CZ20023876A3 - Způsob a reagenční kit pro stanovení aktivity 5´-nukleotidázy - Google Patents

Způsob a reagenční kit pro stanovení aktivity 5´-nukleotidázy Download PDF

Info

Publication number
CZ20023876A3
CZ20023876A3 CZ20023876A CZ20023876A CZ20023876A3 CZ 20023876 A3 CZ20023876 A3 CZ 20023876A3 CZ 20023876 A CZ20023876 A CZ 20023876A CZ 20023876 A CZ20023876 A CZ 20023876A CZ 20023876 A3 CZ20023876 A3 CZ 20023876A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
activity
nucleotidase
substrates
nucleotide
measured
Prior art date
Application number
CZ20023876A
Other languages
English (en)
Inventor
András Bertha
István Tulok
Original Assignee
Pronuk Biotechnologiai Kft.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pronuk Biotechnologiai Kft. filed Critical Pronuk Biotechnologiai Kft.
Publication of CZ20023876A3 publication Critical patent/CZ20023876A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/34Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
    • C12Q1/42Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving phosphatase

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Způsob a reagenční kit pro stanovení aktivity 5'-nukleotidázy
Oblast techniky
Vynález se týká způsobu stanovení 5'-nukleotidázy (5'-ribonukleotid-fosfohydroiázy) v tělesných tekutinách, tkáňových preparátech a/nebo buněčných strukturních prvcích. Vynález se též týká soupravy příslušných reagencií v kitu, použitelné ve způsobu podle vynálezu.
Dosavadní stav techniky
Mezi metabolickými poruchami, které jsou spojeny s faktory maligních procesů nebo je doprovázejí nebo podporují, hrají důležitou roli též změny v metabolismu nukleotidů. Tím se vysvětluje, proč je jedním z hlavních cílů lékařových vstupů při léčbě nádorových onemocnění ovlivňování syntézy DNA/RNA a metabolismu nukleové kyseliny a nukleotidů těsně spojených s uvedenými procesy.
Zkoumání metabolických procesů nukleové kyseliny a nukleotidů má velkou důležitost pro detekci vývoje nádorů a pro rozlišení maligních a benigních procesů. Studium změn metabolických procesů nukleové kyseliny je nezbytné i pro sledování nádorové terapie, protože v převažující většině chemoterapeutických přístupů se terapeutický účinek projevuje umele vyvolanými poruchami metabolismu nukleové kyseliny a nukleotidů a v umělém poškození syntézy DNA. Tyto uměle vyvolané změny jsou rozhodujícími faktory pro účinnost terapie nádorových onemocnění, jsou však také odpovědné za podstatné poškození zdravých buněk a poruchy funkcí buněk a orgánů.
V běžných podmínkách je stanovení aktivity 5' -nukleotidázy (5'-ribonukleotid-fosfohydrolázy) , což je enzym zjištěný Reisem (Reis, J.: Uber die spezifische Phosphatase der Nerwengewebe; Enzymologia, sv. 2, ss. 110-115, 1937), jedním z nejvhodnějších způsobů. Tento enzym katalyzuje výhradně hydrolýzu nukleotidpentosamonofosfátů (5'-AMP, 5'-CMP, 5'-UMP, 5'-GMP, 5'-IMP, 5'-TMP, dAMP, dAMP, dCMP, dUMP atd), přičemž vznikají nukleotidy a anorganické fosfáty (Bodansky, O., Schwartz, M.K.:
• · · · • · · ·« ···<
5'-Nucleotidase; Adv. Clin. Chem., sv. 11, ss. 277-327, 1968), a lze jej považovat za jeden z nejcitlivějších markérů pro plasmatickou membránu. Stanovení aktivity 5' -nukleotidázy se používá jak pro klinické účely, tak pro pokusné testy; v prvním případě se obvykle provádí s nehemolyzovaným sérem a/nebo s hemolyzátem, zatímco ve druhém případě se může měření provádět s tělesným tekutinami, tkáňovými preparáty, (například plazmatickými membránami), nebo se strukturními prvky buněk (například mikrozómy, cytoplazmami a lyzozómy, (viz Solyom, A., Trans., E.G.: Enzyme Markers in Characterization of Isolated Plasma Membranes; Enzyme, sv. 13, ss. 329-372, 1972).
Protože 5'-nukleotidáza je enzym, který specificky štěpí nukleotidpentosamonofosfáty, je široce rozšířeným způsobem stanovení aktivity 5'-nukleotidázy inkubovat biologický vzorek s nukleotidpentosamonofosfátovým substrátem a pak po přidání vhodného reagentu pro barevnou reakci stanovit kolorimetricky nebo spektrofotometricky množství anorganického fosfátu uvolněného účinkem enzymu za časovou jednotku. Pokud zkoušený biologický vzorek obsahuje také složky, jež interferují s enzymem 5'-nukleotidázou (pro krev nebo sérum je takovou látkou alkalická fosfatáza, pro lyzozómovou membránu jsou takovými složkami ostatní fosfáty cukrů), provádí se inkubace v přítomnosti inhibitoru schopného inhibovat jejich účinky. Jako činidlo vyvolávající barevnou reakci se užívá molybdenan amonný v přítomnosti redukčního činidla, jímž je obvykle chlorid cínatý případně spolu s hydrazinovou solí nebo askorbovou kyselinou, reagující s anorganickým fosforečnanem za vzniku jasně modrého komplexu. Vzhledem k tomu, že molybdenan amonný sráží bílkoviny obsažené v biologickém vzorku, odstraňují se bílkoviny buď před provedením barevné reakce, nebo se drží v roztoku přidáním solubilizačního činidla do směsi. Podle našich vědomostí je tento druhý způsob jednou z nejnovějších kolorimetrických metod. Při použití tohoto způsobu lze množství vzorku potřebné pro stanovení zmenšit až na několik setin mililitru a značně zvýšit přesnost zkoušky. Stanovení aktivity 5'-nukleotidázy na základě výše uvedeného principu se podrobně • · popisuje spolu s jinými v následujících článcích a v dalších odkazech tam uváděných: J. Chem. Clin. Biochem., sv. 7, ss. 1825, (1969), sv. 13, ss. 453-459 (1975), sv. 15, s. 715-718 (1977), sv. 18, ss. 781-788 (1980); Clin. Chem., sv. 23, ss. 2311-2323 (1977), sv. 27, ss. 464-465 (1981); Adv. Clin. Chem., sv. 11, ss. 277-332 (1968).
Společným znakem všech rutinních metod používaných dříve pro stanovení aktivity 5'-nukleotidázy na výše uvedeném principu pro účely diagnózy nebo obecných experimentálních výzkumů je, že se aktivita enzymu vždy měřila na jediném substrátu. Jako substrát se nej častěji používá adenosin-5'-monofosfát (5'-AMP), méně často cytidin-5'-monofosfát (5'-CTP), nebo inositol-5'-monofosfát nebo (v hemolyzátech) uridin-5'-monofosfát (5'-UMP).
Při našich pokusech prováděných pro detekci zhoubných procesů a sledování účinnosti protinádorové terapie se měřila aktivita 5'-nukleotidázy v jediném biologickém vzorku současně na šesti rozdílných substrátech, totiž adenosin-5'-monofosfátu (5'-AMP), cytidin-5'-monofosfátu (5'-CMP), uridin-5'-monofosfátu (5'-UMP), guanosin-5'-monofosfátu (5'-GMP), inositol-5'monofosfátu (5'-IMP) a thymidin-5'-monofosfátu (5'-TMP). Aktivita nespecifické fosfatázy v biologickém vzorku se měřila na β-glycerofosfátovém substrátu a byla používána pro korekci. Jak bylo možno očekávat na základě výše citovaných odkazů, pozorovali jsme, že třebaže se hodnoty 5'-nukleotidázové aktivity měřené na různých nukleotidpentosamonofosfátech navzájem kvantitativně liší, u zdravých i nemocných osob existuje přísná korelace mezi hodnotami naměřenými na různých substrátech. Je tomu tak proto, že ve fysiologických podmínkách existuje v séru jako společném metabolickém médiu dynamická rovnováha v procesech metabolismu nukleové kyseliny a nukleotidů. Jak opět vyplývá z literatury, pozorovali jsme, že hodnoty 5'-nukleotidázové aktivity naměřené na výše uvedených šesti substrátech v sérech zdravých a nemocných osob se navzájem liší do takové míry, že je nelze připisovat rozdílům v chemické povaze substrátů, ale jsou výsledkem fysiologických • ·
procesů. Mimo očekávání jsme však zjistili, že výše uvedená přísná korelace se při terapii mění a značně rozdílné hodnoty se vyskytují v souvislosti s tím, zda uvedená terapie ovlivňovala purinový metabolismus, pyrimidinový metabolismus nebo thymidinový metabolismus. Proto lze rozhodnout na základě měření aktivity provedeného s výše uvedenými šesti různými substráty, jestli zvolená terapie je účinná, jestli působí v oblasti, v níž působit má, a zda vyvolává nežádoucí poškození buněk nebo ne. Tyto poznatky jsou základem našeho vynálezu.
Podstata vynálezu
Na základě výše uvedeného se vynález týká způsobu diagnostikování existence maligního procesu a/nebo monitorování výsledků terapie aplikované při její léčbě stanovením aktivity 5'-nukleotidázy, při němž se biologický vzorek inkubuje o sobě známým způsobem a za o sobě známých podmínek s nukleotidpentosamonofosfátem jako substrátem, uvolněný anorganický fosfát se působením molybdenanu amonného a redukčního činidla přemění na barevný komplex, známým způsobem se měří intenzita zbarvení a z naměřené hodnoty se známým výpočtem a/nebo pomocí kalibrační křivky vypočte aktivita 5'-nukleotidázy nebo množství anorganického fosfátu uvolněného za jednotku času jako hodnota úměrná aktivitě 5'-nukleotidázy. Podle vynálezu se jako nukleotidpentosamonofosfáty používají 5'-AMP, 5'-CMP, 5'-UMP, 5'-GMP, 5'-IMP a 5'-TMP, měření se provádí na všech těchto šesti substrátech a získané výsledky se porovnávají mezi sebou navzájem a s kontrolními hodnotami.
Protože při chemoterapeutické léčbě se objevují na všech šesti substrátech dobře pozorovatelné změny v aktivitě 5'-nukleotidázy již po krátké době (24 hodin), lze přijmout dobře odůvodněné rozhodnutí ohledně provádění, modifikací a ukončení terapie za kratší dobu a s menší dvojznačností. K tomu pro srovnání poznamenáváme, že změnu použitelnou jako základ pro taková rozhodnutí lze u většiny markérů nádorových onemocnění pozorovat až po asi 1 týdnu léčby.
Když se aktivita 5'-nukleotidázy měří současně na všech • · • ·
šesti výše uvedených substrátech a výsledky se sumarizují, lze stanovit mnohem spolehlivější diagnózu ohledně stavu pacienta a výskytu procesů v játrech a kostech než by bylo možno stanovit při měření pouze na jediném substrátu. To může být cennou pomocí při včasném rozpoznání zhoubných procesů.
Na základě postupného vzájemného propojení biochemických procesů může měření aktivity 5'-nukleotidázy na výše uvedených šesti substrátech nahradit stanovení enzymové aktivity, jichž se v experimentální a klinické praxi užívá méně často, protože jsou složitější a jako rutinní test se provádějí obtížně, pokud vůbec. Jedná se například o tyto možnosti náhrady nebo substituce: 5'-nukleotidáza —> cytidin-kináza -> cytidin-deamináza —> cytidin-trifosfátsyntetáza; 5'-GMP nukleotidáza —> guanosin-deamináza; 5'-IMP nukleotidáza -> IMP-dehydrogenáza; 5<-TMP nukleotidáza —» thymidin-kináza o thymidin-syntetáza.
Podrobné informace o reakčních činidlech potřebných při měření, reakčních podmínkách a způsobech výpočtu lze nalézt v literatuře, mimo jiné v článcích citovaných výše. Jako příklad v dalším uvádíme složení systému reagentů použitelného pro měření bez předběžného odstranění bílkoviny, což se ukázalo jako zvláště výhodné, a také popisujeme, jak by se měl použít v měřeních prováděných na vzorcích séra, společně se způsobem výpočtu, aniž bychom však omezovali rozsah použití způsobu podle vynálezu na tento systém reagentů a na níže popsané podmínky.
Použitelná reagenční činidla jsou tato:
(1) Roztok pufr/aktivátor:
až 400 mmol/1 TRIS, 5,0 až 10,0 mmol/1 MgCl2 nebo 2,0 až 5,0 mmol/1 MnCl2, 1,0 až 5,0 mmol/1 KCl; pH roztoku se upraví na 9,95 vodným 3M-6M roztokem HCI.
(2) Inhibitor:
Inhibitor se má použít pouze když biologický vzorek obsahuje látku, jež interferuje se stanovením aktivity 5'-nukleotidázy. Takovou látkou je pro krev a sérum alkalická fosfatáza, kterou lze inhibovat roztokem obsahujícím 10 až 20 « · g/1 L-cysteinu nebo L-glycinu nebo ekvivalentní množství soli L-cysteinu nebo L-glycinu, nebo 50 až 250 mg/1 Concavalinu A, přičemž je rozpouštědlem výše popsaný pufr. Když se měření provádí na lyzozómových membránách, používá se pro inhibici přítomných fosfátů cukrů roztoku 5 až 50 mmol/1 L(+)-vinanu ve výše uvedeném pufru.
(3) Substráty:
Jako substráty se používají 5'-AMP, 5'-CMP, 5'-UMP, 5'-GMP, 5'-IMP a 5'-TMP jako 1-10 mmolární roztoky v demineralizované vodě. β-glycerofosfát nebo dinatriumfenylfosfát se má jako substrát též použít v roztoku s toutéž koncentrací. Tyto posledně uvedené substráty jsou dva známé substráty pro stanovení aktivity nespecifické fosfatázy; tuto aktivitu je též třeba stanovit v zájmu přesného stanovení aktivity 5'-nukleotidázy.
(4) Regencie pro solubilizací bílkovin
Čistá (koncentrovaná) kyselina mravenčí nebo propionová v nejvyšším stupni čistoty.
(5) Stabilizační činidlo:
Směs glycerolu a vody v objemovém složení od 1:9 do 4:6, nebo vodný roztok sorbitolu koncentrace 0,5 až 5 % hmotn., nebo vodný roztok mannitolu koncentrace 0,25 až 2,5 % hmotn., nebo směs propanolu a vody v objemovém poměru od 1:2 do 1:1.
Doporučuje se rozpustit ve stabilizačním činidle v zájmu stálosti a zvýšení trvanlivosti při skladování malé množství (0,001 až 0,01 % hmotn.) azidu sodného.
(6) Reagencie pro barevnou reakci:
Roztok 5 až 10 gl molybdenanu amonného v demineralizované vodě.
(7) Redukční roztok:
Roztok 1 až 5 g/1 SnCl2 v 1M vodném roztoku chlorovodíkové kyseliny, nebo roztok 1 až 5 g/1 askorbové kyseliny v demineralizované vodě.
(8) Roztok fosfátového standardu:
Roztok 1,61 mmol/1 anorganického fosfátu, který se postupně ředí.
« * • ·
Měření se provádí takto:
Zkušební činidlo pro stanovení množství anorganického fosfátu se připraví přimícháním činidla pro solubilizaci proteinu v poměru objem/objem
- 4:1 až 1:1 pro vodný roztok glycerolu, nebo
- 3:1 až 1:1 pro vodný roztok sorbitolu, nebo
- 5:1 až 1:2 pro vodný roztok mannitolu, nebo
- 7:1 až 4:1 pro vodný roztok n-propanolu, a přidá se činidlo pro barevnou reakci v množství 15 až 25 % obj. z celkového objemu finální směsi.
Složky uvedené v prvních pěti řádcích v tabulce 1 se smísí dohromady v množstvích udaných v tabulce a výsledná směs se inkubuje 60 minut při 37 °C. Potom se ke směsi přidají další složky uvedené v tabulce 1 a výsledná směs se míchá, potom se nechá 15 minut stát a pak se měří absorbance roztoku při 620 až 720 nm. Sloupec v tabulce 1 s nadpisem 5'-ND+ALP se týká měření, v němž se měří aktivita 5'-nukleotidázy společně s aktivitou alkalické fosfatázy (to znamená že se nepoužije inhibitoru), zatímco sloupec s nadpisem 5'-ND se týká měření provedeného v přítomnosti inhibitoru pro alkalickou fosfatázu. Aktivita nespecifické fosfatázy se objevuje ve výsledcích obou měření. Aktivita nespecifické fosfatázy se stanoví zvlášť na βglycerofosfátovém substrátu v přítomnosti inhibitoru; získaná hodnota se odečte od předchozích a získá se aktivita 5'-nukleotidázy + alkalické fosfatázy, resp. aktivita 5'-nukleotidázy.
Výpočet se provádí následovně:
(a) Výpočet extinkčních rozdílů (hodnoty ΔΕ):
β“ gl yCe rO f O S f a t . Evzorek E^ontrola ^Ep_gjyCerofosfát dalSl Substráty . Evzorek — E)<ontrolní vzorek
ΔΕ5 - -AMP, 5 ' -CMP, 5 ’ -UMP, 5 ' -GMP, 5 ' -TMP, 5 ' -IMP
Standard. E3t-_arKjar3 — E^ontrolni činidlo ΔΕ3,&ηάΐίΓά «» ·· • · « · • · » v · * • « « 9 • · • ♦ · • · ··«· ·»·· ♦ · (b) Výpočet aktivit enzymu na bázi výše uvedených hodnot ΔΕ
Vzorek ΔΕ
Aktivita, U/l vzorku =---------------x standard cc. x K
Standard ΔΕ kde standard cc. je koncentrace standardu a
K je konstanta vypočtená z následujícího vzorce:
veškerý inkubovaný objem, ml x 1000 doba inkubace, min. x objem vzorku, ml x tloušťka kyvety (c) Výpočet jednotlivých aktivit enzymů nebo spojených aktivit na základě výše uvedených údajů:
Aktivita nespecifické fosfatázy = aktivita měřená na β-glycerofosfátu
Aktivity 5'-nukleotidázy měřené na různých nukleotidpentosamonofosfátech = 5'-ND aktivita - aktivita nespecifické fosfatázy Aktivita 5'-nukleotidázy + alkalické fosfatázy = 5'-ND+ALP - aktivita nespecifické fosfatázy Aktivita alkalické fosfatázy = 5'-ND+ALP - 5'-ND - aktivita nespecifické fosfatázy
Pokud je biologický vzorek jiný než sérum, provádí se měření stejně s tím rozdílem, že někdy není nutný žádný inhibitor, nebo se používá jiný inhibitor. Výpočty se rovněž provádějí jak uvedeno výše.
0(r • * « « « · • * • ·· ·
Φ * «·* • * · * • » • · * • · • •4 0 ·<*·
Tabulka
Kontrolní reagens 1 I 1 1 1 0,750 ml 0,250 ml 1 ι 1 0,125 ml
Ό l—1 l—1 r—| I-1
β β β β β
ίΰ
Ό o m Ln LO
β lc 04 04 04
β r- rH x—1 rH
4-)
ω o o o o
Ή r-Η ι—1 i—l i—1 ι—1 1—1
β ld Ο β 4-) β rek β m β Lf) g o β m β m β Ln
ο 04 r- 1 1 Ln 04 04 1 04
Ν rH o r- o O i—1
> K K.
Ο o o o o o
ι—1 Γ—1 i—1 1-1 ι-l 1—1 <—1
Q β β β β β β β
S LO o Lf) LO Ln o m
04 O) 04 04 04 Ln 1 1 04
ίη ,—1 O O O O Γ rH
«*. »».
ο o o o o O o
Οκ 1-1 i—| 1-1 rH i—1 I—1
á β β β β β β
+ Q Ζ LO Lf) Lf) LO o Ln
04 θ' 04 04 m 04
<—1 o O O r- t—1
S. K. V K Ν» K.
LO ο o o o o o
(t β
m Ό
o w c O
β > > A4
áto ineralizovaná β β β β 4-1 age: ineralizovaná β β β 4-J Ό roztc
Α4 Ο iv (J 4J '05 re 'Φ tn ar
4-) Ν Ο (k /akt InhibJ Aí Φ ubst bní Αί Φ ubst tand Redukční
Pufr Vzor cn Zkuše Vzor cn cn
β β
Φ o
Q Q
I
Z hodnot aktivit 5'-nukleotidázy získaných s jednotlivými substráty ve výše uvedených řadách měření lze odvodit následující biologické závěry:
Rozhodnutí o zdravotním stavu: hodnota získaná sečtením šesti naměřených údajů o aktivitě charakterizuje nepřítomnost nemoci až do hodnoty 54 až 65 U/l, za předpokladu že je současně aktivita alkalické fosfatázy 10 až 25 U/l. Pokud je aktivita alkalické fosfatázy nad 50 U/l a zároveň součet údajů o aktivitách 5'-nukleotidázy je 54 až 65 U/l, znamená to indikaci zhoubných procesů v kostech. Je-li součet aktivit 5'-nukleotidázy nad 70 U/l, jde o bezpečnou indikaci chorobného stavu. Je-li zároveň aktivita alkalické fosfatázy nad 35 U/l, jde o spolehlivou indikaci poškození jater. Při zhoubných nádorech jater jsou jak součet hodnot aktivit 5'-nukleotidázy tak i aktivita alkalické fosfatázy 4 až 10 krát vyšší než normální hodnoty.
Hodnocení terapie: změna aktivit měřených na substrátech 5'-AMP, 5'-GMP a 5'-IMP udává, že protinádorové terapie intervenovala do purinového metabolismu, zatímco změna aktivity měřená na substrátech 5'-CMP, 5'-UMP a 5'-TMP indikuje intervenci do pyrimidinového metabolismu. Nezměněné hodnoty indikují, že terapie je bezvýsledná. Pokles aktivity vždy indikuje blahodárnou intervenci užité terapie do procesu. V mnoha případech se stává, že po aplikované chemoterapii je pokles aktivit 5'-nukleotidázy tak výrazný, že aktivity měřené jednotlivě na individuálních substrátech i součet těchto aktivit jsou nižší než 10 U/l, a že dokonce lze někdy získat pro aktivity 5'-nukleotidázy negativní hodnoty. Je to způsobeno tím že terapie atakuje nukleotidový metabolismus, ale neovlivňuje hodnoty aktivit nespecifické fosfatázy; negativní hodnota aktivity se získá, když se odečtou vyšší hodnoty aktivity nespecifické fosfatázy od nižší hodnoty aktivity 5'-ND. Když jsou hodnoty aktivity 5'-nukleotidázy nižší než hodnoty získané kontrolní zdravé subjekty, je to již indikace cytotoxického poškození zdravých buněk s rychlým nukleotidovým
metabolismem (primárně střevní sliznice, kostní dřeně a erythrocytů), zvláště když k této změně dojde u aktivit všech 5'-nukleotidáz měřených na všech šesti substrátech. V takových případech je třeba terapii buď pozměnit nebo zastavit.
Vynález se též týká soupravy reagencií umístěné v kitu použitelné při způsobu podle vynálezu, jež obsahuje jako substráty 5'-AMP, 5'-CMP, 5'-UMP, 5'-GMP, 5'-IMP a 5'-TMP spolu s obvyklými komponentami kitů pro reagencie použitelnými pro stanovení aktivity 5'-nukleotidázy vytvořením anorganického fosfátu, přeměnou výsledného fosfátu na barevný komplex a fotometrickým měřením barevné intenzity.
Obvyklé komponenty kitu s reagenciemi mohou být ty, jež se používají pro známé metody, například složky popsané ve výše uvedených publikacích. Výhodný kit s reagenciemi může obsahovat následující obvyklé komponenty:
- pufr,
- činidlo pro solubilizaci bílkovin,
- stabilizační činidlo,
- činidlo pro barevnou reakci,
- redukční činidlo,
- fosfátový standard, dále v případě potřeby
- inhibitor a/nebo
- jiný substrát než nukleotidpentosamonofosfát (jako β-glycerofosfát).
Výhodné příklady výše uvedených obvyklých složek představují složky uvedené výše při popisu provedení způsobu podle vynálezu. Kit s reagenciemi může běžné složky obsahovat buď jako roztoky ve výše uvedených koncentracích, nebo jako koncentrovanější roztoky, jež se zředí před použitím, nebo jako čisté chemikálie.
V dalším se jako příklad uvádějí výsledky měření aktivity
5'-nukleotidázy provedeného na vzorcích séra spolu se závěry odvozenými od tohoto měření. Množství jednotlivých látek a podmínky testu vždy odpovídaly množství a podmínkám uváděným v tabulce 1. Přesná složení jednotlivých reagencií použitých při
měřeních jsou tato:
(1) Roztok pufr/aktivátor: 75,0 mmol/l TRIS.HC1, 5,0 mmol/l MgCl2, 5,0 mmol/l Kl, pH 9,3.
(2) Inhibitor: 0,29 g L-cysteinhydrochloridu rozpuštěného ve 20,0 ml roztoku pufr/aktivátor.
(3) Substráty: roztoky 8,0 mmol/l 5'-AMP, 5'-CMP, 5'-UMP, 5'-GMP, 5'-IMP, 5'-TMP a β-glycerofosfátu v demineralizované vodě.
(4) Činidlo solubilizující bílkoviny: čistá (koncentrovaná) kyselina mravenčí v nejvyšším stupni analytické čistoty.
(5) Stabilizační činidlo: 300 ml glycerolu v nejvyšším stupni analytické čistoty + 700 ml demineralizované vody + 0,05 g NaN3.
(6) Činidlo pro barevné reakce: roztok 8,0 g/1 molybdenanu amonného v demineralizované vodě.
(7) Redukční činidlo: 0,20 g SnCl2 rozpuštěného ve 100 ml l,0M vodného roztoku chlorovodíkové kyseliny.
(8) Standardní fosfátový roztok: roztok anorganického fosfátu Dyalab® v koncentraci 1,61 mmol/l (pro další tisícinásobné zředění).
Zkušební činidlo: 200 ml složky (4) smíšené s 200 ml složky (5) a 100 ml složky (6).
Měření se prováděla v těchto případech:
- Na zdravých osobách a na osobách s klinicky diagnostikovanými nádory před léčbou. Výsledky se uvádějí v tabulce 2.
- Pro sledování terapie CMF (cyklofosfamid - methotrexát 5-fluorouracil) pacientek s nádory prsů po chirurgickém zákroku. Výsledky se uvádějí v tabulkách 4 a 5.
- Pro sledování methotrexátové terapie (antagonizující činidlo na bázi listové kyseliny) pacientů s osteosarkomem. Výsledky jsou uvedeny v tabulce 7.
Pro zjednodušení se v tabulce 2 a dalších uvádějí pouze symboly příslušných substrátů; vždy se však vztahují k hodnotám 5'-nukleotidázy měřeným na daných substrátech.
Tabulka
Aktivita enzymu, U/l + standardní odchylka Alkali- fosfát CM šP 00 r-L +1 45, 7 ±7,8 65, 5 ±11,2 57, 6 ±12,3 23,4 ±4,4 43,3 ±6, 2 41,3 ±6, 8 CM ™ CM 2! LO 167, 6
Q £ 1 LO w o; £ +1 161,4 ±5, 33 287, 8 ±6, 3 235,56 ±6, 98 144,11 ±5, 13 220, 1 ±5, 71 88, 01 ±2, 61 360,4 ±10,15 CO ·». LT) sr
cu £ H 1 K LD LO CO co ® CM +l ST tH *«. *» O UD cn +1 I—1 LO LO CTi sr +1 LO CM V % co cn T—4 +| 15,5 ±3,2 23,2 ±4,3 34 ±4, 5 co cn
CU £ M 1 K ID 3, 3 ±0,9 10,6 ±3,3 r- un *» *». cn cn t—i +1 17, 8 ±5,2 rd CM i—1 - CM σι +| r~ cn v O rU +1 co K. °° +i cn (O v CM fO +1 3, 3
CU S 1 LO r-1 _? Γ-) +1 č ** —♦« 33,2 i ±4,4 22,3 ±4,4 11,6 ±6, 3 21,2 ±5,2 cn r~~ 00 s. LO O +1 34 ±5, 9 sr LQ
cu 1 K LO ST 00 +1 00 r-~ sr sr cn +1 r—1 ΟΊ *1. r-~ LO +1 sr cn s. s, LO LO sr ±1 34,5 ±5,1 lo sr θ' ΓΙΟ +| 15, 8 ±2, 9 co 10 co 2 r- +1 8,2
CU £ o 1 K LO 10,1 ±2, 2 50, 92 ±9, 8 00 ý LO LO li CTl Tl co r- o cn r~ +1 oo sr 00 sr +1 o í co 23,7 ±3, 8 sr sr *» cn cn CN t—1 -Η Ή CO o t—1
CU 1 LO LO ™ LO LO r-L sr v. m 5* CM +l 47,56 ±7, 8 í cn 23, 5 ±5, 6 lo cn »». sr cn cn +1 10, 8 ±2,3 67,7 ±13, 4 9, 2
Testované skupiny chorob Kontrolní zdravé osoby, 1 n = 157 | i Karcinom prsu, n = 341 Karcinom vaječníků, n = 189 Karcinom štítné žlázy n - 76 Nehodgkinský lymfom, n = 45 Hodgkinova choroba, n = 36 Zhoubný melanom n = 1567 Plicní tumor n = 76 Lymfom s manifestací na
• ·
±23 56, 7 ±11,2
ΟΊ ω γΗ
ω ΚΤ
Γ- σ VD
+1 τ—1 ±1
co CO
s. Κ Κ
r*H ’χΓ
+1 ω ±1
Csl σι σ
ο CO
+1 ω ±1
σ 00 ±12
±0, L0 χςΤ
VD
ϊ~Η κ ϊ—ί
** η
+1 Ο 5—1 ±1
Γ- Γ ·>» C0
σ C\]
rH +1 00 τΉ +1
C0 Γ~ σ
(Μ +1 cn’ C0 ±1
C
μΗ
υ kO
ω π3 Γ—
CN Ρ
ω II
II ω
Ρ ΰ
G •Η
C
Ρ
Ή g υ
Ρ ω
W ρ
ο Ρ
ρ g 'ίΰ
0 *Γ~1
<w
Ρ
♦ » · · · • · • · · • · · · ·
Z údajů v tabulce 2 je zřejmé, že s výjimkou lymfomu + manifestace na kosti byly hodnoty aktivity 5'-nukleotidázy měřené na šesti substrátech značně zvýšené u pacientů trpících vyšetřovaným zhoubným nádorovým onemocněním ve srovnání s kontrolními hodnotami zdravých osob. Součet hodnot aktivity 5'-nukleotidázy (E5'-ND) ukázal nejvýraznější vzrůst v případě plicních nádorů a/nebo lymfomů ve spojení s manifestací na játrech.
Vzrůst aktivity alkalické fosfatázy byl ve srovnání se změnou aktivity 5'-nukleotidázy nejvýraznější pro lymfomy ve spojení s manifestací na kosti.
Tabulka 3
Srovnávané dvoj ice Korelace
5'-AMP 5'-CMP 0,9943
5' -MAP 5' -UMP 0,9728
5'-AMP 5' -GMP 0,9234
5'-AMP 5' -IMP 0,9656
5'-AMP 5'-TMP 0,9878
5'-CMP 5' -UMP 0,9456
5'-CMP 5' -GMP 0,9678
5'-CMP 5' -IMP 0,9489
5'-CMP 5' -TMP 0,8978
5'-UMP 5' -GMP 0,8989
5'-UMP 5' -IMP 0,9323
5' -UMP 5' -TMP 0,9562
5'-GMP 5' -IMP 0,8978
5'-GMP 5' -TMP 0,9545
5'-AMP β-glycerofosfát 0,8978
• 4 • 4 · •4 4444
Z údajů v tabulce 3 je zřejmé, že lze nalézt přesné korelace mezi hodnotami aktivity 5'-nukleotidázy jednotlivých substrátů i mezi aktivitou měřenou na 5'-AMP a aktivitou měřenou na β-glycerofosfátu, indikující aktivitu nespecifické fosfatázy, a to jak u pacientů trpících vyšetřovanými zhoubnými nádorovými onemocněními a připravovaných k léčbě, tak u kontrolních případů zdravých pacientů.
Výsledky měření za účelem monitorování terapie pacientek po odoperování tumoru prsu s následnou chemoterapií jsou uvedeny v tabulkách 4 a 5. Tabulka 4 shrnuje údaje úspěšných případů, zatímco tabulka 5 shrnuje údaje o případech rezistentních vůči terapii CMF. Údaje získané po změně terapie jsou též dány v tabulce 5. Při změně terapie se pacienti podrobili terapii cisplatinou a aktivity 5'-nukleotidázy se měřily 1 den po první léčbě (*) a 1 den po ukončení terapie (**), Ve všech ostatních případech se měření prováděla 24 hodin po reálné chemoterapeutické léčbě. Za účelem srovnání se též uvádějí hodnoty naměřené u zdravých kontrolních osob.
Tabulka 4
Aktivita 5'-nukleotidázy, U/l + standardní odchylka
5'-AMP 5'-CMP 5' -UMP 5'-GMP 5'-IMP 5'-TMP Σ5'-ND
Kontrolní 6, 5 10,1 co 4,1 3,3 8,9 40, 9
test, zdravá osoba ±1,2 ±2,2 ±1, 6 ±1, 1 ±0, 9 ±1, 6 ±1,43
Nemocný, 29, 4 34,7 11,8 7,9 7,6 19, 8 112,2
před CMF ±3,7 ±7,8 ±3, 4 ±1,8 ±1,1 ±3,7 ±3,5
Po 1 řadě 11, 6 3,4 4,6 2,3 3,2 4,5 29,6
CMF ±2,1 ±0,9 ±1,2 ±0,8 ±0, 9 ±1,4 ±1,2
Po 3 řadách 3,4 2,3 2,1 -2,4 -2,8 1,1 1,28
CMF ±1,1 ±0, 9 ±0, 9 ±0, 1 ±0, 8 ±0,03 ±0,63
Po 6 řadách 0,7 -1,7 2,2 -3, 3 1,1 -3,4 -4,4
CMF ±0, 04 ±0,3 ±0, 7 ±0,8 ±0,1 ±0,7 ±0,44
• ·
Z těchto údajů lze odvodit následující závěry: aktivity 5'-nukleotidázy měřené na substrátech 5'-CMP, 5'-GMP, 5'-IMP a 5'-TMP značně poklesly již po první řadě podání CMF. Po třetí řadě podání CMF bylo možno pozorovat značné poklesy aktivit 5'-nukleotidázy měřené na substrátech 5'-AMP, 5'-GMP a 5'-IMP. Po šesté řadě podání CMF bylo možno pozorovat značné poklesy aktivit 5'-nukleotidázy měřené na substrátech 5'-AMP, 5'-CMP, 5'-GMP a 5'-IMP. Při kombinacích léků je obtížné definovat účinek v oblasti působení v důsledku rozdílných oblastí působení jednotlivých komponent. V takových případech slouží jako vodítko srovnání se stavem před léčbou. Změřené údaje ukazují, že použitá kombinace léků projevila svůj terapeutický účinek ve dvou fázích v podobě důsledků vyvolaných v metabolických procesech jednak purinu, jednak pyrimidinu.
Tabulka 5
Aktivita 5'-nukleotidáz y, u/1 + standardní odchylka
5'-AMP 5'-CMP 5'-UMP 5'-GMP 5'-IMP 5' -TMP Σ5'-ND
Kontrolní 6,5 10,1 CO ►u 4,1 3,3 8,5 40,9
test, zdravá osoba ±1,2 ±2,2 ±1,6 ±1,1 ±0, 9 ±1, 6 ±1,43
Nemocný, 39, 6 72, 4 45, 8 23,7 18,9 24,7 225,11
před CMF ±8,67 ±11,3 ±10, 9 ±7,8 ±3, 5 ±6,2 ±8,05
Po 1 řadě 26, 7 68, 9 40,2 19, 8 16, 4 21,1 193,1
CMF ±5,3 ±10,2 ±9, 9 ±6, 9 ±4,6 ±5,2 ±7,01
Po 3 řadách 20, 3 43,2 26, 5 4,2 2,3 8,9 115,4
CMF ±3,4 ±8,1 ±5,7 ±1,1 ±0, 9 ±1, 8 ±3,5
Po 6 řadách 4,1 3, 6 4,4 -1,6 1,1 1,2 12,8
CMF ±1, 3 ±0, 9 ±1, 5 ±0, 8 ±0, 6 ±0, 3 ±1,2
Když byla léčba CMF neúčinná, nebylo možno nalézt žádné změny v aktivitách 5'-nukleotidázy měřené na jednotlivých substrátech; proto pokračovala cisplatinová terapie. Z výsledků jsme zjistili, že již v prvním stádiu • 4 ··
4 4 4
4
4
4 4 4 léčby (24 hodin po léčbě, v tabulce označeno *) došlo k významným změnám v aktivitách 5'-nukleotidázy příslušných k různým substrátům; zejména na substrátech zúčastněných na purinovém metabolismu bylo možno pozorovat značný pokles. Hodnoty naměřené prvního dne po ukončení léčby cisplatinou (v tabulce označeno **) svědčí, že změny purinového metabolismu jsou časem následovány změnami v pyrimidinovém metabolismu, přičemž je třeba poznamenat, že se tyto změny dvou metabolických procesů skládají.
Naše testy zjišťují neúčinnost terapie CMF již 5 dní před měřením diagnostickým indikátorem tumoru CA 15-3 (který též indikuje neúčinnost), takže pacienti mohou být ušetřeni pěti dnů nadbytečné léčby CMF.
Úspěch a účinnost terapie rovněž odráží skutečnost, že se mění původní přísná korelace mezi hodnotami aktivity 5'-nukleotidázy měřenými na změnách různých substrátů. Hodnoty korelace, vypočítané po úspěšné terapii jsou uvedeny níže v tabulce 6, kde jsou pro srovnání zařazeny i hodnoty získané před léčbou.
Tabulka 6
Korelace
Srovnávané dvojice Před chemoterapií Po chemoterapii
5'-AMP 5'-CMP 0,9856 0,6767
5'-AMP 5'-UMP 0,8997 0,4561
5'-AMP 5'-GMP 0,7845 0, 3267
5'-AMP 5'-IMP 0, 8967 0,4519
5'-AMP 5'-TMP 0,7897 0, 4687
5'-CMP 5'-UMP 0,9897 0,5639
5'-CMP 5'-GMP 0,7868 0,2345
5'-CMP 5'-IMP 0,8887 0, 2689
5' -CMP 5'-TMP 0,6767 0,1123
5'-UMP 5'-GMP 0,8978 0,3493
• ·
5' -UMP 5' -IMP 0,8889 0,0567
5' -UMP 5'-TMP 0,8992 0,3635
5' -GMP 5' -IMP 0,9981 0,4684
5' -GMP 5' -TMP 0,9767 0,4781
5' -IMP 5' - 0,8898 0,4356
Údaje v tabulce 6 ukazují, že původní přesná korelace mezi aktivitami 5'-nukleotidázy měřenými na různých substrátech zmizela, což též znamená, že měření na různých substrátech umožňují samostatně detekovat a vyhodnocovat jednotlivé biologické procesy k nimž během léčby dochází.
Stanovení aktivity 5'-nukleotidázy pomocí výše uvedených šesti substrátů rovněž poskytuje nenahraditelné a užitečné informace v případech, když chemoterapie nemá žádný přímý účinek na metabolismus nukleotidu. Dobrým příkladem takové situace je léčba pacientů s osteosarkomem pomocí methotrexátu. Methotrexát je látka antagonizující působení listové kyseliny, nemá přímý účinek na metabolismus nukleotidu, takže každá změna v metabolismu nukleotidu, k níž dochází při léčbě methotrexátem indikuje novou syntézu nukleotidu, to znamená poškození zdravých buněk. Každé poškození k němuž při léčbě dochází v podobě vedlejšího účinku má trvale vážné následky; takovým následkem může být například snížení buněčné a humorální imunity, jež též může přivodit tvorbu nového tumoru.
V tabulce 7 jsou shrnuty změny aktivit 5'-nukleotidázy měřené na pacientech s osteosarkomem léčených dávkami 12,0 g methotrexátu.
Tabulka 7
Aktivita 5'-nukleotidázy, U/l
Pyrimididinový, metabolismus Purinový metabolismus
Doba 5'-AMP 5'-CMP 5'-UMP 5'-GMP 5'-IMP 5'-TMP
····
0 min. -8,39 5, 33 5,05 3,34 3,77 1,56
15 min. -3, 12 2,21 0, 14 0, 57 -0,2 -6,75
30 min. -11,87 -2,19 1,92 -2,19 2,98 -6, 89
1 hod. -5,05 2,41 1,2 -2,1 1, 34 -1, 01
2 hod. -4,84 5, 97 2,77 2,84 -3,49 -2,49
3 hod. -0,5 8, 6 4,05 7,61 5, 68 2,41
4 hod. -3, 63 6,76 4,19 0, 92 -0,28 -3, 98
6 hod. -10,32 -1,63 -1,85 -5,48 -2,7 -3,7
12 hod. -1,71 -0,15 1,48 1, 98 3, 69 -4,49
21 hod. -2,56 6,04 5,83 -0, 99 0,35 -4,84
44 hod. 31,38 4,69 7,89 1, 99 -12,95 -9,46
69 hod. 7, 96 18,42 14,93 13,16 13,01 8,6
90 hod. 6,83 13,09 15,16 3,49 10,1 3,63
162 hod. -12,6 6, 97 29,53 -6,33 -1,99 -1,35
186 hod. 1,41 7,53 12,16 14,94 6,54 0, 35
210 hod. 5,76 4,48 7,39 3, 91 -3, 91 0,92
234 hod. 8,61 3,48 10,88 8,68 5,47 6,11
258 hod. 3, 99 2,42 2,64 0,22 0,43 -5,82
330 hod. 9,25 7,47 2,99 8,46 10,53 -2,7
358 hod. 9,67 5,47 4,9 5,97 -2,28 2,56
402 hod. 5,18 8, 03 9,59 8,24 6,04 5,4
Z údajů v tabulce 7 lze odvodit následující závěry: Výsledky stanovení aktivity 5'-nukleotidázy provedené na šesti substrátech použitých pro studium změn v pyrimidinovém a purinovém metabolismu ukazují, že v první etapě léčba ovlivňuje pyrimidinový metabolismus. Rozdíly mezi oběma cestami metabolismu jsou zvláště výrazné 44 hodin po léčbě. Rovněž se zdá z údajů v tabulce 7, že lze pozorovat značné rozdíly mezi jednotlivými substráty také uvnitř jedné a téže metabolické dráhy. Tento jev je nepochybně způsoben rozdíly mezi biochemickými funkcemi jednotlivých substrátů. Při sledování terapie způsobem podle vynálezu je možno terapii zastavit nebo změnit dříve než by detekovaná porucha mohla vést k vážnějším změnám v podobě pozdějších následků.
Třebaže byly výše popsány způsob a kit s reagenciemi podle vynálezu v souvislosti s diagnostickým využitím, • · · · · · není rozsah vynálezu tímto typem aplikace omezen. Tento způsob i kit s reagenciemi se též může s vynikajícími výsledky používat pro účely výzkumu, například pro detekování mechanismu určitých zhoubných procesů, pro zkoušky známých nebo nových protinádorových léků a pro zkoumání mechanismu jejich působení.

Claims (7)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    9 9 9 9 9
    9 99 9 9 9 9 9 9 99 9
    1. Způsob diagnostikování existence maligního procesu a/nebo monitorování výsledků terapie aplikované při její léčbě stanovením aktivity 5'-nukleotidázy, při němž se biologický vzorek inkubuje o sobě známým způsobem a za o sobě známých podmínek s nukleotidpentosamonofosfátem jako substrátem, uvolněný anorganický fosfát se působením molybdenanu amonného a redukčního činidla přemění na barevný komplex, známým způsobem se měří intenzita zbarvení a z naměřené hodnoty se známým výpočtem a/nebo pomocí kalibrační křivky vypočte aktivita 5'-nukleotidázy nebo množství anorganického fosfátu uvolněného za jednotku času jako hodnota úměrná aktivitě 5'-nukleotidázy, vyznačující se tím, že se jako nukleotidpentosamonofosfáty použijí 5'-AMP, 5'-CMP,
    5'-UMP, 5'-GMP, 5'-IMP a 5'-TMP, měření se provádí na všech těchto šesti substrátech a získané výsledky se porovnávají mezi sebou navzájem a s kontrolními hodnotami.
  2. 2. Způsob podle nároku 1, vyznačující se tím, že se biologický vzorek inkubuje se substrátem v pufrovaném médiu případně v přítomnosti inhibitoru a potom se po molybdenanu amonném a redukčním činidle do inkubační směsi přidá činidlo pro solubilizaci bílkovin a stabilizační činidlo.
  3. 3. Způsob podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se tím, že se nukleotidpentosamonofosfátové substráty používají ve vodných roztocích při koncentracích 1 až 10 mmol/1.
  4. 4. Způsob podle kteréhokoli z nároků 1 až 3, vyznačující se tím, že se jako tím, • · biologický vzorek používá plná krev, sérum nebo hemolyzát, a inkubace se substrátem se provádí jak v přítomnosti, tak v nepřítomnosti inhibitoru alkalické fosfatázy.
    »·
    4 4
    4 ·
  5. 5. Reagenční kit pro provádění způsobu podle kteréhokoli z nároků 1 až 4, vyznačující se tím, že zahrnuje 5'-AMP, 5'-CMP, 5'-UMP, 5'-GMP, 5'-IMP a 5'-TMP jako substráty společně s běžnými složkami reagenčního kitu použitelného pro stanovení aktivity
    5'-nukleotidázy cestou uvolnění anorganického fosfátu, přeměnou výsledného fosfátu na barevný komplex a fotometrickým měřením barevné intenzity.
  6. 6. Reagenční kit podle nároku 5, vyznačující se tím, že obsahuje jako běžné složky pufr, činidlo solubilizující bílkoviny, stabilizační činidlo, reagens pro barevnou reakci, fosfátový standard a případně inhibitor a/nebo substrát jiný než nukleotidpentosamonofosfát.
  7. 7. Použití způsobu nárokovaného v kterémkoliv z nároků 1-4 nebo kitu s reagenciemi nárokovaného v nárocích 5 nebo 6 pro diagnózu zhoubného procesu a/nebo pro monitorování výsledků terapie použité pro léčbu zhoubného procesu.
CZ20023876A 2000-05-24 2000-07-03 Způsob a reagenční kit pro stanovení aktivity 5´-nukleotidázy CZ20023876A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU0002003A HUP0002003A3 (en) 2000-05-24 2000-05-24 Process and reagent-kit for determining of 5'-nucleotidase activity

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ20023876A3 true CZ20023876A3 (cs) 2003-03-12

Family

ID=89978352

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20023876A CZ20023876A3 (cs) 2000-05-24 2000-07-03 Způsob a reagenční kit pro stanovení aktivity 5´-nukleotidázy

Country Status (15)

Country Link
US (1) US6861225B1 (cs)
EP (1) EP1283901B1 (cs)
CN (1) CN1221667C (cs)
AT (1) ATE261495T1 (cs)
AU (2) AU5835800A (cs)
CA (1) CA2407446A1 (cs)
CZ (1) CZ20023876A3 (cs)
DE (1) DE60008934T2 (cs)
EA (1) EA005164B1 (cs)
HR (1) HRP20020899A2 (cs)
HU (1) HUP0002003A3 (cs)
PL (1) PL359850A1 (cs)
SK (1) SK16722002A3 (cs)
WO (1) WO2001090403A1 (cs)
YU (1) YU88302A (cs)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1302119C (zh) * 2004-09-14 2007-02-28 王尔中 5ˊ-核苷酸酶活性测定方法及5ˊ-核苷酸酶诊断试剂盒
DE102006046411A1 (de) * 2006-09-20 2008-03-27 Eberhard-Karls-Universität Tübingen Universitätsklinikum Arzneimittel zur Prophylaxe oder Behandlung oder Diagnostik von akutem Lungenversagen (ALI)
FI20070795A0 (fi) 2007-10-24 2007-10-24 Faron Pharmaceuticals Oy Uusi biomarkkeri sairauksien kehittämisen tarkkailuun ja terapioiden tehon arviointiin
US8975081B2 (en) 2007-10-24 2015-03-10 Faron Pharmaceuticals Oy Biomarker for monitoring development of diseases and assessing the efficacy of therapies
CN107250157B (zh) 2014-11-21 2021-06-29 百时美施贵宝公司 包含修饰的重链恒定区的抗体
SG11201703192SA (en) 2014-11-21 2017-05-30 Bristol Myers Squibb Co Antibodies against cd73 and uses thereof
CN106967787B (zh) * 2017-02-13 2021-01-22 山东博科生物产业有限公司 一种稳定的5’-核糖核苷酸水解酶检测试剂盒
CN113584125B (zh) * 2021-07-28 2024-06-04 德赛诊断系统(上海)有限公司 一种液态稳定的5’-核苷酸酶校准品及检测试剂盒及其应用
CN114199844B (zh) * 2021-12-09 2024-02-09 吉林大学 一种金纳米簇及其在制备检测碱性磷酸酶荧光探针中的应用

Also Published As

Publication number Publication date
YU88302A (sh) 2006-01-16
EA200201281A1 (ru) 2003-06-26
CA2407446A1 (en) 2001-11-29
HU0002003D0 (en) 2000-07-28
CN1454262A (zh) 2003-11-05
AU2000258358A1 (en) 2002-02-21
US6861225B1 (en) 2005-03-01
WO2001090403A1 (en) 2001-11-29
CN1221667C (zh) 2005-10-05
EA005164B1 (ru) 2004-12-30
AU2000258358B2 (en) 2005-08-18
DE60008934D1 (de) 2004-04-15
HUP0002003A3 (en) 2003-01-28
HUP0002003A2 (en) 2002-08-28
ATE261495T1 (de) 2004-03-15
PL359850A1 (en) 2004-09-06
EP1283901A1 (en) 2003-02-19
AU5835800A (en) 2001-12-03
HRP20020899A2 (en) 2005-10-31
EP1283901B1 (en) 2004-03-10
DE60008934T2 (de) 2005-03-10
SK16722002A3 (sk) 2003-05-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Giusti Adenosine deaminase
Smyth et al. The metabolism of cytosine arabinoside as a predictive test for clinical response to the drug in acute myeloid leukaemia
Isshi et al. Predicting 5-FU sensitivity using human colorectal cancer specimens: comparison of tumor dihydropyrimidine dehydrogenase and orotate phosphoribosyl transferase activities with in vitro chemosensitivity to 5-FU
Que et al. Mechanism of selective inhibition of 3'to 5'exonuclease activity of Escherichia coli DNA polymerase I by nucleoside 5'-monophosphates
HU176133B (en) Process and reagent for determining mb-creatinase-activity in body-liquid-samples
Goldberg 5’Nucleotidase: Recent advances in cell biology, methodology and clinical significance
CZ20023876A3 (cs) Způsob a reagenční kit pro stanovení aktivity 5´-nukleotidázy
BR112013013656B1 (pt) processo para determinação da sensibilidade de um indivíduo a um agente anticâncer, kit para realização do dito processo bem como processo de triagem para um agente de aperfeiçoamento de sensibilidade a um agente anticâncer
US5576177A (en) Bioassay for reverse transcriptase inhibitors
Battisti et al. Ectonucleotide pyrophosphatase/phosphodiesterase (E-NPP) and adenosine deaminase (ADA) activities in prostate cancer patients: influence of Gleason score, treatment and bone metastasis
EA001988B1 (ru) СПОСОБ ИСТОЩЕНИЯ АДЕНОЗИН 5&#39;-МОНОФОСФАТА В МЕТИЛТИОАДЕНОЗИНФОСФОРИЛАЗА (МТАза)-НЕДОСТАТОЧНЫХ КЛЕТКАХ МЛЕКОПИТАЮЩЕГО-ХОЗЯИНА
Orfanos et al. A rapid screening test for Duchenne muscular dystrophy using dried blood specimens
Bachelard Allosteric activation of brain hexokinase by magnesium ions and by magnesium-ion–adenosine triphosphate complex
US5670331A (en) Methods for optimizing fluoropyrimidine cancer therapy
Dudzinska et al. Uridine-an indicator of post-exercise uric acid concentration and blood pressure.
Stachelska-Wierzchowska et al. Non-typical nucleoside analogs as fluorescent and fluorogenic indicators of purine-nucleoside phosphorylase activity in biological samples
Van Waeg et al. Purine metabolism in normal and ITP-pyrophosphohydrolase-deficient human erythrocytes
RU2063044C1 (ru) Способ прогнозирования течения инфекционно-аллергической бронхиальной астмы
Rogler-Brown et al. Tight binding inhibitors—VIII: Studies of the interactions of 2′-deoxycoformycin and transport inhibitors with the erythrocytic nucleoside transport system
Qiu et al. IL-6/JAK2-dependent G6PD phosphorylation promotes nucleotide synthesis and supports tumor growth
JP3901860B2 (ja) 複数の酵素を反応させる物質の定量方法及び酵素組成物
EP0071087B1 (en) Improved determination of creatine phosphokinase in body fluids
EP0130030B1 (en) Diagnostic applications of phosphofructokinase
Wilmanns Dihydrofolate Reductase: Tetrahydrofolate Dehydrogenase
Moore et al. Pharmacologic stimulation of erythrocyte 2, 3-diphosphoglycerate production in vivo.