CS203676B1 - Process for preparing chromogenic amylaceous substrate for the determination of the activity of glucoamylase - Google Patents

Process for preparing chromogenic amylaceous substrate for the determination of the activity of glucoamylase Download PDF

Info

Publication number
CS203676B1
CS203676B1 CS21979A CS21979A CS203676B1 CS 203676 B1 CS203676 B1 CS 203676B1 CS 21979 A CS21979 A CS 21979A CS 21979 A CS21979 A CS 21979A CS 203676 B1 CS203676 B1 CS 203676B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
starch
glucoamylase
substrate
determination
activity
Prior art date
Application number
CS21979A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Inventor
Ludovit Kuniak
Juraj Zemek
Original Assignee
Ludovit Kuniak
Juraj Zemek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ludovit Kuniak, Juraj Zemek filed Critical Ludovit Kuniak
Priority to CS21979A priority Critical patent/CS203676B1/cs
Publication of CS203676B1 publication Critical patent/CS203676B1/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

SOCIALISTICKÁ i POPIS VYNÁLEZU
<”> K AUTORSKÉMU OSVEDČENIU 203676 («) (Bl)
/22/ Přihlášené 10 01 79/21/ /PV 219-79/ (Sl) Int Cl.* 1 2 3C 13 L 1/08//C 12 N 9/34 (40) Zverejnené 30 06 80
ÚŘAD PRO VYNÁLEZY
A OBJEVY (45) Vydané 15 10 8 2 (75)
Autor vynálezu
KUNIAK CUDOVÍT ing. CSc., BRATISLAVA a ZEMEK JURAJ ing. CSc., LEHNICE (54) Spósob přípravy chromogónneho škrobového substrátu na stanovenieaktivity glukoamylázy 1
Vynález sa týká sposobu přípravy chromogénného škrobového substrátu na stanovenie gluko-amylázovej enzýmovej aktivity.
Rychle, jednoduché a spolehlivé testy na kvalitativně a kvantitativné stanovenie enzýmo-vej aktivity stali sa v praktickou životě nepostradatelnými. K najprogresívnejším metodám stahovenia úrovně ehzýnovej aktivity glukán-giukánohydro-láz patři kolorimetrická metoda založená na tom, Že ako testovací substrÚt sa použije vhodnýnerozpustný polysachařid s kovalentne viazaným f.arbivom,
Chromogénny, nerozpustný polysacharidový gel .sa vplyvom prítomnej enzýmovej hydrolázyštiepa na rozpustné štíepne produkty, ktoré spolu 8 viazaným farbivom prechádzajú do roztoku,pričom intenzita farby roztoku je lineárně úměrná koncentrácii produktov hydrolýzy a tým ajkoncentraci! přítomného enzymu. •fak napr. v případe testovania alfa-amylázovej enzýmovej aktivity možno s výhodou použitako substrát chromogénny škrob, t. j. farebný polysachařid s vizbami alfa/1—>4/, ktoré saúčinkom enzymu alfa-amylázy štepia £j. Kenedyt Advances in carbohydrate chemistry and bioche-mistry, 2 9, / 1 97 4 / , str 350-3.57, L . Kuniak,, J. Zemek /és. AO Č. 1 92 2 1 0 /J ,
Na základe výsledkov výskumu v tejto'oblasti sa zistilo, Že Specificky sietovaný škrobs velmi vysokým napúčacím objemom vo vodě'12 až 20 ml/g po kovalentnom naviazaní farbiva jevynikajúcim substrátom aj pre enzym glukoamy1ázu, /oiz-1 ,4-glukán glukohydrolázu, EC 3.2.1.3/tak, že je ho možné použit výhodné na kolorimetrické stanovenie glukoamylázy.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že 2'ě'miákový škrob sa v prvom stupni zosietuje v 0,1 iXhydroxide sodnom za použitia 0,1 až 1,0 7» epichlárhydrinu na hmotnost suchého škrobu, po dobu 2 až 24 hodin pri teplote miestnosti za stálého miešania pri pomere kvapalnej a pevnej fázy2:1, v druhora stupni sa nechá zosietený škrob reagovat s dvojsodnou solou kyseliny 8-amino- -5-£3-/sulfoetýlsulfonyl/ anilinoJ-6-antrachinon.sulfónovej v množstve 4 až 20 Z na hmotnostsuchého Škrobu v 0,7 až 1,0% hydroxide sodnom pri pomere kvapalnej a pevnej fázy 10:1 až10:15 pri teplote miestnosti po dobu 1 až 2 hodiny, nač.o sa reakčná zmes neutralizuje ekvi- 036 76 203676 2 valentným množstvom kyseliny octovej a nakoniec sa chromogénny škrob premýva na filtri eta-nolom o koncentrácii 40 až 50 % do bezfarebnej reakcie filtrátu.
Najvýhodnejší zo škrobov je škrob zemiakový pre jeho vysókú chemickú čistotu, relativnévelké rozměry zrna a dobru filtrovatelnost.
Sietovanie s epichlórhydřínom je volené tak, aby napúčací objem hotového chromogénnehoŠkrobového gélu sa pohyboval v medziach 12 až 18 ml/g, čo je zárukou velmi vysokej citlivostina glukoaraylázu. Pri nižších hodnotách stupfta napúčania je substrát nedostatočne citlivý prerychle sériové meranie glukoamylázovej enzýmove.j aktivity. Optimálna doba sietovania pohybujesa za reakčných podraienok predmetu vynálezu okolo 4 hodin. Po prvom stupni sietovania, přidá-váním roztoku farbiva v alkalickora roztoku škrob asi do dvoch rninút vytvoří pevný gel, ktorýsa nedá miešat a preto reakcia viazania farbiva prebieha staticky bez miešania, Nie. je tovšak na překážku rovnoměrnému priebehu reakcie viazania farbiva na škrob, pretože farbivo.sapřidává v rozpustenom stave a reakčná zni es sa dostatočne zhomogenizu je pokial zoželatinujedo takého atupfta, ze sa miešanie musí zastavit.
Po ukončení reakcie naviazania farbiva přidáním kyseliny octovej v zriedenora etanole/1:1/ sa tuhý škrobový gél prevedie na riedku slispenziu, kcorá sa opat móže lahko miešata dobré filtrovat.
Premývanie je najpomalší technologický stupeň přípravy, nakolko volné nezreagované farbí-vo sa musí kvantitativné z gélu vymyt,až je filtrát úplné číry,. Obyčajne sa na to spotřebuje70-až 100násobok zriadeného etanolu na hmotnost povodného škrobu.
Red je premývanie ukončené, nakoniec sa gél viacuásobne premýva na filtri koncentrovanýmetanolom, aby sa dokonale odstranila voda. Ak sa voda nedostatočne vytěsní etanolom, gélpri sušení vytvára tvrdé hrudky čo je nežiaduce, nakolko by sa musel suchý gél pomliet.
Nakoniec sa etanol z gélu odstráni sušením volné na vzduchu alebo v sušiarni pri teplotě'80 až 100 °C.
Suchý chromogénny, sletovaný škrob má napúčací objem vo vodě 14 ml/g a je výbornýmsubstrátom pre kvantitativné stanovenie glukoamy1ázy.
Pochopitelné, připravený gél je .rovnako dobrým substrátem aj pre alfa-amylázu. Pretovo vzorkácn, kde sa súČasne vyskytuje tak alfa-amylázová ako i glukoamylázová aktivita,najprv sa stanoví alfa-amylázovým testom alf a-ar.iy lázová aktivita, v druhom stanovení v novejvzorke sa stanoví alfa-amylázová i glukoamylázová enzymová aktivita pomocou navrhovanéhoškrobového substrátu v tabletovej formě a ich rozdiel zodpovedá samotnej glukoamylázovej akti-vitě. · Výhodou navrhovaného sposobu přípravy chromogénneho škrobového substrátu pre stanovenieglukoamylázovej aktivity je, že umožňuje přípravu chromogénneho škrobu vo formě tabletiek, ktoré spíňajú náročné požiadav-ky klinickej a prevádzkovej praxe prisériovej analýze enzýmovej aktivity, preparát sa móže vyrábat z domácích lacných surovin poměrně velmi jednoduchým technolo-gickým postupom, výrobna cena připraveného preparátu je mnohonásobné nižšia ako cena obdobných preparátovna svetovom trhu, pri kombinácií s alf a-amylázovým testom umožňuje stanovit vedla seba tak alf a-ů.aylázovúako i glukoamylázovú enzýraovú aktivitu. Příklady prevedenia Přikladl V '380 ml 0,1 M NaOH sa rozpustí 2 ml epichlórhydrinu pri teplote miestnosti potom sapřidá za stálého miešania 220 g vzduchosuchého zemiakového škrobu a nechá sa reagovat zastálého miešania pri teplote miestnosti *po dobu 4 hodin. V osobitnej kádičke sa rozpustí14 g pevného NaOH v 1 200 ml vody a v dalSej kádičke osobitne sa rozpustí 8 g dvojsodnejsoli kyseliny 8-amino-5-f3-/sulfoetylsulfonyl/anilinoJ-6-antrachinonsulfóuovej /demazol ‘Brilant Blue R/ v 400 ml vody. Obidva roztoky po vychladení na 20 °C sa zlejú dohromady a při-dá sa naraz do reakčnej banky so sletovaným škrobom, reakčná zmes sa dobré zamieša a asi po2 minutách sa změní na hustý gél, ktorý sa nechá 90 minut bez miešania doreagovat. Potom do

Claims (1)

  1. 3 203676 reakčhej banky sa vlejé asi 200 ml zriedeného etanolu /til/, do ktořého sa před tým přidalo20 ml koncentrovanéj kyseliny octovej. Reakčná zmes zr.edne, dobře sa zaraieša po dobu 5 minuta filtruje sa cez skleněný filter» Na filtri sa premýva zriedeným etanolom /1:1/ tak dlhoaž filtrát je úplné, bezfarebný. Nakoniec škrobový gél sa p*remýva na filtri koncentrovanýmetanolom. Etanol sa dokonale odsaje a škrobový gél sa suší na vzduchu alebo v sušiarni priteplote 80 až 100 °C. Suchý Škrobový gél ma napúčací objem 14 ml/g. Přiklad 2 Postup podlá příkladu 1, s tým rozdielom, že doba sietovania sa krátí na 2 hodiny, a ďa-lej sa pokračuje ako v příklade 1. Škrobový gél má napúčací objem 16 ml/g. P r i k 1 a d 3 Postup podlá příkladu 1, s tým rozdielom, že sa použije 10 g dvojsodnej soli kyseliny8-amino~5-[3-/sulf oetylsulf onyl/anilinoj-ó-antrachinotisulf ónovej Připravený gél sa dlhšiepremýva, ale obsahuje viac víazaného farbiva;t. j. je citlivější pri analytických stanovenýchenzýmových aktivit. Příklad 4 Postup podlá příkladu 1, s tým rozdielom, že- sa použije 0,2 ml epichlorhydrinu a sieťova-nie prebieha pri teplote miestnosti po dobu 24 hodin a na farbenie sa použije 40 g dvojsodnejsoli kyseliny 8-amÍno-5-L,3-/su1foety1 sulfony1/anilinoj-6-antrachinonsulfoaovej. Výsledný suchýchroraogénny škrobový gél má napúčací objem 18 ml/g. Vynález má uplatnenie vŠade>kde je potřebné sledovat úroveň glukoamylázovej aktivityči už v priemyslovej praxi ďalej vo výskume pri testovaní raikroorganizmov na glukoamylázovúenzýraovú aktivitu, a v klinickej praxi pre diagnostické účely niektorých ochorení. PREDMET VYNÁLEZU Sposob přípravy chroraogénneho substrátuna stanovenie aktivity glukoamylázy, vyznačenýtým, že zemiakový škrob sa v prvom stupni zosieťuje v 0,1 M hydroxide sodnom 2a použitia0,1 až 1,0% epichlórhydrinu na hmotnost suchého škrobu, po dobu 2 až 24 hodin pri teplotemiestnosti za stálého mieŠani.a pri pomere kvapalnej a pevnej fázy 2:1, vdruhom stupni sa necházosietený Škrob reagovat s dvojsodnou solou kyseliny S-amíno-S- j_3 -/sul f oe ty Isu 1 f ony 1 /ani 1 inoj-6-antrachinonsulfónovej v množstve 4 až 20 7. na hmotnost suchého škrobu v 0,7 až 1,0* hydro-xide sodnom pri pomere kvapalnej a pevnej fázy 10:1 až 10:15 pri teplote miestnosti po dobu1 až 2 hodiny,, naco sa reakčná zmes neutralizuje ekvivalentnýra množstvom kyseliny octoveja nakoniec. sa chroraogénny škrob premýva na filtri etanolom o koncentrácii 40 až 50 % do bez-farebnej reakcie filtrátu. f Sevrrografia. η. p·. závod 7. Mott
CS21979A 1979-01-10 1979-01-10 Process for preparing chromogenic amylaceous substrate for the determination of the activity of glucoamylase CS203676B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS21979A CS203676B1 (en) 1979-01-10 1979-01-10 Process for preparing chromogenic amylaceous substrate for the determination of the activity of glucoamylase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS21979A CS203676B1 (en) 1979-01-10 1979-01-10 Process for preparing chromogenic amylaceous substrate for the determination of the activity of glucoamylase

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS203676B1 true CS203676B1 (en) 1981-03-31

Family

ID=5333912

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS21979A CS203676B1 (en) 1979-01-10 1979-01-10 Process for preparing chromogenic amylaceous substrate for the determination of the activity of glucoamylase

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS203676B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Biely et al. Soluble chromogenic substrates for the assay of endo-1, 4-β-xylanases and endo-1, 4-β-glucanases
Jung Preparation and application of procion yellow starch for amylase assay
Klein et al. New chromogenic substrate for determination of serum amylase activity
CN111638106B (zh) 一种尿液干化学分析质控物
McCleary New chromogenic substrates for the assay of alpha-amylase and (1→ 4)-β-d-glucanase
Leisola et al. Determination of the solubilizing activity of a cellulase complex with dyed substrates
AU608900B2 (en) Chromogenic substrates
CS203676B1 (en) Process for preparing chromogenic amylaceous substrate for the determination of the activity of glucoamylase
SU396036A1 (ru) СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ сс-АМИЛАЗЫ В БИОЛОГИЧЕСКИХ ЖИДКОСТЯХ
US3759794A (en) Method for determination of amylase activity
US3694318A (en) Substrate and method for alpha-amylase assay
JPH05213944A (ja) ナフトトリアゾリウム塩
PL80211B1 (cs)
JPH0551279B2 (cs)
CA1110620A (en) SUBSTRATE FOR .alpha.-AMYLASE AND THE PREPARATION THEREOF
CS237101B1 (sk) Sposob přípravy vodorozpustných chromolytických polysacharidových enzýmových substrátov
US7648839B2 (en) Metal indicator
CS234607B1 (sk) SpSsob stanovenia aktivity endo-1,4- β-xylanáz
CN109061162A (zh) 一种高通量测定淀粉水解酶抑制活性的方法
JP3048672B2 (ja) 試薬結合ポリマー、該ポリマー膜および該ポリマーを含む担持体
Kennedy Some Methods for the Characterisation of Natural and Dyed Amyloses as Potential Substrates for the Assay of α‐Amylase
CN108645846A (zh) 一种基于纸基测定血清α-淀粉酶活性的方法
CS224156B1 (cs) Spósob přípravy chromogénneho škrobu pre detekciu izoenzýmov alfa amylázy
CA2146207C (en) Assay method and device
JPH0730107B2 (ja) 加水分解酵素活性を有する物質の検出方法及び二環式化合物