CN117106759A - 一种r型酰胺水解酶、制备方法及其在制备普瑞巴林中间体上的应用 - Google Patents

一种r型酰胺水解酶、制备方法及其在制备普瑞巴林中间体上的应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种R型酰胺水解酶、制备方法及其在制备普瑞巴林中间体上的应用,提供了来自芽孢杆菌的目的基因表达的R型酰胺水解酶及其突变酶作为普瑞巴林中间体R‑3‑(氨甲酰甲基)‑5‑甲基己酸的制备方法,以3‑异丁基戊二酰亚胺为底物进行生物催化反应,并进一步提供了制备固定化载体的优选方案,利用该方法生产,转化率不低于99%,产物ee值不低于99%,转化结束后固定化酶经抽滤可与转化液直接分离,重复用于下一批转化,固定化酶重复利用次数不低于25次。

Description

一种R型酰胺水解酶、制备方法及其在制备普瑞巴林中间体上 的应用
技术领域
本发明涉及生物酶催化领域,具体地说涉及一种R型酰胺水解酶、制备方法及其在制备普瑞巴林中间体上的应用。
背景技术
普瑞巴林作为治疗神经性理性疼痛和癫痫的药物与一些传统药物相比具有副作用小、服用剂量少等优点,具有很大的市场前景。普瑞巴林的销售额也逐年迅速增长,使其成为了全球药品市场上增长最快速的药品之一,因此无论在国内还是国外对普瑞巴林的研究依旧是热点之一。
普瑞巴林中间体手性决定了普瑞巴林成品手性纯度,目前普瑞巴林主要采用化学法合成,例如美国专利申请US20030225161A1(公开日2003年12月4日)公开了以异戊酸为原料,先制备成酰氯,再与手性试剂发生亲和取代制备手性中间体的合成路线,再进一步经亲和取代、羰基还原、酯化、重氮化等反应制备普瑞巴林,该方法通过不对称合成法,以手性试剂诱导产生手性中心,需要使用大量昂贵的手性试剂,且在反应过程中,为避免手性中心消旋化,操作条件比较苛刻,合成路线长。此外,US5616793A、CN105085290A、WO2008007145A2等专利文献披露了使用不同的手性拆分剂(如苯乙胺,苯甘氨醇,薄荷醇等)合成混旋体的3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸。手性拆分剂的价格通常都比较昂贵,且拆分效率只有40%左右,另一半异构体没有得到很好的利用。综合来看,目前化学法合成普瑞巴林中间体涉及繁琐的合成路线和大量有机溶剂进行手性拆分,仅一半构型的化合物能用于目标产物的纯化,成本高且不环保。
生物法具有立体选择性强、反应条件温和、污染少等优点,一条有效途径是选用合适的酰胺水解酶将底物3-异丁基戊二酰亚胺水解为R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸。中国专利申请CN111944856A(公开日2020年11月17日)公开海因酶制备R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸的技术方案,转化底物浓度2g/L,产物ee值99%;中国专利(CN114164198A)公开了一种酰胺水解酶突变体可制备高光学纯度R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸,但未提及转化底物浓度。
发明内容
发明目的:本发明的目的是提供一种高立体异构选择性的R型酰胺水解酶水解底物以获得R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸;本发明还有一个目的是提供所述R型酰胺水解酶的编码基因、重组质粒和宿主细胞;本发明还有一个目的是提供利用前述R型酰胺水解酶在制备普瑞巴林中间体上的应用;本发明还有一个目的是提供转化率高、立体异构体纯度高的生物催化R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸的制备方法。
技术方案:为了实现上述发明目的,本发明的一种R型酰胺水解酶,包括与SEQ IDNO:1所示氨基酸序列具有至少98%相同的氨基酸序列。
具体地说,所述R型酰胺水解酶选自SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4任意一条氨基酸序列。这三条序列是基于SEQ ID NO:1定点突变获得,突变位点如表1所示。
本发明还提供一种酶组合物,包括不少于两种不同的R型酰胺水解酶,所述R型酰胺水解酶的氨基酸序列如SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4任意一条氨基酸序列所示。
本发明还提供编码所述R型酰胺水解酶的基因片段,其与上述R型酰胺水解酶的关系如表1所示。
表1酰胺水解酶及突变位点
对应氨基酸序列 突变位点 对应核苷酸序列
AMD I SEQ ID NO:1 - SEQ ID NO:5
AMD II SEQ ID NO:2 I31L、E164G SEQ ID NO:6
AMD III SEQ ID NO:3 I31L、E164G、S254M SEQ ID NO:7
AMD IV SEQ ID NO:4 I31L、E164G、S254M、D315A SEQ ID NO:8
通过基因工程手段,将上述核苷酸序列对应的基因片段与质粒载体结合获得重组质粒,转染感受态宿主细胞中获得可生产R型酰胺水解酶的发酵菌种。将发酵菌液破碎后即可直接对底物进行生物催化,或进一步与固定化载体结合以提高酶的重复使用率。
利用本发明获得的R型酰胺水解酶制备普瑞巴林中间体的技术路线如下:
在磷酸缓冲液中,以3-异丁基戊二酰亚胺为底物,加入R型酰胺水解酶在30-50℃、pH 7.0-9.0的条件下进行生物催化反应,经分离和/或纯化后获得R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸;其中,所述R型酰胺水解酶具有SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ IDNO:4任意一条氨基酸序列。作为本发明的进一步优化,反应体系的催化条件为40-45℃、pH7.5-8.0。
所述R型酰胺水解酶是通过制备包含目的基因的重组质粒,转染感受态宿主细胞后,经生物发酵、超声破碎后获得的酶液。
作为本发明的进一步优化以适用于工业化生产:将所述酶液与固定化载体结合,作为R型酰胺水解酶使用,底物浓度为150-250g/L。与固定化载体的结合包括但不限于物理吸附、包埋、共价结合、化学交联任意一种或多种的结合。
优选地,所述固定化载体选自LX-1000HA、LX-1000EP、LX-1000NH、LX-1000HFA,DIAIONHP2MG、SEPABEADSEC-EP、SEPABEADSEC-HFA、SEPABEADSEC-HA、SEPABEADSEC-HFA/S的任意一种或多种的组合。
进一步地,所述固定化载体与酶液的质量比1:10-20,优选为1:10。
有益效果:本发明提供的R型酰胺水解酶可用于在制备R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸,底物3-异丁基戊二酰亚胺投加浓度不低于200g/L,转化率不低于99%,产物ee值不低于99%,转化结束后固定化酶经抽滤可与转化液直接分离,重复用于下一批转化,固定化酶重复利用次数不低于25次。该方法无需引入其他助溶剂或游离酶蛋白等杂质,整个过程操作方便、产物分离简单。
附图说明
图1为DIAION HP2MG、Seplite LX-1000HA、SEPABEADSEC-HA三种树脂固定化酶稳定性比较;
图2为实施例8固定化酰胺水解酶重复操作使用次数。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例对本发明进行进一步说明。
实施例1R型酰胺水解酶表达菌株的制备
利用无缝克隆技术将来源于芽孢杆菌属ISL-75(NCBI Reference Sequence:WP_215013235.1)的核苷酸序列SEQ ID No.5连接于质粒pET28a(+)载体上,获得重组质粒,将重组质粒导入大肠杆菌BL21 star(DE3)感受态细胞中进行转化,冰浴30min后,45℃水浴热激90s,再冰浴2min后将菌液均匀地涂布在含有卡那霉素抗性的LB固体培养基的平板上,37℃培养18h后获得菌落。挑取上述单克隆菌落接入4mL含卡那霉素50mg/L的LB液体培养基中,37℃,180rpm培养12小时后,将菌液全部接种至600mL TB液体培养基中,37℃,180rpm培养至OD600至1左右,加入终浓度为0.3mM的IPTG进行诱导,25℃诱导16h。然后5000rpm离心20分钟收集含酰胺水解酶的湿菌体,其中含有R型酰胺水解酶的氨基酸序列如SEQ ID No.1所示,定义为AMD I。
参照表1将对SEQ ID NO:1进行定点突变,分别获得SEQ ID No.2、SEQ ID No.3、SEQ ID No.4序列,委托安徽通用生物股份有限公司合成对应的核苷酸序列SEQ IDNo.6、SEQ ID No.7、SEQ ID No.8,分别连接质粒pET28a(+)载体上,获得重组质粒,将重组质粒导入大肠杆菌BL21 star(DE3)感受态细胞中进行转化,冰浴30min后,45℃水浴热激90s,再冰浴2min后将菌液均匀地涂布在含有卡那霉素抗性的LB固体培养基的平板上,37℃培养18h后获得菌落。挑取上述单克隆菌落接入4mL含卡那霉素50mg/L的LB液体培养基中,37℃,180rpm培养12小时后,将菌液全部接种至600mL TB液体培养基中,37℃,180rpm培养至OD600至1左右,加入终浓度为0.3mM的IPTG进行诱导,25℃诱导16h。然后5000rpm离心20分钟收集含酰胺水解酶的湿菌体获得突变后的酰胺水解酶的湿菌体,分别记为AMD II、AMDIII、AMD IV。
实施例2
菌体细胞酶活的检测方法:取10mL磷酸缓冲液(0.2M,pH 7.5),加入0.1g 3-异丁基戊二酰亚胺,加入0.5g实施例1获得的湿菌体,40℃反应2h,液相检测底物转化率和产物ee值,结果如表2所示。
表2 R型酰胺水解酶酶活比较
转化率% 产物ee% 产物主要构型
AMD I 71.5 71.8 R
AMD II 79.5 85.7 R
AMD III 91.6 94.4 R
AMD IV 97.8 99.2 R
实施例3固定化酶的制备
1.氨基树脂固定化载体活化
a.按10g氨基树脂加入40mL 0.1M PBS缓冲液(pH=4.2-4.5),在温度20-25℃,转速150rpm,搅拌或振荡15min,结束后用4M NaOH溶液调pH=8.0,弃液体;
b.加入40mL 0.02M的PBS缓冲液(pH8.0),在温度20-25℃,转速150rpm,搅拌或振荡5min,弃液体;
c.加入40mL 0.02M的PBS缓冲液(pH8.0),再加入1.6mL 50%的戊二醛(即戊二醛的使用浓度为2%),在温度20-25℃,转速150rpm,搅拌或振荡60min,弃液体,然后用0.02MPBS洗两遍,抽干液体即得活化后氨基酸树脂载体,备用。
一般氨基树脂使用前需要活化,其他类型树脂无需活化。
2.酶液制备
由于经定点突变后AMD IV酶活和手性值最为理想,后续实施例均选用AMD IV作为固定化用酶。
取20g实施例2制备的湿菌体AMD IV用80g磷酸缓冲液(0.1mol/L,pH 7.0)重悬,超声破碎后,6000rpm离心即得R型酰胺水解酶液。
3.固定化酶制备
取1g树脂载体,加入10g酶液,25℃,180rpm振荡20h,抽滤水洗三次,再用0.02MPBSpH8.0的缓冲液,0.5M NaCl,150rpm,搅拌或振荡45min,然后用0.02M PBS pH8.0的缓冲液洗2次,抽滤即得固定化酶。
实施例4固定化R型酰胺水解酶的酶活比较
1.固定化R型酰胺水解酶的制备
根据表3提供的不同固定化载体,按照实施例3所述的方法制备固定化R型酰胺水解酶。
表3不同树脂型号
树脂名称 树脂官能团 树脂来源
Seplite LX-1000HA 氨基 西安蓝晓
Seplite LX-1000NH 氨基 西安蓝晓
SEPABEADSEC-HA 氨基 日本三菱
Seplite LX-1000EP 环氧 西安蓝晓
Seplite LX-1000HFA 环氧 西安蓝晓
SEPABEADSEC-EP 环氧 日本三菱
SEPABEADSEC-HFA 长间隔臂环氧 日本三菱
SEPABEADSEC-HFA/S 氨基环氧官能团 日本三菱
DIAION HP2MG 吸附 日本三菱
2.酰胺水解酶液酶活检测方法
取9mL磷酸缓冲液(0.2M,pH 7.5),加入0.3g 3-异丁基戊二酰亚胺,加入1mL上述实施例2制备的酰胺水解酶液,40℃反应20min,液相检测底物生成量。酶活定义:1min产生1μmol R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸定义为一个酶活单位。
3.固定化酰胺水解酶酶活检测方法
取10mL磷酸缓冲液(0.2M,pH 7.5),加入0.3g 3-异丁基戊二酰亚胺,加入0.2g上述实施例3制备的固定化酰胺水解酶,40℃反应20min,液相检测底物生成量。酶活定义:1min产生1μmol R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸定义为一个酶活单位。
4.试验结果
如表4可以看出,使用DIAION HP2MG作为固定化载体酶活回收率最高,固定化效果最好,LX-1000HA、SEPABEADSEC-HA效果其次。
表4不同树脂固定化亚胺还原酶结果
型号 LX-1000HA LX-1000NH SEPABEADSEC-HA
比酶活(U/g) 102 92 112
酶活回收率% 43.5 39.8 47.6
型号 LX-1000EP LX-1000HFA SEPABEADSEC-EP
比酶活(U/g) 52 40 60
酶活回收率% 21.3 16.4 25.6
型号 SEPABEADSEC-HFA SEPABEADSEC-HFA/S DIAION HP2MG
比酶活(U/g) 42 76 174
酶活回收率% 18.0 32.4 74.2
实施例5固定化酶的稳定性比较
DIAION HP2MG、Seplite LX-1000HA、SEPABEADSEC-HA三种树脂固定化酶稳定性比较:取10mL磷酸缓冲液(0.2M,pH 7.5),加入0.3g 3-异丁基戊二酰亚胺,加入0.5g上述实施例3制备的固定化酰胺水解酶,40℃反应2h,液相检测转化率,抽滤将所得的固定化酶重复操作用于下次催化反应,三种酶重复使用6次结果如图1所示,选用DIAION HP2MG树脂制备固定化酶使用第三次转化几乎难以反应,而Seplite LX-1000HA、SEPABEADSEC-HA制备固定化酶较稳定,转化率仍保持97%以上,表明DIAION HP2MG树脂尽管有着较高的酶活回收率,但由于其与酶蛋白之间是通过吸附结合,相较于后两者共价结合,稳定性较差。
实施例6固定化酰胺水解酶制备R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸
转化体系:950g磷酸缓冲液(0.2M,pH 7.5),加入200g 3-异丁基戊二酰亚胺,加入100g固定化酰胺水解酶,45℃搅拌,反应30h,高效液相色谱HPLC检测转产物浓度201.5g/L,转化率99.5%,ee值99.1%。
实施例7固定化酰胺水解酶重复操作使用次数
分别选用Seplite LX-1000HA、SEPABEADSEC-HA制备的固定化酶按照实施例6转化方案进行连续转化,即每次转化完成后,将抽滤获得固定化酶继续用于下次催化反应,酶活稳定如图2所示,以第一次使用固定化酶酶活定为100%,使用25次后仍保留初始酶活的90%以上。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出:对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。

Claims (12)

1.一种R型酰胺水解酶,其特征在于:包括与SEQ ID NO:1所示氨基酸序列具有至少98%相同的氨基酸序列。
2.根据权利要求1所述的一种R型酰胺水解酶,其特征在于:选自SEQ ID NO:2、SEQ IDNO:3、SEQ ID NO:4任意一条氨基酸序列。
3.酶组合物,包括不少于两种不同的R型酰胺水解酶,所述R型酰胺水解酶的氨基酸序列如SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4任意一条氨基酸序列所示。
4.编码权利要求2所述R型酰胺水解酶的基因片段。
5.一种重组质粒,包含权利要求4所述的基因片段。
6.一种宿主细胞,包含权利要求所述的重组质粒。
7.权利要求1或2所述R型酰胺水解酶,或权利要求3所述的酶组合物在制备普瑞巴林中间体上的应用。
8.R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸的制备方法,其特征在于:在磷酸缓冲液中,以3-异丁基戊二酰亚胺为底物,加入R型酰胺水解酶在30-50℃、pH 7.0-9.0的条件下进行生物催化反应,经分离和/或纯化后获得R-3-(氨甲酰甲基)-5-甲基己酸;
其中,所述R型酰胺水解酶具有SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4任意一条氨基酸序列。
9.根据权利要求8所述的方法,其特征在于:所述R型酰胺水解酶是通过制备包含目的基因的重组质粒,转染感受态宿主细胞后,经生物发酵、超声破碎后获得的酶液。
10.根据权利要求9所述的方法,其特征在于:进一步将所述酶液与固定化载体结合,作为R型酰胺水解酶使用,底物浓度为150-250g/L。
11.根据权利要求10所述的方法,其特征在于:所述固定化载体选自LX-1000HA、LX-1000EP、LX-1000NH、LX-1000HFA,DIAIONHP2MG、SEPABEADSEC-EP、SEPABEADSEC-HFA、SEPABEADSEC-HA、SEPABEADSEC-HFA/S的任意一种或多种的组合。
12.根据权利要求10所述的方法,其特征在于:所述固定化载体与酶液的质量比1:10-20。
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