CN1317231A - 蝴蝶兰快速繁殖的新方法 - Google Patents
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Abstract
蝴蝶兰快速繁殖的新方法,先用蝴蝶兰种子萌发得到无菌实生苗;再用无菌实生苗培养得到试管苗和PLB;最后以PLB为外植体培养出组培苗。每一步骤均必须使用专用培养基。本方法具有稳定性好、操作简便、繁殖速率快的优点。
Description
本发明涉及一种新的蝴蝶兰(Phalaenopsis hybrid)快速繁殖方法。
目前,采用组织培养快速繁殖蝴蝶兰已在生产上得到广泛应用。主要通过两个途径实现:一是将近成熟或成熟的果实消毒后在培养基上无菌播种,组培形成实生苗(见张秀清等,莱阳农学院报,1995年第12卷第1期:第44-46页);二是采用各种营养器官为外植体,通过诱导类原球茎(protocormlike body,PLB)或丛生芽的方法来繁殖获得组培苗(见王怀宇,园艺学报,1989年第16卷:第73-77页;刘荣维等,热带作物学报,1993年第14卷:第105-107页)。第一种方法是目前采用最为普遍的方法,但需要获得优良品种的果实。而通过杂交获得优良品种果实具有一定的难度。通过丛生芽的方法繁殖组培苗存在着繁殖速度不够快的缺陷,而在诱导类原球茎(protocorm like body,PLB)时,现有的方法是用蝴蝶兰的茎尖或幼叶作为外植体,存在着不同品种的难易程度不同,一些好品种的诱导难度太大的问题。
本发明的目的在于针对上述问题,提供一种获得无菌苗的快速方法,该方法具有稳定性好、操作简便、繁殖速率更快的优点。
本发明的方法是先用蝴蝶兰种子萌发得到无菌实生苗;再用无菌实生苗培养得到试管苗和PLB;最后以PLB为外植体培养出组培苗。
本发明方法的较佳方案如下:
1、用蝴蝶兰种子萌发得到无菌实生苗:蝴蝶兰果实经75-80%乙醇浸泡8-10分钟,在酒精灯火焰上灼烧消毒后,切开果实,将种子萌发在1/2 MS+6-BA 2+NAA 0.2+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基上,以培养获得高0.5-1cm的无菌实生苗,培养条件为光照8-12小时/天,光强1500-2000Lx,温度为25-27℃,培养时间2-3个月;
2、用无菌实生苗培养得到试管苗和PLB:将由步骤1得到的无菌实生苗转接到1/2 MS+6-BA 2-5+NAA 0.1-0.5+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基上,生长2-3个月获得试管苗,在此过程中部分试管苗的茎基部(或根、茎结合部)可产生一种片状结构或茎状结构,属于类原球茎(protocorm like body,PLB);
3、以PLB为外植体培养出组培苗:将PLB切割成长为0.25-1.0cm的外植体,培养在1/2MS+6-BA0.5-2+NAA 0-0.5+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基上或改良的Kyoto培养基(花宝1号3.5g/L+水解酪蛋白0.1%+NAA2+肌醇100mg/L+活性碳0.05%的固体培养基)上,7-21天就可长出芽点,芽点在原有培养基上生长之后可长成组培苗。
在本方法中,MS培养基是最常用的培养基,一般从有关植物组织培养的书都可找到其配方。6-BA2-5是指在培养基中加入6-BA2-5mg/L,其它类推,6-BA是6-苄基腺嘌呤,NAA是萘乙酸,它们都是常用的植物生长调节剂,在化学或生化试剂商店可购买到。花宝1号是美国生产的化肥,在市面上也可以买到。
统计结果表明,在本方法中,10%-15%试管苗的茎基部(或根、茎结合部)可产生PLB。每株试管苗的PLB数目不同,一至十几个不等。平均长0.5cm的PLB,平均出芽数为16个/每外植体,最多可达42个/每外植体;而平均长0.25cm的PLB,平均出芽数为8.4个/每外植体,最多可达28个/每外植体。
本发明具有如下的优点和效果:
1、在组织培养实生苗或丛生芽生长过程中,将幼苗基部的PLB切下,进行增殖和扩大培养,既不影响无菌苗的生长,又可从此途径获得大量的无菌苗,使增殖率增加上万倍。这个增殖途径具有简便、快速的优点。以每株植株的茎基部产生3个1cm长的PLB计算,每4个月平均一株无菌苗可增殖为96株无菌苗,准备出瓶移栽。以4个月为一个周期,每株无菌苗产生PLB的概率为10%计算,每年每株实生苗的增殖理论数为8847株。这对于进行杂交育种中,获得极少数果实的优质品种蝴蝶兰的快速繁殖有很大的应用价值。
2、本方法稳定可靠,在3个品种(红花、红花白心、白花)的实生苗培养过程中,都获得了PLB结构,并能增殖产生大量的芽和植株。且可随时从组培中获得PLB,不受季节限制。从此途径获得的无菌苗都能正常生长、出瓶。
下面结合实施例描述本发明的最佳实施方案,但不限于此:
实施例1
1、红花蝴蝶兰果实经80%乙醇浸泡10分钟,在酒精灯火焰上灼烧消毒后,切开果实,将种子萌发在1/2 MS+6-BA 2+NAA 0.2+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基上,获得高0.5cm的无菌实生苗,培养条件为光照12小时/天,光强1500Lx,温度为25℃,培养时间为2个月;
2、将得到的无菌实生苗转接到1/2 MS+6-BA 5+NAA 0.5+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基上,生长2个月获得试管苗,在此过程中10%的试管苗的茎基部(或根、茎结合部)可产生PLB;
3、将PLB切割成长为0.25cm的外植体,培养在1/2MS+6-BA 0.5+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基上21天,将长出的芽点在原有的培养基上进行培养,成功获得所需的组培苗。接种外植体个数为54个,获得的芽数454个,平均每外植体长芽8.4个。
实施例2
操作同实施例1,在步骤1中使用的蝴蝶兰为白花品种,乙醇浓度为75%浸泡8分钟,培养条件为光照8小时/天,光强2000 Lx,温度为27℃,培养时间为2个月,得到的无菌实生苗高1.0cm。在步骤2中,固体培养基采用1/2 MS+6-BA 3+NAA 0.3+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%,无菌实生苗在固体培养基上生长的时间为3个月,有15%的试管苗的茎基部(或根、茎结合部)可产生PLB。在步骤3中,切成的外植体长度为0.5cm,培养基采用改良的Kyoto培养基,培养时间为7天,结果成功获得所需的组培苗。接种外植体个数91个,获得的芽为1456个,平均每外植体长芽16个。
实施例3
操作同实施例1,在步骤1中使用的蝴蝶兰品种为白花红心,乙醇浓度为77%浸泡9分钟,培养条件为光照10小时/天,光强1700Lx,温度为27℃,培养时间为2个月,得到的无菌实生苗高0.5cm。在步骤2中,固体培养基采用1/2 MS+6-BA 2+NAA 0.1+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%,无菌实生苗在固体培养基上生长的时间为2个半月,有10%的试管苗的茎基部(或根、茎结合部)可产生PLB。在步骤3中,切成的外植体长度为0.5cm,培养基采用1/2MS+6-BA 0.5+NAA 0.1+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基,培养时间为15天,结果成功获得所需的组培苗。接种外植体个数30个,获得的芽为477个,平均每外植体长芽15.9个。
实施例4
操作同实施例1,步骤1、步骤2与实施例1相同。在步骤3中,切成的外植体长度为0.5cm,培养基采用1/2MS+6-BA 1+NAA 0.1+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基,培养时间为15天,结果成功获得所需的组培苗。
实施例5
操作同实施例1,步骤1、步骤2与实施例1相同。在步骤3中,切成的外植体长度为0.5cm,培养基采用1/2MS+6-BA 2+NAA 0.2+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基,培养时间为15天,结果成功获得所需的组培苗。
实施例6
操作同实施例1,步骤1、步骤2与实施例1相同。在步骤3中,切成的外植体长度为0.5cm,培养基采用改良的Kyoto培养基,培养时间为15天,结果成功获得所需的组培苗。
Claims (3)
1、一种蝴蝶兰快速繁殖的方法,其特征在于:先用蝴蝶兰种子萌发得到无菌实生苗;再用无菌实生苗培养得到试管苗和PLB;最后以PLB为外植体培养出组培苗。
2、如权利要求1所述的方法,其特征在于:-在用蝴蝶兰种子萌发得到无菌实生苗的步骤中,蝴蝶兰果实先经75-80%乙醇浸泡8-10分钟,在酒精灯火焰上灼烧消毒后,切开果实,再将种子萌发在1/2MS+6-BA2+NAA0.2+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基上获得高0.5-1cm的无菌实生苗,培养条件为光照8-12小时/天,光强1500-2000Lx,温度为25-27℃,培养时间为2-3个月;-在用无菌实生苗培养得到试管苗和PLB的步骤中,将无菌实生苗转接到1/2MS+6-BA2-5+NAA0.1-0.5+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基上,生长2-3个月获得试管苗,在此过程中部分试管苗的茎基部或根、茎结合部可产生PLB;-在以PLB为外植体培养出组培苗的步骤中,将PLB切割成长为0.25-1.0cm的外植体,培养在1/2MS+6-BA0.5-2+NAA0-0.5+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基上或改良的Kyoto培养基上,7-21天后长出芽点,芽点在原培养基上培养长成组培苗。
3、如权利要求1或2所述的方法,其特征在于:在以PLB为外植体培养出组培苗的步骤中,所用的培养基为1/2MS+6-BA 0.5-2+NAA0.1-0.2+香蕉泥50g/L+活性碳0.05%的固体培养基。
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Cited By (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN102893851A (zh) * | 2012-06-19 | 2013-01-30 | 漳州钜宝生物科技有限公司 | 一种蝴蝶兰的育种方法 |
CN102986533A (zh) * | 2012-12-14 | 2013-03-27 | 苏州和美生物科技有限公司 | 蝴蝶兰防褐变专用培养基 |
CN103202233A (zh) * | 2013-04-28 | 2013-07-17 | 安徽农业大学 | 一种蝴蝶兰防褐化组培方法及防褐化培养基 |
CN103704126A (zh) * | 2013-12-11 | 2014-04-09 | 华南农业大学 | 一种创建兰花高效发生2n雄配子资源的方法 |
CN104255494A (zh) * | 2014-09-19 | 2015-01-07 | 郎溪庆林生态特色农业观光园有限公司 | 一种蝴蝶兰组培培养基 |
CN104686324A (zh) * | 2013-04-28 | 2015-06-10 | 安徽农业大学 | 一种以柠檬提取液为防褐化培养基的蝴蝶兰防褐化组培方法 |
CN104770294A (zh) * | 2015-04-02 | 2015-07-15 | 河南省农业科学院 | 一种基于蝴蝶兰种子萌发的原球茎为受体的育种方法 |
CN108684525A (zh) * | 2018-05-16 | 2018-10-23 | 芜湖市三山区绿色食品产业协会 | 蝴蝶兰的组织培养方法 |
CN108719063A (zh) * | 2018-05-16 | 2018-11-02 | 芜湖市三山区绿色食品产业协会 | 用于蝴蝶兰组织培养的组织培养基及其制备方法和应用 |
CN111543322A (zh) * | 2020-05-27 | 2020-08-18 | 山东省农业科学院蔬菜花卉研究所 | 一种脱毒蝴蝶兰新品种培育及组培扩繁方法 |
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2001
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Cited By (12)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102893851A (zh) * | 2012-06-19 | 2013-01-30 | 漳州钜宝生物科技有限公司 | 一种蝴蝶兰的育种方法 |
CN102986533A (zh) * | 2012-12-14 | 2013-03-27 | 苏州和美生物科技有限公司 | 蝴蝶兰防褐变专用培养基 |
CN103202233A (zh) * | 2013-04-28 | 2013-07-17 | 安徽农业大学 | 一种蝴蝶兰防褐化组培方法及防褐化培养基 |
CN104686324A (zh) * | 2013-04-28 | 2015-06-10 | 安徽农业大学 | 一种以柠檬提取液为防褐化培养基的蝴蝶兰防褐化组培方法 |
CN103704126A (zh) * | 2013-12-11 | 2014-04-09 | 华南农业大学 | 一种创建兰花高效发生2n雄配子资源的方法 |
CN103704126B (zh) * | 2013-12-11 | 2016-06-29 | 华南农业大学 | 一种创建兰花发生2n雄配子资源的方法 |
CN104255494A (zh) * | 2014-09-19 | 2015-01-07 | 郎溪庆林生态特色农业观光园有限公司 | 一种蝴蝶兰组培培养基 |
CN104770294A (zh) * | 2015-04-02 | 2015-07-15 | 河南省农业科学院 | 一种基于蝴蝶兰种子萌发的原球茎为受体的育种方法 |
CN108684525A (zh) * | 2018-05-16 | 2018-10-23 | 芜湖市三山区绿色食品产业协会 | 蝴蝶兰的组织培养方法 |
CN108719063A (zh) * | 2018-05-16 | 2018-11-02 | 芜湖市三山区绿色食品产业协会 | 用于蝴蝶兰组织培养的组织培养基及其制备方法和应用 |
CN111543322A (zh) * | 2020-05-27 | 2020-08-18 | 山东省农业科学院蔬菜花卉研究所 | 一种脱毒蝴蝶兰新品种培育及组培扩繁方法 |
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