CS221003B1 - Method of preparation of 7-/4-carboxybutanamidol/-3-cefem derivatives - Google Patents

Method of preparation of 7-/4-carboxybutanamidol/-3-cefem derivatives Download PDF

Info

Publication number
CS221003B1
CS221003B1 CS676281A CS676281A CS221003B1 CS 221003 B1 CS221003 B1 CS 221003B1 CS 676281 A CS676281 A CS 676281A CS 676281 A CS676281 A CS 676281A CS 221003 B1 CS221003 B1 CS 221003B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
cells
formula
group
cephalosporin
preparation
Prior art date
Application number
CS676281A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Marta Somorova
Stefan Mazan
Marcel Dudek
Ladislav Welward
Augustin Martvon
Rudolf Kosalko
Jindrich Chromik
Richard Frimm
Original Assignee
Marta Somorova
Stefan Mazan
Marcel Dudek
Ladislav Welward
Augustin Martvon
Rudolf Kosalko
Jindrich Chromik
Richard Frimm
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Marta Somorova, Stefan Mazan, Marcel Dudek, Ladislav Welward, Augustin Martvon, Rudolf Kosalko, Jindrich Chromik, Richard Frimm filed Critical Marta Somorova
Priority to CS676281A priority Critical patent/CS221003B1/cs
Publication of CS221003B1 publication Critical patent/CS221003B1/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

ČESKOSLOVENSKÁ SOCIALISTICKÁ REPUBLIKA (19) POPIS VYNALEZU K AUTORSKÉMU OSVEDÍENIU 221003 (11) (Bl) — (51) Int. Gl.3 C 12 P 35/00 (22) Přihlášené 14 09 81(2.1)1 (PV 8762-81) ra (40) Zverejnené 15 09 82 ÚfcAD PRO VYNÁLEZY A OBJEVY (45) Vydané 15. 03 86 (75j
Autor vynálezu SOMOROVÁ MARTA ing., MAZÁN ŠTEFAN RNDr., DUDEK MARCEL ing.,WELWARD LADISLAV mg. CSc., BANSKÁ BYSTRICA, MARTVOŇAUGUSTIN doc. ing. CSc., KOŠALKO RUDOLF ing. CSc., BRATISLAVA,CHROMÍK JINDŘICH ing. CSc., PRAHA, FRIMM RICHARD doc. ing. CSc.,BRATISLAVA (54) Sposob přípravy 7-(4-karboxybatanamido)-3-cefemderivátov 1 2
Vynález sa týká sposobu přípravy 7-(4-karboxybutanamido)-3-cefem derivátov o-becného vzorca I hooc-ich^
CH/ íl) kde X je vodíkový atóm, hydroxylová skupina,acetoxy skupina, 5-karboxymetyltio-l,3,4-tia-diazol-2-yl skupina, l-metyl-lH-tetrazol-5-ylskupina, alebo 5-metyl-l,3,4-tiadiazol-2-ylskupina, M je vodíkový atóm alebo katión tvoriacisoli a komplexy.
Zlúčeniny obecného vzorce I je možnépřipravit zo 7-(D-5-amino-5-karboxy-n-valer-amido j-3-cefem derivátov obecného vzorca IIs rovnakým významom substituentov X a Mako u zlúčenín obecného vzorca I.
HOOC CW-ÍCH^
(II)
Zlúčeniny obecného vzorca I je možnéchemicky alebo účinkom acyláz róznych mi-kroorganizmov transformovat N-dezacylá- ciou na kyselinu 7-amino-3-acetoxymetyl-3--cefem-4-karboxylovú (kyselina 7-aminoce-falosporánová — vzorec III). 221003 221003
COOH CHzCQOCHb tlil)
Kyselina 7-aminocefalosporánová je vý-chodiskovou surovinou pri přípravě polosyn-tetických cefalosporínových antibiotik. V sú-časnosti je připravovaná přednostně chemic-kou konverziou sodnej soli alebo zinočnaté- ho komplexu 7-(D-5-amino-5-karboxy-n-va-leramido ) -3-acetoxymetyl-3-cef em-4 karbo-xylovej kyseliny (cefalosporín C — vzorecIV).
HQQC
0 COOH t IV)
Nedostatkom chemických metod přípra-vy kyseliny 7-aminocefalosporánovej je su-rovinová náročnost, přísný technologickýrežim, práca s agresívnymi látkami a viac-stupňový proces. Perspektivnou sa javí en-zýmová dezacylácia zlúčenín obecného· vzor-ca II v jednom alebo dvoch stupňoch.
Priamu jednostupňovú N-dezacyláciu po-lohy C-7 rieši US patent 3 239 394, ktorý u-vádza ako producenta cefalosporín-acylázyrody Brevibacterium, Achromobacter, Flavo-bacterium. NSR patent 2 723 463 popisujeneekonomická konverziu cefalosporínu C nakyselinu 7-aminocefalosporánovú (5%), po-mocou rodov Alternaria a Aspergillus.
Japonský patent 7894093 chráni buňkyPseudomonas sp. BN 188 (FERM-P-3567),ktoré transformujú 1 g cefalosporínu C na0,12 g kyseliny 7-aminocefalosporánovej.
Perspektivným sa javí dvojstupňový pro-ces, kde v prvom stupni sú účinkom D-ami-noacidoxidázy (D-aminoacid : O2-oxidore-duktáza -deamiujúca) transformované zlúče-niny obecného vzorca II, na zlúčeniny obec-ného vzorce I, ktoré sú v druhom stupni de-acylované acylázami baktérií a húb na ky-selinu 7-aminocefalosporánovú.
Riešením enzýmovej N-deacylácie Zlúče-nín vzorca I sa zaoberá patent NSR 2 355 078,ako producent acyláz je uvádzaný kmeňArthrobacter CA-218; v japonskom patenteproducentom acyláz je Alcaligenes CA-4887;japonský patent 5 394 093 uvádza ako pro-ducenta acyláz Pseudomonas ovalíš ATCC 950a japonský patent 7 670 884 popisuje buňkyComamonas sp. V časopiseckej literatúre existujú infor-mácie, že látky obecného vzorca I bolí de-tekované aj v kultivačných pňdach niekto-rých krneňov patriacich k rodu Cephalospo-rium (J. Ferment. Technol. 54, 10, 1976,s. 712).
Medzi producentami D-aminoacidoxidázsú uvádzané rody Aspergillus, Penicillium,Neurospora, Aerobacter (Belgický patent736 934) a kvasinka Trigonopsis variabilis (Japonský patent 507 158). Japonský patent7 644 695 chráni D-amihoacidoxidázu produ-kovaná Fusarium solani.
Japonský patent 80 023 966 ako producen-ta D-aminoacidoxidázy uvádza kmeň Cán-dida humicola IFO-0753, ktorý rovnakýmmechanizmom pdsobí aj na cefamycíny.
Brodelius P. v Enzyme Eng. 5, 1980, s. 383popisuje přípravu «-ketokyselín pomocou D--aminoacidoxldázy produkovanej imobilizo-vanými buňkami Trigonopsis variabilis. V práci Serizawu a Nakagawu (J. Antibio-tics XXXIII, 6, 1980, s. 585) je rozpracovanépósobenie D-aminoacidoxidázy z kvasinkyTrigonopsis variabilis SANK 59 963 (IAM--4443') na cefamycíny.
Kmeň Trigonopsis variabilis IFQ 0755 chrá-ní rakúsky patent 355 204. Váčšina vypracovaných postupov používáako substrát pre deaminačnú reakciu čistésoli cefalosporínu C. V prípadoch, kde po-užívajú fermentačnú půdu, resp. filtrát — čůpředstavuje najekonomickejší postup — jedoporučovaný významný přebytek D-amino-acidoxidázy (jap. patent 507 158).
Riešenie představuje jednak získanie bu-niek s vyššou aktivitou D-aminoacidoxidázy,alebo úprava fermentačnej pódy před enzy-movou reakciou.
Podstata vynálezu spočívá v sposobe pří-pravy 7-(4-karboxybutánamido)-3-cefem de-rivátov obecného vzorce I enzýmovou kon-verziou 7-(D-amino-5-karboxy-n-valeramidoj--3-cefem derivátov obecného vzorca II pó-sobením vysoko aktívnych buniek kvasinkyTrigonopsis variabilis CCY 15-1-1 (Chemic-ký ústav akademie ved, československásbierka kvasinkovitých mikroorganizmov,Bratislava).
Vysokoaktívne buňky Trigonopsis variabi-lis sú získané aerobnou kultiváciou v pří-tomnosti induktorov. Ako účinný induktorje možné použit sodnú sof kyseliny 7-(D-5--amino-5-karboxy-n-valeramido)-3-aceto-metyl-3-cefem-4-karboxylove j (cefalosporínC) v množstve 1 až 7 mmol/1 s optimom 5 221003 mmol/1 alebo kyselinu DL-a-aminoadipovúo koncentrácii 1 až 5 mmol/1, s optimom 3mmol/1. V přítomnosti uvedených indukto-rov sú získané buňky vyznačujúce sa vyso-kou aktivitou D-aminoacidoxidázy, vhodnéaj na enzýmovú konverziu fermentačnej pó-dy, ktorá obsahuje cefalosporín C. Získané vysokoaktívne buňky sú ďalejspracované organickými rozpúšťadlami, ú-činkom nízkých teplot, alebo vzájomnoukombináciou obidvoch postupov. Na enzý-movú oxidáciu sa používajú zlúčeniny obec-ného vzorca II vo formě solí alebo ako vol-né kyseliny přítomné vo fermentačnej pode.
Buňky kvasinky Trigonopsis variabilis sapripravujú dvojstupňovou kultiváciou. V pr-vom stupni sa používá podá o zložení: ku-kuřičný extrakt 2 %, glukóza 2 %, pepton1 %. V druhom stupni sa používá póda ozložení: kukuřičný extrakt 2 %, glukóza3 %, pepton 1 %, kašalotový olej 1 % 5mmol/1 sodnej soli cefalosporínu C alebo3 mmol/1 kyseliny DL-a-aminoadipovej.
Obidve pódy sú rozplnené po 60 ml v 500mililitrových bankách. pH pódy před steri-lizáciou je 5,0. Kultivácia obidvoch stupňovtrvá 72 hodin pri teplote 27 °C, na trepacomstroji (4 Hz, excenter 0,04m). Po skončeníkultivácie sa buňky separujú na odstredivkepri 4 °C, 3000xg, 10 minút. Buňky sa premý-vajú 0,15 mol/1 NaCl s obsahom 0,1% deter-gentu (Tween-20, Triton X-100). Premytébuňky sa uskladňujú pri —10 až —30 °C.K uvolneniu D-aminoacidoxidázy dochádzauž působením nízkých teplot s nasledujúcimrozsuspendováním buniek v roztokoch fos-fátových pufrof (0,1 mol/1], pH 6,5 až 8,5. Účinným spósobom uvolnenia enzýmu jetiež inkubácia buniek s chloroformom, to-luénom, alebo vzájomnou kombináciou o-boch postupov. Pri enzýmovej konverzii zosodnej soli alebo draselnej soli cefalosporí-nu C sú používané koncetrácie 20 až 100mmol/1. V případe, že sa používá fermentač-ná póda, je možné pracovat s deproteinizo-vaným filtrátom, získaným úpravou pH fer-mentačnej pódy, alebo upravit pódu pomo-cou neionogenných sorbentov (Amber litXAD-2, Diaion HP-20). pH enzýmovej reak-cie je v intervale 6,5 až 8,5 s optimom pripH 8,1. Teplota enzýmovej reakcie z aspek-tu stability cefalosporínov je v intervale 28až 40 °C, s optimom pri 33 °C. V preparátochD-aminoacidoxidázy je obvykle přítomná ka-taláza. Ako inhibitory katalázy sú používané:kyselina askorbavá, 3-amino-l,2,3-triažol aanorganické azidy, najma azid sodný (1 ažiOO mmol/).
Enzýmová reakcia je stimulovaná prítom-nosťou Mn2+ iónov, ktoré zvyšujú reakčnúrýchlosť a chrania koncový produkt předdegradáciou. Oxidatívnu deaminačnú reak-ciu stimuluje tiež detergent Triton X-100 vkoncentráciach 0,01 až 0,3 %, s optimom0,1 %.
Enzýmová reakcia vyžaduje přítomnostOž. Aerácia je zabezpečená vačšinou v po-měre 1 objem vzduchu/1 objem zmesi/min.
Enzýmová reakcia vyžaduje v závislosti napodmienkách 2 až 6 hodinový reakčný čas.Priebeh enzýmovej konverzie je možné sle-dovat metodou chromatografie na tenkejvrstvě (TLC), alebo vysokotlakovou kvapa-linovou chromatografiou (HPLCHj, kde jemožné proces jednoducho kvantifikovat.
Metoda TLC 10 μΐ filtrátu reakčnej zmesi naniesť naplatné silikagelu Silikagel 60 F 254 Merck,alebo Silufol UV-254 (Kavalier). Zostupnevyvíjať v systéme n-butanol : kyselina octo-vá : voda : (4 : 1 : 2). Vysušené platné de-tekovat pod UV svetlom (254 nm). Zlúčeni-ny obecného vzorca I a II sa prejavujú akotmavé zóny. Po postriekaní ninhydrínom dá-vajú ninhydrín-pozitívnu reakciu len látkyobecného vzorce II.
Metoda HPLCH
Chromatograf Spectra Physics SP-8000.Ako mobilná fáza použitý 0,01 mol/1 NaHzPCUv 10% metanole; prietok mobilněj fázy 1 ml//min. Ako náplň kolony použitá reverzná fá-za oktadecylsilan RP-1'8 (Merck).
Za uvedených podmienok bolo dosiahnutédobré rozlíšenie látok obecného vzorca Ia II. Zlúčeniny vzorca I je možné po skonče-ní enzýmovej reakcie izolovat po filtráciipri pH 2,5 extrakciou do octanu etylnatého.Z organickej fázy možno tieto látky získatbud ako volné kyseliny, alebo ako soli s nie-ktorými amínmi (N,N‘-dibenzyletyléndia-mín), alebo s morfolínom. Příklad 1
Buňky Trigonopsis variabilis získané vdvojstupňovej kultivácii na pode s obsahom5 mmol/1 sodnej soli cefalosporínu C boliseparované na odstredivke pri 4 °C, 3000xg,10 minút. Buňky boli premyté dvakrát 50 ml0,15 mol/1 NaCl s obsahom 0,1% Tweenu-20a deponované pri —20 °C. 10 g buniek po rozmražení sa rozsuspen-duje v 100 ml 0,1 mol fosfátového pufru 8,1;ako inhibitor kataláz sa použije 1 mmolazidu sodného; substrátom je 8 mol sodnejsoli cefalosporínu C. Enzýmová konverziaprebieha pri 33 °C za miešania a vzdušenia4 hodiny. Priebeh konverzie bol sledovanýkvapalinovou chromatografiou v hodinovýchintervaloch. Stupeň konverzie 80 %. Příklad 2
Postup zhodný s príkladom 1, ale namiestosodnej soli cefalosporínu C bola ako induk-tor použitá kyselina DL-a-aminoadipová vmnožstve 3 mmol/1. Příklad 3
Buňky Trigonopsis variabilis priprevené 221003 7 za rovnakých kuítivačných podmienok akov příklade 1.
Po premytí buniek O',15 mol/1 NaCl s ob-sahom 0,1 % Tweenu-20 sa 10 g buniek sus-penduje v 100 ml 0,1 mol/1 fosfátového puf-ru pH 8,1. K suspenzii sa přidá 10 ml tolué-nu. Aktivácia enzýmu prebiehala 3 hodinypri teplote 27 °C za miešania (4 Hz). Po akti-vácii sa buňky separujú z toluénovej zmesina odstredivke pri 4 °C, 3000xg, 10 minut apoužíjú na konverziu podl'a příkladu 1.Přikládá
Buňky Trigonopsis variabilis so připravíza rovnakých kuítivačných podmienok akov příklade 1. Po premyti sa deponujú pri—30 °C. 10 g zmrazených buniek sa rozsus-penduje v 100 ml toluénovej zmesi (toluén:Tween-20 — 49 : 1). Aktivácia buniek bolazhodná s príkladom 3. Po aktivácii sa buňkyseparujú na odstredivke pri 4 °C, 3000xg,10 minut, premyjú roztokem 0,15 mol/1 NaClako v bode 1 a použijú na konverziu v po-meroch uvedených v příklade 1. Stupeň kon-verzie 83 %. Příklad 5 10 g buniek připravených podlá příkladu2 deponovaných pri —30 °C sa aktivuje alkov příklade 4 s tým rozdielom, že po aktivá-cii sa použije pTiamo 20 ml toluénovej bu-tiečnej suspenzie, přidá sa 1,6 mmol sodnejsoli cefalosporínu C a 0,2 mmol/ azidu sod-ného. Další priebeh zhodný s príkladom 1.P r í k 1 a d 6
Postup přípravy buniek zhodný s príkla-dom 3, ale ako aktivačnú zmes sa použije100 ml fosfátového pufru a 10 ml chlorofor-mu. Příklad 7
Buňky sa připraví a aktivujú ako v pří-klade 4. Na enzýmovú konverziu sa použijefiltrát fermenfačnej půdy upravený acidifi-káciu půdy na pH 2,5 a po filtrácii spatnéupravený na pH 8,0, Na 100 ml filtrátu sapoužije 10 g aktivovaných buniek v přítom-nosti 10 mmol azidu sodného. Konverziaprebiehala pri 33 °C na trepacom stroji (4,6Hz) 4 hodiny. Příklad 8 10 g buniek kultivovaných za přítomnostisodnej soli cefalosporínu C, deponovanýchpři —30 °C, sa přidá k 100 ml filtrátu fer-mentačnej pódy upravenej neionogertnýmsorbentom Diaion HP-20. K reakčnej zmesi sa přidá 5 ml toluénu a 10 mmol azidu sod-ného. pH zmesi sa upraví na 8,0. Konverziaza miešania a vzdušenia (1 objem vzduchu//1 objem zmesi) trvala pri teplote 33 ŮC 5hodin. P r í k 1 a d 9
Postup zhodný s príkladom 8, ale na úpra-vu půdy sa použije Amberlit XAD-2.Příklad 10
Konverzia sa realizuje podlá príkladov1 až 6. Zmes po konverzii (500 ml) sa pře-filtruje. pH filtrátu sa upraví na 2,5, zopa-kuje sa filtrácia. Previede sa trojnásobnáextrakcia filtrátu octanom etylnatým. Etyl-acetátové extrakty sa vysuší síranom sod-ným, nakoncentrujú vo vákuu pri teplotemax. 35 °C. Zo zahuštěného extraktu pri5 °C krystalizuje kyselina 7-(4-karboxybu-tánamidoj-cefalosporánová. Z matečnýchlúhov je možné kvantitativné izolovat zbyt-ky uvedenej kyseliny prídavkom n-hexánu.Totožnost kyseliny identifikovaná metódouHPLCH. Příklad 11
Postup zhodný s príkladom 10 až po zís-kanie vysušeného etylacetátového extraktu,ku kterému sa po kvapkách přidává 5%-nýroztok N,N‘-dibenzyIetyléndiamínu v octaneetylnatom (v molárnom pomere k vzniknu-té j kyselině 7-(4-karboxybutánamido)cefalo-sporánovej.
Dochádza ku kvantitativnému zrážaniu u-vedenej kyseliny vo formě žltej zrazeniny,identita ktorej bola zistená metódou HPLCH.Příklad 12
Postup zhodný s príkladom 10 až po zís-kanie etylacetátového extraktu, ktorý sa vá-kuove nakoncentruje přibližné na 1/5 pů-vodného objemu. K získanému koncetrátu saza intezívneho miešania přidává po kvap-kách morfolín. Vzniknutá morfolínová sofkyseliny 7-(4-karboxybutánamidoJcefalospo-ránovej je btelej farby. Příklad 13
Postupuje sa podlá příkladu 7, tj. použijesa filtrát fermentačnej půdy. Po skončeníenzýmovej konverzie sa zmes přefiltruje apřidá sa 10 % Amberlitu XAD-2, po důklad-nom premlešaní sa sorbent odfiltruje, pHfiltrátu sa upraví na 2,5; zopakuje sa fíltrá-cia, vzniknutý číry filtrát sa spracuje etyl-acetátom, etylacetátová vrstva sa spracová-va postupem podlá příkladu 10, 11, alebo 12.

Claims (1)

  1. 221003 10 PREDMET VYNALEZU Spósob přípravy 7-(4-karboxybutanamido)-3-cefem dérivátov obecného vzorca I HOQC-ICH^-CONH O
    kde X je vodíkový atóm, hydroxylová skupina,acetoxyskupina, 5-karboxymetyltio-l,3,4-tia-diazol-2-yl skupina, l-metyl-lH-tetrazol-5-ylskupina, alebo 5-metyl-l,3,4-tiadiazol-2-ylskupina a M je vodíkový atom alebo katión tvoriacisoli a komplexy vyznačujúci sa tým, že na7- (D-5-amino-5-karboxy-n-valeramido] -3--cefem deriváty obecného vzorca II HOOC CH-iCH^-CONH COOM CH* i íll) s rovnakým významom substituentov X a Mako u zlúčenín obecného vzorca I sa pósobívysokoaktívnymi buňkami mikroorganizmu Trigonopsis variabilis CCY-15-1-1 za aerobných podmienok.
CS676281A 1981-09-14 1981-09-14 Method of preparation of 7-/4-carboxybutanamidol/-3-cefem derivatives CS221003B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS676281A CS221003B1 (en) 1981-09-14 1981-09-14 Method of preparation of 7-/4-carboxybutanamidol/-3-cefem derivatives

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS676281A CS221003B1 (en) 1981-09-14 1981-09-14 Method of preparation of 7-/4-carboxybutanamidol/-3-cefem derivatives

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS221003B1 true CS221003B1 (en) 1983-04-29

Family

ID=5415372

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS676281A CS221003B1 (en) 1981-09-14 1981-09-14 Method of preparation of 7-/4-carboxybutanamidol/-3-cefem derivatives

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS221003B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4857462A (en) Process for obtaining D(+)-naproxen
RU2136759C1 (ru) Способ получения производного бета-лактама
Kupka et al. Studies on the ring-cyclization and ring-expansion enzymes of β-lactam biosynthesis in Cephalosporium acremonium
JP2676568B2 (ja) R(−)−マンデル酸およびその誘導体の製造法
JPH022396A (ja) セファロスポリンc及び類似体の一段階酵素反応による7‐アミノセファロスポラン酸及びその類似体への変換
JPH0239B2 (cs)
JP3167739B2 (ja) クロトノベタインからl−(−)−カルニチンの製法
JPS6230789A (ja) 7−ホルミルアミノセフアロスポリン化合物およびその製造法
GB2058776A (en) Esters and their use in the synthesis of -lactam antibacterial compounds
CS221003B1 (en) Method of preparation of 7-/4-carboxybutanamidol/-3-cefem derivatives
EP0578761B1 (en) Enzymatic process for the production of cefonicid
JPH0928390A (ja) グリコール酸の微生物学的製造法
US3905868A (en) Enzymatic deacylation of benzyl- and phenoxymethylpenicillin tetrazoles
EP0667396A1 (en) Enzymatic acylation of 3-hydroxymethyl cephalosporins
WO1998020152A1 (en) Process for producing optically active 3-quinuclidinol derivatives
SERIZAWA et al. Enzymatic conversion of cephamycin C by D-amino acid oxidase from Trigonopsis variabilis
US4135978A (en) Production of n-acyl-thienamycins
JP2884119B2 (ja) ベンゼンジカルボン酸モノエステルまたはその誘導体の製造方法
JP4765358B2 (ja) 光学活性なn−保護−プロパルギルグリシンの製造方法
CH643299A5 (fr) Procede de preparation de d-alpha-amino-acides.
JP2002017387A (ja) インドール誘導体の製造法
JPH05176794A (ja) 光学活性な2−フェニルプロピオン酸および2−フェニ ルプロピオンアミドの製造法
US6071712A (en) Enzymatic process for the production of cephalosporins
US5534435A (en) Process for decomposing peroxycarboxylic acids
JP2674076B2 (ja) D−α−アミノ酸の製造方法