CS221003B1 - Sposob přípravy 7-(4-karboxybatanamido)-3-cefemderivátov - Google Patents

Sposob přípravy 7-(4-karboxybatanamido)-3-cefemderivátov Download PDF

Info

Publication number
CS221003B1
CS221003B1 CS676281A CS676281A CS221003B1 CS 221003 B1 CS221003 B1 CS 221003B1 CS 676281 A CS676281 A CS 676281A CS 676281 A CS676281 A CS 676281A CS 221003 B1 CS221003 B1 CS 221003B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
cells
formula
group
cephalosporin
preparation
Prior art date
Application number
CS676281A
Other languages
Czech (cs)
English (en)
Inventor
Marta Somorova
Stefan Mazan
Marcel Dudek
Ladislav Welward
Augustin Martvon
Rudolf Kosalko
Jindrich Chromik
Richard Frimm
Original Assignee
Marta Somorova
Stefan Mazan
Marcel Dudek
Ladislav Welward
Augustin Martvon
Rudolf Kosalko
Jindrich Chromik
Richard Frimm
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Marta Somorova, Stefan Mazan, Marcel Dudek, Ladislav Welward, Augustin Martvon, Rudolf Kosalko, Jindrich Chromik, Richard Frimm filed Critical Marta Somorova
Priority to CS676281A priority Critical patent/CS221003B1/sk
Publication of CS221003B1 publication Critical patent/CS221003B1/sk

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

(54) Sposob přípravy 7-(4-karboxybatanamido)-3-cefemderivátov
2
Vynález sa týká sposobu přípravy 7-(4-karboxybutanamido)-3-cefem derivátov obecného vzorca I hooc-(chz)3
CH/ íl) kde
X je vodíkový atóm, hydroxylová skupina, acetoxy skupina, 5-karboxymetyltio-l,3,4-tiadiazol-2-yl skupina, l-metyl-lH-tetrazol-5-yl skupina, alebo 5-metyl-l,3,4-tiadiazol-2-yl skupina,
M je vodíkový atóm alebo katión tvoriaci soli a komplexy.
Zlúčeniny obecného vzorce I je možné pripraviť zo 7-(D-5-amino-5-karboxy-n-valeramido )-3-cefem derivátov obecného vzorca II s rovnakým významom substituentov X a M ako u zlúčenín obecného vzorca I.
HOOC
H^N
CH-ICH^
(II)
Zlúčeniny obecného vzorca I je možné chemicky alebo účinkom acyláz roznych mikroorganizmov transformovat N-dezacylá221003 ciou na kyselinu 7-amino-3-acetoxymetyl-3-cefem-4-karhoxylovú (kyselina 7-aminocefalosporánová — vzorec III).
COOH
CHzCQOCHb tlil)
Kyselina 7-aminocefalosporánová je východiskovou surovinou pri príprave polosyntetických cefalosporínových antibiotik. V súčasnosti je připravovaná přednostně chemickou konverziou sodnej soli alebo zinočnatého komplexu 7-(D-5-amino-5-karboxy-n-valeramido) -3-acetoxymetyl-3-cef em-4 karboxylovej kyseliny (cefalosporín C — vzorec IV).
HQQC
0 COOH t IV)
Nedostatkom chemických metod přípravy kyseliny 7-aminocefalosporánovej je surovinová náročnost, přísný technologický režim, práca s agresívnymi látkami a viacstupňový proces. Perspektivnou sa javí enzýmová dezacylácia zlúčenín obecného· vzorca II v jednom alebo dvoch stupňoch.
Priamu jednostupňovú N-dezacyláciu polohy C-7 rieši US patent 3 239 394, ktorý uvádza ako producenta cefalosporín-acylázy rody Brevibacterium, Achromobacter, Flavobacterium. NSR patent 2 723 463 popisuje neekonomickú konverziu cefalosporínu C na kyselinu 7-aminocefalosporánovú (5%), pomocou rodov Alternaria a Aspergillus.
Japonský patent 7 894 093 ohřáni buňky Pseudomonas sp. BN 188 (FERM-P-35e7), ktoré transformujú 1 g cefalosporínu C na 0,12 g kyseliny 7-aminocefalosporánovej.
Perspektivným sa javí dvojstupňový proces, kde v prvom stupni sú účinkom D-aminoacidoxidázy (D-aminoacid : O2-oxidoreduktáza -deamiujúca) transformované zlúčeniny obecného vzorca II, na zlúčeniny obecného vzorce I, ktoré sú v druhom stupni deacylované acylázaml baktérií a húb na kyselinu 7-aminocefalosporánovú.
Riešením enzýmovej N-deacylácie Zlúčenín vzorca I sa zaoberá patent NSR 2 355 078, ako producent acyláz je uvádzaný kmeň Arthrobacter CA-218; v japonskom patente producentom acyláz je Alcaligenes CA-4887; japonský patent 5 394 093 uvádza ako producenta acyláz Pseudomonas ovalis ATCC 950 a japonský patent 7 670 884 popisuje buňky Comamonas sp.
V časopiseckej literatúre existujú informácie, že látky obecného vzorca I boli detekované aj v kultivačných půdách niektorých krneňov patriacich k rodu Cephalosporium (J. Ferment. Technol. 54, 10, 1976, s. 712).
Medzi producentami D-aminoacidoxidáz sú uvádzané rody Aspergillus, Peniclllium, Neurospora, Aerobacter (Belgický patent 736 934) a kvasinka Trigonopsis variabilis (Japonský patent 507 158). Japonský patent 7 644 695 chrání D-aminoacidoxidázu produkovaná Fusarium solani.
Japonský patent 80 023 966 ako producenta D-aminoacidoxidázy uvádza kmeň Candida humicola IFO-0753, ktorý rovnakým mechanizmom působí aj na cefamycíny.
Brodelius P. v Enzyme Eng. 5, 1980, s. 383 popisuje přípravu «-ketokyselín pomocou D-aminoacidoxldázy produkovanej imobilizovanými buňkami Trigonopsis variabilis.
V práci Serizawu a Nakagawu (J. Antibiotics XXXIII, 6, 1980, s. 585) je rozpracované působenie D-aminoacidoxidázy z kvasinky Trigonopsis variabilis SANK 59 963 (IAM-4443') na cefamycíny.
Kmeň Trigonopsis variabilis IFQ 0755 chrání rakúsky patent 355 204.
Váčšina vypracovaných postupov používá ako substrát pre deaminačnú reakciu čisté soli cefalosporínu C. V prípadoch, kde používajú fermentačnú půdu, resp. filtrát — čo představuje najekonomickejší postup — je doporučovaný významný přebytek D-aminoacidoxidázy (jap. patent 507 158).
Riešenie představuje jednak získanie huniek s vyššou aktivitou D-aminoacidoxidázy, alebo úprava fermentačnej půdy před enzymovou reakciou.
Podstata vynálezu spočívá v sposobe přípravy 7-(4-karboxybutánamido)-3-cefem derivátov obecného vzorce I enzýmovou konverziou 7-(D-amino-5-karboxy-n-valeramido)-3-cefem derivátov obecného vzorca II působením vysoko aktívnych buniek kvasinky Trigonopsis variabilis CCY 15-1-1 (Chemický ústav akademie ved, československá sbierka kvasinkovitých mikroorganizmov, Bratislava).
Vysokoaktívne buňky Trigonopsis variabilis sú získané aerobnou kultiváciou v přítomnosti induktorov. Ako účinný induktor je možné použit sodnú sol’ kyseliny 7-(D-5-amino-5-karboxy-n-valeramido)-3-acetometyl-3-cefem-4-karboxylove j (cefalosporín C) v množstve 1 až 7 mmol/1 s optimom 5 mmol/1 alebo kyselinu DL-a-aminoadipovú o koncentrácii 1 až 5 mmol/1, s optimom 3 mmol/1. V přítomnosti uvedených induktorov sú získané buňky vyznačujúce sa vysokou aktivitou D-aminoacidoxidázy, vhodné aj na enzýmovú konverziu fermentačnej půdy, ktorá obsahuje cefalosporín C.
Získané vysokoaktívne buňky sú ďalej spracované organickými rozpúšťadlami, účinkom nízkých teplot, alebo vzájomnou kombináciou obidvoch postupov. Na enzýmovú oxidáciu sa používajú zlúčeniny obecného vzorca II vo formě solí alebo ako volné kyseliny přítomné vo fermentačnej pode.
Buňky kvasinky Trigonopsis variabilis sa pripravujú dvojstupňovou kultiváciou. V prvom stupni sa používá půda o zložení: kukuřičný extrakt 2 %, glukóza 2 %, pepton 1 %. V druhom stupni sa používá půda o zložení: kukuřičný extrakt 2 %, glukóza 3 %, pepton 1 %, kašalotový olej 1 % 5 mmol/1 sodnej soli cefalosporínu C alebo 3 mmol/1 kyseliny DL-a-aminoadipovej.
Obidve půdy sú rozplnené po 60 ml v 500 mililitrových bankách. pH půdy před sterilizáciou je 5,0. Kultivácia obldvoch stupňov trvá 72 hodin pri teplote 27 °C, na trepacom stroji (4 Hz, excenter 0,04m). Po skončení kultivácie sa buňky separujú na odstredivke pri 4 °C, 3000xg, 10 minút. Buňky sa premývajú 0,15 mol/1 NaCl s obsahom 0,1% detergentu (Tween-20, Triton X-100). Premyté buňky sa uskladňujú pri —10 až —30 °C. K uvolneniu D-aminoacidoxidázy dochádza už působením nízkých teplot s nasledujúcim rozsuspendováním buniek v roztokoch fosfátových pufrof (0,1 mol/1], pH 6,5 až 8,5.
Účinným sposobom uvolnenia enzýmu je tiež inkubácia buniek s chloroformom, toluénom, alebo vzájomnou kombináciou oboch postupov. Pri enzýmovej konverzii zo sodnej soli alebo draselnej soli cefalosporínu C sú používané koncetrácie 20 až 100 mmol/1. V případe, že sa používá fermentačná půda, je možné pracovat s deproteinizovaným filtrátom, získaným úpravou pH fermentačnej půdy, alebo upravit půdu pomocou neionogenných sorbentov (Amber lit XAD-2, Diaion HP-20). pH enzýmovej reakcie je v intervale 6,5 až 8,5 s optimom pri pH 8,1. Teplota enzýmovej reakcie z aspektu stability cefalosporínov je v intervale 28 až 40 °C, s optimom pri 33 °C. V preparátoch D-aminoacidoxidázy je obvykle přítomná kataláza. Ako inhibitory katalázy sú používané: kyselina askorbavá, 3-amino-l,2,3-triazol a anorganické azidy, najma azid sodný (1 až 100 mmol/).
Enzýmová reakcia je stimulovaná prítomnosťou Mn2+ iónov, ktoré zvyšujú reakčnú rýchlosť a chrania koncový produkt před degradáciou. Oxidatívnu deaminačnú reakciu stimuluje tiež detergent Triton X-100 v koncentráciach 0,01 až 0,3 %, s optimom 0,1 %.
Enzýmová reakcia vyžaduje přítomnost O2. Aerácia je zabezpečená váčšinou v pomere 1 objem vzduchu/1 objem zmesi/min.
Enzýmová reakcia vyžaduje v závislosti na podmienkách 2 až 6 hodinový reakčný čas. Priebeh enzýmovej konverzie je možné sledovat metodou chromatografie na tenkej vrstvě (TLCJ, alebo vysokotlakovou kvapalinovou chromatografiou (HPLCHj, kde je možné proces jednoducho kvantifikovat.
Metoda TLC μΐ filtrátu reakčnej zmesi naniesť na platné silikagelu Silikagél 60 F 254 Merck, alebo Silufol UV-254 (Kavalier). Zostupne vyvíjať v systéme n-butanol : kyselina octová : voda :(4:1:2). Vysušené platné detekovat pod UV svetlom (254 nm). Zlúčeniny obecného vzorca I a II sa prejavujú ako tmavé zóny. Po postriekaní ninhydrínom dávajú ninhydrín-pozitívnu reakciu len látky obecného vzorce II.
Metoda HPLCH
Chromatograf Spectra Physics SP-8000. Ako mobilná fáza použitý 0,01 mol/1 NaHzPCU v 10% metanole; prietok mobilněj fázy 1 ml/ /min. Ako náplň kolony použitá reverzná fáza oktadecylsilan RP-1'8 (Merck).
Za uvedených podmienok bolo dosiahnuté dobré rozlíšenie látok obecného vzorca I a II. Zlúčeniny vzorca I je možné po skončení enzýmovej reakcie izolovat po filtrácii pri pH 2,5 extrakciou do octanu etylnatého. Z organickej fázy možno tieto látky získať bud ako volné kyseliny, alebo ako soli s niektorými amínmi (N,N‘-dibenzyletyléndiamín), alebo s morfolínom.
Příklad 1
Buňky Trigonopsis variabilis získané v dvojstupňovej kultivácii na půdě s obsahom 5 mmol/1 sodnej soli cefalosporínu C bolí separované na odstredivke pri 4 °C, 3000xg, 10 minút. Buňky holi premyté dvakrát 50 ml 0,15 mol/1 NaCl s obsahom 0,1% Tweenu-20 a deponované pri —20 °C.
g buniek po rozmražení sa rozsuspenduje v 100 ml 0,1 mol fosfátového pufru 8,1; ako inhibitor kataláz sa použije 1 mmol azidu sodného; substrátom je 8 mol sodnej soli cefalosporínu C. Enzýmová konverzia prebieha pri 33 °C za miešania a vzdušenia 4 hodiny. Priebeh konverzie bol sledovaný kvapalinovou chromatografiou v hodinových intervaloch. Stupeň konverzie 80 %.
Příklad 2
Postup zhodný s příkladem 1, ale namiesto sodnej soli cefalosporínu C bola ako induktor použitá kyselina DL-a-aminoadipová v množstve 3 mmol/1.
Příklad 3
Buňky Trigonopsis variabilis priprevené za rovnakých kuítivačných podmienok ako v příklade 1.
Po premytí buniek Ú',15 mol/1 NaCl s obsahom 0,1 % Tweenu-20 sa 10 g buniek suspenduje v 100 ml 0,1 mol/1 fosfátového pufru pH 8,1. K suspenzií sa přidá 10 ml toluénu. Aktivácia enzýmu prebiehala 3 hodiny pri teplote 27 °C za miešania (4 Hz). Po aktivácii sa buňky separujú z toluénovej zmesi na odstredivke pri 4 °C, 3000xg, 10 minút a použíjú na konverziu podta příkladu 1. Přikládá
Buňky Trlgonopsis variabilis so připraví za rovnakých kuítivačných podmienok ako v příklade 1. Po premyti sa deponujú pri —30 °C. 10 g zmrazených buniek sa rozsuspenduje v 100 ml toluénovej zmesi (toluén: Tween-20 — 49 : 1). Aktivácia buniek bola zhodná s príkladom 3. Po aktivácii sa buňky separujú na odstredivke pri 4 °C, 3000xg, 10 minút, premyjú roztokem 0,15 mol/1 NaCl ako v bode 1 a použíjú na konverziu v poměrech uvedených v příklade 1. Stupeň konverzie 83 %.
Příklad 5 g buniek připravených podlá příkladu 2 deponovaných pri —30 °C sa aktivuje alko v příklade 4 s tým rozdielom, že po aktivácii sa použije priamo 20 ml toluénovej butiečnej suspenzie, přidá sa 1,6 mmol sodnej soli cefalosporínu C a 0,2 mmol/ azidu sodného. Další priebeh zhodný s príkladom 1. P r í k 1 a d 6
Postup přípravy buniek zhodný s príkladom 3, ale ako aktivačnú zmes sa použije 100 ml fosfátového pufru a 10 ml chloroformu.
Příklad 7
Buňky sa připraví a aktivujú ako v příklade 4. Na enzýmovú konverziu sa použije filtrát fermenfačnej půdy upravený acidifikáciu půdy na pH 2,5 a po filtrácii spatné upravený na pH 8,0, Na 100 ml filtrátu sa použije 10 g aktivovaných buniek v přítomnosti 10 mmol azídu sodného. Konverzia prebiehala pri 33 °C na trepacom stroji (4,6 Hz] 4 hodiny.
Příklad 8 g buniek kultivovaných za přítomnosti sodnej soli cefalosporínu C, deponovaných při —30 °C, sa přidá k 100 ml filtrátu fermentačnej půdy upravenej neionogertným sorbentom Diaion HP-20. K reakčnej zmesi sa přidá 5 ml toluénu a 10 mmol azidu sodného. pH zmesi sa upraví na 8,0. Konverzia za miešania a vzdušenia (1 objem vzduchu/ /1 objem zmesi) trvala pri teplote 33 ŮC 5 hodin.
P r í k 1 a d 9
Postup zhodný s príkladom 8, ale na úpravu půdy sa použije Amberlit XAD-2. Příklad 10
Konverzia sa realizuje podta príkladov 1 až 6. Zmes po konverzii (500 ml] sa přefiltruje. pH filtrátu sa upraví na 2,5, zopakuje sa filtrácia. Previede sa trojnásobná extrakcia filtrátu octanom etylnatým. Etylacetátové extrakty sa vysuší síranom sodným, nakoncentrujú vo vákuu pri teplote max. 35 °C. Zo zahuštěného extraktu pri 5 °C krystalizuje kyselina 7-(4-karboxybutánamidoj-cefalosporánová. Z matečných lúhov je možné kvantitativné izolovat zbytky uvedenej kyseliny prídavkom n-hexánu. Totožnost kyseliny identifikovaná metódou HPLCH.
Příklad 11
Postup zhodný s príkladom 10 až po získanie vysušeného etylacetátového extraktu, ku kterému sa po kvapkách přidává 5%-ný roztok N,N‘-dibenzyIetyléndiamínu v octane etylnatom (v molárnom pomere k vzniknuté j kyselině 7-(4-karboxybutánamidojcefalosporánovej.
Dochádza ku kvantitativnému zrážaniu uvedenej kyseliny vo formě žltej zrazeniny, identita ktorej bola zístená metódou HPLCH. Příklad 12
Postup zhodný s príkladom 10 až po získáme etylacetátového extraktu, ktorý sa vákuove nakoncentruje přibližné na 1/5 půvabného objemu. K získanému koncetrátu sa za intezívneho miešania přidává po kvapkách morfolín. Vzniknutá morfolínová sol kyseliny 7-(4-karboxybutánamidoJcefalosporánovej je blelej farby.
Příklad 13
Postupuje sa podta příkladu 7, tj. použije sa filtrát fermentačnej půdy. Po skončení enzýmovej konverzie sa zmes přefiltruje a přidá sa 10 % Amberlitu XAD-2, po důkladnom premiešaní sa sorbent odfiltruje, pH filtrátu sa upraví na 2,5; zopakuje sa fíltrácia, vzniknutý číry filtrát sa spracuje etylacetátom, etylacetátová vrstva sa spracováva postupom podta příkladu 10, 11, alebo 12.

Claims (1)

  1. PREDMET VYNALEZU
    Spůsob přípravy 7-(4-karboxybutanamido)-3-cefem derivátóv obecného vzorca I
    HOQC-ICH^-CONH
    O kde
    X je vodíkový atóm, hydroxylová skupina, acetoxyskupina, 5-karboxymety]tio-l,3,4-tiadiazol-2-yl skupina, l-metyl-lH-tetrazol-5-yl skupina, alebo 5-metyl-l,3,4-tiadiazol-2-yl skupina a
    M je vodíkový atom alebo katión tvoriaci soli a komplexy vyznačujúci sa tým, že na 7- (D-5-am,ino-5-karboxy-n-valeramido] -3-cefem deriváty obecného vzorca II
    HOOC
    CH-íCH^-CONH
    COOM
    CHX i
    til) s rovnakým významom substituentov X a M ako u zlúčenín obecného vzorca I sa působí vysokoaktívnymi buňkami mikroorganizmu
    Trigonopsis vařiabilis CCY-15-1-1 za aerob ných podmienok.
CS676281A 1981-09-14 1981-09-14 Sposob přípravy 7-(4-karboxybatanamido)-3-cefemderivátov CS221003B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS676281A CS221003B1 (sk) 1981-09-14 1981-09-14 Sposob přípravy 7-(4-karboxybatanamido)-3-cefemderivátov

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS676281A CS221003B1 (sk) 1981-09-14 1981-09-14 Sposob přípravy 7-(4-karboxybatanamido)-3-cefemderivátov

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS221003B1 true CS221003B1 (sk) 1983-04-29

Family

ID=5415372

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS676281A CS221003B1 (sk) 1981-09-14 1981-09-14 Sposob přípravy 7-(4-karboxybatanamido)-3-cefemderivátov

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS221003B1 (sk)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4857462A (en) Process for obtaining D(+)-naproxen
RU2136759C1 (ru) Способ получения производного бета-лактама
Kupka et al. Studies on the ring-cyclization and ring-expansion enzymes of β-lactam biosynthesis in Cephalosporium acremonium
JP2676568B2 (ja) R(−)−マンデル酸およびその誘導体の製造法
JPH022396A (ja) セファロスポリンc及び類似体の一段階酵素反応による7‐アミノセファロスポラン酸及びその類似体への変換
JPH0239B2 (sk)
JP3167739B2 (ja) クロトノベタインからl−(−)−カルニチンの製法
JPS6230789A (ja) 7−ホルミルアミノセフアロスポリン化合物およびその製造法
GB2058776A (en) Esters and their use in the synthesis of -lactam antibacterial compounds
CS221003B1 (sk) Sposob přípravy 7-(4-karboxybatanamido)-3-cefemderivátov
EP0578761B1 (en) Enzymatic process for the production of cefonicid
JPH0928390A (ja) グリコール酸の微生物学的製造法
US3905868A (en) Enzymatic deacylation of benzyl- and phenoxymethylpenicillin tetrazoles
EP0667396A1 (en) Enzymatic acylation of 3-hydroxymethyl cephalosporins
WO1998020152A1 (en) Process for producing optically active 3-quinuclidinol derivatives
SERIZAWA et al. Enzymatic conversion of cephamycin C by D-amino acid oxidase from Trigonopsis variabilis
US4135978A (en) Production of n-acyl-thienamycins
JP2884119B2 (ja) ベンゼンジカルボン酸モノエステルまたはその誘導体の製造方法
JP4765358B2 (ja) 光学活性なn−保護−プロパルギルグリシンの製造方法
CH643299A5 (fr) Procede de preparation de d-alpha-amino-acides.
JP2002017387A (ja) インドール誘導体の製造法
JPH05176794A (ja) 光学活性な2−フェニルプロピオン酸および2−フェニ ルプロピオンアミドの製造法
US6071712A (en) Enzymatic process for the production of cephalosporins
US5534435A (en) Process for decomposing peroxycarboxylic acids
JP2674076B2 (ja) D−α−アミノ酸の製造方法