CS204643B1 - Způsob kontinuální inverze sacharózy - Google Patents

Způsob kontinuální inverze sacharózy Download PDF

Info

Publication number
CS204643B1
CS204643B1 CS280379A CS280379A CS204643B1 CS 204643 B1 CS204643 B1 CS 204643B1 CS 280379 A CS280379 A CS 280379A CS 280379 A CS280379 A CS 280379A CS 204643 B1 CS204643 B1 CS 204643B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
invertase
immobilized
sucrose
cellulose
inversion
Prior art date
Application number
CS280379A
Other languages
English (en)
Inventor
Jiri Hradil
Frantisek Svec
Josef Bures
Original Assignee
Jiri Hradil
Frantisek Svec
Josef Bures
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jiri Hradil, Frantisek Svec, Josef Bures filed Critical Jiri Hradil
Priority to CS280379A priority Critical patent/CS204643B1/cs
Publication of CS204643B1 publication Critical patent/CS204643B1/cs

Links

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Description

Vynález se týká způsobu kontinuální inverze sacharózy za katalýzy /3-D-fruktořuranozidem fruktohydrolázy (dále invertázy) immobilizované na perlové celulóze s diethylaminovými skupinami.
Současný stav použití immobilizované invertázy charakterizuje následující přehled. Immobilizace tohoto enzymu byla uskutečněna zapolymerováním v akrylamidu (M. Kreen; A. Kestner, K. Kask: Tr. Tallin. Politekh. Inst. 1973, 331,117-30), vazbou enzymu na kolagen následným zesítěním glutaraldehydem (A. C. Olson, Ch. L. Cooney: Immobilized Enzymes in Food and Microbial Processes, Str. 157, Plenům Press, 1974). Invertáza je také enkaplsulována do porézních vláken z triacetátu celulózy. Aktivita takto immobilizovaného enzymu byla 1840 /zkat. (K. Venkatasubramanian, W. R. Vieth, F. R. Bernath: „Enzyme Engineering“, Plenům, New York, 1974, str. 439). Všechny tyto metody immobilizace: chemickou kovalentní vazbou, zachycením v polymerní síti (enkapsulace aj.) mají společnou nevýhodu spočívající v jednoúčelovém použití bez Jednoduché regenerace nosiče.
Tyto nevýhody lze odstranit vazbou enzymu iontovou vazbou, na nosič ionexového typu. Tento způsob vazby enzy-mu byl popsán v případě aminoacylázy na DEAE-Sephadex A-25 (T. Tosa, T. Moři, N. Fuse, í. Chibata: Biotechnol. Bioeng. 9, 603 /1967/). Obdobně byla glukózoisomeráza immobilizována na DEAE-celulóze (C. Huitron, J. Limon-Lason: Biotechnol. Bioeng. 20, 1377 /1978/).
Invertáza byla immobilizována iontovou vazbou na porézním styren-divinylbenzenovém kopolymeru s diethylaminomethylovými skupinami (Amberlite IRA 93, Rohm and Haas, Philadelphia, USA; J. Bourbaut, J. C. Cheftel: Fr. Demande 2, 233, 334 /10. 1. 1975/). Aktivita takto immobilizované invertázy byla v tomto případě 1600 ,ukat.
Předmětem předloženého vynálezu je způsob kontinuální inverze sacharózy pomocí invertázy (/LD-fruktofuranozidf ruktohydrolázy) vyznačený tím, že se roztoky sacharózy o koncentraci 10 až 65 % hmotnostních a pH 3 až 6 při teplotě 20 až 70 °C uvedou ve styk s invertázou immobilizovanou iontovou vazbou s perlovou celulózou obsahující diethylaminové skupiny v koncentraci 0,2 až 3,5 mmol/g a schopné regenerace.
Způsob podle vynálezu je dále vyznačen tím, že se inverze provádí invertázou, immobilizovanou perlovou celulózou s diethylaminovými skupinami v Cl- nebo OH- při pH 3 až 6 při teplotě 0 až 50 °C, v koncentraci 10 až 160 mg aktivní invertázy/g sorbentu.
Dalším význakem vynálezu je, že se inverze provádí invertázou immobilizovanou perlovou celulózou s diethylaminovými skupinami po předchozím promytí už inaktivní perlové celulózy 0,1 až 1 M roztokem NaCl a/nebo 0,1 až 1 M roztokem HC1 a/nebo 0,1 až 1 M roztokem NaOH. Kontinualizace reakce provedením v průtočném tubulárním nebo míchaném reaktoru je přínosem z hlediska automatizace a jednoduchosti provedení.
Immobilizaci enzymu na nosič — perlovou celulózu s diethylaminovými skupinami — lze provést z vodných roztoků při pH 3 až 6 nosičem v Cl“ nebo OH“ formě při teplotě 0 až 50 °C. Tento nosič sorbuje až 160 mg/g aktivní invertázy. Nosič enzymu je dostatečně stálý. Po 42 dnech provozu nebyl pozorován podstatný pokles v konverzi (86%) v průtočném uspořádání. Dle statistického vyhodnocení dat bylo zjištěno, že poločas životnosti immobilizace enzymu (doba, kdy aktivita poklesne na polovinu výchozí hodnoty) je 215 dní.
Perlová celulóza s diethylaminovými skupinami má také afinitu k nečistotám obsaženým v roztocích sacharózy (betainům apod.). Pouhým průtokem se sníží absorbance roztoku při 250 nm na 50 % původní hodnoty. Sorpcí těchto nečistot se však nesnižuje enzymatická aktivita inmobilizovaného enzymu.
Vyšší účinek vynálezu ve srovnání se současným technickým stavem spočívá především ve vysoké aktivitě immobilizované invertázy až 6100 <ukat (=:^mol/min g), dlouhodobá stálost (poločas životnosti 215 dní) a zejména snadná immobilizace enzymu a regenerace nosiče.
Jako nosiče enzymu lze použít celulózový ionex např. na bázi perlové celulózy s diethylaminovými skupinami připravený podle čs. A. O. 193 202 (PV 962-77) a/nebo čs. A. O. 195 205 (PV 1428-78) a/nebo čs. A. O. 199 420 (PV 1429-78).
Předmět vynálezu charakterizují následující příklady, kterými se předmět vynálezu nijak neomezuje.
Příklad 1 díl odsáté perlové celulózy s 1-fN, N-diethylamino) ethylovými skupinami (2,0 mmol/g; 8,209 g H2O) byl suspendován v roztoku 0,5 dílu /J-D-fruktofuranozid-fruktohydrolázy v 10 dílech dest. vody. Sorbováno za občasného promíchání po dobu 47 hodin. při 4°C. Pak promyto 250 cm3 dest. vody a 150 cm3 roztoku sacharózy o pH 4 a koncentrací 10 hmot. °/o.
100 dílů roztoku sacharózy o pH 4 a koncentraci 10 hmot. % bylo temperováno na teplotu 30 °C v míchané baňce o objernu 100 ml, pak přidáno 0,380 g vlhkého odcentrifugovaného výše popsaného nosiče s immobilizovanou invertázou. Průběh inverze sacharózy byl sledován polarimetrieky. Rychlost reakce za těchto podmínek byla 0,45 % min. Aktivita takto immobilizované invertázy byla za uvedených podmínek
3417 /zkat (= ^mol/min g, vztaženo na g suchého nosiče). Vzhledem k tomu, že použitá nativní invertáza má aktivitu 37,5 ^kat ( —μΐηοΐ/min mg,' vztaženo na mg enzymu), obsahuje nosič 91 mg navázané aktivní invertázy na 1 g nosiče.
Příklad 2
Nosič s immobilizovanou invertázou (1 díl) byl promyt 100 díly 1 M HC1, 50 díly dest. vody, 100 díly 1 M NaOH a 100 díly dest. vody; na tímto způsobem regenerovaný nosič byla znovu sorbována Invertáza za podmínek uvedených v příkladu 1.
0,153 díly takto regenerovaného a promytého immobilizovaného enzymu bylo suspendováno ve 100 cm3 roztoku sacharózy o pH 5 (Britton-Robinsonův pufr) o. koncentraci 10 hmot. %. Při 20 °C byla aktivita takto immobilizované invertázy 3951 ^kat, což odpovídá 141 mg navázané invertázy na 1 g nosiče.
Příklad 3
Immobilizovaná invertáza podle příkladu 1 v množství 0,9 dílu byla umístěna do kolonky s fritou. Přes tento immobilizovaný enzym byl čerpán roztok sacharózy o koncentraci 39 hmot. % s pH 5 rychlostí 0,18 ml/ /min. Při době zdržení (τ) 5 minut byla dosažena konverze 51,5 %, to odpovídá aktivitě 135 /zkat a poločasu reakce 3,9 minut.
Příklad 4
Immobilizovaná Invertáza podle příkladu 1 měla při pH 5 v roztoku sacharózy o koncentraci 10 hmot. % při 50 °C aktivitu 6001 μkat.
Příklad S
Perlová celulóza s 1-(N, N-diethyl)-2-hydroxypropylovými skupinami (v koncentraci 0,85 mmol/g) a immobilizovanou invertázou postupem podle příkladu 1 . invertovala v průtočném uspořádání v kolonce podle příkladu 3 při 25 °C nepufrovaný roztok sacharózy o koncentraci 10 hmot. °/o s konverzí 86 % po dobu 43 dní.
Z těchto údajů vypočtený poločas životnosti tímto způsobem immobilizovaného enzymu je 215 dní.
Příklad 6
Perlová celulóza s 1-(N, N-diethyl}-2-hydroxypropylovými skupinami (v koncentraci 2,02 mmol/g) a immobilizovanou invertázou postupem podle příkladu 1 Invertovala v průtočném uspořádání v kolonce dle příkladu 3 při 40 °C nepufrovaný roztok sacharózy o koncentraci 64,6 hmot. °/o. Při průtoku 2,22 g roztoku sacharózy/minutu činil poločas reakce 92 minut.

Claims (3)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    1. Způsob kontinuální inverze sacharózy pomocí. invertázy (/J-D-fruktofuranozid-fruktohydrolázy) vyznačený tím, že se roztoky sacharózy o koncentraci 10 až 65 °/o hmotnostních a pH 3 až 6 při teplotě 20 až 70°C uvedou ve styk s invertázou immobilizovanou iontovou vazbou s perlovou celulózou obsahující diethylaminové skupiny v koncentraci 0,
  2. 2 až 3,5 mmol/g a schopné regenerace.
    Z. Způsob kontinuální inverze sacharózy podle bodu 1, vyznačený tím, že se inverze provádí invertázou, immobilizovanou perlovou celulózou s diethylaminovými sku-> pinami v Cl- nebo OH~ formě při pH 3 až 6 při teplotě 0 až 50 °C, v koncentraci 10 až 160 mg aktivní invertázy/g sorbentu.
  3. 3. Způsob kontinuální inverze sacharózy podle bodu 1 a 2 vyznačený tím, že se inverze provádí invertázou immobilizovanou perlovou celulózou s diethylaminovými skupinami po předchozím promytí už inaktivní' perlové celulózy 0,1 až 1 M roztokem NaCl a/nebo 0,1 až 1 M roztokem HC1 a/nebo 0,1 až 1 M roztokem NaOH,
CS280379A 1979-04-23 1979-04-23 Způsob kontinuální inverze sacharózy CS204643B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS280379A CS204643B1 (cs) 1979-04-23 1979-04-23 Způsob kontinuální inverze sacharózy

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS280379A CS204643B1 (cs) 1979-04-23 1979-04-23 Způsob kontinuální inverze sacharózy

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS204643B1 true CS204643B1 (cs) 1981-04-30

Family

ID=5366181

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS280379A CS204643B1 (cs) 1979-04-23 1979-04-23 Způsob kontinuální inverze sacharózy

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS204643B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2884188B2 (ja) 固定化酵素によるヘミセルロースの加水分解の方法および固定化ヘミセルロース分解酵素からなる製品
Klibanov et al. A rationale for stabilization of oxygen-labile enzymes: application to a clostridial hydrogenase.
KR900007631B1 (ko) 가교제에 의한 고정효소제제의 제조방법
CA1289091C (en) Method for immobilization of enzyme and immobilized enzymes
US4132596A (en) Support-aminoacylase complexes
JPS6219835B2 (cs)
CS204643B1 (cs) Způsob kontinuální inverze sacharózy
CA1215336A (en) Immobilization of catalytically active microorganisms in agar gel fibers
Cabral et al. Influence of coupling conditions on activity and operational stability of glucoamylase immobilized on titanium (IV)-activated controlled pore glass
US4176006A (en) Enzyme immobilization with a disulphide bridge
JPS6030683A (ja) 酵素固定樹脂組成物並びにその製造法及び再生法
US4610965A (en) Adsorption-desorption purification of glucose isomerase
Ooshima et al. Stability of immobilized yeast alcohol dehydrogenase
Wasserman et al. Immobilization of glucoamylase from Aspergillus niger on poly (ethylenimine)-coated non-porous glass beads
Chibata et al. New method for immobilization of microbial cells and its industrial application
EP0340378B1 (en) Method for microbial immobilization
Tomar et al. Immobilization of cane invertase on bentonite
NO144633B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av 6-aminopenicillansyre
CA1104110A (en) Enzyme-immobilization carriers and preparation thereof
CN102888390B (zh) 肝素酶ⅲ的固定化方法
JPS62158484A (ja) 固定化酵素の製造法
JPS61111686A (ja) 固定化酵素の製造方法
JPS59109173A (ja) 固定化生体触媒の製法
SU810717A1 (ru) Способ получени иммобилизован-НОй пОлиРибОНуКлЕОТидфОСфОРилАзы
JPS60237993A (ja) 水酸基含有繊維への酵素固定化法