CN117327808B - 扩增稻水象甲线粒体coi基因序列的特异性引物组及其应用 - Google Patents

扩增稻水象甲线粒体coi基因序列的特异性引物组及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明涉及分子生物学技术领域。本发明提供了扩增稻水象甲线粒体COI基因序列的特异性引物组,包括正向引物DSXJF5和反向引物DSXJR5;还提供了该特异性引物组在区分稻水象甲生殖型中的应用、试剂盒以及方法。本发明操作简单,结合测序结果,凭借3个特异性碱基快速高效地区分稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型,为稻水象甲的检疫和预防提供科学依据。

Description

扩增稻水象甲线粒体COI基因序列的特异性引物组及其应用
技术领域
本发明涉及分子生物学技术领域,尤其涉及一种扩增稻水象甲线粒体COI基因序列的特异性引物组及其应用。
背景技术
稻水象甲(Lissorhoptrus oryzophilus Kuschel),是一种重要的外来入侵和检疫性害虫,属鞘翅目、象甲科、沼泽象亚科、稻水象属,成虫以取食叶片为害,幼虫蛀食稻根,使水稻根系发黑发烂从而影响吸收营养物质的能力,导致植株生长能力下降并大大减产。它繁殖能力强,传播方式多,寄主范围广,适应性强,对水稻的产量有非常重要的影响。
稻水象甲成虫体长2.5-3.8mm,体壁为褐色,覆盖灰色的鳞片,触角红褐色,中足胫节两侧各有一排长的游泳毛;蛹长约3mm,白色;老熟幼虫体长约10mm,白色无足,头部褐色;卵长约0.8mm,白色圆柱形,两端圆略弯。稻水象甲在美国存在两性生殖和孤雌生殖2种生殖型,在国内经调查后皆为孤雌生殖型。快速区分稻水象甲2种生殖型的技术,可为稻水象甲2种生殖型生物学研究奠定基础,对稻水象甲入侵和传播的研究具有重要理论意义,能为稻水象甲的检疫和预防提供科学依据。稻水象甲体小难以辨认,2种生殖型成虫形态高度相似,寄主范围一致,难以用肉眼快速检测鉴定。目前,对稻水象甲2种生殖型的特异性检测的方法尚未建立。
由于是同一个物种的2种生殖型,线粒体细胞色素C氧化酶I(cytochrome coxidase subunit I,COI)基因序列基本上一致,难以通过多序列比对设计特异性明显的引物对,直接通过凝胶电泳图上面的条带有无直接得出结果。因此,亟需得到一对特异性COI引物并用来快速区分稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型。
发明内容
本发明的目的在于提供一种基于稻水象甲线粒体COI基因序列扩增的特异性引物,它能快速区分稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型,是对稻水象甲2种生殖型生物学鉴定识别方法的补充和改进,对稻水象甲入侵和传播的研究具有重要理论意义。
为了实现上述发明目的,本发明提供以下技术方案:
本发明提供了一种扩增稻水象甲线粒体COI基因序列的特异性引物组,包括正向引物DSXJF5和反向引物DSXJR5。
作为优选,所述正向引物DSXJF5的核苷酸序列如SEQ ID NO.13所示,所述反向引物DSXJR5的核苷酸序列如SEQ ID NO.14所示。
本发明提供了所述特异性引物组在区分稻水象甲生殖型中的应用。
本发明提供了一种区分稻水象甲生殖型的试剂盒,所述试剂盒包括所述特异性引物组、扩增试剂和检测试剂。
本发明还提供了一种利用所述特异性引物组区分稻水象甲生殖型的方法,包括如下步骤:
(1)以待测样本的总DNA为模板,利用所述特异性引物组进行PCR扩增,获得扩增产物;
(2)对扩增产物进行凝胶电泳,并测序,然后依据测序结果序列判断稻水象甲生殖型;
当目标序列对比模板25N3的序列时,第236位碱基为T、第311位碱基为A、第323位碱基为A时,为稻水象甲两性生殖型;当序列第236位碱基为C、第311位碱基为G、第323位碱基为G时,为稻水象甲孤雌生殖型。
作为优选,所述PCR扩增的总体系以25μL计,包括Vazyme 2xRapid Taq MasterMix 12.5μL、正向引物DSXJF5 1μL、反向引物DSXJR5 1μL、DNA模板2.5μL、ddH2O 8μL。
作为优选,所述PCR扩增程序为:94℃ 3min;94℃ 15s,46℃ 15s,72℃ 30s,共35个循环;循环完成后再72℃处理5min。
通过采用上述技术方案,本发明具有如下有益效果:
本发明技术方案基于稻水象甲线粒体COI基因序列扩增得到特异性引物组正向引物DSXJF5和反向引物DSXJR5;通过PCR扩增,结合测序结果,依据测序结果序列特定位点的3个特异性碱基的差异,快速高效地区分稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型。其中,当目标序列对比模板25N3的序列中第236位碱基为T、第311位碱基为A、第323位碱基为A时,为稻水象甲两性生殖型;当序列第236位碱基为C、第311位碱基为G、第323位碱基为G时,为稻水象甲孤雌生殖型。相对于常规的形态学鉴定,本发明技术方案操作简单快速,客观准确,特异性强,为稻水象甲的检疫和预防提供科学依据,是对稻水象甲2种生殖型生物学鉴定识别方法的补充和改进,对稻水象甲入侵和传播的研究具有重要理论意义。
附图说明
图1为COI通用引物对稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的扩增结果图(其中M表示Vazyme DL 2000 Plus DNA Marker;1表示稻水象甲孤雌生殖型;2表示稻水象甲两性生殖型);
图2为COI通用引物对稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的多序列比对图(第1-5行为5个稻水象甲两性生殖型序列,第6-8行为3个稻水象甲孤雌生殖型序列);
图3为特异性引物对稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的扩增结果图(其中M表示Vazyme DL 2000 Plus DNA Marker,1表示稻水象甲孤雌生殖型,2表示稻水象甲两性生殖型;第一组1和2表示通用引物);
图4为特异性引物1组对稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的第一次验证多序列比对图(每个比对的第1行为稻水象甲两性生殖型模板序列,第2行为稻水象甲孤雌生殖型模板序列,第3行为稻水象甲两性生殖型利用特异性引物获得的序列,第4行为稻水象甲孤雌生殖型利用特异性引物获得的序列);
图5为特异性引物2组对稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的第一次验证多序列比对图(每个比对的第1行为稻水象甲两性生殖型模板序列,第2行为稻水象甲孤雌生殖型模板序列,第3行为稻水象甲两性生殖型利用特异性引物获得的序列,第4行为稻水象甲孤雌生殖型利用特异性引物获得的序列);
图6为特异性引物3组对稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的第一次验证多序列比对图(每个比对的第1行为稻水象甲两性生殖型模板序列,第2行为稻水象甲孤雌生殖型模板序列,第3行为稻水象甲两性生殖型利用特异性引物获得的序列,第4行为稻水象甲孤雌生殖型利用特异性引物获得的序列);
图7为特异性引物5组对稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的第一次验证多序列比对图(每个比对的第1行为稻水象甲两性生殖型模板序列,第2行为稻水象甲孤雌生殖型模板序列,第3行为稻水象甲两性生殖型利用特异性引物获得的序列,第4行为稻水象甲孤雌生殖型利用特异性引物获得的序列);
图8为特异性引物5组对稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的第二次验证扩增效果图(其M表示Vazyme DL 2000 Plus DNA Marker;25N1、25N2、25N3、25N6、25N7、25M6、25P3、SS4表示稻水象甲两性生殖型;A14、262、263、26M2表示稻水象甲孤雌生殖型);
图9为特异性引物5组对稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的第二次验证多序列比对图(第1行为稻水象甲两性生殖型模板序列,第2行为稻水象甲孤雌生殖型模板序列,第3-10行为稻水象甲两性生殖型利用引物5组获得的序列,第11-14行为稻水象甲孤雌生殖型利用引物5组获得的序列)。
具体实施方式
本发明提供了一种扩增稻水象甲线粒体COI基因序列的特异性引物组,包括正向引物DSXJF5和反向引物DSXJR5。
在本发明中,所述正向引物DSXJF5的核苷酸序列如SEQ ID NO.13所示,序列为5’-GGATTATTAGGGTTTGTTGT-3’;所述反向引物DSXJR5的核苷酸序列如SEQ ID NO.14所示,序列为5’-AGTTAGTCCTCCGATTGTGA-3’。
本发明提供了所述特异性引物组在区分稻水象甲生殖型中的应用。
本发明提供了一种区分稻水象甲生殖型的试剂盒。
在本发明中,所述试剂盒包括上述特异性引物组、扩增试剂和检测试剂。本发明中所述扩增试剂包括Vazyme 2xRapid Taq Master Mix、ddH2O。
本发明还提供了利用所述特异性引物组区分稻水象甲生殖型的方法,包括如下步骤:
(1)以待测样本的总DNA为模板,利用所述特异性引物组进行PCR扩增,获得扩增产物;
(2)对扩增产物进行凝胶电泳,并测序,然后依据测序结果序列判断稻水象甲生殖型。
在本发明中,当目标序列对比模板25N3的序列时,第236位碱基为T、第311位碱基为A、第323位碱基为A时,为稻水象甲两性生殖型;当序列第236位碱基为C、第311位碱基为G、第323位碱基为G时,为稻水象甲孤雌生殖型。
在本发明中,所述样本的总DNA通过Easy Tissue&Blood DNA Extraction Kit试剂盒提取获得(易思得,中国)。
在本发明中,取5μL扩增产物进行电泳,剩下的20μL(未纯化)PCR产物直接送公司测序。本发明中所述测序委托浙江尚亚生物技术有限公司、生工生物工程(上海)股份有限公司操作。
在本发明中,所述PCR扩增的总体系以25μL计,包括Vazyme 2xRapid Taq MasterMix 12.5μL、正向引物DSXJF5 1μL、反向引物DSXJR5 1μL、DNA模板2.5μL、ddH2O 8μL。
在本发明中,所述PCR扩增程序为:94℃ 3min;94℃ 15s,46℃ 15s,72℃ 30s,共35个循环;循环完成后再72℃处理5min。
下面结合实施例对本发明提供的技术方案进行详细的说明,但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1设计特异性COI引物
(一)提取稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的总DNA
本实施例中的待检昆虫为稻水象甲的孤雌生殖型和两性生殖型,其中稻水象甲孤雌生殖型来自于中国江西,稻水象甲两性生殖型来自于美国路易斯安那。将获取的稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型单头虫分别放入1.5 mL的离心管中,倒入磁珠至淹没虫体,SCIENTZ-48S高通量组织研磨器(宁波新芝,中国)液氮研磨充分后,再根据Easy Tissue&Blood DNA Extraction Kit试剂盒(易思得,中国)分别提取各单头虫总DNA,洗脱液40μL,保存于-20℃。
采用不同时间、不同提取方法对同一批次孤雌生殖型和两性生殖型稻水象甲处理,提取得到总DNA,其中,稻水象甲两性生殖型的总DNA编号包括25N1、25N2、25N3、25N6、25N7、25M6、25P3,稻水象甲孤雌生殖型的总DNA编号包括A14、262、263、26M2。
(二)用COI通用引物进行PCR扩增检测总DNA提取效率
为确保提取到稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的总DNA的正确性,从而更准确无误地进行后续实验操作,因此用COI通用引物进行PCR扩增反应检测总DNA提取效率。
以稻水象甲两性生殖型25N3和孤雌生殖型A14的总DNA为模板,其中,COI通用引物包括正向引物F和反向引物R,所述正向引物F的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,具体序列为5’-CAACATTTATTTTGATTTTTTGG-3’;反向引物R的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示,具体序列为5’-TCCAATGCACATATCTGCCATATTA-3’。
PCR扩增的总体系以25μL计,具体包括:Vazyme 2xRapid Taq Master Mix 12.5μL、正向引物F 1μL、反向引物R 1μL、DNA模板2.5μL、ddH2O 8μL。PCR扩增程序为:94℃ 3min;94℃ 15s,46℃ 15s,72℃ 30s,共35个循环;循环完成后再72℃处理5min获得扩增产物。分别取两种生殖型PCR扩增产物各5μL进行琼脂糖凝胶电泳检测,用1wt%琼脂糖凝胶电泳分离。
结果如图1所示,两种生殖型即每条泳道均出现一条大小为1000bp左右的DNA扩增条带,提取效率较好,后续送公司测序符合。所述稻水象甲两性生殖型模板25N3的COI序列如SEQ ID NO.3所示,序列为TGATTTTTGGACACCCAGAAGTATATATTTTAATTCTCCCAGGATTTGGAATAATCTCCCATATTATTGGTCAAGAAAGAGGAAAAAAAGAAGCCTTCGGCGTACTTGGAATAATCTATGCAATAATAGCAATTGGATTATTAGGGTTTGTTGTTTGAGCACACCACATATTTACAGTAGGATTAGATGTCGATACACGAGCCTATTTTACTTCTGCTACAATAATTATTGCAGTTCCTACTGGAATTAAAATTTTTAGATGATTAGCAACTTATCATGGGACACAAATTTCTTTTAATCCATCTTCTTTATGGTCATTAGGATTCATTTTCCTTTTCACAATCGGAGGACTAACTGGAGTTATTTTAGCAAATTCATCTATTGATATTATTCTTCATGATACCTACTATGTAGTAGCCCATTTCCACTATGTTTTATCTATAGGTGCAGTATTTGCTATTTTAGGAGGAATCATTCAATGATTCCCCCTTTTTACTGGATTGACATTAAATTCTAAATTTTTAAAAACTCAATTTTTAATTATATTTATCGGAGTAAATATAACTTTCTTTCCCCAACATTTTCTTGGTCTAAGAGGTATACCACGACGATATTCTGATTATCCAGATGCTTATTTTTTATGAAACATAGTATCTTCAATTGGAAGATTAATTTCATTAATAGGGGTATTTTATTTCATTTTTATCTTATGAGAAGCTTTTTCATCTAAACGAATAAATCTTTCAAGATCAAGAATAAATACATCACTAGAATGAATACAATTTTTTCCTCCAGCAGAACATAGCTATGCAGAATTACCTGTAATTACAAATTTCTAATATGG;
所述稻水象甲孤雌生殖型模板A14的COI序列如SEQ ID NO.4所示,序列为CAACATTTTATTTGATTTTTTGGACACCCAGAAGTTTATATTTTAATTCTCCCAGGATTTGGAATAATCTCCCATATTATTGGTCAAGAAAGAGGAAAAAAAGAAGCCTTCGGTGTACTTGGAATAATCTATGCAATAATAGCAATTGGATTATTAGGGTTTGTTGTTTGAGCCCACCACATATTTACAGTAGGATTAGATGTCGATACACGAGCCTATTTTACTTCTGCTACAATAATTATTGCAGTCCCTACTGGAATTAAAATTTTTAGATGATTAGCAACTTATCATGGGACACAAATTTCTTTTAATCCATCTTCTTTGTGGTCATTAGGGTTCATTTTCCTTTTCACAATCGGAGGACTAACTGGAGTTATTTTAGCAAATTCATCTATTGATATTATTCTTCATGATACCTACTATGTAGTAGCCCATTTCCACTATGTTTTATCTATAGGTGCAGTATTTGCTATTTTAGGAGGAATCATTCAATGATTCCCCCTTTTTACTGGATTGACATTAAATTCTAAATTTTTAAAAACTCAATTTTTAATTATATTTATCGGAGTAAATATAACTTTCTTTCCCCAACATTTTCTTGGTCTAAGAGGTATACCACGACGATATTCTGATTATCCAGATGCTTATTTTTTATGAAACATAGTATCTTCAATTGGAAGATTAATTTCATTAATAGGGGTATTTTATTTCATTTTTATCTTATGAGAAGCTTTTTCATCTAAACGAATAAATCTTTCAAGATCAAGAATAAATACATCACTAGAATGAATACAATTTTTTCCTCCAGCAGAACATAGCTATGCAGAATTACCTGTAATTACAAATTTCTAATATGG。
但用COI通用引物难以直观通过条带来区分稻水象甲两种生殖型,送公司进一步测序因相同物种序列基本一致而无法辨认,故从中找寻特异性碱基来明确区分开两种生殖型。
(三)设计特异性COI引物
送公司测序获取稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型的COI序列,如SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示,然后用Primer Premier 5和DNAMAN设计比对引物。
由于是同一个物种的两种生殖型,基因序列基本上一致,难以用以前方法,通过多序列比对设计特异性明显的引物对,直接通过凝胶电泳图上面的条带有无直接得出结果。因此,采取设计特异性引物扩增得到两种生殖型个别碱基特异的序列的方法,来明确区分两种生殖型。
具体操作:通过选取扩增出的多个两种生殖型的COI序列,进行多序列比对,找到特异性碱基,从而区分。通过序列比对发现有5个碱基都是差异明显的(如图2),即依照COI序列中这5处明显差异碱基来区分两种生殖型。依据序列比对结果设计得到针对两种生殖型的特异性COI引物,具体见表1。
表1 针对稻水象甲两种生殖型的6对特异性COI引物
实施例2
利用特异性COI引物快速区分稻水象甲两种生殖型。
(一)
以总DNA为模板利用表1中的特异性COI引物进行PCR扩增获得扩增产物。
以稻水象甲两性生殖型25N3和孤雌生殖型A14的总DNA为模板,用表1中记载的6对特异性COI引物进行PCR扩增反应。PCR体系为25μL,具体包括:Vazyme 2xRapid Taq MasterMix 12.5μL、正向引物F 1μL、反向引物R 1μL、DNA模板2.5μL、ddH2O 8μL。PCR扩增程序为:94℃ 3min;94℃ 15s,46℃ 15s,72℃ 30s,共35个循环;循环完成后再72℃处理5min获得扩增产物。
(二)
取上述得到的每种PCR扩增产物各5μL进行琼脂糖凝胶电泳检测,用1wt%琼脂糖凝胶电泳分离。
结果如图3所示,引物1组、引物2组、引物3组和引物5组对稻水象甲两种生殖型的扩增结果中泳道都出现一条大小为200bp左右的DNA扩增条带,且大小深浅基本一致,送公司测序观察是否特异性。进行多序列比对,发现四对引物都能准确呈现3个碱基的差异(如图4-7),即用同一个引物在一段高度一致的序列中,在目标序列对比模板25N3的序列中第236位碱基为T、第311位碱基为A、第323位碱基为A的是稻水象甲两性生殖型,相同位置碱基为C、G和G的是稻水象甲孤雌生殖型,以此快速区分稻水象甲两种生殖型。
(三)
基于上述提取得到的其他稻水象甲两性生殖型序列(25N1、25N2、25N6、25N7、25M6、25P3)和孤雌生殖型序列(262、263、26M2),选择较好效果的引物5继续进行测定,结果如图9所示,可以看出,每个泳道都能出现一条大小为200bp左右的清晰明亮的DNA扩增条带,送公司测序获得序列,进行多序列比对,符合预期,都能准确呈现3个碱基的差异(如图8)。
综上可得到,本发明基于稻水象甲线粒体COI基因序列扩增的特异性引物能快速区分稻水象甲孤雌生殖型和两性生殖型,其中引物5组正向引物DSXJF5和反向引物DSXJR5扩增效果最好,特异性强,能为稻水象甲的检疫和预防提供科学依据,具有很好的实用性。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。

Claims (4)

1.检测鉴别稻水象甲生殖型的位点的特异性引物组在区分稻水象甲生殖型中的应用,其特征在于,所述特异性引物组为扩增稻水象甲线粒体COI基因序列的引物组,包括正向引物DSXJF5和反向引物DSXJR5;
所述正向引物DSXJF5的核苷酸序列如SEQ ID NO.13所示,所述反向引物DSXJR5的核苷酸序列如SEQ ID NO.14所示;
所述鉴别稻水象甲生殖型的位点为如SEQ ID NO.3所示的COI基因序列的第236位碱基、第311位碱基和第323位碱基;
当第236位碱基为T、第311位碱基为A、第323位碱基为A时,为稻水象甲两性生殖型;当序列第236位碱基为C、第311位碱基为G、第323位碱基为G时,为稻水象甲孤雌生殖型。
2.一种利用权利要求1所述特异性引物组区分稻水象甲生殖型的方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)以待测样本的总DNA为模板,利用权利要求1所述特异性引物组进行PCR扩增,获得扩增产物;
(2)对扩增产物进行凝胶电泳,并测序,然后依据测序结果序列判断稻水象甲生殖型;
当目标序列对比模板25N3的COI序列时,第236位碱基为T、第311位碱基为A、第323位碱基为A时,为稻水象甲两性生殖型;当序列第236位碱基为C、第311位碱基为G、第323位碱基为G时,为稻水象甲孤雌生殖型;
所述模板25N3的COI序列如SEQ ID NO.3所示。
3.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,所述PCR扩增的总体系以25μL计,包括Vazyme 2xRapid Taq Master Mix 12.5μL、正向引物DSXJF5 1μL、反向引物DSXJR5 1μL、DNA模板2.5μL、ddH2O 8μL。
4.根据权利要求2或3所述的方法,其特征在于,所述PCR扩增程序为:94℃3min;94℃15s,46℃15s,72℃30s,共35个循环;循环完成后再72℃处理5min。
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The distribution of the invasive pest, rice water weevil Lissorhoptrus oryzophilus Kuschel (Coleoptera: Curculionidae), is expanding in Europe: First record in the Balkans, confirmed by CO1 DNA barcoding;Ioannis A. Giantsis 等;Phytoparasitica;第1-3页 *
湖南省稻水象甲遗传多样性的研究;胡岩;中国优秀硕士学位论文全文数据库 农业科技辑(第10期);第2.4.2节部分 *

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