CS230551B2 - Method of hydrolysis of racemic hydantoins to optical active amino acide derivative - Google Patents

Method of hydrolysis of racemic hydantoins to optical active amino acide derivative Download PDF

Info

Publication number
CS230551B2
CS230551B2 CS781612A CS161278A CS230551B2 CS 230551 B2 CS230551 B2 CS 230551B2 CS 781612 A CS781612 A CS 781612A CS 161278 A CS161278 A CS 161278A CS 230551 B2 CS230551 B2 CS 230551B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
hydrolysis
reaction
derivative
culture
carried out
Prior art date
Application number
CS781612A
Other languages
English (en)
Inventor
Aurelio Viglia
Eugenio Fascetti
Elena Perricone
Ludwig Degen
Original Assignee
Anic Spa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Anic Spa filed Critical Anic Spa
Publication of CS230551B2 publication Critical patent/CS230551B2/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C273/00Preparation of urea or its derivatives, i.e. compounds containing any of the groups, the nitrogen atoms not being part of nitro or nitroso groups
    • C07C273/18Preparation of urea or its derivatives, i.e. compounds containing any of the groups, the nitrogen atoms not being part of nitro or nitroso groups of substituted ureas
    • C07C273/1854Preparation of urea or its derivatives, i.e. compounds containing any of the groups, the nitrogen atoms not being part of nitro or nitroso groups of substituted ureas by reactions not involving the formation of the N-C(O)-N- moiety
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/832Bacillus
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
    • Y10S435/832Bacillus
    • Y10S435/833Bacillus brevis

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Vynález se týká způsobu hydrolýzy recenických hydentoinů ,ne opticky aktivní deriváty eminokyselin. Především se týká hydrolýzy hydentoinu e jeho derivátů v deriváty aminokyselin, které - mejí D-koitfiguraci. Teto hydrolýze se provádí za požití určitých mikroorganismů, jejichž schopnost produkovat hydropyrimidinhyidrolázu (E.C. 3.5.2.2.) je vázána na přítomnost hydentoinů jako induktorů v kultivačním médiu. Některé aminokysslioy, které mejí D-konnigurei, zejména fenylglycin a hydronχУeeoУglycln, jsou nyní Široce používány jako důležité meziprodukty ve farmaceutickém průmyelu.
Pro dosažení dělení optických antipodů bylo provedeno mnoho pokusů, nicméně žádný z nich nevedl k nějaké průmmylově vy^i^elné metodě.
Chemické metody dosud používané k dělení optických antipodů'jsou založeny ne používání opticky aktivních látek, například kyseliny kafrsulfonové, kyseliny vinné a dalších.
Ty věek meaí tu nevýhodu, ie výtěžky přeměny jsou nízké a náklady vysoké.
Alternativní metody jsou založeny na selektivní hydrolýze D-acyleiinonys·liny enzymem acylázou. Avěak acylázy jsou poměrně vzácné a jsou vždy znečistěný L-acylázou, takže met*· de, která je sama o sobě složitá, vede k získání produktu nízké optické čistoty.
hydrolýze, která je předmětem tohoto vynálezu, vede k získání jednotné stereoizomerní formy derivátu atinonyyeliny z racemlcké sloučeniny.
Způsoby enzymaatLcké rezoluce D,L-ainonyyelin nebo jejich derivátů byly - již navrženy, stej^mi- přihlašovaacH v československém patentu č. 222 177.
Tyto dřívější metody spočívaly v tom, že se racemická forma sloučeniny obecného vzorce I
II
/C--NH ch | ^NH—C=O
X = -H, OH, -OCH3 (I) po^oPÍIs enzymové hydrolýze hydropprimidinhydrolázou extrahovanou z telecích jater nebo hyιd?oppy‘iiiLd.nhУ<d’oláznu produkovanou mikroorganismy rodu Peeuinmonas.
Taková hydrolýze- probíhá podle následující chemické reakce:
(D. L) racemizace
X
COOH
I ch-nh-co-nh2 (D) (reakce 2)
(L)
X
Nyní bylo shledáno, že enzymatickou rezoluci racemických forem výše uvedeného obecného vzorce I podle výše uvedené reakce (2) lze provádět rovněž hydrolázami produkovanými určiými termofilními mikroorganismy čeledi Beillaceae. Hyddolázy produkované takovými mikroorganismy jsou odolné proti teplu a lze jich tedy používat při hydrolytických procesech, které lze provádět při poměrně vysokých teplotách (30 až 60 °C) a dovooují pracovat s roztokem o vyěší koncentraci hydantoinu, tím listují nevýhody spojené s nízkou rozpustností některých hydentoinů při nízkých a normálních teplotách.
Způsob hydrolýzy racemických hydantoinů na opticky aktivní deriváty aminooyselin podle tohoto vynálezu tedy spočívá v tom, že se reakce provádí v přítomnosti enzymu, který je odvozen od mitaroorganismů Becilus tarevis ' sp. NRRL B-11080 nebo/a Bacilus etearothermsphilus sp. NRRL B-11079.
Způsob podle vynálezu se s výhodou provádí při teplotě 30 až 60 °C e při hodnotě pH 6 ež 8.
Způsob podle vynálezu se zvlášt výhodně může provádět tak, že se reakce provádí v přítomnooti enzymu produkovaného in šitu intaktními buňkami uvedených mikroorganismů, které jsou přítomny v reakčním prostředí obsahujícím zdroje dusíku, uhlíku a so^i.
Podle tohoto vynálezu buňky určitého kmene druhu Bccilaceae, kterých se používá k enzymatickým postupům, se pěaliadí ze aerobních podmínek v kultivačním médiu, které obsahuje zdroje dusíku a uhlíku a minneriní soli při teplotách mezi 30 až 60 °C, s výhodou mezi 40 a 60 °C, po dobu od 10 do 48 hodin, s výhodou mezi 10 a 24 hodinami a hodnotě pH od 6 do 8, s výhodou od 7,4 do 7,8. Jako zdroje uhlíku lze používat peptonu, masového extraktu, kukuřičné mmáecí vody (corn steep liquor) a jako zdroje dusíku dusičnanů, amontých solí a hydrolyzátů mase, kaseinu e sójových bobů. Jako induktory enzymové aktivity se poižívají D^-thydannoiny, s výhodou 5,D,L-hy(tentoin. Induktor lze přidávat ke kultvvačnímu médiu přímo před sterilizací nebo během růstu mikroorganismů.
Ze srovnání morfologických a fyziologických znaků kmenů, kterých se používá podle tohoto vynálezu, s popisy uvedenými v díle Begey's Nanuel, 7. vydání, vyplývá, že patří do čeledi Bodlacene, rod Becilus, druh B. brevis a B. etearsthermophilus.
Důležitá modifikace tohoto vynálezu, která ještě patří do jeho rozsahu, je dána skutyetostí, že enzym produkovaný výše vyjmenovanými kmeny je schopen hydrolyzovat 5-D,L-parameehoздfθntlhydθУltoit rycl^l^l^í^t^tí, která se rovná rychlosti experimentálně ověřené u 5,D,L-fenslhyiattritu, což je zcela nové a nemá obdobu ve srovnání s hydrolázami extrahovanými z jitých zdrojů.
Test na selektivní hydrolýzu hydantoinových derivátů D,L-βminoryselin pomocí ΒϋοΌο^βnismů byl proveden takto:
Bakteriální keeny, izolované z půdy, kompotu, zeleniny a odpadků různého původu, byly očkovány při teplotě 50 °C ze Šikmého agaru do 250ml Erlenmeyerových baněk, obsahujících po 50 ml tohoto kultivačního média:
masa-poptm 10 g na 1
kvasničný extrakt 10 g na 1
chlorid sodný 3 g ne 1
5-D,L-meУhylhydantoin 1 g ne 1
pH ' 7,2
Sterilizace po dobu 30 minut při teplotě 110 °C.
30551
Po inkubaci po dobu 16 ež 20 hodin ze krouživého míchání při teplotě 50 °C byly inkubovény 5OO0llill.trové Erlenmeyerovy baňky,. obsehhjicí po 100 ml stejného kultivačního médie se 2 ml výše uvedené sublkdtury.
Po deléích 16 ež 16 hodinách byle provedena s ostatními buňkami následujícím způsobem enzymeeická reakce:
Do zkumavek s obsahem 10 ml 0,07 molárního fosfátového pufru - o hodnotě pH 8,5 e 20 mikromolů 5-D|L-fenylhydentlinu v mililitru bylo přidáno po 1 ml bakteriálních suspenzí (hmoonost sušiny 40 mg v ml). v
Po 15 minutách inkubace při teplotě 40 °C byla provedena reakce ' s p-dimethyladnobenzeldehydem za účelem kvantitativního hodnocení vznikajícího кarbamoyllvého derivátu (J. Bol. Chem, 238, 3325 /1963/).
Tabulka 1 uvádí kmeny, kterých bylo pouužto při postupu podle tohoto vynálezu. Tyto kmeny byly uloženy 11. února 1977 ve sbírce kultur ιnlta*llrgeni8mů v Northern Pe^onel Research Center of Peoria, IH., USA a označeny následujícími sbírkovými depozitními označeními. Jsou to Bcillus siaerltherooppilus (sbírkové deppoltní označení NRRL B-1I 079) a Bccilus b?evls (sbírkové depozitní označení NRRL Β—11 080).
Tabulka 1
Kmen N-кarbθaoylCLeaoCglycln (> teoaet. výtěžku)
NRRL - B-11 060 60 *
NRRL B-11 079 10 %
Bylo pozorováno, že zatímco probíhá enzymatická hydrolýza D-hydantoinu při alkalitкéo pH (pH od 7 do 10), probíhá souběžná naenlyoatické ^cem^ece zb^v^cího D-hydantoinu. Z tohoto důvodu a jako výsledek kontinuálního odnímáni D-hydantoinu enzymovou hydrolýzou ne konci reakce je, že veškerý kerbarni^z^jLový derivát je v D-formě. Rfctihos-t τ^ιοΙ^ι L-hydantoinu je funkcí teploty a hodnoty pH a je tím vySSÍ, čin vyěěí je teplota a hodnota pH. ^^^r ез cs ui ^Je—l^i se však při hodnotě pH blízké 8, rychlost není tak vysoká, aby omee^z^o^v^la rychlost reakce hydenitoinázy. EozymθtiiкlU reakci lze provádět při teplotě mezi 10 a 60 °C; z praktických důvodů se používá teplot od 35 do 55 °C.
Chemická inde^ite N-kθrbθmoylffnyCglccinu a N-kaгbaaiyl-((Pae-meathlyCfenoCglyclou byle potvrzena po přelkry stolování reakčního produktu pomocí iC-spekter, NMR-spekter a hmotové spektroskopie a elementární analýzy·
Hodnoty optické otáčivosti jsou (a]£0 °C = _37o (e = ., y 1 h KH4OH) θ (aJ25 °C = -140° (c = 1 v 1 N NH4OH), což odpovídá hodnotám z chemické Шегаит^
Podle tohoto vynálezu hydrolýza hyúentoinů neprobíhá výlučně v pří1^(^m^(^f^1^l mi'k?llrgani.smů v jejich růstové fázi nebo v přít omnuti in^letních buněk nebo příslušných spor, ale též v přítomnoofcl, extraktů z výše uvedených Ukroorgani smů.
Aby se dosáhlo nahromadění hydrolázy v buňkách, lze například pěstovat mikroorganismy v tekutém živnuta prostředí e D,L-hydantoin potom přidávat do živného prostředí.
Enzymovou hydrolýzu lze provádět rovněž metodou tak zvaných klidových buněk. V tomto případě se bakteriální buňky izolují ze živné kultury e důkladně prooyí e suspendují v systOu, který je vhodný a který'byl vhodně pufrován, e rec^ický hydantoin se k němu přidává.
Stejně je oiožné poižívat příprevků, které obsahují hydrolázy., například extraktů nebo koncentrátů, příprevků ze surových nebo čiětěiých hydroláz, e které byly získány z buněk výěe vyjmenovaných [Mikroorganismů. \
Konečně dalěího technického a ekonomckého zdokoneeení lze dooíci imobilizecí enzymu jeho kombinacemi s sloučeninami pomocí vytváření . chemických vazeb s matricí nebo pomooí vazeb. iontového typu nebo fyzikální imoobllzecí.
Následující příklady ozřejmí dalěí moonooti provedení, které se týkají tohoto vynálezu, ale neooeeují jej.
Příklad 1
Ke 100 ml živné kultury výěe uvedeného druhu kmene B. brevis v 500ml Erlenmayerově baňce bylo po 18hodinové inkuteci (orbtá^! míchání) při teplotě 40 °C přidáno 100 ml fosfátového pUfru (0,14 mooární a pH 8,5), obsahujícího 40 mikromolů 5-(DlL)-feIlyltydeotoinu v ml. Po dalSích 4 .hodinách inkubace ze stejných podmínek byl stanoven vzniklý N-ker lbaoyof (senl^ly у ío .
Ze 705 mg 5-(D,L)-feoylhydlotoiou vzniklo 700 og N-kar tbemylfeenlglycinu, což odpovídá výtěžku přibližně 90 % teorie.
Příklad!*
Za stejných podmínek jeko v příkladu 1 bylo po 4 hodinách při teplotě ' 40 °C získáno pomocí kmene B.‘ stelrotheroophllus ze 705 mg 5-(D,L)-feryrlhyílotУiou 600 mg N-kerbernoyyfenylilycinu, což odpovídá výtěžku asi 85 % teorie.
Příklad 3
Bylo připraveno kultivační prostředí výSe uvedeného složení, obsahhJící 1 g 5-(0,L·)met.hylhydentoinu v litru. Hofriota. pH byle nestavena pomoc:! Uhličitanu sodného na 7,5 e živná půda byla rozdělena po 50ml dávkách do 250ml Erlenmayerových baněk. Po sterilizaci po dobu 30 minut při teplotě 110 °C byly baňky očkovány k^iene^m BaHlus breerts ze Šikmého agaru obsahujícího stejné pevné živné prootiřidí · s agerem .(DJFCO) při 2% koncentraci a lnkubovány po dobu 22 hodin pH teplotě 40 °C ze yrbitáloíUy míchání při 220 otáčkách/nin.
Z takové předkiltury (optická hustota při 550 nm = 0,4, ředění 1 : 10) bylo očkováno po 2 ml do &rlromeyeryvýcU baněk objemu 500 ml se 100 ml stejného prostředí a kultura byle ponechána inkubaci při teplotě 40 °C ze orbitálního míchání při 220 otáčkách/mLn po dobu 18 hodin (prrspyrullční fáze). Buňky oddělené z živného prostředí odstředěním při 5 000 g (g značí odstředivou sílu) po dobu 20 minut byly prosty třikrát i8oУonCkýn roztokem při hodnotě pH 8,0 a suspendovány ve fosfáУovéo pufru o hodnotě pH 8,5 (0,07 ^о^^'пО), představovaly klidové buňky.
Pro reakci enzymové hydrolýzy bylo ^kubováno při teplotě 40 °C a za orbitálního míchání (220 otáček/oln) ve 250ml Erlenmayořových baňkách 64 ml reakční sOsí, obselmjjczí 200 ' 'mg bak^erí (suché h^oonc^í^t) a 20 mikromolů v ml 5-(0,L)fronyUtyílotУinu (= 3,52 mg v 1 ol).
V přiměřených časových intervalech byl hodnocen produkt . hydrolýzy, tj. D-kerbarnoylfenylglycin, kolorimetricky při 438 nanorneerech. Obr. 1 ne připojených výkresech uvádí údeje v procentech teoretického výtěžku vzniklého karbaooylového derivátu, na úsečkách časy v minutách a ne pořadnnci u procenta vzniklého D(-)kerbarnoolfennlglycinu.
Příklad 4
Způsobem popsaným v příkladu 3 . byly připraveny bekttriální buňky kmene B. brevis. Jejich suspenze (41,5 mg suchých bakteriálních buněk v 1 ml) v 0,1 molárním pufru fosfátových solí o pH 8,5 byla podrobena mechanickému rozrušení pomocí №nton Ceulinova homogennzátoru, pracujícího za tlaku 650 kg/ce2 při teplotě nepřevvšujjcí 35 0C. Bwněčná kaše byla oddělena z extraktu odstředěním (25 000 x odstředivá síla po dobu 30 K 970 ml
0,2 eolárního pufru fosfátových solí o hodnotě pH 8,5, obsahujících 4,7 g 5-(D,L-fenylhydantolnu, bylo přidáno 30 ml extraktu, který obsahovat 280 jednotek enzymu. (Jedna jednotka enzymu je ennožsví, které přemění 1 eikroeol substrátu v mililitru za 1 minutu v 0,2 molárním fo8fá0ovée pufru o pH 8,5 při 50 °C, přičemž pufr obsahuje 20 eiikOooiomlliUtr 5-(D,L)-f^€^nyl^hyd^i^1^<^o.ni^)). Po jedná hodLně vznikly 3,2 g D-kerb0tneylferivátu, což odpovídá asi 63 ® celková hydrolýzy.
Příklad 5
Bylo připraveno polosyntetická prostředí následujícího složení:
chlorid amonný sek. fosforečnan sodný prim, fosforečnan draselný masový pepton kvasničný extrakt 5-(D,L)-oethylhydentoin
5,00 g v Litru 7,05 e v Litru 2,72·g v literu 5,00 g v fitiu
0,50 g v litru
1,00 g v litím
Prostředí bylo rozděleno v dávkách po 50 HL do 250ml · arlmeeyerových baněk a v dávkách po 100 HL do 500el Erfenmayerových baněk a sterilioovéno po dobu 30 olinut při· teplotě 110 °C. Předtaúitura byle připravena za očkováním 250ml baněk ze ěikmáho agaru · kulturou kmene B. brevis a inkubováne jeko v příkladu 4 při teplotě 40 °C po dobu 22 hodin. Z táto kultury (optická hustota při 550 ne: 0,105, ředění 1 : 10) bylo očkováno po 2,5 · HL do 500ml Erlmmeyerových baněk obsáhlí cích totáž pros třod í. Po 15 bodlinách inkubace při teplotě 40 °C jako výěe byly připraveny jeko v příkladu 4 klidová· buňky. Enzymová hydrolýza byla provedena pH teplotě 40 °C v reakční slěs, která obsahovala v 64 HL piufru 100 mg bakterií (vztaženo ne hnoonost sušiny a ekvivalenci ke 100 ml živná kultury) a 20 mikromolů 5-(D,L)-fenylhydantoinu v miiilitru.
Po 5, 10 a 15 minutách bylo stanoveno enoožtví vznikláho kartemoylfodvátu.
Tabulka 2
Sobe, linuty 5 10 15
vzniklý kerbeeooУferi'vét v οΙΚ^ιο^^ v eiiflUru 0,5 1,0 1,4
Příkladó
Bylo připraveno kultivační prostředí, která bylo tvořeno výlučně 2,6® kukuřičrým výluhem (vztaženo na sušinu), který nebyl zpracován s čerstvou vodou (aqua pu^r^)). Prostředí, jehož hodnota pH byla upravena KOH na 7,5, bylo rozděleno po 50 HL do Erleneayerových baněk objemu 250 ш1 β po 100 ni do 500ml Erlenmayerových baněk a sterilizováno po dobu 30 minut při teplotě 110 °C. Pro předkulturu byly 250ml banky očkovány ze Šikmého agaru kulturou kmene B. brevis a inkubovény jako v příkladu 4 při teplotě 40 °C po dobu 22 hodin.
Z této kultury bylo očkováno po 2,5 ml do 500ml baněk. Po 18 hodinách Inkubace pM °C jako výěe byly připraveny klidové buňky jako v příkladu 3. Enzymové hydrolýza byla prováděna při teplotě 40 °C následujícím způsobem:
e) v reakční směsi obsahující v 64 ml fosfátového pufru (0,07 molárního, pH 8,5) bakteriální buňky procházející ze 100 ml živného prostředí a 20 mikromolů 5-(D,L)-fenylhydentoinu v mililitru;
b) v reakční směsi obsahující v 64 ml fosfátového pufru (0,07 molárního, pH 8,5) bakteriální buňky pocházející ze 100 ml živné kultury a 20 mikromolů 5-(D,L)-peraeethokyfenylhydentoinu v mililitru.
Po 5, 10, 15 a 60 minutách bylo stanoveno množství vzniklého kerbemoylderivátu.
Tabulka 3
Doba Vzniklý N-karbemoylfenylglycin V zni klý N-ker ba m oy1-p-meth oxyfenyIglyc i n
minuty v mmol/ml Konverze % v mmol/ml Konverze %
5 6,55 32,8 6,45 32,3
10 11,1 55,5 10,9 54,5
15 15,05 75,5 14,85 74,2
60 19,8 99,0 19,85 99,2
Příklad 7
Z kmene Becillus brevis byl připraven acetonový buněčný prášek.
mg tohoto prášku, obsahujícího 420 jednotek enzymu, bylo suspendováno do 1 litru
0,2 molárního fosfátového pufru o pH 8,5, obsahujícího 5,0 5-(B,L)-fenylhydantoinu. Po jedné hodině při teplotě 50 °C vzniklo 4,8 D-karbemoylderivátu, což odpovídá asi 87 % celkové hydrolýzy.
Příklad 8
Z kmene Becillus brevis byla připravena biomasa ve dvacetilitrovém Fomelově feraentoru, obsahujícím 16 1 kultivačního prostředí následujícího složení:
kvasničný extrakt masový pepton chlorid sodný sek. fosforečnan draselný
5-(D,L)-methylhydantoin pH g v litru g v litru g v litru
0,56 g v litru g v litru
7,8
Sterilizace při teplotě 110 °C po dobu 30 minut.
Kultura ve fermentoru byla naočkována 160 ml předkultury (optická hustota při 550 nm: 0,360, ředění 1 : 10), vyrostlou v 500ml baňkách, obsahujících 100 ml stejného kultivačním ho prostředí a inkubována po dobu 16 hodin při teplotě 40 °C za orbitálního míchání při 220 ot/min. Fermentace byla prováděna při teplotě 41 °C a pH 7,6 za automatické kontroly dvojnorwální kyselinou chlorovodíkovou a systému O. A. R. o 0,45· Po 16 hodinách fermentace (optická hustota při 550 nm: 0,350, ředění 1 : 10) byle biomasa oddělena od živného prostředí odstředěním ne odstředivce Alfe-Laval při teplotě místaosSi. U tekto získaných a isoonickým roztokem při pH 8,5 promyltých buňkách byle hodnocena enzymové aktivitě. Ehsymová hydrolýze byla provedena při teplotě 40 °C.
e) V reekční směsi obsah^jcí v 64 ml 0,07 mollrního pufru fosfátové soli o pH 8,5, 0,5 g buněčné pasty (ekri.valentní 0,120 g suchých buněk) a 20 mikromolům 5-(D,L)-hydantoinu v millitru,
b) v reakční směsi jeko v a) obsahující 20 mikromold 5-(D,L)-p-methoxyfenylhydBntoinu v millitru.
Po 5> 10, 15 a 60 minutách bylo stanoveno imnŽžtví vzniklého karbamoollarivátu.
nibulka 4
Doba mnuty Vzni.klý N-kιнrtemoy^lfrnlglycin Vzznklý N-kartemoyl-ppmortioyffrylglycin
v oboI/oI v c^<^o//o1 *
5 4,05 20,2 4,10 ; v 20,5
10 7,6 38,0 7,65 33,2
15 10,4 52,0 10,5 52,5
60 18,2 91,0 18,1 90,5

Claims (3)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    1. Způsob hycdrolýzy racemických hydantoinů na opticky aktivní deriváty amineokesein, vyznáaující se tím, že se reakce provádí v přítomnost enzymu, který je odvozen od mikroorganismů Bcillus brevis sp. NDDRL B-1180 nebo/a Beillus st^e^aro^l^h^e^i^m^i^t^ilus sp. NRRL B-11079.
  2. 2. Způsob podle bodu 1 , v;^i^^i^au^uj^í^^S se tím, že se reakce provádí při teplotě 30 až 60 °C a pH hodnotě pH 6 až 8.
  3. 3. Způsob podle bodů - 1 nebo 2, vyzm^uící se tím, že se reakce provádí v přítomnoati enzymu produkovaného in šitu intektními buňkami uvedených mikroorganismů, které jsou přítomny v reakčním pros středí obsahujícím zdroje dusíku, uhlíku a mincerální soli.
CS781612A 1977-03-15 1978-03-14 Method of hydrolysis of racemic hydantoins to optical active amino acide derivative CS230551B2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
IT21232/77A IT1075132B (it) 1977-03-15 1977-03-15 Complessi enzimatici atti a trasformare idantoine raceme in amminoacidi otticamente attivi e loro applicazioni

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS230551B2 true CS230551B2 (en) 1984-08-13

Family

ID=11178761

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS781612A CS230551B2 (en) 1977-03-15 1978-03-14 Method of hydrolysis of racemic hydantoins to optical active amino acide derivative

Country Status (22)

Country Link
US (1) US4248967A (cs)
JP (1) JPS53115890A (cs)
AU (1) AU519192B2 (cs)
BE (1) BE864935A (cs)
CA (1) CA1113871A (cs)
CH (1) CH636078A5 (cs)
CS (1) CS230551B2 (cs)
DD (1) DD141683A5 (cs)
DE (1) DE2811303C3 (cs)
DK (1) DK113578A (cs)
FR (1) FR2383961A1 (cs)
GB (1) GB1566088A (cs)
HU (1) HU181488B (cs)
IL (1) IL54185A (cs)
IT (1) IT1075132B (cs)
LU (1) LU79217A1 (cs)
NL (1) NL7802819A (cs)
NO (1) NO148153C (cs)
SE (1) SE7802949L (cs)
SU (1) SU1124889A3 (cs)
YU (1) YU60778A (cs)
ZA (1) ZA781447B (cs)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3031151A1 (de) * 1980-08-18 1982-04-15 Basf Ag, 6700 Ludwigshafen Verfahren zur herstellung von d-n-carbamoyl-(alpha)-aminosaeuren und mikroorganismen dafuer
IT1209495B (it) * 1984-02-02 1989-08-30 A San Donato Milanese Milano Procedimento per la preparazione di l-alfa-amminoacidi.
US5283182A (en) * 1986-09-17 1994-02-01 Beecham Group Plc Preparation of immobilized hydantoinase stabilized with divalent metal ions
EP0377083B1 (de) * 1989-01-02 1993-09-22 Rütgerswerke Aktiengesellschaft Verfahren zur Herstellung von L-alpha-Aminosäuren
DE3918057C1 (cs) * 1989-06-02 1990-05-03 Degussa Ag, 6000 Frankfurt, De
US5962279A (en) * 1994-06-24 1999-10-05 Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha Process for producing D-amino acids with composite immobilized enzyme preparation
FR2728905A1 (fr) * 1994-12-29 1996-07-05 Rhone Poulenc Nutrition Animal Nouvelle acide amine amidohydrolase, sequence nuclotidique correspondant et leurs utilisations
US6121024A (en) * 1997-07-17 2000-09-19 Sudge; Sandhya Suresh Halophilic Pseudomonas strain having accession No.NCIM 5109 (ATCC 55940) and a process for preparingD(-)N-carbamoylphenylglycine using said strain

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT987278B (it) * 1973-05-11 1975-02-20 Snam Progetti Procedimento per la preparazione di l carbamil ammino acidi e dei corrispondenti l amminoacidi
US4065353A (en) * 1975-05-12 1977-12-27 Snamprogetti, S.P.A. Method for the preparation of D-carbamyl aminoacids and the corresponding D-aminoacids
IT1039757B (it) * 1975-07-10 1979-12-10 Snam Progetti Complessi enzimatici atti a trasformare idantoine raceme in am minoacidi otticamente attivi e loro applicazione
US4094741A (en) * 1976-02-04 1978-06-13 Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha Process for preparing D-(-)-N-carbamoyl-2-(phenyl or substituted phenyl)glycines

Also Published As

Publication number Publication date
DK113578A (da) 1978-09-16
DE2811303C3 (de) 1981-05-21
SE7802949L (sv) 1978-09-16
AU3370478A (en) 1979-10-18
DD141683A5 (de) 1980-05-14
FR2383961B1 (cs) 1980-08-29
BE864935A (fr) 1978-09-15
NO780882L (no) 1978-09-18
CA1113871A (en) 1981-12-08
DE2811303A1 (de) 1978-09-21
NO148153B (no) 1983-05-09
DE2811303B2 (de) 1980-07-31
NO148153C (no) 1983-08-17
LU79217A1 (fr) 1978-06-28
IT1075132B (it) 1985-04-22
GB1566088A (en) 1980-04-30
IL54185A (en) 1981-09-13
CH636078A5 (it) 1983-05-13
US4248967A (en) 1981-02-03
AU519192B2 (en) 1981-11-19
NL7802819A (nl) 1978-09-19
YU60778A (en) 1982-10-31
HU181488B (en) 1983-07-28
ZA781447B (en) 1979-02-28
JPS53115890A (en) 1978-10-09
SU1124889A3 (ru) 1984-11-15
FR2383961A1 (fr) 1978-10-13
IL54185A0 (en) 1978-06-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4814272A (en) Process for the biotechnical production of rhamnolipids including rhamnolipids with only one β-hydroxydecanoic acid residue in the molecule
US4762788A (en) Process for producing cellulolytic enzymes
EP0089370B1 (en) Production of gamma-decalactone
FI66021C (fi) Enzymatiskt foerfarande foer framstaellning av optiskt aktiva d-aminosyror ur motsvarande hydantoiner eller rasemiska karbamoylderivat
US4774179A (en) Process for preparing a 7-aminocephalosporanic acid compound
US3945888A (en) Method for the production of cephalosporins
US4111749A (en) Method of converting racemic hydantoins into optically active aminoacids
US3749641A (en) Production of 7-amino-3-methylcephem compounds
CS230551B2 (en) Method of hydrolysis of racemic hydantoins to optical active amino acide derivative
EP0299558A1 (en) Process for the preparation of ibuprofen
JPH022396A (ja) セファロスポリンc及び類似体の一段階酵素反応による7‐アミノセファロスポラン酸及びその類似体への変換
US4985364A (en) Preparation of cyclopropanecarboxylic acids
FI70596B (fi) Foerfarande foer enzymatisk hydrolysering av raffinos
US4533632A (en) Production of a cephalosporin by fermentation
US4340672A (en) Enzymatic synthesis of β-lactam antibacterials
EP0332379B1 (en) Production process of L-alpha-amino acids
US4141790A (en) Process for the preparation of 7-amino-cephem compounds using mold fungi
US5108914A (en) Process for the synthesis of l-alpha-amino acids
D'Amato et al. A chemically defined medium for cephalosporin C production by Paecilomyces persicinus
KR100264740B1 (ko) 글루탐산을 생산하는 미생물 및 이를 이용한 글루탐산의 제조방법
CZ847388A3 (en) Use of gamma-glutamyl transpeptidase for hydrolysis of alpha-aminoadipinylmonoamino compounds
JP2692457B2 (ja) 発酵法によるピルビン酸の製造法
CA1292713C (en) Process for producing antibiotic salinomycin
KR910007849B1 (ko) 신균주 스트렙토마이세스 sp.Y-183 및 이로부터 생산되는 히단토인에이즈의 생산방법
EP0290136A2 (en) 7-Beta-substituted-3-lower alkanoylacetoxymethyl-7-alpha-methoxy-3-cephem-4-carboxylic acid and process for production of same