CN1767847A - 用胸腺素α1治疗曲霉菌感染 - Google Patents

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Abstract

一种利用胸腺素α1为刺激树突状细胞的免疫刺激剂来治疗人类曲霉菌感染的方法。该方法尤其适用于预防骨髓移植后免疫缺乏症宿主的曲霉菌感染。

Description

用胸腺素α1治疗曲霉菌感染
相关文献
本申请要求2003年3月28日提交的申请号为60/457,911的临时申请为优先权申请。
技术领域
本发明涉及真菌感染的治疗。尤其是涉及曲霉菌感染如与骨髓移植相关的侵入性曲霉病感染的治疗和预防。
背景技术
侵入性曲霉病(IA)的特征是菌丝侵入,它破坏肺部组织并扩散到其他器官中,这是导致医院内肺炎和异源性骨髓移植(BMT)死亡的主要原因,估计感染率为5至10%,随之的死亡率为90至100%。引起IA的最重要的风险因素一直被认为是嗜中性白血球减少症,因此,在异源性骨髓移植鼠模型中,骨髓祖细胞的重建为防止IA发挥了作用。但是,近来在BMT接受者中进行的IA流行病学研究表明,与嗜中性白血球减少症相关的感染减少了,而伴随着针对宿主疾病的移植出现的“之后开始”的感染增加了。
本领域仍需要治疗曲霉菌感染的方法。
发明概述
根据本发明,治疗或预防哺乳动物中曲霉菌感染的方法包括给哺乳动物施用含有抗真菌有效量的胸腺素α1(TA1)的药物组合物。
发明详述
临床和实验证据表明Th1细胞反应性在控制IA中的作用。树枝状细胞(DCs)在体内和体外使Th1导向真菌。有证据表明肺部的DCs使适宜的T细胞对真菌抗原产生应答的能力可能受局部免疫调节行为的影响,这些局部免疫调节行为包括通过Toll样受体(TLRs)传导信号。DCs可能是介入免疫治疗和疫苗开发的有前景的靶点,从而从药物介入的研究重心转向“佐剂”。佐剂既能刺激机体产生适宜应答,进行最佳调节从而抑制感染,同时又能有效抑制生物体的免疫反应,对治疗是有利的。
胸腺素α1(TA1)是一种天然产生的胸腺肽。合成的有28个氨基酸残基的的TA1在全球范围内进行临床试验用于治疗一些病毒感染,这种治疗可以采用单独治疗或者与α-干扰素进行联合治疗。治疗一些免疫缺陷性疾病、恶性肿瘤以及HIV/AIDS病毒感染,这些是TA1的其它适应症。合成的多肽TA1的作用机理还不完全清楚,目前认为与免疫调节行为相关,主要作用在于增大了T细胞的功能。由于对先天的免疫系统的免疫细胞具有免疫调节作用,包括激活具有促进细胞分裂能力的蛋白激酶(MAPKs)以及巨噬细胞基因的表达,我们认为TA1能作为佐剂来刺激DCs引导Th1定向于曲霉菌。本发明提供了一种治疗曲霉菌感染的方法,其中TA1可通过TLRs信号传导刺激DCs引导抗真菌的Th1。
本发明提供了一种治疗曲霉菌感染的哺乳动物的方法,其包括给哺乳动物施用抗真菌有效量的TA1。在一个优选实施例中,TA1有效抑制侵入性曲霉病(IA)。有效剂量的TA1足以能刺激树突状细胞产生促Th1细胞的细胞因子。用于治疗真菌感染的优选剂量为每日200至400微克/公斤体重。在一个优选实施例中,哺乳动物是免疫缺乏症宿主,尤其是人类。该方法尤其适用于治疗免疫缺乏症的患者,特别是那些接受了骨髓移植的患者。
本发明还提供了一种预防哺乳动物感染曲霉菌的方法,其包括给哺乳动物施用抗真菌有效剂量的TA1。本发明尤其适用于预防免疫缺乏症宿主中的IA。在一个优选实施例中,该方法可预防免疫缺乏症患者,尤其是接受骨髓移植的患者的所述感染。TA1的有效剂量能足以刺激树突状细胞产生促Th1细胞的细胞因子。用于治疗真菌感染的优选剂量为每日200至400微克/公斤体重。
没有结合任何具体理论,本发明是基于TA1用于治疗或防止曲霉菌感染的新的免疫调节活性的发现。在各种类型的DCs中,通过MyD88-依赖性途径,TA1促进了促Th1生成的细胞因子IL-12 p70,IL-10和IFN-α的生成。
在转染了TLR的细胞中,TA1似乎直接刺激TLR9而不是TLR2传导信号,后者是通过对相关配基的应答得到了加强。因此,TA1直接或间接地刺激了TLR传导信号。数据表明TA1可利用TLR2-依赖性途径使得骨髓树突状细胞(MDCs)生成IL-12 p70,利用TLR9-依赖性途径使得血液树突状细胞(PDCs)来生成IFN-α和IL-10。
由于通过DCs生成IL-10可能是记忆保护性的抗真菌免疫性的组成之一,平衡DCs和/或不同DC亚群上生成的IL-12/IL-10可能是TA1在曲霉病中的辅助作用的本质原因。
用TA1治疗感染曲霉菌后的BMT小鼠模型,TA1导致CD4+和CD8+细胞的增加,以及嗜中心粒细胞总数的增加。TA1治疗后,Th1细胞(生成IFN-γ)数量增加了,而Th2细胞(生成IL-4)数减少了。
重要的是,用TA1治疗感染了曲霉菌的BMT小鼠使得治疗肺中真菌生长所需药物剂量减少,并且采用高剂量药物能将感染完全治愈。TA1还能增加两性霉素B的治疗效果。
TA1对DCs的作用与它的抗凋亡活性相一致。由于DCs在免疫病理学、免疫学和自身免疫学之间的平衡中起着主要作用,且在胸腺中PDCs通过TLR9传导信号,因此TA1调节DC功能的能力表明TA1是通过TLR的作用对先天的、适应性的免疫系统进行调节的内源调节因子。这就为TA1在一些病毒感染的治疗处方中的作用提供了理论基础,在这些病毒感染病例中PDCs生成α-IFN被认为起着关键作用。为了在PDCs中生成IFNα,TLR9是必需的。并且,PDCs还参与造血细胞移植后的免疫应答,这可以解释TA1在BMT哺乳动物中进行免疫重建的有益作用。
TLRs刺激先天免疫系统不仅有助于适应性免疫系统而且还具有直接的抗菌效应子活性。由于TA1刺激DCs使Th1定位于曲霉菌,还使具有相关效应的嗜中性粒细胞达到抗真菌程度,这进一步表明TA1在治疗真菌感染中的有益效果。
曲霉菌具有独特性质,因为它是一种在免疫缺乏症的宿主中繁殖的腐生真菌。本发明提供了精选的细胞靶点和细胞介导的免疫途径,并提高了对曲霉菌的抵抗力,其中TA1是通过利用TLR途径使Th1对真菌产生适宜反应性的佐剂。
通过下述实施例对本发明进行举例说明,不应理解为对本发明的限制。
实施例1
动物
雌性,8周至10周,BALB/c和C57BL6小鼠来自查尔斯河(CharlesRiver),NOD/SCID来自杰克逊。成对饲养纯合的TLR2-缺陷、TLR9-缺陷和MyD88-缺陷型C57BL6小鼠;纯合的IFN-γ-缺陷和IL-4-缺陷型BALB/c小鼠,在没有特定病菌的条件下进行饲养。
微生物的感染和治疗
为了感染上A.fumigatus,连续三天通过小鼠鼻内注射悬浮液2×107分生孢子/20微升盐水。通过检测几丁质观察肺中真菌生长数量。几丁质的含量以每个器官中葡糖胺的微克量表示。将未经感染的小鼠的肺中的葡糖胺含量作为阴性对照,对照含量为0.80至2.25微克葡糖胺/器官。将肺切除并立即保存在福尔马林中以进行组织学分析。用过碘酸希夫染色法对嵌入石蜡的组织部分(3至4微米)进行染色。将胸腺素α1(TA1)和杂乱的多肽纯化为无菌乙酰化多肽冻干粉,通过标准的内毒素鲎试剂测定法(limulus lysate assay),其内毒素水平低于0.03pg/ml。序列如下:Ac-Ser-Asp-Ala-Ala-Val-Asp-Thr-Ser-Ser-Glu-Ile-Thr-Thr-Lys-Asp-Leu-Lys-Glu-Lys-Lys-Glu-Val-Glu-Glu-Ala-Glu-Asn-O(胸腺素α1)以及Ac-Ala-Lys-Ser-Asp-Val-Lys-Ala-Glu-Thr-Ser-Ser-Glu-Ile-Asp-Thr-Thr-Glu-Leu-Asp-Glu-Lys-Val-Glu-Val-Lys-Ala-Asn-Glu-OH(s胸腺素α1)。在无菌水中制备冻干粉。
治疗如下:在BMT-小鼠中,以不同剂量腹膜内给药TA1,腹膜内给予胸腺素α1400μg/kg或静脉给予人重组G-CSF 250μg/kg,在开始灌输BM的那天起每天给药,随着感染的进行,继续给药3天。每天腹膜内给予两性霉素B 4000μg/kg,随着感染的进行,给药3天。该剂量能治愈环磷酰胺处理后的小鼠的IA感染。感染前一天腹膜内给药环磷酰胺150mg/kg。在环磷酰胺处理后的小鼠中,在开始感染的那天起连续5天腹膜内给予剂量400μg/kg的TA1。
感染前一天和感染后一天,通过静脉内注射1mg的Gr-1中和的RB6-8C5抗体,使得小鼠嗜中性粒细胞减少。该处理使肺的嗜中性粒细胞急剧减少,但没有减少DCs数量(在处理前后,CD11c+,MHC Class II+,F480-细胞为5至6×105)。对照小鼠接受等量的纯化的鼠IgG2b。用环磷酰胺处理后一天进行FACS肺细胞分析,可见白血球明显减少且持久(达5天)。F480+细胞的百分比(约20%)以及CD11c+,MHC Class II+,F480-DCs(<3%)的百分比都没有受到处理的影响。
TLR配体
酵母聚糖来自Saccharomyces cerevisiae,脂磷壁酸质(LTA)来自Staphylococcus aureus,以及脂多糖(LPS)来自Salmonella Minnesota Re 595。CpG寡核苷酸1826和2006被证明是具有免疫刺激活性的序列。
BMT小鼠的形成
给予C57BL6小鼠致命剂量的9Gy并灌注取自BALB/c小鼠的不含T细胞的供体细胞。从脾细胞上表达的供体型MHC I抗原可以看出,95%以上的小鼠存活并表现出稳定的状态,供体型的造血细胞嵌合体。
树突状细胞的分离和培养
通过磁性细胞的分选,从CD14+单核细胞中得到血液CD11c+骨髓DCs(MDCs),并在Iscove′s修饰的培养基中培养5天,此培养基含有10%胎牛血清、50μmol的2-巯基乙醇、丙酮酸钠(1mM)、2mM的L-谷胺酰胺、HEPES(10mM)以及50μg/ml的庆大霉素,同时还含有50ng/ml的r-人GM-CSF和200U/ml的r-人IL-4,。未成熟MDCs与1000ng/ml的三聚人CD40配体-亮氨酸-拉链融合蛋白共同培养24个小时得到成熟的DCs。利用BDCA-4分离试剂盒分离CD123+类浆树突状细胞(PDCs)。CD123+细胞的纯度>96%。
将未成熟的DCs与如上的三聚人CD40配体和IL-3(10ng/ml)一起培养得到成熟的PDCs。FACS分析显示PDCs的特征表面受体为CD123bright,CD4+,CD45RA+和CD11c-,而MDCs则为CD1a+,CD11c+,CD11b+,CD4+,CD14low以及CD8-。在未成熟和成熟DCs中HLA II型、CD80和CD86的表达都很高。通过磁性细胞分选分离出鼠肺中的CD11c+DCs(5-7%为CD8α阳性,30-35%为Gr-1阳性)。
在检测吞噬作用中,将DCs预先置于100ng/ml TA1中60分钟,随后在37℃下再与曲霉菌分生孢子孵育60分钟。计算吞噬的百分数并拍摄照片。在评价功能成熟化和细胞因子的检测中,将纯化的DCs再次悬浮在Iscove′s培养基中(不含血清,含有多粘菌素B,以避免血清成分和内毒素的非特异性刺激),然后只与100ng/ml TA1或同时包括TLR配体或未被吞噬的曲霉菌分生孢子一同进行震动混合24个小时。
表型分析
将样品与结合了FITC或PE的大鼠的抗小鼠抗体进行反应来评价细胞表面表型。将无关的hisotype匹配的抗体作为对照。
抗真菌效应子活性
在吞噬作用检测中,支气管小泡巨噬细胞和外周嗜中性粒细胞预先置于100ng/ml TA1中60分钟,在37℃下与未吞噬(unosponized)的曲霉菌分生孢子孵育60分钟。此外,通过确定集落形成单元的数量和集落形成单元的抑制百分数(平均±SE)来评价分生孢子的活性,称为分生孢子活性。
转染的HEK293细胞的测定
野生型或稳定转染了人TLR2、TLR9和TLR4/CD1427的人胚肾细胞系HEK293在含有10%FCS、HEPES(10nM)、L-谷胺酰胺(2μg/ml)以及庆大霉素(50μg/ml)的低糖DMEM培养基(Dulbecco′s modified Eagle′s medium)中培养。转染细胞中又加有嘌呤霉素(100μg/ml)。为进行刺激试验,将细胞在12孔组织培养板中以细胞密度为3-5×105个细胞/孔培养过夜。清洗细胞,在检测上清液中IL-8前,用100ng/ml TA1单独或与TLR配基一起刺激细胞5个小时。
细胞因子和酶联免疫吸附斑点(ELISPOT)的检测
用试剂盒ELISAs检测培养物上清液中TNF-α、IL-10、IL-12 p70、IFN-α和IL-8的浓度。检测限(pg/ml)分别为:TNF-α的检测限<3(人)、<32(鼠);IL-10的检测限<12(鼠)、<5(人),IL-12 p70的检测限<16(鼠)、<3(人);IL-8的检测限<25(人)。人的IFN-α<3ng/ml。为了计算产生细胞因子的细胞数,对来自于肺中的纯化的CD4+T细胞和DCs进行ELISPOT检测。
利用流式细胞分析进行增殖检测
在肺DCs存在的情况下,通过10μg/ml ConA刺激或加热的非活化分生孢子刺激肺CD4+T淋巴细胞的增殖,然后用荧光染料CFSE(5(6)-羧基荧光素二乙酸琥珀酰亚胺酯)标记后进行检测。
逆转录酶(RT)-PCR
从未成熟的DCs中提取总RNA,先用100ng/ml的TA1预处理未成熟的DCs 60分钟,随后与未吞噬的曲霉菌分生孢子接触60分钟(如上述试验所述)。合成cDNA,并采用正向和反向PCR引物以及在鼠和人TLRs和HPRT上所采用的循环数对cDNA进行PCR扩增。在2%琼脂凝胶上电泳分离合成的PCR产物,并用溴乙非啶染色显示。
p38和NF-KB的活化分析
通过与曲霉菌分生孢子和/或100ng/ml的TA1混合20分钟使肺DCs上的P38和NF-kB活化。细胞溶解物印迹与识别未磷酸化的p38 MAPK或识别双磷酸化的p38 MAPK(Thr-180/Tyr-182)的兔多克隆抗体共孵育,或者是与RelA特异性抗体共孵育,其中该RelA是人NF-kB的65kDa DNA的结合亚单位,随后加入联有辣根过氧化物酶的山羊抗兔IgG(按照厂商指示)。用增强型化学发光检测试剂盒显示印迹。免疫印迹在柯达RX胶卷上显示呈条带。为确保每条泳道含有相似的蛋白,将有磷光的免疫印迹剥离,用针对p38和NF-kB的抗体对膜进行重新标记。
胸腺素α1(TA1)刺激树突状细胞(DCs)
前述表明鼠DCs在被感染部位体外吞噬曲霉菌。用TA1,而非杂乱的肽,来刺激肺DCs吞噬未被吞噬的分生孢子(不仅是菌丝),协同刺激抗原表达以及产生细胞因子。相比较,单独的曲霉菌分生孢子并没有表现出能诱导DCs活性的足够刺激,而与TA1结合使用则明显促进了MHCII型抗原、CD86和CD40分子的表达,并使IL-12 p70产生的DCs增多。有趣的是,仅胸腺素也能使IL-12 p70产生的DCs增多。TA1还能刺激人MDC和PDC亚群(subsets)。未成熟和成熟的DC亚群都能吞噬分生孢子。TA1增加了未成熟DCs的吞噬能力,影响了DC形态学特征(在未成熟的MDCs中检测到更多的细胞质突起)并正向调节了HLA II型抗原以及协同刺激了对分生孢子应答的分子表达。TA1显著增加了未成熟MDCs应答分生孢子和酵母聚糖时IL-12 p70的释放量,以及未成熟PDCs应答分生孢子时IL-10的释放量。IFN-α可以通过PDCs对TLR9配基CpG产生应答来生成,该生成过程能被TA1显著增强。相比较,杂乱的肽就不能正向调节II型抗原,也不能协同刺激分子表达,不能通过对分生孢子产生应答诱导DCs产生细胞因子。
这些数据表明了TA1在DCs被激活和发挥功能中的全新的、从未披露过的免疫调节作用。
TA1通过TLR信号传导刺激MvD88依赖性途径
在应答曲霉菌分生孢子时产生了TLR信号传导,它能介导对真菌的功能应答。TA1有力刺激了鼠DCs上的TLR2、TLR5和TLR9的表达。当与分生孢子和TA1混合物进行接触时,TLR2和TLR9的表达仍受到了刺激,而TLR5的表达却受到了抑制。再一次发现,杂乱的肽不能刺激TLR2和TLR9的表达,无论是仅对肽应答还是对分生孢子的应答。
TA1具有刺激TLR依赖性信号传导的能力通过如下研究得到支持,即对转染了TLR2、TLR9和TLR4/CD14的HEK293细胞进行研究,测定该细胞仅对TA1产生应答或对TA1与相关的TLR配基共同产生应答而生成的IL-8。。在这些HEK293细胞中,TA1能通过TLR9转染的细胞单独产生的应答或细胞对TA1与TLR9配基CpG共同产生的应答而显著增加IL-8。但是,TA1不能在转染TLR2的细胞中单独刺激产生IL-8,但是在这些细胞对酵母聚糖应答时能轻微促进IL-8的生成。无论是单独作用还是与TLR4配基LPS的共同作用,TA1都不能诱导转染TLR4/CD14的细胞产生IL-8。TA1还能影响鼠DCs对这些病菌的TLR配基产生应答而产生IL-12 p70和IL-10的能力。TA1并不会影响细胞对Poly(I:C)或LPS(TLR4)的应答而产生细胞因子的能力。在用酵母聚糖和LTA(TLR2)和CpG(TLR9)刺激后,TA1使IL-12 p70的生成显著增加,而使IL-10的生成显著减少。因此,TA1能直接通过TLR9传导信号并通过相关配基增强TLR2的信号。
NF-和p38 MAPK的激活在促发TLR诱导的基因表达中发挥作用,TA1在前面也显示了刺激MAPK转换的途径。为了支持TA1在TLR诱导的途径中的关系,TA1诱导了NF-kB的核迁移以及p38的磷酸化(不被分生孢子、杂乱的肽或杂乱的肽和分生孢子所刺激)。且,NF-kB核迁移抑制剂(SN50)或p38MAPK(SB202190)消除了TA1对DCs的作用。
骨髓分化因子88(MyD88)是激活NF-kB和MAPK以及通过TLRs传导信号生成IL-12 p70的必要连接蛋白之一。TA1和分生孢子对生成IL-12 p70的作用以及TAI1对产生IL-10的作用在MyD88-缺陷型小鼠中明显消除。因此,MyD88依赖性途径似乎对TA1的体外作用机理起着主要作用。为了确定是否MyD88依赖性途径在TA1体内作用中仍发挥主要作用,对感染曲霉菌的野生型、TLR2-缺陷型、TRL9-缺陷型或MyD88-缺陷型小鼠的局部真菌生长进行评价。在TLR2-缺陷型和TRL9-缺陷型的小鼠中,真菌的生长与野生型小鼠相当,在接受胸腺素治疗后,真菌的生长同样受到减弱。MyD88-缺陷的小鼠中真菌生长也相当,但这些小鼠在接受TA1治疗后真菌生长并未受到减弱。因此,无论TLR的使用程度如何,MyD88-依赖性信号传导途径对TA1体外和体内的活性都是必需的。
TA1能防止BMT小鼠患IA
正如存活率得到提高、同时肺中真菌生长相应减少所揭示的,用TA1而不是杂乱的肽进行治疗,似乎能治愈BMT小鼠的IA。治疗效果是剂量依赖性的,用200和400μg/kg TA1治疗小鼠可达到完全治疗(>60天的存活),并且这样的效果超出两性霉素B。而且,TA1增强了两性霉素B的疗效,正如用两种制剂联合治疗小鼠所表现出的小鼠存活率的增加和真菌载量的减少。TA1还能降低肺的病理特征。感染真菌的小鼠的肺切片显示出大量的曲霉菌菌丝侵入了肺实质,还伴有支气管壁的损伤和坏疽以及少量的炎症细胞的补充。相比较,在TA1治疗的小鼠上已观察不到这些特征,小鼠肺部的炎症细胞渗透已治愈,并且没有真菌生长和支气管壁损坏的迹象。可见,TA1具有治疗IA的疗效,并且还可能在与已知的具有降低BMT活性的抗真菌制剂的联合用药上有效。
TA1促进患有IA的小鼠的骨髓和Th1细胞恢复
TA1治疗后,循环系统中的淋巴细胞和嗜中性粒细胞的绝对数量显著增加。更重要的是血液中嗜中性粒细胞的水平并不能来预测个体易患曲霉病。在流式细胞分析中,用TA1治疗BMT小鼠后,其肺中CD4+和CD8+细胞以及嗜中性粒细胞显著增加。如抗原特异性增殖和IFN-γ生成所示,这些肺CD4+T淋巴细胞具有功能上的活性。接受治疗的小鼠中Thl细胞(产生IFN-γ)越多,Th2细胞(产生IL-4)就越少。而且,关于效应子巨噬细胞的抗真菌活性,TA1治疗后的小鼠体内巨噬细胞和嗜中性粒细胞中的分生孢子的(conidiocidal)活性较高。因此,TA1不仅能促进DC成熟,而且还能刺激局部效应子细胞来促进吞噬作用并杀死真菌。
仅使嗜中性粒细胞恢复,如用一已知剂量的G-CSF治疗小鼠来加快小鼠嗜中性粒细胞的恢复并不能足以介导抗真菌的能力达到TA1所获得的程度。相类似,尽管嗜中性粒细胞得到明显恢复,如果没有T细胞或产生IFN-γ的Th1细胞,则TA1的疗效还不够高。当Th1细胞增多时,如在IL-4缺陷型的小鼠中,TA1的疗效仍能得到改善。因此,在缺乏适应性Th1依赖性免疫的情况下,尽管嗜中性粒细胞在介导抗真菌中起着关键的作用,但是若要达到完全不受真菌侵入的状态,如用TA1治疗所达到的状态,则由先天性效应子巨噬细胞和保护性Th1细胞的协同作用所决定。

Claims (12)

1.一种治疗或预防哺乳动物中曲霉菌感染的方法,其包括给所述哺乳动物施用一种包含抗真菌有效量的胸腺素α1(TA1)的药物组合物。
2.根据权利要求1所述的方法,其中所述TA1的施用剂量能足以刺激树突状细胞产生促Th1细胞的细胞因子。
3.根据权利要求1所述的方法,其中所述TA1施加的剂量为200-400μg/kg体重/日。
4.根据权利要求1所述的方法,其中所述哺乳动物为免疫缺乏症的宿主。
5.根据权利要求4所述的方法,其中所述哺乳动物为人。
6.根据权利要求5所述的方法,其中所述人为骨髓移植接受者。
7.根据权利要求5所述的方法,其中施用所述的TA1来刺激树突状细胞产生促进Th1细胞的细胞因子。
8.根据权利要求5所述的方法,其中所述TA1的施用剂量为200-400μg/kg体重/日。
9.根据权利要求1所述的方法,其中所述方法进一步包括给所述人施用至少一种其它的抗真菌制剂。
10.根据权利要求9所述的方法,其中所述其它的抗真菌制剂为两性霉素B。
11.根据权利要求10所述的方法,其中所述两性霉素B的施用剂量为4000μg/kg体重/日。
12.根据权利要求1所述的方法,其中所述曲霉菌感染为侵入性曲霉病。
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