium fáze přísunu výživy.
Limitujících podmínek je v kvasném tanku (fermentoru) možné dosáhnout různými způsoby. Omezující podmínky jsou definovány jako takové podmínky, při nichž není dále možný exponenciální buněčný růst a růst buněk je klesající.
• * · • ·
• · · * • · · • ·»
• · · • · ·
··
Ve způsobu podle tohoto vynálezu jsou omezující podmínky v médiu vytvořeny metodou, zvolenou ze skupiny, která zahrnuje:
a) snížení koncentrace kyslíku ve fermentorovém médiu, s výhodou na méně než 30 % a lépe na méně než 15 %;
b) přeplňování média ethanolem tak dlouho, dokud hladina ethanolu v médiu není rovna koncentraci omezující růst buněk rodu, který je pěstován v médiu, nebo dokud není vyšší;
c) snížení hladiny dalších esenciálních (nezbytných) přísad pro růst buněk, přičemž se taková přísada s výhodou zvolí z dusíku, fosforu, síry a vitamínů.
Po vsádkové fázi je vyživovací (napájecí) profil s výhodou exponenciálně rostoucí s produkcí biomasy. Jakmile nastane omezení kyslíku a započne fáze poklesu, rychlost vyživování se s výhodou ustaví na rychlosti, udržující koncentraci ethanolu ve fermentorovém médiu pod 10 % objemovými. Toho lze například dosáhnout lineární, přímkovou rychlostí vyživování nebo impulsní rychlostí vyživování, anebo stupňovitou rychlostí vyživování.
V ještě upřednostňovanějším ztělesěnní se způsob podle předkládaného vynálezu provádí jako opakovaný vyživovaný (napájený) vsádkový postup.
Induktor je s výhodou vhodný pro ''zapnutí promotoru, který je operativně připojen na heterologní gen v genovém konstruktu, použitém pro transformaci hostitelské houby. Upřednostňovanými induktory jsou galaktóza, methanol, teplota a fosfáty.
Nejupřednostňovanějším induktorem je galaktóza.
- 11 ·· · · · • · · · · · • · ·· · ·
Předkládaný vynález se netýká způsobů exprese, při nichž se ethanol používá jako induktor a zárověň jako zdroj uhlíku nebo částečný zdroj uhlíku.
Pokud je índuktorem galaktóza, mělo by být množství gaiaktózy v médiu s výhodou takové, aby byl promotor zapnut na požadovanou úroveň už při množství tak nízkém, že galaktóza není metabolizována. K prevenci metabolizování gaiaktózy je možné použít rod, který není schopný induktor metabolizovat.
Složení výživového (napájecího) média je s výhodou takové, že médium ve fermentoru obsahuje od 0,1 % hmotnostního do 10 % hmotnostních gaiaktózy, lépe od 0,05 do 1 % hmotnostního gaiaktózy a ještě lépe od 0,05 do 0,2 % hmotnostního gaiaktózy.
Zdroj uhlíku v médiu podle předkládaného vynálezu obsahuje alespoň 50 % hmotnostních a až do 100 % hmotnostních ethanolu S výhodou zdroj uhlíku obsahuje od 80 do 100 % hmotnostních ethanolu. Zbytkem uhlíkového zdroje může být například cukr jako glukóza, galaktóza, laktóza, sacharóza, fruktóza, nebo jiná sloučenina, jako glycerol či acetát, nebo to mohou být komplexní, složené uhlíkové substráty jako syrovátka nebo melasa.
Houbou mohou být kvasinky nebo plísně. Příklady vhodných rodů kvasinek zahrnují Saccharomyces, Kluyveromyces, Pichia, Hansenula. K příkladům vhodných plísní patří Aspergillus, Rhizopus, Trichoderma.
Zvláště upřednostňovaným organismem jsou kvasinky rodu Saccharomyces cerevisiae.
Heterologním proteinem může být jakýkoliv protein nebo peptid, jehož výroba je žádoucí. Bylo zjištěno, že způsob podle předkládaného • · φ · · · • · · φ φ ·
- 12 vynálezu je zvláště výhodný k výrobě nemrznoucích peptidů (antifreeze peptides), protilátek nebo jejich fragmentů, nebo enzymů, jako je kutináza a galaktosidáza.
Nemrznoucí peptidy jsou proteiny, které mají schopnost modifikovat růst ledu a jsou například popsány Griffithem a spoluautory v práci, která je zde začleněnna jako odkaz (Biotechnology Advances 13(3), 375-402, 1995).
Médium pro různé fáze růstu hub obecně zahrnuje zdroj uhlíku, volitelně induktor, jehož přítomnost je vyžadována po vsádkové fázi a volitelně další přísady jako vitamíny, kvasničný extrakt, stopové kovové ionty, okyselující činidla k udržení pH na požadované úrovni, fosforečné sole, síranové sole, vodu a protipěnící činidlo.
Podle jiného upřednostňovaného ztělesnění se předkládaný vynález týká způsobu výrovy heterologního proteinu nebo peptidu, přičemž vsádkové médium obsahuje 1 až 40 % hmotnostních glukózy, vodu, stopové kovy, volitelně protipěnící činidlo, kvasničný extrakt, vitamíny, fosforečné sole a síranové sole a výživové, napájecí médium obsahuje od 5 do 35 % ethanolu, 0,1 až 10 % hmotnostních galaktózy, vodu, stopové kovy a volitelně protipěnící činidlo, kvasničný extrakt, vitamíny, fosforečné soli a síranové soli a kde rychlost vyživování, φ, je v desetilitrovém měřítku od 0,25 do 4 g/min, nebo má odpovídající hodnotu při kvašení ve větším měřítku.
Předkládaný vynález se dále týká isolátu heterologního peptidu, zvláště izolátu nemrznoucího peptidu, získaného způsobem podle tohoto vynálezu.
Vynález bude nyní ozřejměn následujícími Příklady provedení vynálezu, na něž se neomezuje.
Příklady provedení vynálezu
Média a kultivace
Veškerá média a údaje, týkající se kultivace, se vztahují k ethanolovému kvašení v rozsahu 10 litrů.
Pro rozsah 10 m3 platí zhruba totéž po vynásobení faktorem měřítka, tedy jedním tisícem.
Média
Předkultivační média:
Inokulační (očkovací) média sloučenina g-i-1 dodavatel
YNB kvasinky dusík báze YNB w/o aminokyseliny 6,7 Difco
glukóza Glucose*1 aq 5 AVEBE
v demineralizované vodě
YPD kvasinky pepton glukóza YE 10 Difco
baktopepton 20 Difco
glukóza Glucose*1aq 20 AVEBE
v demineralizované vodě
Vsádková a napájecí, výživová média jsou uvedena v Tabulce 1 pro rozsah 10 litrů.
Tabulka 1
sloučenina dodavatel koncentrace (g.kg'1)
vsádka přiváděný ethanol přiváď. komp. př. glukóza
glukóza Avebe 22,0 - 440,0
vodovodní voda
EtOH* Lamers & Pleuger - 333,84 -
galaktóza HMS - 3,0 3,0
vodovodní voda
YE Kat G Ohiy 10,0 25,0 25,0
KH2PO4 Acros 2,1 12,0 12,0
MgSO4 . 7H20 Merck 0,6 2,5 2,5
vitamíny Egii vit Tabulku 2 1,0 1,0 2,0
stopové prvky Egli vit Tabulku 2 10,0 20,0 20,0
Structol J 673 Schill & Seilacher 0,4 0,8 0,8
vodovodní voda
celková hmotnost (g) 5 500 4 000 4 000
* čistý ethanol, obsah 96,2 % objem/objem, nedenaturovaný
Všechna média byla sterilizována 25 minut při 121 °C a tlaku 120 kPa (1,2 bar) v autoklávu Linden, cukry odděleně. Množství vodovodní
- 15 • 9 9 9 9 · · · · • ········· 9 • · · · 9 9 · 9 · * •999 999 99 99 «9 ·· vody jsou uvedena níže a celkové množství bylo takové, aby celková hmotnost odpovídala údaji, uvedenému ve spodním řádku Tabulky 1.
Složení vitamínů Egli a stopových prvků
Tabulka 2
Vitamíny Egli (1000 x zásobní roztok) stopovéprvky Egli (100 x zásobní roztok)
sloučenina g.i'1 sloučenina g.i·1
thiamin (HCI) 5,00 CaCI2. 2 H2O 5,50
meso-inosit 47,00 FeSO4 . 7 H2O 3,73
pyridoxin 1,20 MnSO4 . 1 H2O 1,40
kys. listová 23,00 ZnSO4.7 H2O 1,35
biotin 0,05 CuSO4 . 5 H2O 0,40
CoCI2. 6 H2O 0,45
Vitamíny byly sterilizovány filtrací přes filtr o velikosti pórů 0,22 μπι.
Rod
Použit byl rod Saccharomyces cerevisiae CEN.PK102-3A. Základní rod S. cerevisiae CEN.PK2 je komerčně dostupný od firmy EUROSCARF Mikrobiologického ústavu Goetheho university ve Frankfurtu (Institute of Microbiology, Johann Wolfgang Goethe-University Frankfurt, Marie-Curie-Strasse 9, budova N250, D-60439 Frankfurt, Německo).
Tento rod S. cerevisiae není schopný metabolizovat galaktózu, neboť gen GAL1 byl přerušen zavedením sekvencí, získaných z genu S.
- 16 • fr ·· ·· ··· · • * · · · · • ·· · · · • · · · · · ···· · ·· ·· ·· cerevisiae URA3. Hostitelský rod byl transformován expresním plasmidem, obsahujícím následující prvky:
Promotor:
GAL7 promotor, zaváděcí část GAPDH. GAL7 promotor: dvě po směru aktivující sekvence jsou vždy přítomné. Jsou dvěma přírodními prvky, které jsou částí sekvence, jak je uvedena.
Selekční markér: Leu2d
Signální sekvence: invertáza (SÍ/C2)
Cíl integrace: fragment opakované rDNA s jediným restrikčním místem pro cílovou integraci do specifické oblasti v kvasinkovém chromosomu XII.
Heterologní gen:
Příkiad 1: gen nemrznoucího proteinu, kódující nemrznoucí protein
HPLC12 sliznatky slepé (oceán pout) (ad WO-A-9702343);
Příklad 2: K609B, protilátka vůči virulentním faktorům selat;
Příklad 3: Protein VHH G, kterým je HGL11, tedy imunoglobulin tvořený těžkým řetězcem; inhibitor lipázy působící vůči lidské gastrické lipáze, uvedený v EP-A-1 134 231;
Příklad 4: Protein VHH P, kterým je HPL18, tedy imunoglobulin tvořený těžkým řetězcem; inhibitor iipázy působící vůči lidské pankreatické lipáze, uvedený v EP-A-1 134 231;
Proteiny z příkladů 2 až 4 jsou protilátky, které lze získat imunizací lamy postupem uvedeným v EP-A-1 134 231.
Kultivace
Uchovávání rodů
- 17 ·· * «· ·· ·· ···· • * * · · · · · · · 9 • · 9 9 99 9 9 9 • · ···· · · « · ······· «· «φ M φφ
Rody kvasinek byly uchovávány při -80 °C v jediné vsádce z růstových kultur YNB, naředěných v poměru 1:1 směsí odstředěného mléka a 20% glycerolu.
Za očko ván i:
ml YNB bylo zaočkováno 1 ml uchovávaného rodu a inkubováno 48 ± 2 hodiny při 30 °C a rychlosti míchání 150 otáček za minutu. Inokulum bylo následně převedeno do 500 ml 2% YPD a inkubováno 24 ± 2 hodiny při 30 °C a rychlosti míchání 150 otáček za minutu.
Fermentor
Kvašení bylo prováděno ve standardních kvasných tancích (fermentorech) s pracovním objemem 10 litrů. Pro kontrolu teploty byl fermentor vybaven chladící spirálou a zahříváním. Přepážky měly standardní velikosti. Pro míchání byl použit rotor typu Rushton se šesti lopatkami. Rozpuštěný kyslík (DO2) byl měřen elektrodou Ingold DO2-electrode (Mettler-Toledo) a hodnoty pH byly měřeny gelovou elektrodou Ingold Impro 3000 (Mettler-Toledo). K měření odpadního plynu byl používán spektrofotometr Prima 600 (VG plynový analyzační systém). Celý kvasný proces byl automatizován a softwarově řízen, ale lze ho provádět také manuálně na základě pokynů uvedených níže.
K řízení kvašení byl využit profil vyživování. Hodnota pH byla řízena za použití 3 mol.l'1 roztoku kyseliny fosforečné (Baker) a 12,5 % roztoku (objem/objem) amoniaku.
DO2 byl regulovaný na 30% hodnotu automatickou úpravou rychlosti rotoru až k dosažení maximální rychlosti míchání (1000 otáček za minutu).
···
- 18 • ♦ ·
Během kvašení byly prostřednictvím automatického zařízení na odběr vzorků odebírány vzorky o objemu 5 ml a ochlazeny na 4 °C ke stanovení sušiny a koncentrace produktu.
Vsádková fáze
K započetí vsádkové fáze bylo 500 ml inokula YPD přidáno do 5,5 litru vsádkového média. Parametry kvašení odpovídaly parametrům, uvedeným v Tabulce 3. Jakmile obsah ethanolu v odpadním píynu poklesl na 300 dílů z milionu, bylo zahájeno exponenciální vyživování.
Fáze vyživování
Vyživovací médium bylo rozděleno do dvou vyživovacích lahví, připojených na stejné čerpadlo.
Jedna vyživovací láhev obsahovala ethanol a vodovodní vodu v množství do 2 litrů objemu a obsah byl přiváděn do fermentoru přes spodní desku. Druhá vyživovací láhev obsahovala všechny ostatní složky výživy a vodu v množství do 2 litrů objemu a obsah byl přiváděn do fermentoru přes horní desku.
Z obou lahví, připojených na stejné čerpadlo, byla aplikována stejná exponenciální rychlost vyživování podle rovnice 1. Pro dvě lahve je výsledná rychlost vyživování rovna dvojnásobku rychlosti čerpání.
μ · Xo · e μΑ [g/min] (rovnice 1)
Φν( = rychlost vyživování μ = rychlost růstu
Xo = biomasa na začátku vyživování g/min h'1 g (mol. hm. = 24,6 g/mol)
- 19 ♦ · · · ·
t = doba od začátku vyživování pvyž = hustota (hutnost) vyživování Yxs = odhad, výtěžek biomasy 60 = časový faktor min g EtOH/g vyživování g X/g substrátu min/h
Parametry vyživování odpovídaly parametrům, jak jsou uvedeny v Tabulce 3.
Tabulka 3: Paremetry přísunu kvasné výživy pro kvašení s 10 litry ethanolu
parametr hodnota
μ (l/h) 0,06
Xo 1,06
Pvyi 0,41
^X,S 0,45
T vsádky (°C) 30
T výživy (°C) 21
průtok vzduchu vsádkou (l/min) 2
průtok vzduchu výživou (l/min) 6
DO2 (%) 30
minimum DO2 (%) 0
pH 5
SS min. (otáčky za minutu) 300
SS max. (otáčky za minutu) 1 000
kriterium EtOH na začátku vyživování (díly z mil.) 300
kriterium EtOH na začátku poklesu (díly z mil.) 800
maximum EtOH (díly z mil.) 2 000
počáteční celková rychlost vyživování (g/min) 0,28
lineární celková rychlost vyživování (g/min) 2
- 20 • 9 « 99 99 999999 «990 0000 00 * ·· 99 99 999
9 9999 9999
999· 909 99 09 99 99
Jakmile byla koncentrace kyslíku 0%, byly ustaveny omezující podmínky a rychlost čerpání byly upravena na lineární rychlost čerpání. Toto vyživování pokračovalo tak dlouho, dokud nebyla vyčerpána veškerá výživa.
Výsledky:
Příklad 1
ethanol jako zdroj uhlíku
čas AFP (mg/kg sušina specifická
(h) kvasného bujónu) (g/kg) produkce* (mg/g)
0 0 2,4 0
3 0 3,4 0
6 0 5,7 0
9 0 7,6 0
12 0 10,9 0
15 0 10,5 0
18 0 11,7 0
21 0 13,3 0
24 0 15,6 0
27 7,0 17,9 0,393
30 11,4 20,7 0,549
33 17,9 24,8 0,721
36 24,2 28,8 0,840
39 32,4 32,7 0,990
42 41,8 38,4 1,089
45 52,4 42,7 1,227
·»· ·
- 21 • · « 9 ♦
·· · · • · · · · · t • · ·· · · · ·· ·· · · · · » • · · » · · · * * ·· ·· ♦♦ ♦♦
čas (h) AFP (mg/kg kvasného bujónu) sušina (g/kg) specifická produkce* (mg/g)
48 66,9 49,0 1,366
51 78,7 55,0 1,432
54 93,7 60,6 1,546
57 112,2 64,8 1,732
60 132,1 68,6 1,925
63 151,2 71,9 2,104
66 165,8 75,5 2,195
* specifická produkce: mg AFP/g sušiny
Na základě těchto výsledků byiu učiněn závěr, že pokud produkce AFP, ve vyživovací fázi po omezujících podmínkách, stoupá a pokud pokračuje vyživování médiem, obsahujícím zdroj uhlíku, který je ze 100 % představován ethanolem, dochází k překvapivě vysoké specifické produkci AFP.
Byio pozorováno, že produkce biomasy zůstala konstantní, aniž by došlo k úbytku absolutní produktivity AFP.
Srovnávací příklad
Růstové médium ve vyživovací fázi neobsahovalo jako zdroj uhlíku ethanol, ale 100 % hmotnostních glukózy. Médium pro tento pokus bylo popsáno výše. Také podmínky vyživování, přiváděného do fermentoru, jsou popsány výše, přičemž byly uplatněny následující výjimky: Vyživovací médium bylo dodáváno do fermentoru pouze z jedné vyživovací láhve, obsahující veškeré složky a přívod byl do fermentoru zajištěn přes dolní desku. Použita byla exponenciální rychlost vyživování podle rovnice 1.
φφ φφφφ φ» φφ φ φ « φ φ φ φφ • φφφ φφφφ ΦΦΦΦ ΦΦ φφ
Parametry vyživování odpovídaly těm, které jsou uvedeny v Tabulce 3 kromě toho, že hodnota Xo byla ustavena na 2,11 mol k dosažení takové rychlosti vyživování při použití jedné lahve, jaká byla v ethanolovém kvašení dosahována za použití dvou vyživovacích lahví, zapojených na jedno čerpadlo.
Výsledky jsou následující:
čas (h) AFP (mg/kg sušina (g/kg) specifická produkce* (mg/g)
0 0 1,9 0
3 0 3,3 0
6 0 5,5 0
9 0 7,2 0
12 0 10,4 0
15 0 11,4 0
18 0 11,7 0
21 0,8 15,8 0,049
24 2,6 18,4 0,142
27 5,8 20,3 0,286
30 10,3 24,6 0,421
33 16,8 28,6 0,721
36 25,5 33,0 0,773
39 35,4 37,5 0,942
42 46,8 43,4 1,077
45 60,3 50,0 1,204
48 74,4 55,9 1,33
·· * ♦ φ φ φφ
ΦΦ ΦΦΦΦ • · Φ
ΦΦΦ
- 23 • Φ Φ 4 ΦΦ ΦΦ
Φ Φ Φ Φ ΦΦ ΦΦ
čas (h) AFP (mg/kg kvasného bujónu) sušina (g/kg) specifická produkce* (mg/g)
51 90,8 62,9 1,445
57 126,4 79,2 1,596
60 135,2 79,5 1,701
63 135,13 79,3 1,705
Byl učiněn závěr, že pokud růstové médium obsahuje jako zdroj uhlíku pouze glukózu, produkce AFP je snížena od okamžiku, kdy se ustaví omezující podmínky. Produkce AFP dále nestoupá a specifická produkce klesá.
Výsledky - Příklad 2
ethanol jako zdroj uhlíku glukóza jako zdroj uhlíku (srovnávací příklad 2)
VHH (mg/kg kvas. bujónu) sušina (g/kg) specifická produkce* (mg/g) VHH (mg/kg kvas. bujónu) sušina (g/kg) specifická produkce* (mg/g)
0 0,91 0 0 6,63 0,00
0 6,17 0 0 12,34 0,00
0 11,66 0 106,33 25,60 4,15
141,77 21,26 6,67 248,09 35,65 6,96
927,40 48,68 19,05 425,30 45,02 9,45
1063,26 51,65 20,58 673,40 57,59 11,69
1222,75 56,68 21,57 856,52 72,22 11,86
1151,87 55,31 20,83 915,59 71,31 12,84
* specifická produkce: mg heterologního proteinu / g sušiny
» 0 · ♦ 0 00 0 0 0 00 0
• 0 • 0 0 0 0 0 0 0
0 0 00 0 0 0
«
0 0 0 0 0 0 0 0
000· ·♦· 0 0 00 00 00
Byl učiněn závěr, že specifická produkce heterologního proteinu, využívající jako zdroj uhlíku ethanol, je mnohem vyšší než specifická produkce za použití glukózy jako zdroje uhlíku.
Výsledky - Příklad 3
ethanol jako zdroj uhlíku glukóza jako zdroj uhlíku (srovnávací příklad 3)
čas (h) VHH (mg/kg kvas. bujónu) sušina (g/kg) specif. produk- ce* (mg/g) čas (h) VHH (mg/kg kvas. bujónu) sušina (g/kg) specif. produk- ce* (mg/g)
3 0 2,87 0 21 103,45 17,19 6,02
6 0 5,73 0 27 127,59 20,78 6,14
9 0 6,93 0 33 227,59 28,66 7,94
33 268,97 45,37 5,93 39 272,41 36,78 7,41
36 417,24 50,86 8,20 45 327,59 47,52 6,89
39 537,93 54,45 9,88 51 413,79 57,07 7,25
42 689,66 56,36 12,24 57 503,45 64,48 7,81
63 565,52 67,10 8,43
69 596,55 69,73 8,56
* specifická produkce: mg heterologního proteinu/g sušiny
Byl učiněn závěr, že specifická produkce heterologního proteinu, využívající jako zdroj uhlíku ethanol, je mnohem vyšší než specifická produkce za použití glukózy jako zdroje uhlíku.
Výsledky - Příklad 4 • · • · · · ·
0 0 0 0 • 0 0 0 0 0 * · · · 0
0 »0
- 25 0
ethanol jako zdroj uhlíku glukóza jako zdroj uhlíku (srovnávací příklad 4)
čas (h) VHH (mg/kg kvas. bujónu) sušina (g/kg) specif. produk- ce* (mg/g) čas (h) VHH (mg/kg kvas. bujónu) sušina (g/kg) specif. produk- ce* (mg/g)
0 0,00 0,72 0,00 15 13,79 10,51 1,31
12 0,00 9,79 0,00 21 27,59 16,00 1,72
18 13,79 17,19 0,80 27 55,17 19,10 2,89
24 155,17 25,31 6,13 33 117,24 25,07 4,68
30 275,86 35,82 7,70 39 155,17 32,00 4,85
36 403,45 46,80 8,62 45 213,79 45,13 4,74
39 472,41 50,63 9,33 51 210,34 56,83 3,70
42 620,69 53,49 11,60 57 255,17 68,30 3,74
45 675,86 58,03 11,65
* specifická produkce: mg proteinu/g sušiny
Byl učiněn závěr, že specifická produkce heterologního proteinu, využívající jako zdroj uhlíku ethanol, je mnohem vyšší než specifická produkce za použití glukózy jako zdroje uhlíku.

Claims (13)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob výroby heteroiogníhoproteinu houbami, vyznačující se t í m , že zahrnuje kroky, při nichž se uvedené huby pěstují v médiu obsahujícím zdroj uhlíku, přičemž 50 až 100 % hmotnostních tohoto uhlíkového zdroje představuje ethanol a médium nádavkem obsahuje induktor, s tou výhradou, že se tento způsob netýká způsobů exprese, při nichž se ethanol používá jako induktor a také jako zdroj uhlíku nebo část takového zdroje.
  2. 2. Způsob výroby podle nároku 1, vyznačující se tím, že zahrnuje vsádkovou fázi a vyživovací fázi, přičemž médium pro vyživovací fázi obsahuje zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních představuje ethanol a médium vyživovací fáze nádavkem obsahuje induktor.
  3. 3. Způsob výroby podle nároku 2, vyznačující se tím, že médium pro vyživovací fázi obsahuje zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních představuje ethanol a toto médium pro vyživovací fázi nádavkem obsahuje induktor.
  4. 4. Způsob výroby podle nároku 2 nebo 3, vyznačující se t í m , že způsob se provádí ve fermentoru, který se vyživuje médiem takovou rychlostí vyživování, že koncentrace ethanolu ve fermentoru je udržována nižší než 10 % objemových.
  5. 5. Způsob výroby podle kteréhokoliv z nároků 1 až 4, který zahrnuje vsádkovou fázi, indukční fázi a fázi vyživování, vyznačující se t í m , že v uvedné fázi vyživování
    a) se buňky hub pěstují k dosažení buněčné hustoty alespoň 5 g/l v médiu obsahujícím jakýkoliv zdoj uhlíku, bez specifické volby, a
    - 27 • 4 4 «« ·4 4« 4444 »•44 4444 44 »
    4 4 4*44 4« 4 * 444 44 44·· 4
    4 4 44*4 4444
    4444 444 4· ·4 44 44 následně jsou buňky hub pěstovány k dosažení buněčné hustoty větší než 5 g/l, s výhodou od 10 do 90 g/l a ještě lépe od 40 do 60 g/l, za použití média, obsahujícího induktor a zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních představuje ethanol;
    b) se poté, co je dosaženo buněčné hustoty kroku (a), vytvoří podmínky omezeného růstu;
    c) se poté, co se ustaví tyto omezující podmínky, buňky dále pěstují na médiu, obsahujícím zdroj uhlíku, jehož 50 až 100 % hmotnostních představuje ethanol.
  6. 6. Způsob výroby podle kteréhokoliv z předcházejících nároků, vyznačující se tím, že způsob se provádí jako opakující se vyživivaný vsádkový proces.
  7. 7. Způsob výroby podle kteréhokoliv z předcházejících nároků, vyznačující se tím, že induktor se zvolí ze skupiny, zahrnující galaktózu, methanol, teplotu a fosforečnany.
  8. 8. Způsob výroby podle kteréhokoliv z nároků 2 až 7, vyznačující se tím, že vyživovací médium obsahuje 0,1 až 10 % hmotnostních gaiaktózy.
  9. 9. Způsob výroby podle kteréhokoliv z předcházejících nároků, vyznačující se tím, že zdroj uhlíku obsahuje 80 až 100 % hmotnostních ethanolu.
  10. 10. Způsob výroby podle kteréhokoliv z předcházejících nároků, vyznačující se tím, že houbami jsou kvasinky, s výhodou rodu Saccharomyces cerevisiae.
    fr· • · • • frfr • fr v • fr • fr • r • · • · fr • • • • frfr· • « • · • · * · ···· • •fr • fr ·· ·· • fr
  11. 11. Způsob výroby podle kteréhokoliv z předcházejících nároků, vyznačující se tím, že heterologní protein nebo peptid se zvolí z nemrznoucích peptidů, z protilátek nebo jejich fragmentů a z enzymů.
  12. 12. Způsob výroby podle nároku 5, vyznačující se tím, že vsádkové médium zahrnuje 1 až 40 % hmotnostních glukózy, vodu, stopové kovové prvky, volitelně protipěnivé činidlo, kvasničný extrakt, vitamíny, fosforečnanové soli a síranové soli a vyživovací médium obsahuje 5 až 35 % objemových ethanolu, 0,1 % hmotnostního až 10 % hmotnostních galaktózy, vodu, stopové kovové prvky, volitelně protipěnivé činidlo, kvasničný extrakt, vitamíny, fosforečnanové soli a síranové soli a rychlost vyživování Φ je od 0,25 do 4 g/min v desetilitrovém měřítku.
  13. 13. Heteroiogní protein, vyznačující se tím, že je získatelný způsobem podle kteréhokoliv z nároků 1 až 12.
CZ20031659A 2000-12-13 2001-11-16 Zpusob výroby heterologního proteinu CZ303983B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP00311095 2000-12-13

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ20031659A3 true CZ20031659A3 (cs) 2003-11-12
CZ303983B6 CZ303983B6 (cs) 2013-07-31

Family

ID=8173440

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20031659A CZ303983B6 (cs) 2000-12-13 2001-11-16 Zpusob výroby heterologního proteinu

Country Status (18)

Country Link
US (1) US7560249B2 (cs)
EP (1) EP1349945B1 (cs)
JP (1) JP4494716B2 (cs)
CN (1) CN1481439A (cs)
AT (1) ATE351911T1 (cs)
AU (2) AU1604902A (cs)
BR (1) BR0116675A (cs)
CA (1) CA2427665C (cs)
CZ (1) CZ303983B6 (cs)
DE (1) DE60126148T2 (cs)
ES (1) ES2278681T3 (cs)
HU (1) HU228689B1 (cs)
IL (1) IL156438A0 (cs)
MX (1) MXPA03005358A (cs)
PL (1) PL204737B1 (cs)
SK (1) SK287621B6 (cs)
WO (1) WO2002048382A2 (cs)
ZA (1) ZA200303353B (cs)

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2121916A1 (en) * 2006-12-20 2009-11-25 Danisco US, INC., Genencor Division Assays for improved fungal strains
US11214610B2 (en) 2010-12-01 2022-01-04 H. Lundbeck A/S High-purity production of multi-subunit proteins such as antibodies in transformed microbes such as Pichia pastoris
AU2016273912B2 (en) * 2011-05-20 2018-08-02 H. Lundbeck A/S High-purity production of multi-subunit proteins such as antibodies in transformed microbes such as Pichia pastoris
CA2837000C (en) * 2011-05-20 2021-09-14 Alderbio Holdings Llc High-purity production of multi-subunit proteins such as antibodies in transformed microbes such as pichia pastoris
US10150968B2 (en) 2011-08-19 2018-12-11 Alderbio Holdings Llc Multi-copy strategy for high-titer and high-purity production of multi-subunit proteins such as antibodies in transformed microbes such as Pichia pastoris
WO2014152145A1 (en) 2013-03-15 2014-09-25 Bristol-Myers Squibb Company Methods for producing antibodies
US20160230141A1 (en) * 2013-09-19 2016-08-11 Research Foundation Of The City University Of New York Process for increased yeast biomass
DK4089113T3 (da) 2015-03-31 2024-02-05 Sorriso Pharmaceuticals Inc Polypeptider
AU2016239949A1 (en) 2015-03-31 2017-09-07 Sorriso Pharmaceuticals, Inc. Peptide construct having a protease-cleavable linker
WO2016156474A1 (en) 2015-03-31 2016-10-06 Vhsquared Limited Polypeptide comprising an immunoglobulin chain variable domain which binds to clostridium difficile toxin a
WO2016156475A1 (en) 2015-03-31 2016-10-06 Vhsquared Limited Polypeptide comprising an immunoglobulin chain variable domain which binds to clostridium difficile toxin b
WO2018060453A1 (en) 2016-09-30 2018-04-05 Vhsquared Limited Compositions
EP3986570A1 (en) 2019-06-21 2022-04-27 Sorriso Pharmaceuticals, Inc. Compositions
US20230056445A1 (en) 2019-06-21 2023-02-23 Sorriso Pharmaceuticals, Inc. Polypeptides
US20220242945A1 (en) 2019-06-21 2022-08-04 Sorriso Pharmaceuticals, Inc. Polypeptides

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2109238T3 (es) 1989-07-07 1998-01-16 Unilever Nv Procedimiento para la preparacion de una proteina mediante un hongo transformado por integracion multicopia de un vector de expresion.
CZ698A3 (cs) 1995-07-05 1998-05-13 Unilever N. V. Exprese peptidu mořských ryb chránící proti zmrznutí v organizmu vhodném pro potravinářský průmysl a aplikace těchto peptidů v potravinářských produktech
EP1134231B1 (en) 2000-03-14 2009-04-15 Unilever N.V. Antibody heavy chain variable domains against human dietary lipases, and their uses

Also Published As

Publication number Publication date
CA2427665A1 (en) 2002-06-20
US20040077069A1 (en) 2004-04-22
DE60126148T2 (de) 2007-05-31
CN1481439A (zh) 2004-03-10
SK7402003A3 (en) 2003-09-11
EP1349945B1 (en) 2007-01-17
PL362773A1 (en) 2004-11-02
JP4494716B2 (ja) 2010-06-30
US7560249B2 (en) 2009-07-14
WO2002048382A2 (en) 2002-06-20
BR0116675A (pt) 2003-11-04
EP1349945A2 (en) 2003-10-08
AU1604902A (en) 2002-06-24
HUP0302655A3 (en) 2004-10-28
PL204737B1 (pl) 2010-02-26
DE60126148D1 (de) 2007-03-08
WO2002048382A3 (en) 2003-01-30
ATE351911T1 (de) 2007-02-15
IL156438A0 (en) 2004-01-04
HUP0302655A2 (hu) 2003-11-28
MXPA03005358A (es) 2003-10-06
JP2004515249A (ja) 2004-05-27
AU2002216049B2 (en) 2005-11-24
ZA200303353B (en) 2004-04-30
SK287621B6 (sk) 2011-04-05
HU228689B1 (hu) 2013-05-28
CA2427665C (en) 2011-10-11
CZ303983B6 (cs) 2013-07-31
ES2278681T3 (es) 2007-08-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ20031659A3 (cs) Způsob výroby heterologního proteinu
Kiers et al. Regulation of alcoholic fermentation in batch and chemostat cultures of Kluyveromyces lactis CBS 2359
Boze et al. Production of food and fodder yeasts
Eggeling et al. Derepression and partial insensitivity to carbon catabolite repression of the methanol dissimilating enzymes in Hansenula polymorpha
CN101983242A (zh) 含有尿素类氮源的发酵培养基及其用于生产次级代谢产物、酶和重组蛋白的用途
CN112626143B (zh) 一种l-赖氨酸的发酵方法
US4877731A (en) Fermentation process for carboxylic acids
CN112940945A (zh) 一种中国被毛孢发酵的方法
RU2713124C2 (ru) Способ повышения продукции изолимонной кислоты у дрожжей Yarrowia lipolytica, дрожжи вида Yarrowia lipolytica, обладающие способностью к продукции изолимонной кислоты
CA2662402C (en) Process for producing erythritol using moniliella tomentosa strains in the presence of neutral inorganic nitrates, such as potassium nitrate, ammonium nitrate or sodium nitrate, as nitrogen source
CN101270339A (zh) 分泌表达蛋白酶的酵母菌培养方法
Harvey et al. Liquid fermentation systems and product recovery of Aspergillus
US6750045B2 (en) Fermentation medium and method
US5702943A (en) Process for preparing a biomass on a cereal medium, use of the products so prepared and panification ferment
CN101709318A (zh) 一种产朊假丝酵母流加发酵制备谷胱甘肽的方法
RU2785901C1 (ru) Рекомбинантный штамм дрожжей Ogataea haglerorum - продуцент фитазы Escherichia coli
US4237233A (en) Method for cultivating Basidiomycetes
RU2757603C1 (ru) Штамм дрожжей Yarrowia lipolytica, продуцирующий изолимонную кислоту
Wongso Optimisation of industrial whey ethanol fermentation process: a thesis presented in partial fulfilment of the requirements for the degree of Doctor of Philosophy in Biotechnology at Massey University
CN114807259B (zh) 一种用于发酵生产谷氨酸的种子培养基和发酵培养基
US6303351B1 (en) Process for the continuous production of citric acid by fermentation
EP1363992A1 (en) Method for increasing the intracellular glutamate concentration in yeast
Liu et al. Improvement of glycerol production by Candida krusei in batch and continuous cultures using corn steep liquor
KR0177321B1 (ko) 재조합 효모로부터 인간 알파 인터페론의 대량 생산 방법
CN116286584A (zh) 一种耐高渗透压菌种筛选方法及在谷氨酸发酵中的应用

Legal Events

Date Code Title Description
MK4A Patent expired

Effective date: 20211116