CN1181195C - 一种人外周血血管内皮祖细胞的培养方法 - Google Patents
一种人外周血血管内皮祖细胞的培养方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN1181195C CN1181195C CNB021454922A CN02145492A CN1181195C CN 1181195 C CN1181195 C CN 1181195C CN B021454922 A CNB021454922 A CN B021454922A CN 02145492 A CN02145492 A CN 02145492A CN 1181195 C CN1181195 C CN 1181195C
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cell
- human peripheral
- peripheral blood
- endothelial progenitor
- epcs
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明属生物细胞技术领域,具体涉及一种人外周血血管内皮祖细胞的培养方法。本发明直接用MNC细胞进行体外培养以获得EPCs,在培养液中加入生长因子,以一定的种植密度植于用明胶包被的培养瓶中或小玻片上,进行常规培养获得ECPs。本发明简化了传统培养方法的步骤,有效的避免MNC CD34+的不必要损失,提高EPCs的得率,可重复性高,并节省大量的经费。本发明方法为人外周血EPCs的分离和培养建立了方法学,为今后临床应用做准备,能相应减少外周血的用量,为自体回输治疗缺血性疾病创造条件。
Description
技术领域
本发明属生物技术领域,具体涉及人外周血血管内皮祖细胞的培养方法。
背景技术
人为地刺激血管新生是治疗缺血性疾病的一种新方法。血管新生包括两个概念:胚胎期的血管发生(vasculogenesis,VG)和出生后的血管生成(angiogenesis,AG)。传统意义的VG指,在没有血管系统的情况下,由血管内皮祖细胞(endothelial progenitor cells,EPCs)或成血管细胞(angioblasts)分化成内皮细胞,以出芽方式形成血管网,进而形成血管。这一过程通常以造血干细胞(HSC)为中心、EPCs在周围的血岛开始。传统意义的AG指,在成体血管由已经存在的成熟内皮细胞冲破管壁基质迁移,增殖和重构,以发芽方式使血管树枝持续延长。近年来,Ashara等研究报道从外周血中分离培养出EPCs,并且证明EPCs也参与了出生后的血管生成,AG的概念有新的改变。
用磁式细胞分选法从人的外周血中分离出CD34+的单个核细胞(MNCCD34+),体外培养显示它能分化为内皮细胞,给缺血动物模型回输显示它参与了出生后血管生成(Angiogenesis,AG)的过程。因而首次证明血管内皮祖细胞(endothelial progenitor cells,EPCs)来源于MNCCD34+。此后陆续有从胚胎、骨髓、脐静脉血分离出同样的EPCs的报道。
目前,传统的EPCs分离培养法如下:
1.用已知的Ficoll密度梯度离心法将外周血分离出单个核细胞(MNC)层。
2.用人CD34+抗体包被的免疫磁珠采取磁珠分选法在MNC中分离出MNCCD34+。然后将MNCCD34+单独种植于培养皿中进行培养。
3.MNCCD34+的培养:
培养液:medium-199+20%胎牛血清+牛脑提取物+抗生素,或EBM-2+5%FBS+人VEGF-1+人FGF-2+人EGF+人IGF-1+抗坏血酸。(VEGF为血管内皮生长因子,FGF为成纤维细胞生长因子,EGF为表皮细胞生长因子,IGF为胰岛素样生长因子)培养皿采用人纤维结合蛋白(fibronectin)或胶原I型(collagen typeI)包被。
传统的培养方法较为繁琐,在用CD34+抗体包被的免疫磁珠分选MNC的过程中不可避免会有MNC CD34+的损失,造成细胞收率较低。另外,国外传统方法要求实验条件较高,因此其方法的可重复性较差。
发明内容
本发明的目的是提供一种新的人外周血血管内皮祖细胞的培养方法。本发明方法采用分离人外周血MNC后,通过体外直接培养MNC得到EPCs。本方法可简化EPCs培养步骤,提高细胞的收率。
医学界公认EPCs有以下用途:a.促进血管新生的作用,改善脏器缺血导致的功能障碍,EPCs的体内回输可用来治疗人体缺血性疾病:如缺血性心脏病、脑缺血、肾缺血、肢端缺血坏死等一系列疾病,尤其将在心肌梗死、心绞痛等缺血性心脏病的治疗过程中起到巨大作用;b.帮助修复损伤的血管内膜,如经皮冠状动脉腔内成形术(PTCA)和其他血管的介入手术不可避免的多少会损伤血管内膜,EPCs的回输将促进损伤内膜的修复,减少因内膜损伤而导致的介入术后的血管再狭窄;c.帮助恢复和重建动脉粥样硬化的血管内皮功能,防止动脉粥样硬化的进一步恶化,减少心肌梗死的发生;d.在肿瘤学方面,通过研究EPCs在肿瘤血管生成过程中的作用,采取相应的抑制措施,为抑制肿瘤血管生成以及抑制肿瘤生长开辟新途径。
本发明一种人外周血血管内皮祖细胞的培养方法通过下述步骤实现:
1、分离人外周血MNC:取人股动脉抗凝血10-15ml,用Ficoll密度梯度离心法分离出MNC。
2、体外培养MNC:在体外细胞培养液中加入生长因子;将MNC细胞种于包被有明胶的培养瓶中或小玻片上,明胶密度为5-10μl/cm2;细胞置于37℃、5%CO2的培养箱中,每3-4天半量换液一次。
上述MNC的体外细胞培养液为M-199+20%FBS+肝素100U/ml+0.1mg/ml青霉素+0.1mg/ml链霉素;生长因子为牛垂体提取物(市购),以3-15μg/ml的终浓度加入培养液中;细胞按105-106cell/cm2种植;培养瓶中或小玻片上包被有2%的明胶,明胶密度为5-10μl/cm2。
3、血管内皮祖细胞特性鉴定:
细胞形态学特征:每ml外周血经Ficoll密度梯度离心可得到MNC 1-2×106,培养一天的贴壁率约为30%,多数细胞形态为圆形。培养的第2天出现梭形贴壁细胞(attaching cell,AT cell),并出现成簇现象,第4天梭形细胞多见并形成条索状或管状分布。
细胞功能鉴定:在培养的第7天,将细胞和DiI标记的乙酰化的低密度脂蛋白(DiI-Ac-LDL)10μg/ml在37℃孵浴24h,结果为85%的贴壁细胞都特异性地摄取了乙酰化的LDL,说明所述贴壁细胞具有内皮细胞家族的功能特性。
蛋白和细胞表面分子鉴定:在培养的第14天,将培养在小玻片上的细胞进行vWF和Flk-1的免疫组化染色以及CD31和CD34的免疫荧光染色,和CD31、CD34的流式细胞计数检测。结果显示AT cell胞浆内vWF、Flk-1(VEGFR-2)、CD31、CD34均呈阳性,流式细胞计数结果:CD31为70.24±10.12%(n=5),CD34为55.37±14.85%(n=8)。所述的vWF、Flk-1、CD31、CD34均为内皮细胞家族特异性标志,其中Flk-1、CD34为EPCs的特异性标志。
基因鉴定:在培养的第14天,用Tris抽提细胞RNA,用RT-PCR方法检测细胞Flt-1(VEGFR-1)mRNA的表达。Flt-1为内皮细胞家族的特异性基因之一,在血管的发育过程中是必须的。本方法使用了不同引物如下:
引物1(317bp)——Choi K,Development.1998;125.
sense,5′CTCTGATGGTGATCGTGG3′;
antisense,5′CATGCGTCTGGCCACTTG3′.
引物2(1080bp)——Bellamy WT,Cancer Res.1999;59.
sense,5′GAGAATTCACTATGGAAGATCTGATTTCTTACAGT′;antisense,
′GAGCATGCGGTAAAATACACATGTGCTTCTAG 3′.
结果显示细胞表达Flt-1基因。
本发明所用试剂均为市购,本发明所用检测方法为常规已知方法。
本发明培养的来源于MNC的AT细胞在生长过程中呈现出特殊的形态特征,如细胞呈梭形贴壁生长、有成簇现象和条索状或管状的生长现象。同时AT细胞具有内皮细胞家族特性:a.功能方面:AT细胞能摄取Ac-LDL,具备了内皮细胞的功能;b.蛋白和细胞表面分子方面:AT细胞胞浆含有vWF、Flk-1,细胞表面分子CD31和CD34阳性,说明AT细胞具有内皮细胞家族的特异性标志;c.基因方面:用两种来自Flt-1基因不同片段的引物进行的RT-PCR检测结果均显示AT细胞表达内皮细胞特异性基因Flt-1。另外,由于Flk-1和CD34目前被认为是EPCs的特异性标志,进一步证明了本发明培养所得的AT细胞就是EPCs。本发明通过直接培养MNC得到EPCs,简化了传统培养方法的实验步骤,有效的避免MNC CD34+的不必要损失,提高EPCs的得率,可重复性高,并节省大量的经费。本发明方法为人外周血EPCs的分离和培养建立了方法学,为以后的研究奠定基础。本方法还充分为今后临床应用做准备,能相应减少外周血的用量,为日后自体回输治疗缺血性疾病创造条件。
附图说明
图1是所培养细胞的形态特征图
其中:a.贴壁细胞的成簇现象
b.梭形细胞呈条索状分布
c.梭形细胞呈管状分布
图2是细胞功能鉴定图
其中:a.红色荧光为摄取了LDL的AT cell
b.同一视野中普通光显微镜下景象
图3是免疫荧光和免疫组化图
其中:a.免疫荧光检测显示绿色荧光为CD31阳性的细胞,绿色CD31阳性部分位于细胞浆内
b.免疫荧光检测显示绿色荧光为CD34阳性的细胞,绿色CD34阳性部分同样也位于细胞浆内
c.免疫组化检测显示vWF阳性染色,棕色vWF阳性部分分布于细胞浆内,苏木素反染后显示细胞核为蓝色
d.免疫组化检测显示Flk-1阳性染色,棕色Flk-1阳性部分分布于细胞浆内,苏木素反染后显示细胞核为蓝色。
图4是流式细胞计数分析图
其中:黑色曲线为阴性对照,绿色曲线为CD31(a)和CD34(b)阳性曲线。
图5是Flt-1的RT-PCR电泳图
其中:内参照为长度510bp的βactin。
具体实施方式
实施例1
1、分离人外周血MNC:取人股动脉抗凝血10-15ml,用D-Hanks平衡盐溶液1∶1稀释后沿管壁铺在Ficoll分离液上,2000rpm×30min密度梯度离心后将白色云雾层吸出,再用D-Hanks平衡盐溶液1000rpm×10min洗两遍,最后将细胞重悬于培养液中并用台盼蓝记数。
2、体外培养MNC:培养液为M-199+20%FBS+肝素100U/ml+0.1mg/ml青霉素+0.1mg/ml链霉素;生长因子为牛垂体提取物,以9μg/ml的终浓度加入培养液中;将细胞按105/cm2种于包被有2%明胶的培养瓶中或小玻片上,明胶密度为5μl/cm2;细胞置于37℃、5%CO2的培养箱中,每3-4天半量换液一次。
3、血管内皮祖细胞特性鉴定:按上述方法进行。
Claims (6)
1、一种人外周血血管内皮祖细胞的培养方法,其特征在于分离人外周血单个核细胞,通过体外直接培养后,得到血管内皮祖细胞,包括下述步骤:
1)分离人外周血单个核细胞:取人股动脉抗凝血10-15ml,用Ficoll密度梯度离心法分离出单个核细胞;
2)体外培养单个核细胞:培养液中加入生长因子,将单个核细胞种于包被有明胶的培养瓶中或小玻片上,所述培养液含20%胎牛血清的M-199,肝素100U/ml,青霉素0.1mg/ml,和0.1mg/ml的链霉素,所述生长因子是牛垂体提取物,终浓度为3-15μg/ml;
3)血管内皮祖细胞鉴定:进行细胞形态学、功能、蛋白和细胞表面分子及基因鉴定。
2、按权利要求1所述的人外周血血管内皮祖细胞的培养方法,其特征在于所述的单个核细胞种植密度为105-106个细胞/cm2。
3、按权利要求1所述的人外周血血管内皮祖细胞的培养方法,其特征在于所述的包被明胶浓度为2%,密度为5-10μl/cm2。
4、按权利要求1所述的方法,其中步骤2的生长因子牛垂体提取物的终浓度为9μg/ml。
5、按权利要求2所述的方法,其中单个核细胞种植密度是105个细胞/cm2。
6、按权利要求3所述的方法,其中包被明胶密度为5μl/cm2。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNB021454922A CN1181195C (zh) | 2002-11-20 | 2002-11-20 | 一种人外周血血管内皮祖细胞的培养方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CNB021454922A CN1181195C (zh) | 2002-11-20 | 2002-11-20 | 一种人外周血血管内皮祖细胞的培养方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN1410531A CN1410531A (zh) | 2003-04-16 |
CN1181195C true CN1181195C (zh) | 2004-12-22 |
Family
ID=4750903
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CNB021454922A Expired - Fee Related CN1181195C (zh) | 2002-11-20 | 2002-11-20 | 一种人外周血血管内皮祖细胞的培养方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN1181195C (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9809798B2 (en) * | 2011-03-11 | 2017-11-07 | National University Of Singapore | Pericyte progenitors from peripheral blood |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
ES2366701T3 (es) * | 2004-06-01 | 2011-10-24 | Kwalata Trading Limited | Técnicas in vitro para su uso con células madre. |
CN101265464B (zh) * | 2008-05-13 | 2010-06-16 | 中国人民解放军第二军医大学 | 一种猪骨髓内皮祖细胞的分离和培养方法 |
CN101947241B (zh) * | 2010-08-27 | 2013-12-04 | 上海士腾生物技术有限公司 | 用于保护血管内皮细胞氧化损伤的抗氧化制剂及其制备方法 |
CN101940593B (zh) * | 2010-08-27 | 2013-12-04 | 上海士腾生物技术有限公司 | 治疗外周动脉粥样硬化引起的缺血性疾病的制剂及其制备方法 |
CN102321575B (zh) * | 2011-10-08 | 2012-11-21 | 南方医科大学珠江医院 | 一种人脐带间充质细胞的分离和培养方法 |
CN103898192B (zh) * | 2014-04-23 | 2015-01-28 | 重庆庞通医疗器械有限公司 | 一种血液培养方法 |
CN108823149B (zh) * | 2018-07-26 | 2022-01-04 | 海南医学院 | 一种人外周血源性早期内皮祖细胞的培养方法 |
CN110484492A (zh) * | 2019-08-27 | 2019-11-22 | 广州准优生物科技有限公司 | 内皮祖细胞培养制剂、培养液及内皮祖细胞分离培养方法 |
-
2002
- 2002-11-20 CN CNB021454922A patent/CN1181195C/zh not_active Expired - Fee Related
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9809798B2 (en) * | 2011-03-11 | 2017-11-07 | National University Of Singapore | Pericyte progenitors from peripheral blood |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN1410531A (zh) | 2003-04-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Ren et al. | Microvesicles from human adipose stem cells promote wound healing by optimizing cellular functions via AKT and ERK signaling pathways | |
Hou et al. | Transplantation of mesenchymal stem cells from human bone marrow improves damaged heart function in rats | |
JP6076402B2 (ja) | 心臓幹細胞 | |
KR101297145B1 (ko) | 줄기세포를 사용한 시험관내 기술 | |
CN106754668B (zh) | 一种干细胞培养液及注射液 | |
CN101914495A (zh) | 用于体外大量扩增毛囊干细胞的培养方法 | |
CN108060125A (zh) | 促进多能干细胞分化为心肌细胞成熟的方法 | |
CN103458935A (zh) | 使组织或器官再细胞化以提高其可移植性的方法 | |
CN1181195C (zh) | 一种人外周血血管内皮祖细胞的培养方法 | |
JP6921249B2 (ja) | 向上された臍帯由来付着型幹細胞、その製造方法及びその用途 | |
Hutton et al. | Hypoxia inhibits de novo vascular assembly of adipose-derived stromal/stem cell populations, but promotes growth of preformed vessels | |
CN103881971B (zh) | 一种用于培养和/或扩增间充质干细胞的培养基及其培养方法 | |
CN112121063A (zh) | 外泌体在制备治疗间质性肺损伤和/或肺纤维化的药物中的应用 | |
CN101831403B (zh) | 体外扩增人脐带胎盘间充质干细胞的方法 | |
Bai et al. | Characterization of vascular endothelial progenitor cells from chicken bone marrow | |
CN106102753A (zh) | 治疗赘生物形成的方法 | |
CN113559273B (zh) | 一种静脉注射用成体干细胞的预处理方法、成体干细胞注射液及应用 | |
CN103396995B (zh) | 一种筛选乳腺癌干细胞的三维培养方法 | |
CN103421740B (zh) | 一种人骨髓间充质干细胞体外培养扩增方法 | |
CN107674858B (zh) | 骨髓内皮祖细胞的分离培养基和分离方法 | |
CN114507640B (zh) | 一种高增殖能力和高细胞毒性cik细胞的培养方法及其应用 | |
CN102245757A (zh) | 来自人单核细胞的治疗用干细胞及其诱导方法 | |
CN106754650A (zh) | 一种骨髓来源的内皮祖细胞培养方法 | |
Zhironkina et al. | Proliferative potential of multipotent mesenchymal stromal cells from human bone marrow | |
CN106474157B (zh) | 一种肝干细胞注射液及其制备方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
C19 | Lapse of patent right due to non-payment of the annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
C17 | Cessation of patent right | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20041222 |