CN1462310A - 异麦芽糖的制备方法及用途 - Google Patents
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Abstract
本发明以提供异麦芽糖的新型制备方法及其用途为课题，在或无α－异麦芽糖基转移酶的存在下，使α－异麦芽糖基葡萄糖合成酶与作为非还原末端的苷键方式具有α－1，4－葡糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类作用，生成作为非还原性末端的苷键方式具有α－1，6－葡糖苷键，作为该非还原性末端以外的苷键方式有α－1，4－葡糖苷键的葡萄糖聚合度3以上的α－异麦芽糖基葡萄糖、和/或环{1→6}－α－D－吡喃葡糖基－(1→3)－α－D－吡喃葡糖基－(1→6)－α－D－吡喃葡糖基－(1→3)－α－D－吡喃葡糖基－(1→)、使异麦芽糖游离酶与该生成物作用生成异麦芽糖、收集该生成的异麦芽糖，通过确立以此为特征的异麦芽糖的制备方法及其用途，从而解决了该课题。
Description
技术领域
本发明涉及一种异麦芽糖的新型制备方法及其用途，更详细地讲，涉及为了由作为非还原末端的苷键方式的有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类高收率地制得异麦芽糖的异麦芽糖的制备方法及其用途。
技术背景
异麦芽糖是发酵食品等中微量存在的难结晶性且具有良好保温性的低甜味糖，过去，作为与葡萄糖，麦芽糖，6-α-葡糖基麦芽糖等的混合糖类，是在各种食品、化妆品、医药品等中广泛使用的有用的糖类。
异麦芽糖在自然界只不过是发酵食品等中微量存在的稀有糖类，众所周知，工业上采用使用酸催化剂的葡聚糖的部分水解反应，使用葡聚糖酶或异麦芽葡聚糖酶等的酶反应，使用来自葡萄糖的葡糖淀粉酶或酸催化剂的反向合成反应，使用来自麦芽糖或麦芽糊精的α-葡糖苷酶的葡萄糖转移反应等的制备方法。然而，采用以往方法所得反应液中的异麦芽糖含有量每单位固形物只不过大约10至25％(W/W)(以下，本说明书中，若没有特殊说明，将％(W/W)简称为％)左右，这作为异麦芽糖的工业制备方法纯度低，无论如何也不能满足要求。作为改进该问题的方法，例如，有特开昭58-72598号公报公开的柱色谱法。若采用该方法，可以从每单位固形物相当的异麦芽糖含量约10至约25％的原料糖液中，制得高纯度的异麦芽糖，然而，该异麦芽糖的制备方法中，也存在所得异麦芽糖的纯度和收率不得不依赖于原料糖液中的异麦芽糖含量的问题。
在这样的情况下，建立工业上可大量且价廉地制得高收率的异麦芽糖的新型制备方法是翘首以待的。
本发明，鉴于前述以往技术，把确立工业上可大量且价廉地高收率制得异麦芽糖的制备方法及其用途作为课题。
发明内容
本发明人等以解决前述课题为目的的深入研究中，在“欧洲生物化学杂志”(European Journal of Biochemistry)第226卷、641～648页(1994年)中，主要介绍了使水解酶交替糖酶(alternanase)与具有四个葡萄糖残基通过α-1，3糖苷键与α-1，6糖苷键交替地连接的结构的交替糖(alternan)作用，获得的具有分子内有异麦芽糖结构的环{→6)-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→6)-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D吡喃葡糖基-(1}结构的四糖类(以下，简称“环四糖”。)
另外，本发明人等在特愿2000-229557号说明书中，公开了使用由来自6-α-葡糖基麦芽糖等的淀粉的糖类生成环四糖、用α-异麦芽糖基转移酶制备环四糖的方法，同时在特愿2000-234937号说明书中，公开了使前述异麦芽糖基转移酶和由麦芽低聚糖等生成α-异麦芽糖基葡萄糖的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与淀粉原料作用高效地制备环四糖的方法。
其后，本发明人等着眼于前述α-异麦芽糖基葡萄糖及环四糖的分子内具有异麦芽糖结构，对由这些的糖类制备麦芽糖的方法进行了研究。即，本发明人等对这些α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶和α-异麦芽糖基转移酶的酶反应机理进行研究，结果发现在没有或有α-异麦芽糖基转移酶的存在下，使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶和具有使异麦芽糖游离的作用的异麦芽糖游离酶，与作为非还原末端的苷键方式的有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度在2以上的糖类作用，则大幅度地提高异麦芽糖的产率，而且工业上也容易实施。另外，本发明人等确立了采用这样的制备方法所制得的异麦芽糖的用途，从而完成了本发明，具体来说，本发明是确立了异麦芽糖的制备方法及其用途，其特征是在α-异麦芽糖基转移酶的非存在或存在下，使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用于作为非还原末端的苷键方式有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度在2以上的糖类，生成作为非还原性末端的苷键方式有α-1，6葡糖苷键，作为该非还原性末端以外的苷键方式有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度3以上的α-异麦芽糖基葡萄糖及/或环{→6}-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→6)-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D吡喃葡糖基-(1→)，将异麦牙糖游离酶作用于此生成物，收集该生成的异麦芽糖，从而解决了本发明的课题。
附图的简单说明
图1是表示温度对来自圆孢芽孢杆菌(Bacillus globisporus C9)的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的酶活性影响的示意图。
图2是表示pH对来自圆孢芽孢杆菌C9的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的酶活性影响的示意图。
图3是表示来自圆孢芽孢杆菌C9的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的温度稳定性的图。
图4是表示来自圆孢芽孢杆菌C9的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的pH稳定性的示意图。
图5是表示温度对来自圆孢芽孢杆菌C9的α-异麦芽糖基转移酶的酶活性影响的示意图。
图6是表示pH对来自圆孢芽孢杆菌C9的α-异麦芽糖基转移酶的酶活性影响的示意图。
图7是表示来自圆孢芽孢杆菌C9的α-异麦芽糖基转移酶的温度稳定性的示意图。
图8是表示来自圆孢芽孢杆菌C9的α-异麦芽糖基转移酶的pH稳定性的示意图。
图9是表示温度对来自圆孢芽孢杆菌C11的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的酶活性影响的示意图。
图10是表示pH对来自圆孢芽孢杆菌C11的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的酶活性影响的示意图。
图11是表示来自圆孢芽孢杆菌C11的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的温度稳定性的示意图。
图12是表示来自圆孢芽孢杆菌C11的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的pH稳定性的示意图。
图13是表示温度对来自圆孢芽孢杆菌C11的α-异麦芽糖基转移酶的酶活性影响的示意图。
图14是表示pH对来自圆孢芽孢杆菌C11的α-异麦芽糖基转移酶的酶活性影响的示意图。
图15是表示来自圆孢芽孢杆菌C11的α-异麦芽糖基转移酶的温度稳定性的示意图。
图16是表示来自圆孢芽孢杆菌C11的α-异麦芽糖基转移酶的pH稳定性的示意图。
图17是表示采用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶反应制得的α-异麦芽糖基麦芽三糖的1H-NMR谱图。
图18是表示采用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶反应制得的α-异麦芽糖基麦芽四糖的1H-NMR谱图。
图19是表示采用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶反应制得的α-异麦芽糖基麦芽三糖的13C-NMR谱图。
图20是表示采用α-异麦芽糖基麦芽四糖的13C-NMR谱图。
图21是表示产物A的1H-NMR谱图。
图22是表示产物A的13C-NMR谱图。
实施发明的最佳方式
用于本发明的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶，是指由淀粉类生成α-异麦芽糖基葡萄糖(别名，6-α-葡糖基麦芽糖)、α-异麦芽糖基麦芽糖、α-异麦芽糖基麦芽三糖、α-异麦芽糖基麦芽四糖等的α-异麦芽糖基葡萄糖糖类的酶，具体来说，可列举特愿2000-234937号说明书公开的，2000年4月25日在日本国茨城县筑波市东1J目潘地1中央第6处的独立行政法人产业技术综合研究所专利生物保藏中心中，保藏号码为FERMBP-7143的保藏的来自圆孢芽孢杆菌(Bacillus globisporus)C9及保藏号码为FERM BP-7144的寄存的来自圆孢芽孢杆菌(Bacillusglobisporus)C11的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶及特愿2001-5441号说明书公开的基因重组型具有α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性的多肽等。
另外，用于本发明的α-异麦芽糖基转移酶，是指由6-α-葡糖基麦芽糖、异麦芽糖基麦芽糖之类的α-异麦芽糖基葡萄糖生成环四糖的酶，可列举特愿2000-229557号说明书公开的来自圆孢芽孢菌(Bacillusglobisporus)C9(FERM BP-7143)及来自圆孢芽孢杆菌(Bacillusglobisporus)C11(FERM BP-7144)的α-异麦芽糖基转移酶，及特愿2000-350142号说明书公开的基因重组型具有α-异麦芽糖基转移酶活性的多肽等。
此外，本发明用的异麦芽糖游离酶，意味着具有使异麦芽糖从α-异麦芽糖基葡萄糖或环四糖有游离的作用的酶，例如，可列举来自“生物化学杂志”(Journal of Biochemistry)第75卷，105～112页(1974年)报道的球形节杆菌(Arthrobacter globiformis)T6(NRRL B-4425)，由东京大学应用微生物研究所转让的球形节杆菌(IAM 12103)及“糖类研究(Carbohydrate Research)”第89卷，289～299页(1981年)报道的马杜拉放线菌(Actinomadura)R10(NRRL B-11411)等微生物的异麦芽葡聚糖酶(EC3.2.1.94)。
所谓作为用于本发明的非还原末端的苷键方式的α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类，例如，是指玉米淀粉、米淀粉、小麦淀粉等的地上淀粉、马铃薯淀粉、甘薯淀粉、木薯淀粉等的地下淀粉及它们的部分水解物(淀粉部分分解物)。前述淀粉部分分解物，通常将上述的地上乃至地下淀粉悬浮在水中，通常配成浓度为10％以上，更优选15％～65％，再优选为20％～50％的淀粉乳，将其加热进行液化，或者可采用酸剂或酶剂将上述的地上乃至地下淀粉进行液化而制得。液化的程度可设定的较低，一般为DE15以下，优选DE10以下，更优选DE9～0.1的范围。用酸剂进行液化时，例如，采用使用盐酸、磷酸、草酸等酸剂进行液化后，通常，用碳酸钙、氧化钙、碳酸钠等的碱剂中和到要求的pH的方法。用酶剂进行液化时，本发明中可适当使用α-淀粉酶，尤其是耐热性的液化型α-淀粉酶。
在没有或者有α-异麦芽糖基转移酶的存在下，使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与作为这些非还原末端的苷键方式有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类作用，生成作为非还原性末端的苷键方式有α-1，6葡糖苷键、作为该非还原性末端以外的苷键方式有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度3以上的α-异麦牙基葡萄糖和/或环→6})-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→6)-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D吡喃葡糖基-(1→)}，使异麦芽糖游离酶与该生成物作用，生成异麦芽糖，收集该生成的异麦芽糖，可高收率地制得异麦芽糖。此外，使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用时，通过使由α-异麦芽糖基转移酶，环麦芽糊精葡聚糖转移酶(以下，简称CGTase)、α-葡糖苷酶、葡糖淀粉酶及淀粉支化酶(异淀粉酶、支链淀粉酶等)中选出的1种或2种以上的酶作用，或者，使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用后，通过使由α-异麦芽糖基转移酶，CGTase、α-葡糖苷酶、葡糖淀粉酶及异淀粉酶中选出的1种或2种以上的酶作用，可高收率地制得异麦芽糖。尤其是，在α-异麦芽糖基转移酶的存在下，使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与作为非还原末端的苷键方式有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类作用所得环四糖再与异麦芽糖游离酶作用时，可使由环四糖制得异麦芽糖的产率最大提高到100％。本发明中使用多种的酶时的顺序，可考虑异麦芽糖的收率、反应时间、反应条件等进行设定，也可以使多种酶同时作用，或者也可把这些酶的需用量分成几批，在不同的时标(timing)下使之作用。使本发明用的酶作用时的pH，可以是前述酶可发挥这些酶活性的pH，通常从pH4～10、优选从pH5～8的范围选择。另外，使酶作用时的温度，通常从10～80℃，优选从30～70℃的范围选择。酶量可考虑各酶的反应条件、反应时间而适当地进行增减，通常每克底物固形物，α-异麦芽糖基转移酶及α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶分别从0.01～100单位的范围异麦芽糖游离酶及淀粉支化酶分别从1～10,000单位的范围以及CGTase、α-葡糖苷酶、葡糖淀粉酶及异淀粉酶从0.05～7,000单位的范围中适当地选用。此外，所用酶的反应时间，虽然依赖于酶量，但也可考虑异麦芽糖的生成收率来适当地选择，通常设定在1～200小时，优选5～150小时、10～100小时完成所有酶反应。再者，各种酶反应时的pH及温度也可在完成本发明中的酶反应的工序中适当地进行变更。
这样制得的酶反应液中的异麦芽糖含量，通常每单位固形物为30％以上，优选40％以上，更优选50％以上，最大也可达到99％以上。特别是在这些作为非还原末端的苷键方式有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类中，同时或按顺序添加α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶、α-异麦芽糖基转移酶及异麦芽糖游离酶时，可容易地制得每单位固形物的异麦芽糖含有率50％以上的酶反应液。前述酶反应液通常采用过滤、离心分离等常用方法除去酶反应液中的不溶物，然后用活性炭脱色，再用H型、OH型离子交换树脂等脱盐，进行精制、浓缩成为糖浆状制品，或者，再将其干燥成粉末状制品。如果需要的话，还可以例如将采用离子交换柱色谱法、活性炭柱色谱法、硅胶柱色谱法等的柱色谱法的级分、使用醇及丙酮等的机溶剂的分离，膜分离法等的1种或2种以上的适当组合进行精制，可以制成异麦芽糖高含量物。尤其是，作为异麦芽糖高含量物的工业化大量制备方法，优选采用离子交换树脂柱色谱法。具体例如，特开昭58-23799号公报及特开照58-72598号公报等公开的，采用键合磺酸基的苯乙烯-二乙烯基苯交联共聚物树脂的Na+形、K+形等碱金属型及Ca2+型Mg2+型等碱土金属型的1种或2种以上的强酸性阳离子交换树脂的离子交换树脂柱色谱法时，工业上可高收率，大量、容易且价廉地制备异麦芽糖高含量物。作为前述市售的强酸性阳离子交换树脂，可列举道化学公司制的商品名(Dowex 50WX2)(Dowex 50WX4)及(Dowex 50WX8)，罗姆·哈斯公司制的商品名(アンバ一ライトCG-120)东京有机化学工业公司制的商品名(XT-1022E)、三菱化成工业公司制的商品名(DiaionSK1B)(Diaion SK102)及(Diaion SK104)等。前述离子交换树脂柱色谱法中，可采用固定床方式，移动床方式，类似移动床方式的任一种方式。若采用这样的方法，每单位异麦芽糖的固形物的纯度一般可达60％以上，优选80％以上，更优选达到99％以上的最高纯度。再者，除最高纯度的异麦芽糖以外的异麦芽糖，即，异麦芽糖高含量物通常除异麦芽糖以外，还含有每单位固形物一般为1～60％的由葡萄糖、麦芽糖、麦芽三糖、麦芽四糖、其他的淀粉部分水解物、α-异麦芽糖基葡萄糖类及α-葡糖基-({1→6}-α-葡糖基-(1→3)-α-葡糖基-(1→6)-α-葡萄糖(以下，有时简称“开环四糖”。)中选出的1种或2种以上的糖类。
这样制得的本发明的异麦芽糖及异麦芽糖高含量物，具有良好的质量和上等品质的甜味，同时具有阻止作为引起禹齿原因之一的葡聚糖生成的作用，优选作为难以引起禹齿的甜味剂使用。另外，本发明的异麦芽糖及异麦芽糖高含量物的储存稳定性也好。尤其是异麦芽糖结晶高含量制品的情况，可与Pullulan、羟乙基淀粉、聚乙烯基吡咯烷酮等公知的粘合剂并用，也有利于作为片剂的糖衣剂使用。另外，本发明的异麦芽糖及异麦芽糖高含量物也兼具渗透压调节性、赋形性、赋亮泽性、保湿性、粘性、防糖类结晶析出性、难发酵性、防糊化淀粉老化性等的有用的性质。因此，本发明的麦芽糖及麦芽糖高含量物作为甜味料、矫味剂、风味改剂、品质改良剂、稳定剂、赋形剂等，可优选在食品、饲料、饵料、化妆品、医药品、嗜好品等各种组合物中使用。
本发明的异麦芽糖及异麦芽糖高含量物，也可作为使各种物品带甜味的调味料使用。还可根据需要，例如与饴糖、葡萄糖、果糖、乳果糖、麦芽糖、蔗糖、异构化糖、蜂蜜、槭糖、异麦芽低聚糖、半乳低聚糖、果低聚糖、山梨糖醇、麦芽糖醇、乳糖醇(ラクチト一ル)、二氢化查尔酮、甜菊苷，α-葡糖基甜菊苷、莱状特苷、甘草酸、L-天门冬酰基-L-苯丙氨酸甲酯、スクラロ一ス、阿斯塞夫K(アセスルファムk，acesulfame，双氧噁噻嗪)、糖精、甘氨酸、丙氨酸等之类的其他的甜味料的1种或2种以上并用，如果需要，也可随意与糊精、淀粉、乳糖等的增量剂的1种或2种以上并用。
另外，本发明的异麦芽糖或异麦芽糖高含量物，尤其是它们的粉末状制品，可以直接或根据需要与适宜的增量剂、赋形剂、粘结剂、甜味料等的1种或2种以上并用，可随意地加工成颗粒、球状、短棒状、板状、立方体状、片剂状、薄膜状或薄片状等各种形状使用。
而且，本发明的异麦芽糖及异麦芽糖高含量物的甜味，也可以与具有酸味，成味、涩味、鲜味、苦味等其他味道的各种物质充分地调和，由于本身耐酸性、耐热性大，可以用于各种饮食品的着甜味，味道改良或品质改良而使用。具体例如，可用作为氨基酸、肽类、酱油、粉末酱油、酱汤、粉末酱汤料、粗制酱油、酱、撒味料、蛋黄酱、调味品、食醋、三杯醋(料酒、酱油、醋各-杯混成的醋)、粉末生鱼片用醋、中华之素、糖水、面汤、沙司、番茄酱、烧肉饭料、咖喱酱、炖味料、汤料、海带鲤鱼制调料、核酸类调味料、复合调味料、糯米制料酒、新糯米料酒、餐点用糖、咖啡用糖等各种调味料。另外，例如，可在酥脆饼干、糯米点心、米花糖、饼类、豆沙包、黑麦卷、馅类、羊羹、水羊羹、蛋羹、果冻、蛋糕、糖球等的各种日本式点心，面包、饼干、成饼干、小甜饼、小面包、布丁、黄油羹、鸡蛋羹、雪糕、窝状儿饼、松蛋糕、炸面圈、巧克力、口香糖、焦糖、糖果等的洋糕点，冰激淋、果子露等的冰点、水果糖蜜罐头、冰蜜等的果子露类，面粉糊、花生酱、水果酱、膏状食品等的酱类，果子酱、橘皮果酱、糖渍水果、糖果等的水果、蔬菜的加工食品类、什锦酱菜、暴腌咸菜、千层咸菜、腌薤等的腌菜类、成萝卜咸菜之素、腌白菜之素等的腌菜之素类、火腿、香肠等折畜肉制品类、鱼肉火腿、鱼肉香肠、鱼糕、烤鱼、炸虾等的鱼肉制品，海胆、墨鱼的腌制物、醋海带、干鱿鱼片、料酒浸河豚干等的各种珍味类，用紫菜、野菜、干鱿鱼、小鱼、贝等制备的煮制食品类，煮豆、马铃薯沙拉、海带卷等的家常菜食品，酸奶酪、干酪等的乳制品，鱼肉、畜肉、水果、蔬菜的瓶装罐头、罐头类、日本清酒、合成酒、甜酒、洋酒等的酒类，咖啡、红茶、可可、果汁、碳酸饮料、乳酸饮料、乳酸菌饮料等的清凉水饮料，布丁混合物、热饼混合物、快速年糕小豆汤、快餐汤等的快餐食品，还有断奶食品、治疗食品、饮料冲剂、肽食品、冷冻食品、健康食品等的各种饮食品中利用。
此外，为了提高家畜、家禽、蜜蜂、蚕、鱼等饲养动物用的饲料、饵料的嗜食性，也可以使用。除此之外，还可作为香烟、牙膏、口红、愈裂膏、内服液、片剂、糖衣剂、肝油丸、口腔清凉剂、口腔芳香剂、漱口剂等的各种固形物用甜味剂、或用作为这些的味道改良剂、矫味剂、品质改良剂、稳定剂等。
本发明的异麦芽糖及异麦芽糖高含量物作为品质改良剂和/或稳定剂，通过配合用在含有效成份、活性成分或生理活性物质的健康食品、医药品等中，可制得稳定且高品质的液状、糊状或固体状的健康食品或医药品。作为前述有效成分或生理活性物质，可列举如α干扰素、β干扰素、γ干扰素、TNF-α、TNF-β、巨噬细胞移动抑制因子、集落刺激因子、转移因子、白介素等的淋巴因子、胰岛素、生长激素、催乳素、红细胞生成素、卵细胞刺激激素等的激素，BCG疫苗、日本脑炎疫苗、麻疹疫苗、小儿麻痹疫苗、天花疫苗、破伤风类毒素、蛇毒(ハブ)抗毒素、人免疫球蛋白等的生物制剂、青霉素、红霉素、氯霉素、四环素、链霉素、硫酸卡那霉素等的抗生物质、硫胺素、核黄素、L-抗坏血酸、α-葡糖基抗坏血酸、鱼肝油、类胡萝卜素、麦角甾醇、生育酚、芦丁、α-葡糖基芦丁、柚皮苷、α-葡糖基柚皮苷、橙皮苷、α-葡糖基橙皮苷等的维生素类、脂酶、弹性蛋白酶、尿激酶、蛋白酶、β-淀粉酶、异淀粉酶、葡糖化酶、乳糖酶等的酶、人参提取物、矮竹提取物、梅提取物、松提取物、甲鱼提取物、小球藻提取物、芦荟提取物、芦荟胶提取物等的提取物类、病毒、乳酸菌、酵母等的活菌、蜂王精等。
使以上所述的各种组合物含有本发明的异麦芽糖或异麦芽糖高含量物的方法是可在制成这些组合物的工序中使之含有，例如，适当选择混合、溶解、熔解、浸渍、浸透、分散、涂布、包覆、喷雾、注入、晶析、固化等公知的方法。其量通常相对于每单位重量前述组合物，在0.1％以上，优选1％以上，更优选2～99.99％。
以下，用实施例具体地说明本发明。
实验例1：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶的配制。
把淀粉部分分解物(商品名“パインデツクス#4”松谷化学株式会社制)4.0w/v％、酶母提取物(商品名“アサヒミ-スト”朝日啤酒株式会社制)1.8w/v％、磷酸氢二钾0.1w/v％、磷酸二氢钠·12水盐0.06w/v％、硫酸镁·7水盐0.05w/v％及水所组成的液体培养基100ml加到500ml三角烧瓶中，在高压釜中，121℃灭菌20分钟，冷却后接种圆孢芽孢杆菌C9(FERM BP-7143)，在27℃、230rpm条件下旋转振荡48小时，把培养物作为种培养物。
把与种培养时相同组成的培养基约20L加到容量30L的发酵器中、加热杀菌、冷却到温度27℃后，接种种培养液1v/v％，边保持温度27℃，pH6.0～8.0，边通气搅拌培养48小时。培养后，培养液中的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性约为0.45单位/ml，α-异麦芽糖基转移酶活性约为1.5单位/ml，环四糖生成活性约为0.95单位/ml，离心分离(10.000rpm、30分钟)，测定回收的上清液约18L的酶活性，结果该上清液中α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶大约为0.45单位/ml的活性(总活性约8,110单位)，α-异麦芽糖基转移酶有大约1.5单位/ml的活性(总活性约26,900单位)，该上清液可用作为含有α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶及α-异麦芽糖基转移酶的酶剂。
再有，前述酶活性测定如下。即，α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性，是使麦芽三糖溶解在100mM醋酸缓冲液(pH6.0)中使浓度为2w/v％，作为底物液，在其底物液0.5ml中加入酶液0.5ml，在35℃进行酶反应60分钟，将该反应液煮沸10分钟，使反应停止后，用高效液相色谱(以下，简称HPLC法)定量分析反应液中主要生成的异麦芽糖基麦芽糖与麦芽糖中的该麦芽糖的量。HPLC法使用YMC Pack ODS-AQ303柱(YMC株式会社制)，在柱温度40℃、流速0.5ml/min的水的条件下进行检测，使用示差折射计(RI-8012)(东曹株式会社)进行检测。α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的活性1单位，定义为在上述的条件下，1分钟生成1微摩尔麦芽糖的酶量。
此外，α-异麦芽糖基转移酶活性，是使6-α-葡糖基麦芽糖溶解在100mM醋酸缓冲液(pH6.0)中使浓度为2w/v％，以此作为底物液，在该底物液0.5ml中加入酶液0.5ml，在35℃进行酶反应30分钟，将该反应液煮沸10分钟，使反应停止后，用葡萄糖氧化酶法定量分析在该反应液中主要生成的环四糖和葡萄糖的该葡萄糖量。α-异麦芽糖基转移酶的活性1单位，定义为在上述的条件下1分钟生成1微摩尔的葡萄糖的酶量。
环四糖生成活性，是使淀粉部分分解物(商品名パインデツクス#100、松谷化学株式会社制)溶解在50mM醋酸缓冲液(pH6.0)中使浓度为2w/v％，以此作为底物液，在该底物液0.5ml中加入酶液0.5ml，在35℃进行酶反应60分钟，将该反应液在100℃热处理10分钟，使反应停止后，再加入含有α-葡糖苷酶(商品名糖苷转移酶L“AMANO”天野制药制)70单位/ml和葡糖淀粉酶(ナガせ生化学工业株式会社销售)27单位/ml的50mM醋酸缓冲液(pH5.0)1ml，在50℃处理60分钟，在100℃将该液体热处理10分钟，使酶失活后，用上述HPLC法定量环四糖量。环四糖生成活性1单位定义为在上述条件下1分钟生成1微摩尔的环四糖的酶量。实验例2：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶的分离<实验例2-1：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的分离>
用80％饱和硫酸铵溶液盐析实验例1制得的培养上清液约18L，在4℃放置24小时后，将其盐析沉淀物进行离心分离(10,000rpm、30分钟)、回收、溶解在10mM磷酸缓冲液(pH7.5)中后，对该缓冲液透析，制得粗酶液约400ml。该粗酶液具有α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性8,110单位，α-异麦芽糖基转移酶活性24,700单位和环四糖生成活性约15,600单位。将该粗酶液供使用三菱化学株式会社制Sepabeads FP-DA13凝胶的离子交换色谱法用(凝胶容量1,000ml)。此时，α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶、α-异麦芽糖基转移酶和环四糖的任一种，均不吸附在SepabeadsFP-DA13凝胶上，溶解在非吸附流分中流出。将该酶液含1M硫酸铵的透板到10mM磷酸缓冲液(pH7.0)中，离心分离该透析液，除去杂质，供使用Amersham Phrarmacia Biotec株式会社制(SephacrylHRS-200)凝胶的亲和色谱法(凝胶量500ml)用。酶活性成分吸附在Sephacryl HR s-200凝胶上，硫酸铵从1M到0呈线性梯度、麦芽四糖从0M到100mM呈线性梯度洗脱，结果α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶分离，流出，α-异麦芽糖基转移酶活性在硫酸铵的线性梯度中，在其浓度大约0M左右洗脱，α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性，因麦芽四糖的线性梯度中，在其浓度大约30mM左右洗脱，因此分别收集回收α-异麦芽糖基转移酶活性部分和α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性部分。
进一步，将前述α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性部分透析到对含1M硫酸铵的10mM磷酸缓冲液(pH7.0)中，离心分离该透析液，除去不溶物，供使用东曹株式会社制(Butyl-Toyo pearl 650M)凝胶的疏水色谱法用(凝胶量350ml)。该酶活性成分吸附在(Butyl-Toyopearl 650M)凝胶上，硫酸铵从1M到0M呈线性洗脱，结果在硫酸铵浓度约0.3M左右，吸附的酶活性成分洗脱，收集回收表示该酶活性的部分。再将回收液透析到含1M硫酸铵的10mM磷酸缓冲液(pH7.0)中，离心分离该透析液，除去不溶物，采用使用(Sephacryl HR S-200)凝胶的亲和色谱法进行精制。该精制各步骤中的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性量、比活性、收率如表1所示。
表1
| 工序 | α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性量(单位) | α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶比活性(单位/mg蛋白) | 收率(％) |
| 培养上清液 | 8,110 | 0.12 | 100 |
| 硫酸铵盐析后的透析液 | 7,450 | 0.56 | 91.9 |
| 离子交换柱洗脱液 | 5,850 | 1.03 | 72.1 |
| 亲和柱洗脱液 | 4,040 | 8.72 | 49.8 |
| 疏水柱洗脱液 | 3,070 | 10.6 | 37.8 |
| 亲和柱洗脱液 | 1,870 | 13.6 | 23.1 |
采用含7.5w/v％浓度的聚丙烯酰胺的凝胶电泳测定精制的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的纯度，结果蛋白谱带单一，是纯度高的酶标准品。<实验例2-2：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的性质>
将实验例2-1制得的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶供SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法用(凝胶浓度7.5w/v％)，同时与泳动的分子量标识器(日本BioRad Laboratories株式会社制)进行比较，测定该酶的分子量，结果分子量约是140,000±20,000道尔顿。
把精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶供于含2w/v％ampholine(两性电解质)(Amersham Pharmacia Biotec公司制)等电点聚丙烯酰胺凝胶电泳法，泳动后测定蛋白谱带与凝胶的pH，求出该酶的等电点，结果等电点pI约为5.2±0.5。
按照活性测定的方法，分析温度、pH对该酶活性的影响。再者，温度的影响是在没有Ca2+存在下和1mM存在下进行测定。这些的结果如图1(温度的影响)，图2(pH的影响)所示。酶的最适温度在pH6.0、60分钟反应下是约40℃(没有Ca2+存在)和约45℃(有1mM Ca2+存在)，最佳pH在35℃、60分钟反应下是约6.0～6.5。该酶的温度稳定性是在没有Ca2+存在下或有1mM Ca2+存在下将酶溶液(20mM醋酸缓冲液，pH6.0)在各温度保持60分钟，水冷却后，通过测定残存的酶活性而求出。另外，pH稳定性是在各pH下、50mM缓冲液中把该酶在4℃保持24小时后。调整pH到6.0，通过测定残存的酶活性而求出。结果分别如图3(温度稳定性)、图4(pH稳定性)所示。该酶的温度稳定性在约35℃(没有Ca2+存在)、在约40℃(有1mM Ca2+存在)，pH稳定性约在4.5～9.0。
在浓度1mM的各种金属盐存在下，按照活性测定的方法分析金属离子对该酶活性的影响。结果如表2所示。
表2
| 金属离子 | 相对活性(％) | 金属离子 | 相对活性(％) |
| 未添加 | 100 | Hg2+ | 4 |
| Zn2+ | 92 | Ba2+ | 65 |
| Mg2+ | 100 | Sr2+ | 80 |
| Ca2+ | 115 | Pb2+ | 103 |
| Co2+ | 100 | Fe2+ | 98 |
| Cu2+ | 15 | Fe3+ | 97 |
| Ni2+ | 98 | Mn2+ | 111 |
| Al3+ | 99 | EDTA | 20 |
由表2的结果可以看出，该酶活性因Hg2+、Cu2+、EDTA存在而明显受抑制，因Ba2+、Sr2+存在受到抑制。因Ca2+、Mn2+存在被活化。<实验例2-3：α-异麦芽糖基转移酶的分离>
对含1M硫酸铵的10mM磷酸缓冲液(pH7.0)中的实验例2-1制得的α-异麦芽糖基转移酶部分进行透析，离心分离该透析液，除去不溶物，供给于使用东曹株式会社制(Butyl-Toyopearl 650M)凝胶的疏水色谱法用(凝胶量350ml)。该吸附在(Butyl-Toyopearl650M上，在硫酸铵从1M到0M呈线性洗脱时，在硫酸铵浓度约0.3M左右时从凝胶中洗脱，收集该酶活性部分。将该回收馏分再一次透析到含1M硫酸铵的10mM磷酸缓冲液(pH7.0)中，离心分离该透析液，除去不溶物，采用使用(Sephacryl HR S-200)凝胶的亲和色谱法进行精制。各精制阶段的α-异麦芽糖基转移酶活性、比活性、收率如表3所示。
表3
<实验例2-4：α-异麦芽糖基转移酶的性质>
| 工序 | α-异麦芽糖基葡萄糖转移酶活性量(单位) | α-异麦芽糖基葡萄糖转移酶比活性(单位/mg蛋白) | 收率(％) |
| 培养上清液 | 26,900 | 0.41 | 100 |
| 硫酸铵盐析后的透析液 | 24,700 | 1.85 | 91.8 |
| 离子交换柱洗脱液 | 19,400 | 3.41 | 72.1 |
| 亲和柱洗脱液 | 13,400 | 18.6 | 49.8 |
| 疏水柱洗脱液 | 10,000 | 21.3 | 37.2 |
| 亲和柱洗脱液 | 6,460 | 26.9 | 24.0 |
将实验例2～3制得的精制α-异麦芽糖基转移酶供于SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法(凝胶浓度7.5w/v％)，同时与泳动的分子量标识器(日本BioRad Laboratories公司制)进行比较测定该酶的分子量，结果分子量是约112,000±20,000道尔顿。
把精制α-异麦芽糖基转移酶供于含有2w/v％ampholine(两性电解质)(Amersham Pharmacia Biotec公司制)的等电点聚丙烯酰胺凝胶电泳法，泳动后测定蛋白谱带与凝胶的pH，求出该酶的等电点，结果等电点pI约为5.5±0.5。
按照活性测定的方法，分析温度、pH对该酶活性的影响。结果如图5(温度的影响)、图6(pH的影响)所示。酶的最适温度在pH6.0、30分钟反应下约为45℃、最佳pH在35℃、30分钟反应下约为6.0。该酶的温度稳定性是将酶溶液(20mM醋酸缓冲液，pH6.0)在各温度保持60分钟，水冷却后，通过测定残存的酶活性而求出。而pH稳定性是在各pH的50mM缓冲液中把该酶在4℃保持24小时后，把pH调整到6.0，通过测定残存的酶活性而求出。各结果分别如图7(温度稳定性)、图8(pH稳定性)所示，该酶的温度稳定性约在40℃以下，pH稳定性约在4.0～9.0。
在浓度1mM的各种金属盐存在下，按照活性的测定方法分析金属离子对该酶活性的影响。结果如表4所示。
表4
| 金属离子 | 相对活性(％) | 金属离子 | 相对活性(％) |
| 未添加 | 100 | Hg2+ | 1 |
| Zn2+ | 88 | Ba2+ | 102 |
| Mg2+ | 98 | Sr2+ | 101 |
| Ca2+ | 101 | Pb2+ | 89 |
| Co2+ | 103 | Fe2+ | 96 |
| Cu2+ | 57 | Fe3+ | 105 |
| Ni2+ | 102 | Mn2+ | 106 |
| Al3+ | 103 | EDTA | 104 |
由表4的结果可以看出，该活性因Hg2+存在明显受抑制，因Cu2+存在受抑制。另外，不因Ca2+存在被活化，也不因EDTA存在受抑制。
本发明中也可优选使用来自前述圆孢芽孢杆菌C9(FERM BP-7143)的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶及α-异麦芽糖基转移酶的任一种。<实验例3：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶的配制。
把淀粉部分分解物“パインジツクス#4”4.0w/v％、酵母提取物“ヌ#ヒシ-スト”1.8w/v％、磷酸氢二钾0.1w/v％、磷酸二氢钠·12水盐0.06w/v％、硫酸镁·7水盐0.05W/v％及水所组成的液体培养基100ml加到500ml三角烧瓶中，在高压锅中121℃杀菌20分钟，冷却，接种Bacillusglonisporus C11(FERM BP-7144)、把在27℃、230rpm条件下旋转振荡48小时的培养物作为种培养。
把与种培养时相同组成的培养基约20L加到容量30L的发酵器中，加热杀菌，冷却到温度27℃后，接种种培养液1v/v％，边保持温度27℃、pH6.0～8.0，边通气搅拌培养48小时。培养后，培养液中的该活性约为0.55单位/ml、α-异麦芽糖基转移酶活性约为1.8单位/ml、环四糖生成活性约为1.1单位/ml，离心分离(10,000rpm、30分钟)，回收，测定回收的上清液约181的酶活性、结果α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶是约0.51单位/ml的活性(总活性约9,180单位)、α-异麦芽糖基转移酶是约1.7单位/ml的活性(总活性约30,400单位)。
用80％饱和硫酸铵液盐析前述培养上清液约18L，在4℃放置24小时后，将其盐析沉淀物离心分离(10,000rpm、30分钟)，回收，溶解在10mM磷酸缓冲液(pH7.5)中后，对该缓冲液透析，制得粗酶液约416ml。判明该粗酶液中，α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性有8,440单位，α-异麦芽糖基转移酶活性有约28,000单位，环四糖生成活性有约17,700单位。把该粗酶液供于使用实施例2-1所述的(SepabeadsFP-DA13)凝胶的离子交换色谱法。α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性，α-异麦芽糖基转移酶活性、环四糖生成活性的任一种均不吸附在(Sepabeads FP-DA13)凝胶上，而洗脱在非吸附馏分中。对含1M硫酸铵的10mM磷酸缓冲液(pH7.0)中的该非吸附馏分进行透析，离心分离该透析液，除去不溶物，供给于使用Amersham Pharmacia Biotec株式会社制(Sephacryl HRS-200)凝胶的亲合色谱法(凝胶量500ml)。酶活性成分吸附在(Sephacryl HR S-200)凝胶上，在硫酸铵从1M到用0M的线性梯度、麦芽四糖从0mM到100M的线性梯度中洗脱，结果α-异麦芽糖基转移酶活性成分与α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶分离而洗脱，α-异麦芽糖基转移酶活性成分，在硫酸铵的线性范围，在其浓度约0.3M左右洗脱，α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性，在麦芽四糖的线性范围，在其浓度约30mM左右洗脱。然后，分别收集回收α-异麦芽糖基转移酶活性部分和α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶部分。实验例4：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶的分离<实验例4-1：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的分离>
将实验例3制得的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶成分透析到含1M硫酸铵的10mM磷酸缓冲液中(pH7.0)，离心分离该透析液，除去不溶物，供使用东曹株式会社制“Butyl-Toyopearl 650m”凝胶的疏水色谱法(凝胶量350ml)用。该吸附在“butyl-Toyopearl 650M”凝胶上，在硫酸铵从1M到0M的线性梯度洗脱，结果在硫酸铵浓度约0.3M左右，吸附的酶洗脱、收集回收显示该活性的成分。将该回收液再一次透析到含1M硫酸铵的10mM磷酸缓冲液(pH7.0)中，离心分离该透析液，除去不溶物，采用使用“Sepbacryl HR S-200”凝胶的亲和色谱法进行精制。该精制的各阶段的α-异麦芽糖基葡萄糖糖类合成酶活性量、比活性、收率如表5所示。
表5
| 工序 | α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶活性量(单位) | α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶比活性(单位/mg蛋白) | 收率(％) |
| 培养上清液 | 9,180 | 0.14 | 100 |
| 硫酸铵盐析后的透析液 | 8,440 | 0.60 | 91.9 |
| 离子交换柱洗脱液 | 6,620 | 1.08 | 72.1 |
| 亲和柱洗脱液 | 4,130 | 8.83 | 45.0 |
| 疏水柱洗脱液 | 3,310 | 11.0 | 36.1 |
| 亲和柱洗脱液 | 2,000 | 13.4 | 21.8 |
对精制的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶采用含7.5w/v％浓度聚丙烯酰胺的凝胶电泳测定该的纯度，结果蛋白谱带单一，是纯度高的酶标准品。<实验例4-2：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的性质>
把实验例4-1制得的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶供SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法(凝胶浓度7.5w/v％)用，同时与泳动的分子量标识器(日本BioRad Laboratories株式会社制)进行比较，测定该的分子量，结果分子量是约137,000±20,000道尔顿。
把精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶供含有2w/v％ampholine(两性电解质)(Amersham Pharmacia Biotec公司制)的等电点聚丙烯酰胺凝胶电泳法用、泳动后、测定蛋白谱带与凝胶的pH，求出该的等电点，结果等电点pI约5.2±0.5。
按照活性测定的方法，分析温度、pH对该酶活性的影响。然后，有关温度的影响是在没有Ca2+存在下和有1mM Ca2+存在下进行测定。其结果如图9(温度的影响)、图10(pH的影响)所示。酶的最佳温度在pH6.0、60分钟反应下是约45℃(没有Ca2+存在)、约50℃(有Ca2+存在)，最佳pH在35℃、60分钟反应下是约6.0。该的温度稳定性是在没有Ca2+1mM在下或有1mM Ca2+存在下，把酶溶液(20mM醋酸缓冲液、pH6.0)在各温度保持60分钟，水冷却后、测定残存的酶活性而求出。另外，pH稳定性是在各pH50mM缓冲液中把该在40℃保持24小时后，把pH调整到6.0，测定残存的酶活性而求出。各结果分别如图11(温度稳定性)、图12(pH稳定性)所示。该的温度稳定性达到约40℃(没有Ca2+存在)和约45℃(有1mM Ca2+存在)，pH稳定性是约5.0～10.0。
在浓度1mM的各种金属盐存在下，按照活性测定的方法分析金属离子对该活性的影响。结果如表6所示。
表6
| 金属离子 | 相对活性(％) | 金属离子 | 相对活性(％) |
| 未添加 | 100 | Hg2+ | 4 |
| Zn2+ | 91 | Ba2+ | 65 |
| Mg2+ | 98 | Sr2+ | 83 |
| Ca2+ | 109 | Pb2+ | 101 |
| Co2+ | 96 | Fe2+ | 100 |
| Cu2+ | 23 | Fe3+ | 102 |
| Ni2+ | 93 | Mn2+ | 142 |
| Al3+ | 100 | EDTA | 24 |
由表6的结果可以看出，该活性因Hg2+、Cu2+、EDTA存在而明显受抑制，因Ba2+、Sr2+存在受抑制。因Ca2+、Mn2+存在被活性化。<实验例4-3：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的氨基酸序列>
本发明不是关于α-异麦芽葡萄糖合成酶自身的发明，此外，有关其详细的氨基酸序列的分析方法，由于特愿2001-5441号说明书已详细公开，故省略，而实验例4-1制得的α-异麦基葡萄糖合成酶与特愿2001-5441号说明书所公开的聚肽同样，具有序列表中序列序号1中合记的氨基酸序列中的第36～1284号氨基酸序列。<实验例4-4：α-异麦芽糖基转移酶的分离>
将实验例3制得的α-异麦芽糖基转移酶馏分透析到含1M硫酸铵的10mM磷酸缓冲液中(pH7.0)，离心分离该透析液，除去不溶物，供使用东曹株式会社制“Butyl-Toyopearl 950M”凝胶的疏水色谱法用(凝胶量350ml)。该吸附在“butyl-Toyopearl 650M”凝胶上，在硫酸铵从1M到0M的线性梯度洗脱，结果在硫酸铵浓度约0.3M左右，吸附的酶洗脱，收集回收显示该活性的组分。将该回收液再一次透析到含1M硫酸铵的10mM磷酸缓冲液中(pH7.0)、离心分离该透析液，除去不溶物、采用使用“Sephacryl HR S-200”凝胶的亲和色谱法进行精制。该精制的各阶段的α-异麦芽糖基转移酶活性量、比活性、收率如表7所示。
表7
<实验例4-5：α-异麦芽糖基转移酶的性质>
| 工序 | α-异麦芽糖基葡萄糖转移酶活性量(单位) | α-异麦芽糖基葡萄糖转移酶比活性(单位/mg蛋白) | 收率(％) |
| 培养上清液 | 30,400 | 0.45 | 100 |
| 硫酸铵盐析后的透析液 | 28,000 | 1.98 | 92.1 |
| 离子交换柱洗脱液 | 21,800 | 3.56 | 71.7 |
| 亲和柱洗脱液 | 13,700 | 21.9 | 45.1 |
| 疏水柱洗脱液 | 10,300 | 23.4 | 33.9 |
| 亲和柱洗脱液 | 5,510 | 29.6 | 18.1 |
把实验例4-4制得的精制α-异麦芽糖基转移酶供SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法(凝胶浓度7.5w/v％)，同时与泳动的分子量标识器(日本株式会社制)进行比较，测定该的分子量，结果分子量是约102,000±20,000道尔顿。
把精制α-异麦芽糖基葡萄糖转移酶供含有2w/v％ampholine(两性电解质)(Amersham Pharmacia Biotec公司制)的等电点聚丙烯酰胺凝胶电泳法用、泳动后、测定蛋白谱带与凝胶的pH，求该的等电点，结果等电点pI是约5.2±0.5。
按照活性测定的方法，分析温度、pH对该活性的影响。结果如图13(温度的影响)、图14(pH的影响)所示。酶的最佳温度在pH6.0、30分钟反应下是约50℃，最佳pH在35℃、30分钟反应下是约5.5～6.0。该的温度稳定性是将酶溶液(20mM醋酸缓冲液，pH6.0)在各温度保持60分钟，水冷却后，测定残存的酶活性而求出。另外，pH稳定性是在各pH50mM缓冲液中把该在4℃保持24小时后，把pH调整到6.0，测定残存的酶活性而求出。各结果分别如图15(温度稳定性)、图16(pH稳定性)。该的温度稳定性是达到约40℃，pH稳定性是约在4.5～9.0。
按照活性测定的方法，分析浓度1mM的各种金属盐存在下，金属离子对该活性的影响。结果如表8所示。
表8
| 金属离子 | 相对活性(％) | 金属离子 | 相对活性(％) |
| 未添加 | 100 | Hg2+ | 2 |
| Zn2+ | 83 | Ba2+ | 90 |
| Mg2+ | 91 | Sr2+ | 93 |
| Ca2+ | 91 | Pb2+ | 74 |
| Co2+ | 89 | Fe2+ | 104 |
| Cu2+ | 56 | Fe3+ | 88 |
| Ni2+ | 89 | Mn2+ | 93 |
| Al3+ | 89 | EDTA | 98 |
由表8的结果可以看出，该活性因Hg2+存在明显受抑制，Cu2+存在受抑制。而不因Ca2+存在活化，也不因EDTA存在受抑制。<实验例4-6：α-异麦芽糖基转移酶的氨基酸序列>
本发明不是关于α-异麦芽糖基转移酶自身的发明，此外，有关其详细的氨基酸序列的分析方法，由于特愿2000-350142号说明书详细公开，故省略。而实验例4-4制得的α-异麦芽糖基转移酶已在特愿2000-350142号说明书中公开，具有序列表中序列序号2中合记的氨基酸序列中的第30～第1093号的氨基酸序列。实验例5：α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶对各种糖类的作用
对α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶对各种糖类(底物)的作用进行了试验。即，配制含麦芽糖、麦芽三糖、麦芽四糖、麦芽五糖、麦芽六糖、麦芽七糖、异麦芽糖、异麦芽三糖、6-α-葡糖基麦芽糖、异-6-α-葡糖基麦芽糖、α，α-海藻糖、曲二糖、黑曲霉二糖、新海藻糖、纤维二糖、龙胆二糖、麦芽糖醇、麦芽三糖醇、乳糖、蔗糖、吡喃葡糖基庶糖、樱胶糖、麦芽糖基葡糖苷、异麦芽糖基葡糖苷的溶液，在这些的溶液中，按每克底物固形物分别加入来自实验例2-1制得的圆孢芽孢杆菌C9的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶、或来自实验例4-1制得的圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶标准品2单位，将底物浓度调整到2％(w/v)，在30℃、pH6.0条件下反应24小时。把酶反应前后的反应液供硅胶薄层色谱(以下，简称TLC法)分析用。TLC法中，作为展开溶剂使用正丁醇、吡啶和水的混合液(体积比6∶4∶1)，作为薄层板使用墨克公司制“キ-ゼ儿凝胶60”(铝板，20×20cm)，展开2次分离糖类，然后在铝板上喷硫酸-甲醇使之显色，检测全部糖类。另外，通过采用二苯基胺-苯胺法使还原糖显色检测的方法进行检测。TLC法的结果如表9所示。
表9
| 底物 | 酶作用 | 底物 | 酶作用 |
| C9酶 C11酶 | C9酶 C11酶 | ||
| 麦芽糖 | + + | 黑曲霉二糖 | + + |
| 麦芽三糖 | ++ ++ | 新海藻糖 | + + |
| 麦芽四糖 | +++ +++ | 纤维二糖 | - - |
| 麦芽五糖 | +++ +++ | 龙胆二糖 | - - |
| 麦芽六糖 | +++ +++ | 麦芽糖醇 | - - |
| 麦芽七糖 | +++ +++ | 麦芽三糖醇 | + + |
| 异麦芽糖 | - - | 乳糖 | - - |
| 异麦芽三糖 | - - | 庶糖 | - - |
| 6-α-葡糖基麦芽糖 | - - | 吡喃葡糖基庶糖 | + + |
| 异-6-α-葡糖基麦芽糖 | ++ ++ | 樱胶糖 | - - |
| 海藻糖 | - - | 麦芽糖基葡糖苷 | ++ ++ |
| 曲二糖 | + + | 异麦芽糖基葡糖苷 | - - |
注)在酶反应前后
(-)表示无变化
(+)表示底物的斑点略有减少，有其他生成物。
(++)表示底物的斑点减少很多，有其他生成物。
(+++)表示底物的斑点基本消失，有其他生成物。
由表9的结果可以看出，α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶，在试验的多种糖类中，充分地与葡萄糖聚合度3以上、非还原末端有麦芽糖结构的糖作用。另外表明，葡萄糖聚合度2的糖中，对麦芽糖、曲二糖、黑曲霉二糖、新海藻糖、麦芽三糖醇、吡喃葡糖基庶糖略有作用。实验例6：来自麦芽低聚糖的生成物
在浓度1％的麦芽糖、麦芽三糖、麦芽四糖或麦芽五糖水溶液中，相对于，加入实验例4-1制得的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶，相对于这固形物分别为，相对于麦芽糖和麦芽三糖为2单位，相对于麦芽四糖为0.2单位、相对于麦芽五糖为0.1单位的在35℃、pH6.0的条件下作用8小时后，在100℃保持10分钟，使酶失活停止反应。采用HPLC法测定制得的酶反应液的糖组成。作为HPLC法，使用(YMC Pack ODS-AQ303)柱(YMC株式会社制)在温度40℃、流速0.5ml/min水的条件下进行，检测使用示差折光仪(商品名(RI-8012)，东曹株式会社制)进行。将其结果示于表10。
表10
| 反应生成的糖的种类 | 底物 | |||
| 麦芽糖 | 麦芽三糖 | 麦芽四糖 | 麦芽五糖 | |
| 葡萄糖 | 8.5 | 0.1 | 0.0 | 0.0 |
| 麦芽糖 | 78.0 | 17.9 | 0.3 | 0.0 |
| 麦芽三糖 | 0.8 | 45.3 | 22.7 | 1.9 |
| 麦芽四糖 | 0.0 | 1.8 | 35.1 | 19.2 |
| 麦芽五糖 | 0.0 | 0.0 | 3.5 | 34.4 |
| 麦芽六糖 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 4.6 |
| 异麦芽糖 | 0.5 | 0.0 | 0.0 | 0.0 |
| 葡糖基麦芽糖 | 8.2 | 1.2 | 0.0 | 0.0 |
| 葡糖基麦芽三糖 | 2.4 | 31.5 | 6.8 | 0.0 |
| X | 0.0 | 2.1 | 30.0 | 11.4 |
| Y | 0.0 | 0.0 | 1.4 | 26.8 |
| Z | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.7 |
| 其他 | 0.6 | 0.1 | 0.2 | 0.0 |
表中的葡糖基麦芽糖是α-异麦芽糖基葡萄糖(别名：62-O-α-葡糖基麦芽糖、6-O-α-葡糖基麦芽糖)、葡糖基麦芽三糖是α-异麦芽糖基麦芽糖(别名：63-O-α-葡糖基麦芽三糖。X是实验例7所述的α-异麦芽糖基葡三糖(别名：64-O-α-葡糖基麦芽四糖。Y是实验例7所述的α-异麦芽糖基萄四糖(别名：65-O-α-葡糖基麦芽五糖。Z是未鉴定的糖类。
由表10的结果可以看出，该的作用结果是由底物麦芽糖，主要生成葡萄糖和α-异麦芽糖基葡萄糖(别名：62-O-α-葡糖基麦芽糖、6-α-葡糖基麦芽糖)、生成少量麦芽三糖、异麦芽糖、α-异麦芽糖基麦芽糖(别名：63-O-α-葡糖基麦芽三糖)。另外，由底物麦芽三糖，主要生成麦芽糖和α-异麦芽糖基麦芽糖，还生成少量葡萄糖、麦芽四糖、α-异麦芽糖基葡萄糖(别名：62-O-α-葡糖基麦芽糖、6-α-葡糖基麦芽糖)、生成物X。由底物麦芽四糖，主要生成麦芽三糖和生成物X，生成少量麦芽五糖、α-异麦芽糖基麦芽糖(别名：63-O-α-葡糖基麦芽三糖)和生成物X。由底物麦芽五糖，主要生成麦芽四糖和生成物Y，生成少量麦芽三糖，麦芽六糖、生成物X及生成物Z。
将作为来自底物麦芽四糖的主要生成物的生成物X和作为来自底物麦芽五糖的主要生成物的生成物Y进行分离和精制。用制备用HPLC柱(YMC-Pacu ODS-A R355-15S-15 12A)(YMC株式会社制)进行精制，分别从来自上述麦芽四糖的反应物、来自麦芽五糖的反应物中，分离出纯度99.9％以上的生成物X、固形物收率约8.3％，分离出纯度99.9％以上的生成物Y、固形物收率约11.5％。实验例7：生成物的结构解析
对用实验6方法制得的生成物X与生成物Y，按照常规方法进行甲基化分析和NMR分析。甲基化分析的结果归纳于表11。有关NMR分析的结果，将H-NMR光谱归纳于图17(生成物X)、图18(生成物Y)，将13C-NMR光谱和归属归纳于图19(生成物X)、图20(生成物Y)和表12。
表11
| 分析甲基化物的种类 | 组成比 | |
| 生成物X | 生成物Y | |
| 2，3，4-三甲基化物 | 1.00 | 1.00 |
| 2，3，6-三甲基化物 | 3.05 | 3.98 |
| 2，3，4，6-四甲基化物 | 0.82 | 0.85 |
表12
| NMR化学位移值(ppm) | |||
| 葡萄糖序号 | 碳序号 | 生成物X | 生成物Y |
| a | 1a | 100.8 | 100.8 |
| 2a | 74.2 | 74.2 | |
| 3a | 75.8 | 75.7 | |
| 4a | 72.2 | 72.2 | |
| 5a | 74.5 | 74.5 | |
| 6a | 63.2 | 63.1 | |
| b | 1b | 102.6 | 102.6 |
| 2b | 74.2 | 74.2 | |
| 3b | 75.8 | 75.7 | |
| 4b | 72.1 | 72.1 | |
| 5b | 74.0 | 74.0 | |
| 6b | 68.6 | 68.6 | |
| c | 1c | 102.3 | 102.3 |
| 2c | 74.20 | 74.2 | |
| 3c | 76.0 | 76.0 | |
| 4c | 79.6 | 79.5 | |
| 5c | 73.9 | 73.9 | |
| 6c | 63.2 | 63.1 | |
| d | 1d | 102.2 | 102.3 |
| 2d | 74.0(α)，74.4(β) | 74.2 | |
| 3d | 76.0 | 76.0 | |
| 4d | 79.8 | 79.5 | |
| 5d | 73.9 | 73.9 | |
| 6d | 63.2 | 63.1 | |
| e | 1e | 94.6(α)，98.5(β) | 102.1 |
| 2e | 74.2(α)，76.7(β) | 74.0(α)，74.4(β) | |
| 3e | 75.9(α)，78.9(β) | 76.0 | |
| 4e | 79.6(α)，79.4(β) | 79.8 | |
| 5e | 72.6(α)，77.2(β) | 73.9 | |
| 6e | 63.4(α)，63.4(β) | 63.1 | |
| f | 1f | 94.6(α)，98.5(β) | |
| 2f | 74.2(α)，76.7(β) | ||
| 3f | 76.0(α)，78.9(β) | ||
| 4f | 79.6(α)，79.5(β) | ||
| 5f | 72.6(α)，77.2(β) | ||
| 6f | 63.3(α)，63.3(β) | ||
由这些的结果可以看出，由于α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶的作用，来自麦芽四糖的生成物X是葡糖基在麦芽四糖的非还原末端葡萄糖的6位羟基进行α键合的五糖，是结构式1表示的α-异麦芽糖基葡萄三糖(别名，64-O-α-葡糖基麦芽四糖)。结构式1：αD-Glcp(1→6)αD-Glcp(1→4)αD-Glcp(1→4)αD-Glcp(1→4)D-Glcp
另外，来自麦芽五糖的生成物Y，是葡萄糖基在麦芽五糖的非还原末端葡萄糖的6位羟基进行α键合的六糖，是结构式2表示的α-异麦芽糖基葡萄四糖(别名，65-O-α-葡糖基麦芽五糖)。结构式2：αD-Glcp(1→6)αD-Glcp(1→4)αD-Glcp(1→4)αD-Glcp(1→4)αD-Glcp(1→4)D-Glcp
由以上的结果来看，α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶对麦芽低聚糖的作用判断如下。
(1)该与作为底物的由α-1，4糖苷键构成的葡萄糖聚合度2以上的糖(麦芽低聚糖)作用，对具有将其非还原性末端的葡糖残基转移到其他分子的非还原性末端的葡糖残基的6位的作用的分子间6-葡糖基转移进行催化，生成在非还原末端有6-O-α-葡糖基的葡萄糖聚合度增加1的α-异麦芽糖基葡萄糖(别名，6-O-α葡糖基麦芽低聚糖)和葡萄糖聚合度减少1的麦芽低聚糖。
(2)该也稍催化4-葡糖基转移，由麦芽低聚糖生成极少量葡萄糖聚合度增加1的麦芽低聚糖和葡萄糖聚合度减少1的麦芽低聚糖。实验例8：转移受体特异性
用各种糖进行是否可成为该的糖转移受体的试验。即，用D-葡萄糖、D-木糖、L-木糖、D-半乳糖、D-果糖、D-甘露糖、D-阿拉伯糖、D-岩藻糖、L-山梨糖、L-鼠李糖、甲基-α-葡糖苷、甲基-β-葡糖苷、N-乙酰基-葡糖胺、山梨糖醇、α，α-海藻糖、异麦芽糖、异麦芽三糖、纤维二糖、龙胆糖、麦芽糖醇、乳糖、蔗糖、α-环糊精、β-环糊精或γ-环糊精、配制浓度1.6％的溶液(糖转移受体溶液)，然后加入作为糖供给体的淀粉部分分解物(パインデツクス#100)(浓度4％)，相对于每克糖供给体固形物，分别加1单位来自Bacillns golbisporus C9的精制异麦芽糖基葡萄糖合成酶或来自圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶，这2种酶分别是用实验例2-1的方法和实验例4-1的方法制得的，将其在30℃、pH6.0的条件下反应24小时。糖受体是单糖或二糖类时用气相色谱法(以下，简称“GLC法”、糖受体是三糖类以上时用HPLC法对酶反应后的反应液进行分析，确认各种糖受体是否由于该变成糖转移受体。另外。GLC法中，GLC装置用“GC-16A”(岛津制作所株式会社制)、色谱柱用GL科学株式会社制填充“2％硅胶OV-17/クロモゾ儿ブW”的不锈钢制柱(3mmФ×2m)、载气用氮气、流量40ml/分、按7.5℃/分的升温速度从160℃升到320℃、用氢焰离子检测器进行分析。HPLC法中，HPLC的装置用东曹株式会社制“CCPD”、色谱柱用“ODS-AQ-303”(YMC株式会社制)、洗脱液用水、流速0.5ml/分、用示差折射检测器进行分析。结果如表13所示。
表13
| 糖类 | 糖转移生成物 | 糖类 | 糖转移生成物 | |
| C9酶 C11酶 | C9酶 | C11酶 | ||
| D-葡萄糖 | + + | 山梨糖醇 | - | - |
| D-木糖 | ++ ++ | 海藻糖 | ++ | ++ |
| L-木糖 | ++ ++ | 异麦芽糖 | ++ | ++ |
| D-半乳糖 | + + | 异麦芽三糖 | ++ | ++ |
| D-果糖 | + + | 纤维二糖 | ++ | ++ |
| D-甘露糖 | - - | 龙胆二糖 | ++ | ++ |
| D-阿拉伯糖 | ± ± | 麦芽糖醇 | ++ | ++ |
| D-岩藻糖 | + + | 乳糖 | ++ | ++ |
| L-山梨糖 | + + | 庶糖 | - | - |
| L-鼠李糖 | - - | α-环糊精 | - | - |
| 甲基-α-葡萄糖 | ++ ++ | β-环糊精 | - | - |
| 甲基-β-葡萄糖 | ++- ++ | γ-环糊精 | - | - |
| N-乙酰基葡糖胺 | + + | - | - | |
表中的
(-)表示没测出转移到受体的糖转移物
(±)表示虽测出转移到到受体的糖转移物，但生成量在1％以下。
(+)表示转移到受体的糖转移物在1～10％。
(++)表示转移到受体的糖转移物在10％以上。
由表13的结果可以看出，α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶，可利用各种糖作为糖转移受体，尤其是具有有效转移成D-木糖、L-木糖、甲基-α-葡糖苷、甲基-β-葡糖苷、α，α-海藻糖、异麦芽糖、异麦芽三糖、纤维二糖、龙胆二糖、麦芽糖醇、乳糖及蔗糖，其次也可以转移成D-葡萄糖、D-果糖、D-岩藻糖、L-山梨糖及N-乙酰基葡糖胺、还可以转移成D-阿拉伯糖作用的酶。实验例9：由培养物配制环四糖
把淀粉部分分解物(商品名“パインデツクス#1”松谷化学株式会社制)5w/v％、酵母提取物(商品名“スサヒミ-スト”，朝日啤酒株式会社制)1.5w/v％、磷酸氢二钾0.1w/v％、磷酸二氢钠·12水盐0.06w/v％、硫酸镁·7水盐0.05w/v％及水所组成的液体培养基100ml加入到500ml容量的三角烧瓶中、在高压锅中121℃杀菌20分钟、冷却后，接种圆孢芽孢杆菌C9(FERM BP-7143)，在27℃，230rpm条件下旋转振荡培养48小时后，离心分离除去菌体，获得培养上清液。再将该培养上清液进行高压热煮(120℃、15分钟)，放冷后，离心分离除去不溶物回收上清液。把该上清液90ml调整到pH5.0、温度45℃后，按每克固形物添加α-葡糖苷酶(商品名“糖苷转移酶L(Z))”、天野制药株式会社制)1,500单位和按每克固形物添加葡糖淀粉酶(ナガセ生物化学工业株式会社销售)75单位，处理24小时，然后用氢氧化钠把pH调整到12，煮沸2小时，分解残存的还原糖。过滤除去不溶物后，用三菱化学制离子交换树脂(DiaionPK218)和(Diaion WA30)脱色、脱盐、再用三菱化学制阳离子交换树脂(Diaion SK-1B)和有机制阴离子交换树脂(IRA411)再次脱盐，用活性炭脱色、精密过滤后，用蒸发器浓缩、真空冷冻干燥成固形物，制得约0.6g糖粉。本糖粉含有环四糖99.9％以上。实验例10：环四糖的生成
利用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶的作用，用各种糖进行环四糖生成试验。作为糖使用麦芽糖、麦芽三糖、麦芽四糖、麦芽五糖、直链淀粉、可溶性淀粉、淀粉部分分解物“商品名パインデツクス#100”、松谷化学株式会社制)或糖原(来自牡蛎、和光纯药株式会社销售)，分别配制成它们的水溶液。
在它们的水溶液(浓度0.5％)中，按每克固形物加入它们分别来自实验例4-1方法的圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶1单位和按每克固形物加入和来自实验例4-4方法制得的圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基转移酶10单位，在30℃、pH6.0的条件下使它们作用。作用条件按以下的4个体系进行。
(1)使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与各种糖作用24小时后，将酶热失活、然后、使α-异麦芽糖基转移酶作用24小时后，使酶热失活。
(2)使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶作用24小时后，使酶热失活。
(3)只用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用24小时后，使酶热失活。
(4)只用α-异麦芽糖基转移酶作用24小时后，使酶热失活。
为了弄清这些热失活的反应液中的环四糖的生成量，使用与实验例1同样的α-葡糖苷酶和葡糖淀粉酶进行处理，水解残存的还原性低聚糖，用HPLC法定量环四糖。结果如表14所示。
表14
| 底物 | 环四糖生成量(％) | |||
| α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用后，α-异麦芽糖基转移酶作用 | α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶同时作用 | 只用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用 | 只用α-异麦芽糖基转移酶作用 | |
| 麦芽糖 | 4.0 | 4.2 | 0.0 | 0.0 |
| 麦芽三糖 | 10.2 | 12.4 | 0.0 | 0.0 |
| 麦芽四糖 | 11.3 | 21.5 | 0.0 | 0.0 |
| 麦芽五糖 | 10.5 | 37.8 | 0.0 | 0.0 |
| 直链淀粉 | 3.5 | 31.6 | 0.0 | 0.0 |
| 可溶性淀粉 | 5.1 | 38.2 | 0.0 | 0.0 |
| 淀粉部分分解物 | 6.8 | 63.7 | 0.0 | 0.0 |
| 糖原 | 10.2 | 86.9 | 0.0 | 0.0 |
由表14的结果可以看出，试验的任一种糖，在只用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用及只用α-异麦芽糖基转移酶作用时，完全不生成环四糖，而合用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶生成环四糖。在使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用后再使α-异麦芽糖基转移酶作用时，其生成量较低，大约为11％以下，而α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶并用时，任一种糖的环四糖的生成量均提高，尤其是糖原增加到约87％，淀粉部分分解物增加到约64％。
该α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶并用生成环四糖的机理，从两种酶的反应特性来看估计如下。
(1)α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与糖原或部分分解物等的α-1，4葡聚糖链的非还原末端葡萄糖作用，使其葡萄糖基分子间转移到其他的α-1，4葡聚糖链的非还原末端葡萄糖基的6位羟基上，生成非还原末端有α-异麦芽糖基的α-1，4葡聚糖链。
(2)α-异麦芽糖基转移酶与非还原末端有异麦芽糖基的α-1，4葡聚糖链作用。使其异麦芽糖基分子间转移到其他的非还原末端有异麦芽糖基的α-1，4葡聚糖链的非还原末端葡萄糖基的3位羟基，生成非还原末端有异麦芽糖基-1，3-异麦芽糖基的α-1，4葡聚糖链。
(3)然后，α-异麦芽糖基转移酶作用与该非还原末端有异麦芽糖基-1，3-异麦芽糖基的α-1，4葡聚糖链，通过分子内转移作用，将异麦芽糖基-1，3-异麦芽糖基从α-1，4葡聚糖链切断，环化后生成环四糖。
(4)切断的α-1，4葡聚糖链，再一次通过经(1)～(3)的反应，重新生成环四糖。推测由于α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶的并用，如上所述两种酶反复作用，使环四糖的生成量增加。实验例11：淀粉液化度的影响
使玉米淀粉配成浓度15％的淀粉乳，在其中加入碳酸钙0.1％调整到pH6.0，按每克淀粉加入α-淀粉酶(商品名“タ-マシ-L60L”ノ木”公司制)0.02～2.0％，在95℃反应10分钟，然后在120℃，高压煮20分钟，急冷到约35℃、制得DE3.2～20.5的液化溶液，然后，按每克固形物加入精制α-异麦芽转移酶20单位和精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶2单位，它们分别来自实验例4-1制得的Bacillus glohisporns C11和来自实验例4-4的方法制得的Bacillus glohisporus C11在35℃反应24小时。在100℃热处理15分钟使酶失活。接着，与实验例1同样地用α-葡糖苷酶和葡糖淀粉酶进行处理，水解残存的还原性低聚糖，用HPLC法定量环四糖。这些结果如表15所示。
表15
| 单位淀粉相当的α-淀粉酶使用量(％) | DE | 环四糖产率(％) |
| 0.2 | 3.2 | 54.5 |
| 0.4 | 4.8 | 50.5 |
| 0.6 | 7.8 | 44.1 |
| 1.0 | 12.5 | 39.8 |
| 1.5 | 17.3 | 34.4 |
| 2.0 | 20.5 | 30.8 |
由表15的结果可以看出，利用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与α-异麦芽糖基转移酶生成环四糖中，因淀粉的液化程度的不同而受影响，液化程度越低，即，DE值越低，则来自淀粉的环四糖的产率越高，相反，液化程度越高，即，DE值越高，来自淀粉的环四糖的产率越低。具体地，可以看出淀粉的部分分解程度约20以下，优选DE约12以下，更优选DE约5以下的值。实验例12：淀粉部分分解物浓度的影响
配制淀粉部分分解物“バインデツクス#100”(DE约2～5)的最终浓度为0.5～40％的水溶液，按每克固形物加入精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶1单位和精制α-异麦芽糖基转移酶10单位，它们分别来自实验例4-1制得的Bacillus glonisporus C11和来自实验例4-4制得的圆孢芽孢杆菌C11，合用两种酶，在30℃、pH6.0的条件下作用48小时后，在100℃热处理15分钟，使酶失活。接着，与实验例1同样地用葡糖苷酶和葡糖淀粉酶，水解残存的还原性低聚糖，用HPLC法定量环四糖，其结果如表16所示。
表16
| バインデツクス浓度(％) | 环四糖生成量(％) |
| 0.5 | 63.6 |
| 2.5 | 62.0 |
| 5 | 60.4 |
| 10 | 57.3 |
| 15 | 54.6 |
| 20 | 51.3 |
| 30 | 45.9 |
| 40 | 39.5 |
由表16的结果可以看出，淀粉部分解物的浓度是0.5％的低浓度时，环四糖的生成量是约64％，而浓度是40％的高浓度时，环四糖的生成量为约40％，表明环四糖的生成量随作为底物的淀粉部分分解物浓度的不同而变化。从该结果可以看出，环四糖的生成量根据淀粉部分分解物的浓度而进行变化。实验例13；添加环糊精葡糖转移酶添加的作用
配制淀粉部分分解物“バインデツクス#100”水溶液(浓度15％)，按每克固形物加入来自实验例4-1制得的圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶1单位，按每克固形物加入来自实验4-4制得的圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基转移酶10单位，按每克固形物加入来自嗜热脂肪芽孢杆菌(Bacillus Stearothermophilus)的CGTase 0～0.5单位，合用两种酶，在30℃、pH6.0的条件下作用48小时后，在100℃热处理15分钟使酶失活。接着，用α-葡糖苷酶(商品名：糖苷转移酶“アマノ”，天野制药株式会社制)和葡糖淀粉酶(メガセ生化学工业株式会社销售)水解残存的还原性低聚糖，用HPLC法定量环四糖。定量的结果如表17所示。
表17
| CGTase添加量(单位) | 环四糖生成量(％) |
| 0 | 54.6 |
| 2.5 | 60.1 |
| 5 | 63.1 |
| 10 | 65.2 |
由表17的结果可以看出，通过添加CGTase，环四糖的生成量增加。实验例15：异麦芽糖游离酶的配制
将葡聚糖3.0w/v％、胨0.7w/v％、磷酸氢二钾0.2w/v％、硫酸镁7水盐0.05w/v％及水组成的液体培养基l00ml加入500ml容量三角烧瓶中，在高压锅中121℃杀菌20分钟，冷却后，接种球形节杆菌(arthrobacterglobiformis，IAM12103)，把在27℃、230rpm条件下旋转振荡培养48小时的培养物作为种培养。把与种培养时相同组成的培养基约20L加入容量30L的发酵器中，加热杀菌，冷却到温度27℃后，接种种培养液1v/v％，边保持温度27℃、pH6.0～8.0，边通气搅拌培养72小时。培养后，作为培养液中的异麦芽糖游离酶的异麦芽葡聚糖酶活性是约16.5单位/ml、测定离心分离(10,000rpm、30分钟)后回收的上清液约18L的酶活性，结果该酶是约16单位/ml的活性(总活性约288,000单位)。异麦芽葡聚糖酶活性的测定是以含浓度为0.1M醋酸缓冲液(pH5.5)的浓度1.25w/v％葡聚糖水溶液4ml为底物溶液，向该底物液中加入酶液1ml，在40℃酶反应20分钟，取其反应液1ml，将其加到索莫吉氏铜液2ml中，使反应停止后，用索莫吉-纳尔逊瓦法定量生成的异麦芽糖的还原力。异麦芽葡聚糖酶的活性1单位定义为在上述条件下，1分钟生成相当于1微摩尔异麦芽糖的还原力的酶量。用UF膜将培养上清液约18L浓缩成约2L后，用80％饱和硫酸铵液盐析，在4℃放置24小时。离心分离(10,000rpm，30分钟)、回收其盐析沉淀物，溶解在5mM磷酸缓冲液(pH6.8)中后，对该缓冲液进行透析，获得粗酶液约400ml。将该粗酶液供使用“Sepabeads FP-DA13”凝胶的离子交换色谱法(凝胶量2L)用。异麦芽葡聚糖酶活性不吸附在“SepabeadsFP-DA 13”凝胶上，而随非吸附组分洗脱。回收该活性成分，用80％饱和硫酸铵液进行盐析，在4℃放置24小时。离心分离(10,000rpm 30分钟)、回收其盐析沉淀物，溶解在5mM磷酸缓冲液(pH6.8)中后，对该缓冲液进行透析，获得含异麦芽葡聚糖酶活性161,000单位的部分精制酶液约500ml。实验例16：来自α-异麦芽糖基葡萄糖及环四糖的异麦芽糖的配制
在最终固形物浓度0.2％的6-α-葡糖基麦芽糖、α-异麦芽糖基麦芽糖、α-异麦芽糖基三糖、α-异麦芽糖基四糖或环四糖水溶液中，按每克固形物加入用实验例15的方法制得的异麦芽葡聚糖酶100单位(环四糖的情况下，为100单位或3000单位)，在40℃、pH5.5的条件下作用24小时，在100℃保持20分钟，停止反应。用HPLC法测定该酶反应液的糖组成。HPLC在使用“MCIGEL CK04SS”柱(三菱化学株式会社制)，柱内温度80℃，作为洗脱液的水的流速0.5ml/min的条件下进行测定，检测使用示差折射检测器“RI-8012”(东曹株式会社制)进行，其结果如表18所示。
表18
| 底物 | 酶量(单位) | 反应生成的糖(HPLC面积％) | |||||
| G1 | 1M | G2 | G3 | G4 | A | ||
| IMG1 | 100 | 35 | 65 | 0 | 0 | 0 | 0 |
| IMG2 | 100 | 0 | 51 | 49 | 0 | 0 | 0 |
| IMG3 | 100 | 0 | 41 | 0 | 59 | 0 | 0 |
| IMG4 | 100 | 0 | 35 | 0 | 0 | 65 | 0 |
| 环四糖 | 100 | 0 | 22 | 0 | 0 | 0 | 78 |
| 3000 | 0 | 100 | 0 | 0 | 0 | 0 | |
表中，IMG1、IMG2、IMG3、IMG4分别意味着6-α-葡糖基麦芽糖、α-异麦芽糖基麦芽糖、α-异麦芽葡三糖、异麦芽葡四糖，G1、IM、G2、G3、G4分别意味着葡萄糖、异麦芽糖、麦芽糖、麦芽三糖、麦芽四糖，A意味着在由环四糖生成异麦芽糖过程中的中间体。
由表18的结果可以看出，使异麦芽葡聚糖酶作用与α-异麦芽糖基葡萄糖的结果是，由作为底物的6-α-葡糖基麦芽糖只生成葡萄糖和异麦芽糖，由作为底物的α-异麦芽糖基麦芽糖只生成异麦芽糖和麦芽糖，由作为底物的α-异麦芽糖基三糖只生成异麦芽糖和麦芽三糖，由作为底物的α-异麦芽糖基四糖只生成异麦芽糖和麦芽四糖。另外，也看出由作为底物的环四糖，以生成物A作为中间体，只生成异麦芽糖。
然后，对生成物A进行精制与分离，它是来自作为底物的环四糖的中间体。即，通过采用制备用HPLC柱“YMC-Pack ODS-A R355-15S-15 12A”(YMC株式会社制)精制，分离生成物，从来自上述环四糖的反应物中，分离出纯度98.2％以上的生成物A，固形物收率约7.2％。
对生成物A按照常用方法进行甲基化分析和NMR分析。甲基化分析结果归纳于表19。有关NMR分析结果，“1H-NMR光谱如图21所示。13C-NMR光谱如图22所示。将这些的归属归纳于表20。
表19
| 分析甲基化物的种类 | 组成比 |
| 2，3，4-三甲基化物 | 2.00 |
| 2，4，6-三甲基化物 | 0.92 |
| 2，3，4，6-四甲基化物 | 0.88 |
表20
| 葡萄糖序号 | 碳序号 | NMR化学位移值(ppm) |
| a | 1a | 100.7 |
| 2a | 74.2 | |
| 3a | 75.8 | |
| 4a | 72.3 | |
| 5a | 74.5 | |
| 6a | 63.2 | |
| b | 1b | 102.1 |
| 2b | 74.3 | |
| 3b | 75.9 | |
| 4b | 72.6 | |
| 5b | 74.2 | |
| 6b | 68.0 | |
| c | 1c | 100.6 |
| 2c | 72.8 | |
| 3c | 83.0 | |
| 4c | 72.0 | |
| 5c | 73.1 | |
| 6c | 62.9 | |
| e | 1e | 94.9(α)，98.8(β) |
| 2e | 74.1(α)，76.6(β) | |
| 3e | 75.8(α)，78.7(β) | |
| 4e | 72.1(α)，72.1(β) | |
| 5e | 72.6(α)，76.9(β) | |
| 6e | 68.3(α)，68.3(β) |
由这些的结果可以看出，生成物A即，采用异麦芽葡聚糖酶由环四糖生成异麦芽糖时的中间体，是环四糖的α-1，3糖苷键的任一种水解开环的四糖类，是结构式(3)所示的α-葡糖基-(1→6)-α-葡糖基-(1→3)-α-葡糖基-(1→6)α-葡萄糖(开环四糖)。
结构式3：
αD-Gl cp(1→6)-αD-Glcp(1→3)αD-Glcp-(1→6)αD-Glcp
由以上的结果判断异麦芽葡聚糖酶对α-异麦芽糖基葡萄糖的作用如下。
异麦芽葡聚糖酶作用与作为底物的非还原末端有6-O-α-葡糖基的α-异麦芽糖基葡萄糖，特异性地水解其非还原性末端的异麦芽残基和葡萄糖(麦芽低聚糖)残基间的α-1、4糖苷键，生成异麦芽糖和葡萄糖(麦芽低聚糖)。另外，异麦芽葡聚糖酶也作用与作为底物的环四糖，水解其α-1，3糖苷键，开环后生成作为中间体的开环四糖，再作用与开环四糖，水解其α-1，3糖苷键，生成异麦芽糖。
实验例17：由各种底物生成异麦芽糖
使用各种糖，对在α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶及异麦芽葡聚糖酶的作用下生成异麦芽糖进行试验。即，用麦芽糖、麦芽三糖、麦芽四糖、麦芽五糖、麦芽六糖、麦芽七糖、直链淀粉或淀粉部分分解物(商品名バインデツクス#100，松谷化学株式会社制)和氯化钙，分别配制使水溶液的糖最终浓度为5％，氯化钙最终浓度为1mM。然后，按每克固形物加入来自实验例4-1所制得的圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶0.2单位和按每克固形物加入来自实验例15的方法所制得的异麦芽葡聚糖酶100单位，使它们在40℃、pH5.5的条件下反应。反应条件用下述2种体系进行。
(1)使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与糖类作用65小时后，使酶热失活，接着，使异麦芽葡聚糖酶作用65小时后，使酶热失活。
(2)将α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与异麦芽葡聚糖酶并用，与糖类作用65小时后，使两种酶加热失活。然后，用HPLC法定量加热处理的酶反应液中的异麦芽糖生成量。定量的结果如表21所示。
表21
| 底物 | 异麦芽糖生成量(％) | |
| α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用后，异麦芽葡聚糖酶作用 | 并用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与异麦芽葡聚糖酶 | |
| 麦芽糖 | 6.6 | 7.0 |
| 麦芽三糖 | 15.7 | 18.7 |
| 麦芽四糖 | 15.8 | 45.4 |
| 麦芽五糖 | 15.3 | 55.0 |
| 麦芽六糖 | 10.1 | 58.1 |
| 麦芽七糖 | 8.5 | 63.6 |
| 直链淀粉 | 4.0 | 64.9 |
| 淀粉部分分解物 | 3.8 | 62.7 |
由表21的结果可以看出，通过α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶和异麦芽葡聚糖酶的作用，可由试验的任一种糖生成异麦芽糖。在使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用后再使异麦芽葡聚糖酶作用时，其生成量较低，约为15％以下。而将α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与异麦芽葡聚糖酶共同作用时，由任一种糖生成异麦芽糖的生成量提高，尤其是，麦芽五糖、直链淀粉、淀粉部分分解物，其异麦芽糖生成量增加到60％以上。该α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与异麦芽葡聚糖酶并用的异麦芽糖的生成机理，从两种酶的反应特性来看估计如下。
(1)α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用与直链淀粉或淀粉部分分解物等的α-1，4葡聚糖链的非还原末端葡萄糖基，使该葡萄糖基分子间转移到其他的α-1，4葡聚糖链的非还原末端葡萄糖基的6位羟基，生成非还原末端有α-异麦芽糖基的α-1，4葡聚糖链。
(2)异麦芽葡聚糖酶作用与非还原末端有异麦芽糖基的α-1，4-葡聚糖链，水解该异麦芽糖基与α-1，4葡聚糖链间的α-1，4糖苷键，生成异麦芽糖和葡萄糖聚合度减少2的葡聚糖链。
(3)切断的α-1，4葡聚糖链，再一次通过(1)～(2)的反应重新生成异麦芽糖。由于并用α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与异麦芽葡聚糖酶，如上所述，两种酶反复作用，使异麦芽糖的生成量增加。实验例18：添加异淀粉酶的作用
配制淀粉部分分解物“バインデツクス#100”水溶液(最终浓度5％，含有1mM氯化钙)，按每克淀粉加入来自实验例4-1所制得的圆孢芽孢杆菌C11的精制异麦芽糖基葡萄糖合成酶0.2单位、按每克淀粉加入来自实验例15所制得的异麦芽葡聚糖酶100单位和按每克淀粉加入来自介支淀粉假单胞菌(Pseudomonas amyloderamosas)的异淀粉酶(林原生物化学研究所株式会社制)0～250单位，在40℃，pH5.5的条件下并用，作用65小时后，在100℃热处理15分钟使酶失活。用HPLC法定量生成的异麦芽糖，定量的结果如表22所示。
表22
| 异淀粉酶添加量(单位) | 异麦芽糖生成量(％) |
| 0 | 62.7 |
| 50 | 65.1 |
| 250 | 71.1 |
由表22的结果可以看出，通过添加异淀粉酶，异麦芽糖的生成量增加。实验例19：淀粉部分分解物浓度的影响
配制浓度不同的8种淀粉部分分解物“バインデツクス#100”(DE约2～5)的水溶液(最终浓度1～40％的水溶液，含有lmM的氯化钙)，相对于每克固形物分别加入来自实验例4-1所制得的球孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶0.2单位，实验例15的方法所制得的异麦芽葡聚糖酶100单位，来自介支淀粉假单胞菌的异淀粉酶(林原生物化学研究所制)250单位，在40℃、pH5.5的条件下作用65小时后，在100℃热处理15分钟使酶失活。用HPLC法定量生成的异麦芽糖。定量的结果如表23所示。
表23
| バインデツクス浓度(％) | 异麦芽糖生成量(％) |
| 1 | 73.0 |
| 2.5 | 72.8 |
| 5 | 71.1 |
| 10 | 67.0 |
| 15 | 63.7 |
| 20 | 60.7 |
| 30 | 55.4 |
| 40 | 50.7 |
由表23的结果可以看出，淀粉部分分解物的浓度是1％的低浓度时，异麦芽糖的生成量是约73％，而浓度40％的高浓度时，异麦芽糖的生成量为约51％，异麦芽糖的生成量随作为底物的淀粉部分分解物的浓度而进行变化。实验例20：淀粉液化程度的影响
将玉米淀粉配制成浓度15％的淀粉乳，在其中加入碳酸钙0.1％，调整到pH6.0，按每克淀粉加入α-淀粉酶(商品名“タ-マミ-ル60L”ノボ公司制)0.2～2.0％，在95℃反应10分钟，然后在120℃高压热煮，急冷到约40℃，制得DE3.2～20.5的液化溶液，然后调整到最终淀粉浓度为5％、pH5.5后，相对于每克固形物加入来自实验例4-1所制得的圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶标准品0.2单位、相对于每克固形物加入自实验例15的方法所制得的异麦芽葡聚糖酶100单位和相对于每克固形物来自介支淀粉假单胞菌的异淀粉酶(林原生物化学研究所株式会社制)250单位，在40℃反应65小时。在100℃热处理15分钟使酶失活。用HPLC法定量生成的异麦芽糖。定量的结果如表24所示。
表24
| α-淀粉酶使用量(每克淀粉的％(w/w)) | DE | 异麦芽糖产率(％) |
| 0.2 | 3.2 | 71.5 |
| 0.4 | 4.8 | 71.0 |
| 0.6 | 7.8 | 66.2 |
| 1.0 | 12.5 | 59.8 |
| 1.5 | 17.3 | 53.2 |
| 2.0 | 20.5 | 47.9 |
由表24的结果可以看出，在α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与异麦芽葡聚糖酶作用下，异麦芽糖产率受淀粉液化度的影响，液化程度愈低，即，DE值愈低，来自淀粉的异麦芽糖的产率愈高。反之，液化程度愈高，即，DE值愈高，来自淀粉的异麦芽糖的产率愈低。具体地，淀粉部分分解的程度为DE约20以下，优选DE约12以下，更优选DE约5以下。实验例23：添加环糊精葡糖转移酶与葡糖淀粉酶的作用
配制淀粉部分分解物“バインデツクス#100”水溶液(最终浓度20％，含有1mM氯化钙)，相对于每克淀粉加入来自实验例4-1所制得的圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶0.2单位相对于每克固形物加入来自实验例15的方法所制得的异麦芽葡聚糖酶100单位、相对于每克淀粉加入来自介支淀粉假单胞菌的异淀粉酶(林原生物化学研究所计株式会社制)250单位和来自嗜热脂肪芽孢杆菌的CGTase(林原生物化学研究所株式会社制)0～0.5单位，并用这些酶，在40℃、pH5.5的条件下作用65小时，在100℃热处理15分钟使酶失活。接着，相对于每克淀粉加入葡糖淀粉酶(商品名“XL-4”，ナガセ生化学工业株式会社制)20单位，在50℃作用24小时后，在100℃热处理20分钟使酶失活。用HPLC法定量生成的异麦芽糖。定量的结果如表25所示。
表25
| CGTase添加量(每克淀粉的单位数) | 异麦芽糖生成量(％) |
| 0 | 60.7 |
| 0.1 | 62.9 |
| 0.25 | 65.0 |
| 0.5 | 66.4 |
由表25的结果可以看出，在α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与异麦芽葡聚糖的酶反应体系中，通过添加CGTase，异麦芽糖的生成量增加。再者，为了使D-葡萄糖残基从CGTase存在下生成的异麦芽糖苷键1个以上的D-葡萄糖残基的糖类游离，再生成异麦芽糖使用前述葡糖淀粉酶。
以下，在实施例A及实施例B中，对本发明的异麦芽糖或异麦芽糖高含量物的制备方法及其用途进行详细的进行说明。实施例A-1
把来自玉米的植物葡糖苷(フイトグリコ-ゲン)(キュ-ピ-株式会社制)的水溶液(约100L)调整到浓度4w/v％、pH6.0，温度30℃后，按每克淀粉加入来自实验例4-1的方法制得的圆孢芽孢杆菌C11的精制α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶1单位和按每克淀粉加入来自实验例4-4的方法制得的α-精制异麦芽糖基转移酶10单位，反应48小时后，在100℃热处理10分钟使酶失活。取该酶反应液的一部分，用HPLC法测定环四糖的生成量，结果糖组成是约84％。HPLC法用“shodexKS-801柱”(昭和电工株式会社制)，在柱温度60℃，流速0.5ml/分的水的条件下进行测定，用示差折射检测器“RI-8012”(东曹株式会社制)进行检测。把该酶反应液调整到pH5.0、温度45℃后，按每克淀粉加入的α-葡糖苷酶(商品名“糖苷转移酶”アマノ，天野酶株式会社制)1500单位和葡糖淀粉酶(商品名“XL-4”，ナガセ生化学工业株式会社制)75单位，反应24小时，水解残存的还原性低聚糖等，再用氢氧化钠将pH调整到5.8，在温度90℃下保持1小时使酶失活，然后滤去不溶物。用反渗透膜(商品名“ホロセプHR5155pI”，东洋纺织株式会社制)把该滤液浓缩到固体成分浓度16％后，按照常规方法，通过脱色、脱盐、过滤、浓缩，制得含固体成分约3,700g的糖液约6.2kg。把本糖液供填充离子交换树脂(商品名“アンバ-ライトCR-1310(Na+型)型”、有机公司制)的柱(凝胶量约225L)用，在柱温60℃、流速约45L/h的条件下进行色谱分离。用前述HPLC法监控洗脱液的糖组成，回收环四糖纯度98％以上的组分，按照常规方法将其进行脱盐、脱色、过滤、浓缩，制得含固体成分约2500g的糖液约7.5kg。用HPLC法测定本糖液的糖组成，结果环四糖的纯度是约99.5％。用蒸发器将制得的含环四糖液浓缩到浓度约50％后，把该浓缩液约5kg加到圆筒状塑料容器中，边慢慢旋转边用约20小时使温度从65℃降到20℃，晶析环四糖。接着，用离心过滤器进行分离，回收环四糖结晶湿重量1360g，再在60℃干燥3小时，制得环四糖结晶粉末1170g，用HPLC法测定本结晶粉末的糖组成，结果环四糖结晶粉末的纯度在99.9％以上，纯度极高。
然后，将前述环四糖结晶粉末溶解于去离于水中，调整到浓度1％、pH5.5、温度50℃后，按每克固形物加入实验例15的方法配制的异麦芽糖基葡聚糖酶500单位，在pH5.5、温度50℃下反应70小时。在95℃加热保持10分钟后，冷却，把过滤获得的滤液按常规方法，用活性炭脱色，用H型及OH型离子交换树脂脱盐精制，再浓缩到浓度约75％，制得糖浆状异麦芽糖高含量物，每克固形物的收率是约95％。
本品是固形物时，含有异麦芽糖96.1％，开环四糖2.8％及其他的糖1.1％。本品由于具有难结晶性良好的保湿性、低甜味性、浸透压调节性、赋形性、赋亮泽性、保湿性、粘性、防糖晶析性、难发酵性、防淀粉老化性等。利于在各种饮食品、健康食品、饲料、饵料、化妆品、医药品、嗜好品等中使用。实施例A-2
把实施例A-1的方法制得的糖浆状异麦芽糖高含量物供使用强酸性阳离子交换树脂(商品名“アンバ-フイトCR-1310”、Na+型、有机株式会社制)的柱色谱法用。即，把前述树脂填充在10根内径12.5cm带夹套的不锈钢制柱中，将这些柱串联连接使树脂总长为16米。将柱内温度保持在40℃，相对于树脂量加前述糖浆1.5v/v％，向其中通40℃的温水，以SV0.2进行分离，边用HPLC法监控洗脱液的糖组成，边收集异麦芽糖高含量组分，将其进行精制，获得异麦芽糖高含量液体。每单位异麦芽糖固形物的收率约是80％。按照常规方法，将该液进行脱色，脱盐、浓缩，制得浓度约75％的糖浆状异麦芽糖高含量物。
本品的每单位固形物含有99.9％以上极高纯度的异麦芽糖。本品由于具有难结晶性良好的保湿性、低甜味性、浸透压调节性、赋形性、赋亮泽性、保湿性、粘性、防糖晶析性、难发酵性、防淀粉老化性等，利于在各种饮食品、健康食品、饲料、饵料、化妆品、医药品、嗜好品等中使用。实施例A-3
把木薯淀粉制成浓度约20％的淀粉乳，在其中加入碳酸钙0.1％，调整到pH6.5，按每克淀粉加入α-淀粉酶(商品名“タ-マミ-ル60L，ノボ公司制)0.3％，在95℃反应15分钟，然后在120℃高压热煮20分钟，再急冷到约40℃制得DE约4的液化溶液，按每克淀粉向其中加入实验例2-1的方法所制得的α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶0.2单位、实验例15的方法制得的异麦芽葡聚糖酶100单位，异淀粉酶(林原生物化学研究所株式会社制)250单位、CGTase(林原生物化学研究所株式会社制)0.5单位，在pH5.5、温度40℃下反应64小时。在95℃将该反应液保持30分钟后，调整到温度50℃后，按每克固形物加入葡糖淀粉酶剂(商品名“グルコチ-ム”ナガセ生化学工业株式会社制)10单位，反应24小时，将该反应液在95℃加热保持30分钟后，冷却，按照常规方法，把过滤获得的滤液用活性炭脱色、用H型及OH型离子交换树脂脱盐精制，再浓缩，干燥、粉化、造粒，制得颗粒状异麦芽糖高含量物，单位固形物的收率是约95％。
本品含有葡萄糖11.0％，异麦芽糖66.5％，其他的二糖类2.4％、三糖类以上的为20.1％。本品由于具有良好的保湿性、低甜味性、浸透压调节性、赋形性、赋亮泽性、保湿性、粘性、防糖晶析性、难发酵性、防淀粉老化性等，利于在各种饮食品，健康食品，饲料，饵料、化妆品、医药品、嗜好品等中使用。实施例A-4
按照实验例1的方法，把圆孢芽孢杆菌C9(FERM BP-7143)在发酵器中培养48小时。培养后，用SF膜除菌过滤，回收约18L的培养滤液，再将该滤液进行UF膜浓缩，回收含有α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶8.8单位/ml和α-异麦芽糖基转移酶26.7单位/ml的浓缩酶液约1L。把玉米淀粉制成浓度约27％的淀粉乳，向其中加入碳酸钙0.1％，调整到pH6.5，按每克淀粉加入α-淀粉酶(商品名“タ-マミ-ル60L”，ノボ公司制)0.3％，在95℃反应15分钟，然后，在120℃高压热煮20分钟，再急冷到约40℃，制得DE约4的液化溶液，按每克淀粉向其中加入含上述α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶和α-异麦芽糖基转移酶的浓缩酶液，使之成为0.25ml的比例，再按每克淀粉加入实验例15的方法制得异麦芽葡聚糖酶100单位，异淀粉酶(林原生物化学研究所株式会社制)250单位和CGTase(林原化学研究所株式会社制)0.5单位，在pH5.5，温度40℃下反应70小时。将该反应液在95℃加热保持10分钟后，温度调节到50℃后，按每克淀粉加入葡糖淀粉酶剂(商品名“グルコチ-ム”ナガセ生化学工业株式会社制)20单位，反应24小时，将该反应液在95℃加热保持30分钟后，冷却，过滤，按常规方法将得到的滤液用活性炭脱色，用H型及OH型离子交换树脂脱盐精制，再浓缩，得到浓度75％的糖浆状异麦芽糖高含量物，单位固形物的收率是约95％。
本品单位固形物含有葡萄糖32.6％，异麦芽糖59.4％，其他的二糖类1.2％，三糖类以上为6.8％。本品由于具有难结晶性良好的保湿性、低甜味性、渗透压调节性、赋形性、赋亮泽性、保湿性、粘性、防糖晶析性、难发酵性、防淀粉老化性，利于在各种饮食品，健康食品、饲料、饵料、化妆品、医药品、嗜好品等中使用。实施例A-5
将实施A-4的方法制得的含麦芽糖糖浆为原糖液，为了提高异麦芽糖的含量，按照实施例A-2的方法进行盐型强酸性阳离子交换树脂的柱色谱法后，收集异麦芽糖高含量组分，将其进行精制、浓缩，制得异麦芽糖高含量糖浆，单位固形物的收率是约60％。
本品单位固形物含有葡萄糖4.8％，异麦芽糖85.3％，其他的二糖类3.9％，三糖类以上为6.6％，本品由于具有难结晶良好的保湿性，低甜味性、渗透压调节性、赋形性，赋亮泽性，保湿性、粘性、防止糖晶析性、难发酵性、防淀粉老化性，利于在各种饮食品，健康食品、饲料、饵料、化妆品、医药品、嗜好品等中使用。实施例B-1：甜味剂
在采用实施例A-1的方法制得的粉末状异麦芽糖高含量物0.8重量份中，均匀地混合海藻糖含水结晶(注册商标“トレハ”、林原商事株式会社销售)0.2重量份、α-葡糖基蛇菊苷(商品名“αGスイ-ト”，东洋精糖株式会社销售)0.01重量份及L-天冬氨酰基-L-苯丙氨酸甲酯(商品名“アスパルテ-ム”)0.01重量份，均匀混合，加到颗粒成型机中制得颗粒状甜味剂。本品甜味的品质好，有大约2倍蔗糖的甜味度，本品是含有具有难结晶性良好的保湿性、低甜味性的异麦芽糖的低甜味料组合物。另外，本品在室温保存下稳定，没有变质劣化的问题。实施例B-2硬糖
在浓度55％蔗糖溶液100重量份中混合用实施例A-2的方法制得的糖浆状异麦芽糖高含量物50重量份，加热混合，然后在减压下加热浓缩到水分2％以下，与柠檬酸0.6重量份及适量的柠檬香料和着色料混合，按照常规方法成型，制得制品。本品是齿咬感、味道、风味均良好，也没有出现蔗糖晶析，吸湿性少，稳定，高质量的硬糖。实施例B-3：口香糖
把胶料3重量份加热熔融到柔软的程度，然后加入无水结晶麦芽糖醇2重量份，木糖醇2重量份，用实施例A-5的方法制得的糖浆状异麦芽糖高含量物2重量份及海藻糖含水结晶1重量份，再与适量的香料和着色料混合，按常规方法用滚筒捏合、成型、包装，制得制品。本品质地、味道、风味良好，优选作为低蚀性、低热量的口香糖。实施例B-4：粉末肽
在40％食品用大豆肽溶液(商品名ハイニコ-トS，不二制油株式会社销售)1重量份中混合实施例4-A的方法制得的糖浆状异麦芽糖高含量物2重量份，放到塑料大桶中，在50℃减压干燥，粉碎后制得粉末肽。本品风味良好，不仅优选作为プレミツクス(premix)、冰点等的低热量制果材料使用，也优选作为经口流食、经管流食用的难消化性的食物纤维、整肠材料、健康食品材料使用。实施例B-5：浴用剂
相对于柚皮汁1重量份，按实施例A-3的方法制得的颗粒状异麦芽糖高含量物10重量份及环四糖1重量份的比例进行混合，粉化后制得含有柚皮汁的异麦芽糖粉末。
在该粉末5重量份中混合烧碱90重量份、海藻糖含水结晶2重量份，二氧化硅1重量份及α-葡糖基橙皮苷(商品名“αGヘスペリシン”、林原株式会社销售)0.5重量份，制备浴用剂。
本品柚香郁浓，可在洗澡水中稀释到100-10000倍使用，是洗澡后使皮肌湿润光滑，不觉得水冷的高品质的浴用剂。实施例B-6：化妆用乳膏
将单硬脂酸聚氧乙二醇2重量份，自乳化型单硬脂酸甘油脂5重量份，实施例A-2的方法制得的糖浆状异麦芽糖高含量物2重量份，α-葡糖基芸香苷(商品名αGルチン、林原株式会社销售)1重量份，液体石蜡1重量份，三辛酸甘油酯10重量份与适量的防腐剂，按常规方法加热溶解，然后加L-乳酸2重量份、1，3-丁二醇5重量份与精制水66重量份，加到均化器中乳化，再加适量的香料搅拌混合，制得化妆用雪花膏。本品有抗氧化性，稳定性高，高效防晒、可优选作为美肤剂，增白剂使用。实施例B-7：牙膏
把磷酸氢钙45重量份、月桂基硫酸钠1.5重量份、甘油25重量份、聚氧乙烯山梨糖醇酐月桂酯0.5重量份、实施例A-5的方法制得的糖浆状异麦芽糖高含量物15重量份、糖精0.02重量份、防腐剂0.05重量份与水13重量份混合制得牙膏。本品不降低表面活性剂的洗涤力，改进难闻味道、使用后感觉也良好。实施例B-8：流食用固体制剂
配制由实施例A-1的方法制得的粉末状异麦芽糖高含量物100重量份、海藻糖含水结晶200重量份，麦芽四糖高含量粉末200重量份、粉末蛋黄270重量份，脱酯奶粉209重量份，氯化钠4.4重量份、氯化钾1.8重量份，硫酸镁4重量份、硫胺素0.01重量份，抗坏血酸钠0.1重量份，维生素E乙酸酯0.6重量份及烟酰胺0.04重量份组成的组合物，每25克该组合物填充到防潮性复合小袋中，密封制得制品。
本品是整肠作用好的流食。把1袋溶解在约150-300ml的水中，配成流食，人优选通过经口、或通过管经鼻腔、胃、肠等使用方法利用、可有效地用于补充身体的能量。实施例B-9：片剂
在阿斯匹林50重量份中充分混合实施例A-2的方法制得的糖浆状异麦芽糖高含量物14重量份、玉米淀粉4重量份后，按照常规方法，用打片机打片，制得厚5.25mm，每片680mg的片剂。
本品是利用异麦芽糖的赋形性的制品，无吸湿性、物理强度也好，而且非常容易在水中崩解。实施例B-10：糖衣片
以重150mg的基片为芯剂，用实施例A-1的方法制得的粉末状异麦芽糖高含量物40重量份、聚麦芽三糖(プルラン)(平均分子量20万)、水30重量份、滑石25重量份与氧化钛3重量份组成的片包衣液、进行包糖衣，使片剂重量达到约230mg，然后，用环四糖结晶粉末65重量份、聚麦芽三糖1重量份及水34重量份组成的包衣液进行糖衣，再用蜡液抛光，得到有光泽的外观好的糖衣片。本品耐冲击性好，长时间保持高品质。实施例B-11：外伤治疗用药膏
在实施例A-5的方法制得的糖浆状异麦芽糖高含量物100重量份与麦芽糖300重量份中，加入溶解有磺3重量份的甲醇50重量份，进行混合，再加入10w/v％聚麦芽三糖水溶液200重量份，进行混合，制得适度的延展有粘附性的外伤治疗用药膏，本品由于异麦芽糖可防止碘、甲醇的挥发，是经时变化少、商品价值高的药膏。
此外，本品不仅利用碘有杀菌作用，而且因麦芽糖也作为用作为对细胞的能量补充剂，故缩短治疗时间，很好地治疗创伤面。
如以上所说明，本发明涉及异麦芽糖的新型制备方法及其用途，更详细地讲，其特征在于，在没有或有α-异麦芽糖基转移酶的存在下，使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶，与作为非还原末端的苷键方式有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类作用，生成作为非还原性末端的苷键方式有α-1，6葡糖苷键，作为该非还原性末端以外的苷键方式有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度3以上的α-异麦芽糖基葡萄糖、和/或环状{→6}-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→6)-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→)，然后使异麦式糖游离酶作用，生成异麦芽糖，收集该生成的异麦芽糖，在该业界可在工业上大量且价廉而高收率地制得有用的异麦芽糖及异麦芽糖高含量物。由这样的本发明制得的异麦芽糖及异麦芽糖高含量物，由于具有难结晶性、良好的保湿性、低甜味性、渗透压调节性、赋形性、赋亮泽性、保湿性、粘性、防糖析晶性、难发酵性、防淀粉老化性等，利于在各种饮食品、健康食品、饲料、饵料、化妆品、医药品、嗜好品等领域中使用。
本发明是具有如此显著作用效果的发明，是对该业界有极大意义的发明。
序列表<110>株式会社林原生物化学研究所<120>异麦芽糖的制备方法及用途<130>WO899<150>JP 130,922/01<151>2001-4-27<160>2<210>1<211>5234<212>DNA<213>微生物<220><221>CDS<222>(937)...(4785)<400>1atctaccggt ttttgtgaag tttggcagta ttcttccgat gaatttgaac gcgcaatatc 60aagtgggcgg gaccattggc aacagcttga cgagctacac gaatctcgcg ttccgcattt 120atccgcttgg gacaacaacg tacgactgga atgatgatat tggcggttcg gtgaaaacca 180taacttctac agagcaatat gggttgaata aagaaaccgt gactgttcca gcgattaatt 240ctaccaagac attgcaagtg tttacgacta agccttcctc tgtaacggtg ggtggttctg 360tgatgacaga gtacagtact ttaactgccc taacgggagc gtcgacaggc tggtactatg 420atactgtaca gaaattcact tacgtcaagc ttggttcaag tgcatctgct caatccgttg 480tgctaaatgg cgttaataag gtggaatatg aagcagaatt cggcgtgcaa agcggcgttt 540caacgaacac gaaccatgca ggttatactg gtacaggatt tgtggacggc tttgagactc 600ttggagacaa tgttgctttt gatgtttccg tcaaagccgc aggtacttat acgatgaagg 660ttcggtattc atccggtgca ggcaatggct caagagccat ctatgtgaat aacaccaaag 720tgacggacct tgccttgccg caaacaacaa gctgggatac atgggggact gctacgttta 780gcgtctcgct gagtacaggt ctcaacacgg tgaaagtcag ctatgatggt accagttcac 840ttggcattaa tttcgataac atcgcgattg tagagcaata aaaggtcggg agggcaagtc 900cctcccttaa tttctaatcg aaagggagta tccttg 936atg cgt cca cca aac aaa gaa att cca cgt att ctt gct ttt ttt aca 978Met Arg Pro Pro Asn Lys Glu Ile Pro Arg Ile Leu Ala Phe Phe Thr1 5 10 15gcg ttt acg ttg ttt ggt tca acc ctt gcc ttg ctt cct gct ccg cct 1026Ala Phe Thr Leu Phe Gly Ser Thr Leu Ala Leu Leu Pro Ala Pro Pro
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130 135 140ttc tgg gaa cca tca ggc gga ggg gta ttc tca gac ggt gtg cgc ttc 1410Phe Trp Glu Pro Ser Gly Gly Gly Val Phe Ser Asp Gly Val Arg Phe145 150 155 160ctt cat gcc aca ggg gat aat atg tat ggc atc cgg agc ttc aat gct 1458Leu His Ala Thr Gly Asp Asn Met Tyr Gly Ile Arg Ser Phe Asn Ala
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180 185 190cat gcg ggt gaa cag gga gat tcc ggt ggt ccg ctt att tgg agt acg 1554His Ala Gly Glu Gln Gly Asp Ser Gly Gly Pro Leu Ile Trp Ser Thr
195 200 205gca gga tat gga cta tta gtc gat agc gat ggc ggc tac ccc tat aca 1602Ala Gly Tyr Gly Leu Leu Val Asp Ser Asp Gly Gly Tyr Pro Tyr Thr
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245 250 255gga acc ccc aag gaa att atg acc gac gta ggg gaa atc aca ggg aaa 1746Gly Thr Pro Lys Glu Ile Met Thr Asp Val Gly Glu Ile Thr Gly Lys
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340 345 350atc aaa atg atc gga att aca aaa ccc cgc atc gtt acg aag gat gct 2034Ile Lys Met Ile Gly Ile Thr Lys Pro Arg Ile Val Thr Lys Asp Ala
355 360 365tca gcg aat gtg acg acc caa ggg acg gac gcg aca aat ggc ggt tat 2082Ser Ala Asn Val Thr Thr Gln Gly Thr Asp Ala Thr Asn Gly Gly Tyr
370 375 380ttt tat cca ggc cat aac gag tat cag gat tat ttc att ccc gta act 2130Phe Tyr Pro Gly His Asn Glu Tyr Gln Asp Tyr Phe Ile Pro Val Thr385 390 395 400gtg cgt agt atc gat cct tac aat gct aac gaa cgt gct tgg ttc tgg 2178Val Arg Ser Ile Asp Pro Tyr Asn Ala Asn Glu Arg Ala Trp Phe Trp
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420 425 430gac gag acg gat aaa gta tct tcg ggt gga gcg tta tat tgg ttt ggc 2274Asp Glu Thr Asp Lys Val Ser Ser Gly Gly Ala Leu Tyr Trp Phe Gly
435 440 445aat ttc aca aca ggc cac atg tct cag acg atg tac gaa ggg ggg cgg 2322Asn Phe Thr Thr Gly His Met Ser Gln Thr Met Tyr Glu Gly Gly Arg
450 455 460gct tac acg agt gga gcg cag cgt gtt tgg caa acg gct aga acc ttc 2370Ala Tyr Thr Ser Gly Ala Gln Arg Val Trp Gln Thr Ala Arg Thr Phe465 470 475 480tac cca ggt gcc cag cgg tat gcg act acg ctt tgg tct ggc gat att 2418Tyr Pro Gly Ala Gln Arg Tyr Ala Thr Thr Leu Trp Ser Gly Asp Ile
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515 520 525aaa tgg ggc atg gat acc ggc gga ttc aat cag cag gat ggc acg acg 2562Lys Trp Gly Met Asp Thr Gly Gly Phe Asn Gln Gln Asp Gly Thr Thr
530 535 540aac aat ccg aat ccc gat tta tac gct cgg tgg atg cag ttc agt gcc 2610Asn Asn Pro Asn Pro Asp Leu Tyr Ala Arg Trp Met Gln Phe Ser Ala545 550 555 560cta acg cct gtt ttc cga gtg cat ggg aac aac cat cag cag cgc cag 2658Leu Thr Pro Val Phe Arg Val His Gly Asn Asn His Gln Gln Arg Gln
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930 935 940gca aat tgg gac act tgg tct aca caa tct gag aca ctg ccg ttg acg 3810Ala Asn Trp Asp Thr Trp Ser Thr Gln Ser Glu Thr Leu Pro Leu Thr945 950 955 960gca ggt gtg aat gtt gtg acc tat aaa tat tac tcc gat gcg gga gat 3858Ala Gly Val Asn Val Val Thr Tyr Lys Tyr Tyr Ser Asp Ala Gly Asp
965 970 975aca ggc aat gtt aac atc gac aac atc acg gta cct ttt gcg cca att 3906Thr Gly Asn Val Asn Ile Asp Asn Ile Thr Val Pro Phe Ala Pro Ile
980 985 990atc ggt aag tat gaa gca gag agt gct gag ctt tct ggt ggc agc tca 3954Ile Gly Lys Tyr Glu Ala Glu Ser Ala Glu Leu Ser Gly Gly Ser Ser
995 1000 1005ttg aac acg aac cat tgg tac tac agt ggt acg gct ttt gta gac ggt 4002Leu Asn Thr Asn His Trp Tyr Tyr Ser Gly Thr Ala Phe Val Asp Gly1010 1015 1020ttg agt gct gta ggc gcg cag gtg aaa tac aac gtg aat gtc cct agc 4050Leu Ser Ala Val Gly Ala Gln Val Lys Tyr Asn Val Asn Val Pro Ser1025 1030 1035 1040gca gga agt tat cag gta gcg ctg cga tat gcg aat ggc agt gca gcg 4098Ala Gly Ser Tyr Gln Val Ala Leu Arg Tyr Ala Asn Gly Ser Ala Ala
1045 1050 1055acg aaa acg ttg agt act tat atc aat gga gcc aag ctg ggg caa acc 4146Thr Lys Thr Leu Ser Thr Tyr Ile Asn Gly Ala Lys Leu Gly Gln Thr
1060 1065 1070agt ttt acg agt cct ggt acg aat tgg aat gtt tgg cag gat aat gtg 4194Ser Phe Thr Ser Pro Gly Thr Asn Trp Asn Val Trp Gln Asp Asn Val
1075 1080 1085caa acg gtg acg tta aat gca ggg gca aac acg att gcg ttt aaa tac 4242Gln Thr Val Thr Leu Asn Ala Gly Ala Asn Thr Ile Ala Phe Lys Tyr1090 1095 1100gac gcc gct gac agc ggg aac atc aac gta gat cgt ctg ctt ctt tca 4290Asp Ala Ala Asp Ser Gly Asn Ile Asn Val Asp Arg Leu Leu Leu Ser1105 1110 1115 1120act tcg gca gcg gga acg ccg gtt tct gag cag aac ctg cta gac aat 4338Thr Ser Ala Ala Gly Thr Pro Val Ser Glu Gln Asn Leu Leu Asp Asn
1125 1130 1135ccc ggt ttc gag cgt gac acg agt caa acc aat aac tgg att gag tgg 4386Pro Gly Phe Glu Arg Asp Thr Ser Gln Thr Asn Asn Trp Ile Glu Trp
1140 1145 1150cat cca ggc acg caa gct gtt gct ttt ggc gtt gat agc ggc tca acc 4434His Pro Gly Thr Gln Ala Val Ala Phe Gly Val Asp Ser Gly Ser Thr
1155 1160 1165acc aat ccg ccg gaa tcc ccg tgg tcg ggt gat aag cgt gcc tac ttc 4482Thr Asn Pro Pro Glu Ser Pro Trp Ser Gly Asp Lys Arg Ala Tyr Phe1170 1175 1180ttt gca gca ggt gcc tat caa caa agc atc cat caa acc att agt gtt 4530Phe Ala Ala Gly Ala Tyr Gln Gln Ser Ile His Gln Thr Ile Ser Val1185 1190 1195 1200cct gtt aat aat gta aaa tac aaa ttt gaa gcc tgg gtc cgc atg aag 4578Pro Val Asn Asn Val Lys Tyr Lys Phe Glu Ala Trp Val Arg Met Lys
1205 1210 1215aat acg acg ccg acg acg gca aga gcc gaa att caa aac tat ggc gga 4626Asn Thr Thr Pro Thr Thr Ala Arg Ala Glu Ile Gln Asn Tyr Gly Gly
1220 1225 1230tca gcc att tat gcg aac ata agt aac agc ggt gtt tgg aaa tat atc 4674Ser Ala Ile Tyr Ala Asn Ile Ser Asn Ser Gly Val Trp Lys Tyr Ile
1235 1240 1245agc gta agt gat att atg gtg acc aat ggt cag ata gat gtt gga ttt 4722Ser Val Ser Asp Ile Met Val Thr Asn Gly Gln Ile Asp Val Gly Phe1250 1255 1260tac gtg gat tca cct ggt gga act acg ctt cac att gat gat gtg cgc 4770Tyr Val Asp Ser Pro Gly Gly Thr Thr Leu His Ile Asp Asp Val Arg1265 1270 1275 1280gta acc aaa caa taa 4785Val Thr Lys Glnacaaacaacc agctctcccg ttaatgggag ggctggttgt ttgttatgat aatccatcta 4845tttagagtgg attaaacgtt ttgaagtgct tgctgaactt cttgcacaat ggataacgcc 4905gcggtgcggg cacttgagaa agcacgttct gcaagctctc ccttacctgt acagccgtct 4965ccgcagaagt agaaaggaac gttttccacg cgtatcggca gcagattatt ggaagcaatg 5025tttttcacgc tggaaaccat cgctttcttg gaaacccgtt tcacggctgt gacatcgcgc 5085cagcctggat aatgtttatc aaataaggct tccatttgga ggttcttctc ttccaggtac 5145gctttgcgct gctcctcgtt atcaaagcgg tcgcttaagt atgcgatacc ttgcagcagc 5205tgcccgcctt ctggtactag tgtgtgatc 5234<210>2<211>3869<212>DNA<213>微生物<220><221>CDS<222>(241)...(3522)<400>2tcatcgctac tggcaatcgg attcaaacaa atggctgcag ctcgcacaga cgattgtgga 60aagggaatat ctgatttaac catacggcgg tcgcgattga ttgaatagga ttcgtggccg 120cctaatattg aaagggggga tgcgtggagc agcgcatgca cggcgaggaa taactgttgt 180tggagcctct aagtcattca tgtttagcaa acaaatttcg gtacgaaagg ggaaatgttt 240atg tat gta agg aat cta aca ggt tca ttc cga ttt tct ctc tct ttt 288Met Tyr Val Arg Asn Leu Thr Gly Ser Phe Arg Phe Ser Leu Ser Phe1 5 10 15ttg ctc tgt ttc tgt ctc ttc gtc ccc tct att tat gcc att gat ggt 336Leu Leu Cys Phe Cys Leu Phe Val Pro Ser Ile Tyr Ala Ile Asp Gly
20 25 30gtt tat cat gcg cca tac gga atc gat gat ctg tac gag att cag gcg 384Val Tyr His Ala Pro Tyr Gly Ile Asp Asp Leu Tyr Glu Ile Gln Ala
35 40 45acg gag cgg agt cca aga gat ccc gtt gca ggc gat act gtg tat atc 432Thr Glu Arg Ser Pro Arg Asp Pro Val Ala Gly Asp Thr Val Tyr Ile
50 55 60aag ata aca acg tgg ccc att gaa tca gga caa acg gct tgg gtg acc 480Lys Ile Thr Thr Trp Pro Ile Glu Ser Gly Gln Thr Ala Trp Val Thr65 70 75 80tgg acg aaa aac ggt gtc aat caa gct gct gtc gga gca gca ttc aaa 528Trp Thr Lys Asn Gly Val Asn Gln Ala Ala Val Gly Ala Ala Phe Lys
85 90 95tac aac agc ggc aac aac act tac tgg gaa gcg aac ctt ggc act ttt 576Tyr Asn Ser Gly Asn Asn Thr Tyr Trp Glu Ala Asn Leu Gly Thr Phe
100 105 110gca aaa ggg gac gtg atc agt tat acc gtt cat ggc aac aag gat ggc 624Ala Lys Gly Asp Val Ile Ser Tyr Thr Val His Gly Asn Lys Asp Gly
115 120 125gcg aat gag aag gtt atc ggt cct ttt act ttt acc gta acg gga tgg 672Ala Asn Glu Lys Val I1e Gly Pro Phe Thr Phe Thr Val Thr Gly Trp
130 135 140gaa tcc gtt agc agt atc agc tct att acg gat aat acg aac cgt gtt 720Glu Ser Val Ser Ser Ile Ser Ser Ile Thr Asp Asn Thr Asn Arg Val145 150 155 160gtg ctg aat gcg gtg ccg aat aca ggc aca ttg aag cca aag atc aac 768Val Leu Asn Ala Val Pro Asn Thr Gly Thr Leu Lys Pro Lys Ile Asn
165 170 175ctt tcc ttt acg gcg gat gat gtc ctc cgc gta cag gtt tct cca acc 816Leu Ser Phe Thr Ala Asp Asp Val Leu Arg Val Gln Val Ser Pro Thr
180 185 190gga aca gga acg tta agc agt gga ctt agt aat tac aca gtt tca gat 864Gly Thr Gly Thr Leu Set Ser Gly Leu Ser Asn Tyr Thr Val Ser Asp
195 200 205acc gcc tca acc act tgg ctt aca act tcc aag ctg aag gtg aag gtg 912Thr Ala Ser Thr Thr Trp Leu Thr Thr Ser Lys Leu Lys Val Lys Val
210 215 220gat aag aat cca ttc aaa ctt agt gtg tat aag cct gat gga acg acg 960Asp Lys Asn Pro Phe Lys Leu Ser ValTyr Lys Pro Asp Gly Thr Thr225 230 235 240ttg att gcc cgt caa tat gac agc act acg aat cgt aac att gcc tgg 1008Leu Ile Ala Arg Gln Tyr Asp Ser Thr Thr Asn Arg Asn Ile Ala Trp
245 250 255tta acc aat ggc agt aca atc atc gac aag gta gaa gat cat ttt tat 1056Leu Thr Asn Gly Ser Thr Ile Ile Asp Lys Val Glu Asp His Phe Tyr
260 265 270tca ccg gct tcc gag gag ttt ttt ggc ttt gga gag cat tac aac aac 1104Ser Pro Ala Ser Glu Glu Phe Phe Gly Phe Gly Glu His Tyr Asn Asn
275 280 285ttc cgt aaa cgc gga aat gat gtg gac acc tat gtg ttc aac cag tat 1152Phe Arg Lys Arg Gly Asn Asp Val Asp Thr Tyr Val Phe Asn Gln Tyr
290 295 300aag aat caa aat gac cgc acc tac atg gca att cct ttt atg ctt aac 1200Lys Asn Gln Asn Asp Arg Thr Tyr Met Ala Ile Pro Phe Met Leu Asn305 310 315 320agc agc ggt tat ggc att ttc gta aat tca acg tat tat tcc aaa ttt 1248Ser Ser Gly Tyr Gly Ile Phe Val Asn Ser Thr Tyr Tyr Ser Lys Phe
325 330 335cgg ttg gca acc gaa cgc acc gat atg ttc agc ttt acg gct gat aca 1296Arg Leu Ala Thr Glu Arg Thr Asp Met Phe Ser Phe Thr Ala Asp Thr
340 345 350ggg ggt agt gcc gcc tcg atg ctg gat tat tat ttc att tac ggt aat 1344Gly Gly Ser Ala Ala Ser Met Leu Asp Tyr Tyr Phe Ile Tyr Gly Asn
355 360 365gat ttg aaa aat gtg gtg agt aac tac gct aac att acc ggt aag cca 1392Asp Leu Lys Asn Val Val Ser Asn Tyr Ala Asn Ile Thr Gly Lys Pro
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405 410 415aat aat att ccg gct aca gcg gtt gtg ctc gaa cag tgg agt gat gag 1536Asn Asn Ile Pro Ala Thr Ala Val Val Leu Glu Gln Trp Ser Asp Glu
420 425 430aac acg ttt tat att ttc aat gat gcc acc tat acc ccg aaa acg ggc 1584Asn Thr Phe Tyr Ile Phe Asn Asp Ala Thr Tyr Thr Pro Lys Thr Gly
435 440 445agt gct gcg cat gcc tat acc gat ttc act ttc ccg aca tct ggg aga 1632Ser Ala Ala His Ala Tyr Thr Asp Phe Thr Phe Pro Thr Ser Gly Arg
450 455 460tgg acg gat cca aaa gcg atg gca gac aat gtg cat aac aat ggg atg 1690Trp Thr Asp Pro Lys Ala Met Ala Asp Asn Val His Asn Asn Gly Met465 470 475 480aag ctg gtg ctt tgg cag gtc cct att cag aaa tgg act tca acg ccc 1728Lys Leu Val Leu Trp Gln Val Pro Ile Gln Lys Trp Thr Ser Thr Pro
485 490 495tat acc cag aaa gat aat gat gaa gcc tat atg acg gct cag aat tat 1776Tyr Thr Gln Lys Asp Asn Asp Glu Ala Tyr Met Thr Ala Gln Asn Tyr
500 505 510gca gtt ggc aac ggt agc gga ggc cag tac agg ata cct tca gga caa 1824Ala Val Gly Asn Gly Ser Gly Gly Gln Tyr Arg Ile Pro Ser Gly Gln
515 520 525tgg ttc gag aac agt ttg ctg ctt gat ttt acg aat acg gcc gcc aaa 1872Trp Phe Glu Asn Ser Leu Leu Leu Asp Phe Thr Asn Thr Ala Ala Lys
530 535 540aac tgg tgg atg tct aaa cgc gct tat ctg ttt gat ggt gtg ggt atc 1920Asn Trp Trp Met Ser Lys Arg Ala Tyr Leu Phe Asp Gly Val Gly Ile545 550 555 560gac ggc ttc aaa aca gat ggc ggt gaa atg gta tgg ggt cgc tca aat 1968Asp Gly Phe Lys Thr Asp Gly Gly Glu Met Val Trp Gly Arg Ser Asn
565 570 575act ttc tca aac ggt aag aaa ggc aat gaa atg cgc aat caa tac ccg 2016Thr Phe Ser Asn Gly Lys Lys Gly Asn Glu Met Arg Asn Gln Tyr Pro
580 585 590aat gag tat gtg aaa gcc tat aac gag tac gcg cgc tcg aag aaa gcc 2064Asn Glu Tyr Val Lys Ala Tyr Asn Glu Tyr Ala Arg Ser Lys Lys Ala
595 600 605gat gcg gtc tcc ttt agc cgt tcc ggc acg caa ggc gca cag gcg aat 2112Asp Ala Val Ser Phe Ser Arg Ser Gly Thr Gln Gly Ala Gln Ala Asn
610 615 620cag att ttc tgg tcc ggt gac caa gag tcg acg ttt ggt gct ttt caa 2160Gln Ile Phe Trp Ser Gly Asp Gln Glu Ser Thr Phe Gly Ala Phe Gln625 630 635 640caa gct gtg aat gca ggg ctt acg gca agt atg tct ggc gtt cct tat 2208Gln Ala Val Asn Ala Gly Leu Thr Ala Ser Met Ser Gly Val Pro Tyr
645 650 655tgg agc tgg gat atg gca ggc ttt aca ggc act tat cca acg gct gag 2256Trp Ser Trp Asp Met Ala Gly Phe Thr Gly Thr Tyr Pro Thr Ala Glu
660 665 670ttg tac aaa cgt gct act gaa atg gct gct ttt gca ccg gtc atg cag 2304Leu Tyr Lys Arg Ala Thr Glu Met Ala Ala Phe Ala Pro Val Met Gln
675 680 685ttt cat tcc gag tct aac ggc agc tct ggt atc aac gag gaa cgt tct 2352Phe His Ser Glu Ser Asn Gly Ser Ser Gly Ile Asn Glu Glu Arg Ser
690 695 700cca tgg aac gca caa gcg cgt aca ggc gac aat acg atc att agt cat 2400Pro Trp Asn Ala Gln Ala Arg Thr Gly Asp Asn Thr Ile Ile Ser His705 710 715 720ttt gcc aaa tat acg aat acg cgc atg aat ttg ctt cct tat att tat 2448Phe Ala Lys Tyr Thr Asn Thr Arg Met Asn Leu Leu Pro Tyr Ile Tyr
725 730 735agc gaa gcg aag atg gct agt gat act ggc gtt ccc atg atg cgc gcc 2496Ser Glu Ala Lys Met Ala Ser Asp Thr Gly Val Pro Met Met Arg Ala
740 745 750atg gcg ctt gaa tat ccg aag gac acg aac acg tac ggt ttg aca caa 2544Met Ala Leu Glu Tyr Pro Lys Asp Thr Asn Thr Tyr Gly Leu Thr Gln
755 760 765cag tat atg ttc gga ggt aat tta ctt att gct cct gtt atg aat cag 2592Gln Tyr Met Phe Gly Gly Asn Leu Leu Ile Ala Pro Val Met Asn Gln
770 775 780gga gaa aca aac aag agt att tat ctt ccg cag ggg gat tgg atc gat 2640Gly Glu Thr Asn Lys Ser Ile Tyr Leu Pro Gln Gly Asp Trp Ile Asp785 790 795 800ttc tgg ttc ggt gct cag cgt cct ggc ggt cga aca atc agc tac acg 2688Phe Trp Phe Gly Ala Gln Arg Pro Gly Gly Arg Thr Ile Ser Tyr Thr
805 810 815gcc ggc atc gat gat cta ccg gtt ttt gtg aag ttt ggc agt att ctt 2736Ala Gly Ile Asp Asp Leu Pro Val Phe Val Lys Phe Gly Ser Ile Leu
820 825 830ccg atg aat ttg aac gcg caa tat caa gtg ggc ggg acc att ggc aac 2784Pro Met Asn Leu Asn Ala Gln Tyr Gln Val Gly Gly Thr Ile Gly Asn
835 840 845agc ttg acg agc tac acg aat ctc gcg ttc cgc att tat ccg ctt ggg 2832Ser Leu Thr Ser Tyr Thr Asn Leu Ala Phe Arg Ile Tyr Pro Leu Gly
850 855 860aca aca acg tac gac tgg aat gat gat att ggc ggt tcg gtg aaa acc 2880Thr Thr Thr Tyr Asp Trp Asn Asp Asp Ile Gly Gly Ser Val Lys Thr865 870 875 880ata act tct aca gag caa tat ggg ttg aat aaa gaa acc gtg act gtt 2928Ile Thr Ser Thr Glu Gln Tyr Gly Leu Asn Lys Glu Thr Val Thr Val
885 890 895cca gcg att aat tct acc aag aca ttg caa gtg ttt acg act aag cct 2976Pro Ala Ile Asn Ser Thr Lys Thr Leu Gln Val Phe Thr Thr Lys Pro
900 905 910tcc tct gta acg gtg ggt ggt tct gtg atg aca gag tac agt act tta 3024Ser Ser Val Thr Val Gly Gly Ser Val Met Thr Glu Tyr Ser Thr Leu
915 920 925act gcc cta acg gga gcg tcg aca ggc tgg tac tat gat act gta cag 3072Thr Ala Leu Thr Gly Ala Ser Thr Gly Trp Tyr Tyr Asp Thr Val Gln
930 935 940aaa ttc act tac gtc aag ctt ggt tca agt gca tct gct caa tcc gtt 3120Lys Phe Thr Tyr Val Lys Leu Gly Ser Ser Ala Ser Ala Gln Ser Val945 950 955 960gtg cta aat ggc gtt aat aag gtg gaa tat gaa gca gaa ttc ggc gtg 3168Val Leu Asn Gly Val Asn Lys Val Glu Tyr Glu Ala Glu Phe Gly Val
965 970 975caa agc ggc gtt tca acg aac acg aac cat gca ggt tat act ggt aca 3216Gln Ser Gly Val Ser Thr Asn Thr Asn His Ala Gly Tyr Thr Gly Thr
980 985 990gga ttt gtg gac ggc ttt gag act ctt gga gac aat gtt gct ttt gat 3264Gly Phe Val Asp Gly Phe Glu Thr Leu Gly Asp Asn Val Ala Phe Asp
995 1000 1005gtt tcc gtc aaa gcc gca ggt act tat acg atg aag gtt cgg tat tca 3312Val Ser Val Lys Ala Ala Gly Thr Tyr Thr Met Lys Val Arg Tyr Ser1010 1015 1020tcc ggt gca ggc aat ggc tca aga gcc atc tat gtg aat aac acc aaa 3360Ser Gly Ala Gly Asn Gly Ser Arg Ala Ile Tyr Val Asn Asn Thr Lys1025 1030 1035 1040gtg acg gac ctt gcc ttg ccg caa aca aca agc tgg gat aca tgg ggg 3408Val Thr Asp Leu Ala Leu Pro Gln Thr Thr Ser Trp Asp Thr Trp Gly
1045 1050 1055act gct acg ttt agc gtc tcg ctg agt aca ggt ctc aac acg gtg aaa 3456Thr Ala Thr Phe Ser Val Ser Leu Ser Thr Gly Leu Asn Thr Val Lys
1060 1065 1070gtc agc tat gat ggt acc agt tca ctt ggc att aat ttc gat aac atc 3504Val Ser Tyr Asp Gly Thr Ser Ser Leu Gly Ile Asn Phe Asp Asn Ile
1075 1080 1085gcg att gta gag caa taa 3522Ala Ile Val Glu Gln1090aaggtcggga gggcaagtcc ctcccttaat ttctaatcga aagggagtat ccttgatgcg 3582tccaccaaac aaagaaattc cacgtattct tgcttttttt acagcgttta cgttgtttgg 3642ttcaaccctt gccttgcttc ctgctccgcc tgcgcatgcc tatgtcagca gcctagggga 3702aaatctcatt tcttcgagtg tcaccggaga taccttgacg ctaactgttg ataacggtgc 3762gccgagtgat gacctcttga ttgttcaagc ggtgcaaaac ggtattttga aggtggatta 3822tcgtccaaat agcataacgc cgagcgcgaa gacgccgatg ctggatc 3869
Claims (19)
1.异麦芽糖的制备方法，其特征在于在没有或有α-异麦芽糖基转移酶的存在下，使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶与作为非还原末端的键合方式具有α-1，4糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类作用，生成具有作为非还原性末端的键合方式α-1，6糖苷键，作为该非还原性末端以外的键合方式具有α-1，4糖苷键的葡萄糖聚合度3以上的α-异麦芽糖基葡萄糖，和/或，环状{→6})-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→6)-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→)}，使异麦芽糖游离酶与该生成物作用生成异麦芽糖，收集该生成的异麦芽糖。
2.权利要求1所述的异麦芽糖的制备方法，其特征在于使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用时，使从α-异麦芽糖基转移酶、环麦芽糊精葡糖转移酶、α-葡糖苷酶、葡糖淀粉酶及淀粉支化酶中选出的1种或2种以上的酶作用。
3.权利要求1所述的异麦芽糖的制备方法，其特征在于使α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶作用后，使从α-异麦芽糖基转移酶、环麦芽糊精葡糖转移酶、α-葡糖苷酶、葡糖淀粉酶及淀粉支化酶中选出的1种或2种以上的酶作用。
4.权利要求1、2或3所述的异麦芽糖的制备方法，其特征在于作为非还原末端的键合方式具有α-1，4糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类是从麦芽低聚糖、麦芽糊精、淀粉糊精、直链淀粉、支链淀粉、液化淀粉、糊化淀粉及糖原(动物淀粉)中选出的1种或2种以上的糖。
5.异麦芽糖的制备方法，其特征在于使异麦芽糖游离酶作用于从环状{→6})-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→6)-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→)}、α-葡糖基-(1→6)-α-葡糖基-(1→3)-α-葡糖基-(1→6)-α-葡萄糖及4-α-葡糖基麦芽糖中选出的2种以上的混合糖，生成异麦芽糖，收集该生成的异麦芽糖。
6.权利要求5所述的异麦芽糖的制备方法，其特征在于环状{→6})-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→6)-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→)}、α-葡糖基-(1→6)-α-葡糖基-(1→3)-α-葡糖基-(1→6)-α-葡萄糖及6-α-葡糖基麦芽糖，是使酶与具有作为非还原末端的键合方式的α-1，4糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类作用制得的糖。
7.权利要求1至6所述的异麦芽糖的制备方法，其特征在于α-异麦芽糖基转移酶是有下述物理化学性质的酶：
(1)作用
通过由作为非还原性末端的键合方式具有α-1，6糖苷键、作为该非还原性末端以外的苷键方式有α-1，4-葡糖基苷键的葡萄糖聚合度3以上的糖类进行α-异麦芽糖基转移，生成具有环状{→6})-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→6)-α-D-吡喃葡糖基-(1→3)-α-D-吡喃葡糖基-(1→)}的结构的环四糖，
(2)分子量
采用SDS-凝胶电泳法，约82000-132000道尔顿；
(3)等电点
采用含有两性电解质电泳法，pI约5.0-6.1。
(4)最佳温度
在pH6.0、30分钟反应下，约45-50℃
(5)最佳pH
在35℃、30分钟反应下，pH约5.5-6.0
(6)温度稳定性
在pH6.0，保持60分钟下，约到40℃稳定
(7)pH稳定性
在4℃，保持24小时下，pH约4.0-9.0。
8.权利要求1至6所述的异麦芽糖的制备方法，其特征在于α-异麦芽糖基葡萄糖合成酶是有下述物理化学性质的酶：
(1)作用
通过由作为非还原性末端的键合方式具有α-1，4糖苷键的葡萄糖聚合度2以上的糖类，实质上不增加还原性而进行α-葡糖基转移，生成作为非还原性末端的苷键具有α-1，6葡糖苷键方式，作为该非还原末端以外的苷键方式有α-1，4葡糖苷键的葡萄糖聚合度3以上的糖类；
(2)分子量
采用SDS-凝胶电泳法，约117000-160000道尔顿；
(3)等电点
采用含有两性电解质电泳法，pI约4.7-5.7；
(4)最佳温度
在pH6.0、60分钟反应下，约40-45℃
在1mMCa2+存在下，约45-50℃
(5)最佳pH
在35℃，60分钟反应下，pH约为6.0-6.5
(6)温度稳定性
在pH6.0，保持60分钟下，约到35-40℃稳定
在1mM Ca2+存在下，约到40-45℃稳定
(7)pH稳定性
在4℃，保持24小时下，pH约4.5-4.0。
9.权利要求1至8所述的异麦芽糖的制备方法，其特征在于在收集异麦芽糖的工序中，采用使用碱金属型和/或碱土类金属型强酸性离子交换树脂的柱色谱法。
10.权利要求1至9的任一项所述的异麦芽糖的制备方法，其特征在于制得的异麦芽糖是单位固形物含有异麦芽糖40％(W/W)以上的异麦芽糖高含量物。
11.异麦芽糖高含量物，其特征在于含有可采用权利要求1至10的任一项所述的异麦芽糖的制备方法制得的，单位固形物含有异麦芽糖40-99％(W/W)，同时还含有从葡萄糖、麦芽糖、麦芽三糖、麦芽四糖、淀粉部分水解物、α-异麦芽糖基葡萄糖、及α-葡糖基-(1→6)-α-葡糖基-(1→3)-α-葡糖基-(1→6)-α-葡萄糖中选出的1种或2种以上的糖1-60％(W/W)。
12.饮食品或健康食品，其特征在于含有采用权利要求1至10的任一项所述的异麦芽糖的制备方法制得的异麦芽糖或权利要求11所述的异麦芽糖高含量物。
13.饲料或饵料，其特征在于含有可采用权利要求1至10的任一项所述的异麦芽糖的制备方法制得的异麦芽糖或权利要求11所述的异麦芽糖高含量物。
14.化妆品，其特征在于含有可采用权利要求1至10的任一项所述的异麦芽糖的制备方法制得的异麦芽糖或权利要求11所述的异麦芽糖高含量物。
15.医药品，其特征在于含有采用权利要求1至10的任一项所述的异麦芽糖的制备方法制得的异麦芽糖或权利要求11所述的异麦芽糖高含量物。
16.饮食品或健康食品的制备方法，其特征在于使用权利要求1乃至10的任一项所述的异麦糖的制备方法制得的异麦芽糖或权利要求11所述的异麦芽糖高含量物。
17.饲料或饵料的制备方法，其特征在于使用权利要求1乃至10的任一项所述的异麦芽糖的制备方法制得的异麦芽糖或权利要求11所述的异麦芽糖高含量物。
18.化妆品的制备方法，其特征在于使用权利要求1乃至10的任一项所述的异麦芽糖的制备方法制得的异麦芽糖或权利要求11所述的异麦芽糖高含量物。
19.医药品的制备方法，其特征在于使用权利要求1乃至10的任一项所述的异麦芽糖的制备方法制得的异麦芽糖和权利要求11所述的异麦芽糖高含量物。
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Cited By (6)
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|---|---|---|---|---|
| CN105969824A (zh) * | 2016-07-25 | 2016-09-28 | 山东百龙创园生物科技有限公司 | 一种异麦芽酮糖醇的制备方法 |
| CN106222216A (zh) * | 2016-07-25 | 2016-12-14 | 山东百龙创园生物科技有限公司 | 一种新型dp4低聚异麦芽糖及其制备方法 |
| CN106222216B (zh) * | 2016-07-25 | 2019-10-18 | 山东百龙创园生物科技股份有限公司 | 一种dp4低聚异麦芽糖及其制备方法 |
| CN109355330A (zh) * | 2018-12-10 | 2019-02-19 | 山东百龙创园生物科技股份有限公司 | 一种高纯度异麦芽糖的制备方法 |
| CN114875097A (zh) * | 2022-04-21 | 2022-08-09 | 江南大学 | 一种高聚合度低聚异麦芽糖制备方法 |
| CN114875097B (zh) * | 2022-04-21 | 2023-08-25 | 江南大学 | 一种高聚合度低聚异麦芽糖制备方法 |
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