CN116622600A - 苏氨酸生产菌株的构建方法 - Google Patents

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Abstract

本发明提供一种苏氨酸生产菌株的构建方法。本发明通过对苏氨酸合成相关的多个酶进行叠加修饰，包括天冬氨酸转氨酶、天冬氨酸激酶、苏氨酸合酶、柠檬酸合酶、异柠檬酸脱氢酶、HTH转录调节因子和苹果酸醌氧化还原酶等，提高了棒杆菌(如谷氨酸棒状杆菌)生产苏氨酸的能力，其苏氨酸的产量提高到4.9g/L。为大规模生产苏氨酸提供有效手段，应用前景广阔。

Description

苏氨酸生产菌株的构建方法
技术领域
本发明属于微生物工程技术领域，具体地说，涉及一种苏氨酸生产菌株的构建方法。
背景技术
L-苏氨酸(L-Threonin)，化学名称为β-羟基-α-氨基丁酸，分子式C4H9NO3，相对分子质量119.12。L-苏氨酸是一种必需氨基酸，主要用于医药、化学试剂、食品强化剂、饲料添加剂等领域。
谷氨酸棒杆菌中，由草酰乙酸生成苏氨酸需五步催化反应，分别为天冬氨酸激酶(lysC编码)、天冬氨酸半醛脱氢酶(asd编码)、高丝氨酸脱氢酶(hom编码)、高丝氨酸激酶(thrB)以及苏氨酸合酶(thrC)编码。Hermann Sahm等人一直致力于高产苏氨酸的谷氨酸棒状杆菌的开发，并取得一定突破，获得了抗反馈抑制的hom基因(Reinscheid D J,EikmannsB J,Sahm H.Analysis of a Corynebacterium glutamicum hom gene coding for afeedback-resistant homoserine dehydrogenase.[J].Journal of Bacteriology,1991,173(10):3228-3230)、lysC基因(Eikmanns B J,Eggeling L,Sahm H.Molecular aspectsof lysine,threonine,and isoleucine biosynthesis in Corynebacteriumglutamicum.[J].Antonie Van Leeuwenhoek,1993,64(2):145-163)。继Hermann Sahm之后，Lothar Eggling通过弱化苏氨酸利用途径中的编码基因glyA，同时过表达苏氨酸外运蛋白ThrE，使得苏氨酸的产量由49mM提高到67mM(Simic P,Willuhn J,Sahm H,etal.Identification of glyA(Encoding Serine Hydroxymethyltransferase)and ItsUse Together with the Exporter ThrE To Increase l-Threonine Accumulation byCorynebacterium glutamicum[J].Applied and Environmental Microbiology,2002,68(7):3321-3327)。
目前利用谷氨酸棒状杆菌生产苏氨酸的报道主要集中在其合成途径中，关于前体供应等方面的报道较少。且现有报道仅对苏氨酸合成途径做了初步研究，并未形成系统。
发明内容
本发明的目的是提供一种苏氨酸生产菌株的构建方法。
为了实现本发明目的，本发明通过对苏氨酸合成相关的多个酶进行叠加修饰，包括天冬氨酸转氨酶、天冬氨酸激酶、苏氨酸合酶、柠檬酸合酶、异柠檬酸脱氢酶、HTH转录调节因子RamB和苹果酸醌氧化还原酶等，系统地增强苏氨酸合成途径，从而实现提高菌株生产苏氨酸的能力。
第一方面，本发明提供一种修饰的棒状杆菌属微生物，所述微生物相比于未修饰的微生物，其与苏氨酸合成途径相关的酶活性增强，且与三羧酸循环相关的酶活性发生改变以提高苏氨酸合成途径中前体物质的供应，且所述微生物相比于未修饰的微生物具有增强的苏氨酸生产能力。
其中，与苏氨酸合成途径相关的酶选自天冬氨酸转氨酶、天冬氨酸激酶、苏氨酸合酶中的至少一种；
与三羧酸循环相关的酶选自柠檬酸合酶、异柠檬酸脱氢酶、HTH转录调节因子RamB、苹果酸醌氧化还原酶中的至少一种。
优选地，天冬氨酸转氨酶、天冬氨酸激酶、苏氨酸合酶、苹果酸醌氧化还原酶、柠檬酸合酶、异柠檬酸脱氢酶、HTH转录调节因子RamB在NCBI上的参考序列编号分别为WP_011013497.1、WP_003855724.1、WP_011014964.1、WP_011014814.1、WP_011013914.1、WP_011013800.1、WP_003859703.1，或与其相似性为90％的氨基酸序列。
优选地，酶的活性的增强是由选自以下1)～6)，或任选的组合实现的：
1)通过导入具有所述酶的编码基因的质粒而增强；
2)通过增加染色体上所述酶的编码基因的拷贝数而增强；
3)通过改变染色体上所述酶的编码基因的启动子序列而增强；
4)通过将强启动子与所述酶的编码基因可操作地连接而增强；
5)通过对酶的氨基酸序列进行改变而增强；
6)通过改变编码上述酶的核苷酸序列而增强。
酶活性降低或丧失是由选自以下1)-5)，或任选的组合实现的：
1)通过改变所述酶的编码基因的启动子序列而降低或丧失；
2)通过改变所述酶的编码基因的核糖体结合位点而降低或丧失；
3)通过改变所述酶的氨基酸序列而降低或丧失；
4)通过改变编码所述酶的核苷酸序列而降低或丧失；
5)通过敲除所述酶的编码序列而丧失。
可以采用诱变、定点突变或同源重组的方法来改变苏氨酸合成途径和三羧酸循环中酶的活性。
所述微生物与未修饰的微生物相比，其体内天冬氨酸转氨酶、天冬氨酸激酶、苏氨酸合酶和苹果酸醌氧化还原酶活性增强，且柠檬酸合酶、异柠檬酸脱氢酶和HTH转录调节因子RamB活性降低或丧失。
进一步地，天冬氨酸氨基转移酶活性的增强是通过在aspB基因起始密码子上游插入sod启动子来实现的。
进一步地，天冬氨酸激酶活性的增强是通过在lysC基因起始密码子上游插入sod启动子，同时将起始密码子GTG突变为ATG，并将lysC基因编码的第311位氨基酸由苏氨酸突变为异亮氨酸来实现的。
进一步地，苏氨酸合酶活性的增强是通过在thrC基因起始密码子上游插入sod启动子，并将起始密码子GTG突变为ATG来实现的。
进一步地，苹果酸醌氧化还原酶活性的增强是通过在mqo基因起始密码子上游插入sod启动子来实现的。
进一步地，柠檬酸合酶活性降低或丧失是通过将gltA基因的起始密码子由ATG突变为GTG来实现的。
进一步地，异柠檬酸脱氢酶活性降低或丧失是通过将icd基因的起始密码子由ATG突变为TTG来实现的。
进一步地，HTH转录调节因子RamB活性降低或丧失是通过将ramB基因的起始密码子由ATG突变为GTG，或者对ramB基因编码区进行敲除来实现的。
优选地，本发明所述棒杆菌为谷氨酸棒状杆菌(Corynebacterium glutamicum)，谷氨酸棒状杆菌包括ATCC13032、ATCC13870、ATCC13869、ATCC21799、ATCC21831、ATCC14067、ATCC13287等(参见NCBI Corunebacterium glutamicum进化树https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/469)，更优选谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032。
第二方面，本发明提供苏氨酸生产菌株的构建方法，所述方法包括：利用基因工程手段，增强具有氨基酸生产能力的棒杆菌中的与苏氨酸合成途径相关的基因，并改造与三羧酸循环相关的基因以提高苏氨酸合成途径中前体物质的供应；
其中，与苏氨酸合成途径相关的基因选自aspB、lysC、thrC中的至少一种；
与三羧酸循环途径相关的及基因选自gltA、icd、ramB、mqo中的至少一种；
优选地，基因aspB、lysC、thrC、gltA、icd、ramB、mqo在NCBI上的参考序列编号分别为cg0294、cg0306、cg2437、cg0949、cg0766、cg0444、cg2192。
所述增强的途径选自以下1)～6)，或任选的组合：
1)通过导入具有所述酶的编码基因的质粒而增强；
2)通过增加染色体上所述酶的编码基因的拷贝数而增强；
3)通过改变染色体上所述酶的编码基因的启动子序列而增强；
4)通过将强启动子与所述酶的编码基因可操作地连接而增强；
5)通过对酶的氨基酸序列进行改变而增强；
6)通过改变编码上述酶的核苷酸序列而增强。
酶活性降低或丧失是由选自以下1)-5)，或任选的组合实现的：
1)通过改变所述酶的编码基因的启动子序列而降低或丧失
2)通过改变所述酶的编码基因的核糖体结合位点而降低或丧失
3)通过改变所述酶的氨基酸序列而降低或丧失
4)通过改变编码所述酶的核苷酸序列而降低或丧失
5)通过敲除所述酶的编码序列而丧失
酶活改变的方法可选自诱变、定点突变、同源重组等中的至少一种。
第三方面，本发明提供一种生产苏氨酸的方法，所述方法包括如下步骤：
a)培养所述修饰的棒状杆菌属微生物，以获得所述微生物的培养物；
b)从步骤a)中获得的所述培养物中收集所产生的苏氨酸。
优选地，本发明所述棒杆菌为谷氨酸棒状杆菌(Corynebacterium glutamicum)，谷氨酸棒状杆菌包括ATCC13032、ATCC13870、ATCC13869、ATCC21799、ATCC21831、ATCC14067、ATCC13287等(参见NCBI Corunebacterium glutamicum进化树https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/469)，更优选谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032。
第四方面，本发明提供所述修饰的棒状杆菌属微生物或按照上述方法构建得到的苏氨酸生产菌株在苏氨酸发酵生产或提高苏氨酸发酵产量中的应用。
上述有关菌株的改造方法包括基因的强化和弱化等均为本领域技术人员可知的改造方式，参见满在伟.高产L-精氨酸钝齿棒杆菌的系统途径工程改造[D].江南大学,2016；崔毅.代谢工程改造谷氨酸棒杆菌生产L--亮氨酸[D].天津科技大学.；徐国栋.L-异亮氨酸生产菌株的构建及发酵条件优化.天津科技大学,2015.
借由上述技术方案，本发明至少具有下列优点及有益效果：
本发明通过对棒杆菌(如谷氨酸棒状杆菌)苏氨酸合成相关的多个酶进行叠加修饰，包括天冬氨酸转氨酶、天冬氨酸激酶、苏氨酸合酶、柠檬酸合酶、异柠檬酸脱氢酶、HTH转录调节因子和苹果酸醌氧化还原酶等，提高了菌株生产苏氨酸的能力，其苏氨酸的产量提高到4.9g/L。为大规模生产苏氨酸提供有效手段，应用前景广阔。
具体实施方式
本发明提供一种生产苏氨酸的工程菌，菌株改造过程及效果：
首先，在出发菌株谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032中强化表达天冬氨酸转氨酶，获得菌株SMCT286，菌株生产苏氨酸的能力为0.8g/L。
在改造菌SMCT286的基础上，强化表达天冬氨酸激酶，获得菌株SMCT289，菌株生产苏氨酸的能力由0.8g/L提高至1.8g/L。
在改造菌SMCT289的基础上，强化表达苏氨酸合酶，获得菌株SMCT291，菌株生产苏氨酸的能力由1.8g/L提高至2.3g/L。
在改造菌SMCT291的基础上，弱化柠檬酸合酶，获得菌株SMCT294，菌株生产苏氨酸的能力由2.3g/L提高至3.0g/L。
在改造菌SMCT294的基础上，弱化HTH转录调节因子RamB，获得菌株SMCT297，菌株生产苏氨酸的能力由3.0g/L提高至3.5g/L；失活HTH转录调节因子RamB，获得菌株SMCT298，菌株生产苏氨酸的能力由3.0g/L提高至3.6g/L。
在改造菌SMCT298的基础上，弱化异柠檬酸脱氢酶，获得菌株SMCT299，菌株生产苏氨酸的能力由3.6g/L提高至4.2g/L。
在改造菌SMCT299的基础上，表达强化苹果酸醌氧化还原酶，得到菌株SMCT300，菌株生产苏氨酸的能力由4.2g/L提高至4.9g/L。
改造过程中的表达强化包括启动子的替换，核糖体结合位点的改变、拷贝数的增加、质粒过表达等手段，且以上手段均为本领域技术人员公知手段。以上手段无法通过举例而穷尽，具体实施例中仅以启动子强化作为代表进行说明。
改造过程中的表达弱化或失活包括编码区的去除、起始密码子的替换及改变、核糖体结合位点的改变和启动子替换等手段，且以上手段均为本领域技术人员公知手段。
具体地，
天冬氨酸转氨酶，由aspB基因编码，本发明在aspB基因起始密码子上游插入sod启动子，从而实现对aspB基因的表达增强。
天冬氨酸激酶，由lysC基因编码，本发明在lysC基因起始密码子上游插入sod启动子，将起始密码子GTG突变为ATG，并将第311位氨基酸由苏氨酸突变为异亮氨酸，从而实现对lysC基因的过表达。
苏氨酸合酶，由thrC基因编码，本发明在thrC基因起始密码子上游插入sod启动子，并将起始密码子GTG突变为ATG，从而实现对thrC基因的过表达。
柠檬酸合酶，由gltA基因编码，本发明将gltA基因的起始密码子由ATG突变为GTG，从而实现对gltA基因的弱化。
HTH转录调节因子，由ramB基因编码，本发明将ramB基因的起始密码子由ATG突变为GTG，从而实现对ramB基因的弱化；或者，对ramB基因编码区进行敲除突变，失活ramB基因。
异柠檬酸脱氢酶，由icd基因编码，本发明将icd基因的起始密码子由ATG突变为TTG，从而实现对icd基因的弱化。
苹果酸醌氧化还原酶，由mqo基因编码，本发明在mqo基因起始密码子上游插入sod启动子，从而实现对mqo基因的表达增强。
上述菌株为棒杆菌，优选谷氨酸棒状杆菌，最优选谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032。
进一步地，将上述菌株用于苏氨酸发酵生产。
本发明涉及的蛋白及其编码基因如下：
天冬氨酸转氨酶，编码基因名称aspB，NCBI编号：cg0294、cg0294和cg0294。
天冬氨酸激酶，编码基因名称lysC，NCBI编号：cg0306、Cgl0251、NCgl0247。
苏氨酸合酶，编码基因名称thrC，NCBI编号：cg2437、Cgl2220、NCgl2139。
柠檬酸合酶，编码基因名称gltA，NCBI编号：cg0949、Cgl0829、NCgl0795。
异柠檬酸脱氢酶，编码基因名称icd，NCBI编号：cg0766、Cgl0664、NCgl0634。
HTH转录调节因子RamB，编码基因名称ramB，NCBI编号：cg0444、Cgl0369、NCgl0358。
苹果酸醌氧化还原酶，编码基因名称mqo，NCBI编号：cg2192、Cgl2001、NCgl1926。
以下实施例用于说明本发明，但不用来限制本发明的范围。若未特别指明，实施例均按照常规实验条件，如Sambrook等分子克隆实验手册(Sambrook J&Russell DW,Molecular Cloning:a Laboratory Manual,2001)，或按照制造厂商说明书建议的条件。
以下实施例中基因lysC、thrC、gltA、ramB、icd来自谷氨酸棒状杆菌，野生型基因lysC、thrC、gltA、ramB、icd的核苷酸序列分别如SEQ ID NO:1-5所示。
以下实施例中使用的实验材料如下：
以下实施例中涉及的实验方法如下：
PCR扩增体系如下：
成分 体积(微升)
灭菌的去离子水 29
5×pfu buffer 10
2.5mM dNTP 5
10μM上游引物 2
10μM下游引物 2
Pfu 1
模板 1(融合PCR模板最大加到2微升)
共计 50
PCR扩增程序如下：
菌株改造方法：
1、无缝组装反应程序：参照ClonExpress MultiS One Step Cloning Kit说明书。
2、转化方法：参照Trans1-T1 Phage Resistant Chemically Competent Cell说明书。
3、感受态细胞的制备：参照C.glutamicum Handbook,Charpter 23。
以下实施例中涉及到的引物见表1。
表1
注：加粗字体及下划线为引入相应点突变的引物。
实施例1菌株基因组改造质粒的构建
1、天冬氨酸转氨酶表达强化质粒pK18mobsacB-Psod-aspB的构建
以谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032基因组为模板，以P103/P104引物对进行PCR扩增得到上游同源臂up，以P105/P106引物对进行PCR扩增得到启动子片段Psod，以P107/P108引物对进行PCR扩增得到下游同源臂dn。以P103/P106引物对以up、Psod为模版进行融合PCR，获得片段up-Psod。以P103/P108引物对以up-Psod、dn为模板进行融合PCR获得全长片段up-Psod-dn。pK18mobsacB用BamHI/HindIII酶切。两者用无缝克隆试剂盒进行组装，转化Trans1 T1感受态细胞，获得重组质粒pK18mobsacB-Psod-aspB。
2、天冬氨酸激酶表达强化质粒pK18mobsacB-Psod-lysCg1a-T311I的构建
以谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032基因组为模板，以P21/P22引物对进行PCR扩增得到上游同源臂up，以P23/P24引物对进行PCR扩增得到启动子片段Psod，以P25/P26引物对进行PCR扩增得到下游同源臂dn-1，以P27/P28引物对进行PCR扩增得到下游同源臂dn-2。以P21/P24引物对以up、Psod为模版进行融合PCR，获得片段up-Psod。以P25/P28引物对以dn-1、dn-2为模版进行融合PCR，获得片段dn。以P21/P28引物对以up-Psod、dn为模板进行融合PCR获得全长片段up-Psod-dn。pK18mobsacB用BamHI/HindIII酶切。两者用无缝克隆试剂盒进行组装，转化Trans1 T1感受态细胞，获得重组质粒pK18mobsacB-Psod-lysCg1a-T311I。
其中，g1a表示lysC基因(lysC野生型基因序列见SEQ ID NO:1)起始密码子的第1位碱基由g突变为a，T311I表示lysC基因编码的天冬氨酸激酶的第311为氨基酸由T突变为I。
3、苏氨酸合酶表达强化质粒pK18mobsacB-Psod-thrCg1a的构建
以谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032基因组为模板，以P37/P38引物对进行PCR扩增得到上游同源臂up，以P39/P40引物对进行PCR扩增得到启动子片段Psod，以P41/P42引物对进行PCR扩增得到下游同源臂dn。以P37/P40引物对以up、Psod为模版进行融合PCR，获得片段up-Psod。以P37/P42引物对以up-Psod、dn为模板进行融合PCR获得全长片段up-Psod-dn。pK18mobsacB用BamHI/HindIII酶切。两者用无缝克隆试剂盒进行组装，转化Trans1 T1感受态细胞，获得重组质粒pK18mobsacB-Psod-thrCg1a。
其中，g1a表示thrC基因(thrC野生型基因序列见SEQ ID NO:2)起始密码子的第1位碱基由g突变为a。
4、柠檬酸合酶表达弱化质粒pK18mobsacB-gltAa1g的构建
以谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032基因组为模板，以P153/P154引物对进行PCR扩增得到上游同源臂up，以P155/P156引物对进行PCR扩增得到下游同源臂dn。以P153/P156引物对以up、dn为模板进行融合PCR获得全长片段up-dn。pK18mobsacB用BamHI/HindIII酶切。两者用无缝克隆试剂盒进行组装，转化Trans1 T1感受态细胞，获得重组质粒pK18mobsacB-gltAa1g。
其中，a1g表示gltA基因(gltA野生型基因序列见SEQ ID NO:3)起始密码子的第1位碱基由a突变为g。
5、HTH转录调节因子表达弱化质粒pK18mobsacB-ramBa1g的构建
以谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032基因组为模板，以P115/P116引物对进行PCR扩增得到上游同源臂up，以P117/P118引物对进行PCR扩增得到下游同源臂dn。以P115/P118引物对以up、dn为模板进行融合PCR获得全长片段up-dn。pK18mobsacB用BamHI/HindIII酶切。两者用无缝克隆试剂盒进行组装，转化Trans1 T1感受态细胞，获得重组质粒pK18mobsacB-ramBa1g。
其中，a1g表示ramB基因(ramB野生型基因序列见SEQ ID NO:4)起始密码子的第1位碱基由a突变为g。
6、HTH转录调节因子失活质粒pK18mobsacB-△ramB的构建
以谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032基因组为模板，以P119/P120引物对进行PCR扩增得到上游同源臂up，以P121/P122引物对进行PCR扩增得到下游同源臂dn。以P119/P122引物对以up、dn为模板进行融合PCR获得全长片段up-dn。pK18mobsacB用BamHI/HindIII酶切。两者用无缝克隆试剂盒进行组装，转化Trans1 T1感受态细胞，获得重组质粒pK18mobsacB-△ramB。
7、异柠檬酸脱氢酶表达弱化质粒pK18mobsacB-icda1t的构建
以谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032基因组为模板，以P149/P150引物对进行PCR扩增得到上游同源臂up，以P151/P152引物对进行PCR扩增得到下游同源臂dn。以P149/P152引物对以up、dn为模板进行融合PCR获得全长片段up-dn。pK18mobsacB用BamHI/HindIII酶切。两者用无缝克隆试剂盒进行组装，转化Trans1 T1感受态细胞，获得重组质粒pK18mobsacB-icda1t。
其中，a1t表示icd基因(icd野生型基因序列见SEQ ID NO:5)起始密码子的第1位碱基由a突变为t。
8、苹果酸醌氧化还原酶表达强化质粒pK18mobsacB-Psod-mqo的构建
以谷氨酸棒状杆菌ATCC 13032基因组为模板，以P169/P170引物对进行PCR扩增得到上游同源臂up，以P171/P172引物对进行PCR扩增得到启动子片段Psod，以P173/P174引物对进行PCR扩增得到下游同源臂dn。以P169/P172引物对以up、Psod为模版进行融合PCR，获得片段up-Psod。以P169/P174引物对以up-Psod、dn为模板进行融合PCR获得全长片段up-Psod-dn。pK18mobsacB用BamHI/HindIII酶切。两者用无缝克隆试剂盒进行组装，转化Trans1 T1感受态细胞，获得重组质粒pK18mobsacB-Psod-mqo。
实施例2基因组改造菌株的构建
1、天冬氨酸转氨酶强化表达菌株的构建
按照谷棒经典方法(C.glutamicum Handbook,Charpter 23)制备ATCC 13032感受态细胞。重组质粒pK18mobsacB-Psod-aspB以电穿孔方法转化该感受态细胞，并在含有15mg/L卡那霉素的选择培养基上筛选转化子，其中感兴趣的基因由于同源性被插入到染色体中。将筛得的转化子过夜培养于普通液体脑心浸液培养基中，培养温度为30℃，回转摇床220rpm振荡培养。此培养过程中，转化子发生第二次重组，通过基因交换将载体序列从基因组中除去。将培养物做连续梯度稀释(10-2连续稀释至10-4)，稀释液涂布在含有10％蔗糖的普通固体脑心浸液培养基上，33℃静置培养48h。蔗糖培养基上长出的菌株在其基因组中不携带插入的载体序列。通过PCR扩增目的序列，核苷酸测序分析，获得目的突变菌株命名为SMCT286。
2、天冬氨酸激酶表达强化菌株的构建
以上述获得的SMCT286为出发菌，制备感受态细胞。重组质粒pK18mobsacB-Psod-lysCg1a-T311I以电穿孔方法转化该感受态细胞，并在含有15mg/L卡那霉素的选择培养基上筛选转化子，其中感兴趣的基因由于同源性被插入到染色体中。将筛得的转化子过夜培养于普通液体脑心浸液培养基中，培养温度为30℃，回转摇床220rpm振荡培养。此培养过程中，转化子发生第二次重组，通过基因交换将载体序列从基因组中除去。将培养物做连续梯度稀释(10-2连续稀释至10-4)，稀释液涂布在含有10％蔗糖的普通固体脑心浸液培养基上，33℃静置培养48h。蔗糖培养基上长出的菌株在其基因组中不携带插入的载体序列。通过PCR扩增目的序列，核苷酸测序分析，获得目的突变菌株命名为SMCT289。
3、苏氨酸合酶表达强化菌株的构建
以上述获得的SMCT289为出发菌株，制备感受态细胞。重组质粒pK18mobsacB-Psod-thrCg1a以电穿孔方法转化该感受态细胞，并在含有15mg/L卡那霉素的选择培养基上筛选转化子，其中感兴趣的基因由于同源性被插入到染色体中。将筛得的转化子过夜培养于普通液体脑心浸液培养基中，培养温度为30℃，回转摇床220rpm振荡培养。此培养过程中，转化子发生第二次重组，通过基因交换将载体序列从基因组中除去。将培养物做连续梯度稀释(10-2连续稀释至10-4)，稀释液涂布在含有10％蔗糖的普通固体脑心浸液培养基上，33℃静置培养48h。蔗糖培养基上长出的菌株在其基因组中不携带插入的载体序列。通过PCR扩增目的序列，核苷酸测序分析，获得目的突变菌株命名为SMCT291。
4、柠檬酸合酶表达弱化菌株的构建
以上述获得的SMCT291为出发菌株，制备感受态细胞。重组质粒pK18mobsacB-gltAa1g以电穿孔方法转化该感受态细胞，并在含有15mg/L卡那霉素的选择培养基上筛选转化子，其中感兴趣的基因由于同源性被插入到染色体中。将筛得的转化子过夜培养于普通液体脑心浸液培养基中，培养温度为30℃，回转摇床220rpm振荡培养。此培养过程中，转化子发生第二次重组，通过基因交换将载体序列从基因组中除去。将培养物做连续梯度稀释(10-2连续稀释至10-4)，稀释液涂布在含有10％蔗糖的普通固体脑心浸液培养基上，33℃静置培养48h。蔗糖培养基上长出的菌株在其基因组中不携带插入的载体序列。通过PCR扩增目的序列，核苷酸测序分析，获得目的突变菌株命名为SMCT294。
5、HTH转录调节因子表达弱化菌株的构建
以上述获得的SMCT294为出发菌株，制备感受态细胞。重组质粒pK18mobsacB-ramBa1g以电穿孔方法转化该感受态细胞，并在含有15mg/L卡那霉素的选择培养基上筛选转化子，其中感兴趣的基因由于同源性被插入到染色体中。将筛得的转化子过夜培养于普通液体脑心浸液培养基中，培养温度为30℃，回转摇床220rpm振荡培养。此培养过程中，转化子发生第二次重组，通过基因交换将载体序列从基因组中除去。将培养物做连续梯度稀释(10-2连续稀释至10-4)，稀释液涂布在含有10％蔗糖的普通固体脑心浸液培养基上，33℃静置培养48h。蔗糖培养基上长出的菌株在其基因组中不携带插入的载体序列。通过PCR扩增目的序列，核苷酸测序分析，获得目的突变菌株命名为SMCT297。
6、HTH转录调节因子敲除菌株的构建
以上述获得的SMCT294为出发菌株，制备感受态细胞。重组质粒pK18mobsacB-△ramB以电穿孔方法转化该感受态细胞，并在含有15mg/L卡那霉素的选择培养基上筛选转化子，其中感兴趣的基因由于同源性被插入到染色体中。将筛得的转化子过夜培养于普通液体脑心浸液培养基中，培养温度为30℃，回转摇床220rpm振荡培养。此培养过程中，转化子发生第二次重组，通过基因交换将载体序列从基因组中除去。将培养物做连续梯度稀释(10-2连续稀释至10-4)，稀释液涂布在含有10％蔗糖的普通固体脑心浸液培养基上，33℃静置培养48h。蔗糖培养基上长出的菌株在其基因组中不携带插入的载体序列。通过PCR扩增目的序列，核苷酸测序分析，获得目的突变菌株命名为SMCT298。
7、异柠檬酸脱氢酶弱化菌株的构建
以上述获得的SMCT298为出发菌株，制备感受态细胞。重组质粒pK18mobsacB-icda1t以电穿孔方法转化该感受态细胞，并在含有15mg/L卡那霉素的选择培养基上筛选转化子，其中感兴趣的基因由于同源性被插入到染色体中。将筛得的转化子过夜培养于普通液体脑心浸液培养基中，培养温度为30℃，回转摇床220rpm振荡培养。此培养过程中，转化子发生第二次重组，通过基因交换将载体序列从基因组中除去。将培养物做连续梯度稀释(10-2连续稀释至10-4)，稀释液涂布在含有10％蔗糖的普通固体脑心浸液培养基上，33℃静置培养48h。蔗糖培养基上长出的菌株在其基因组中不携带插入的载体序列。通过PCR扩增目的序列，核苷酸测序分析，获得目的突变菌株命名为SMCT299。
8、苹果酸醌氧化还原酶表达强化菌株的构建
以上述获得的SMCT299为出发菌株，制备感受态细胞。重组质粒pK18mobsacB-Psod-mqo以电穿孔方法转化该感受态细胞，并在含有15mg/L卡那霉素的选择培养基上筛选转化子，其中感兴趣的基因由于同源性被插入到染色体中。将筛得的转化子过夜培养于普通液体脑心浸液培养基中，培养温度为30℃，回转摇床220rpm振荡培养。此培养过程中，转化子发生第二次重组，通过基因交换将载体序列从基因组中除去。将培养物做连续梯度稀释(10-2连续稀释至10-4)，稀释液涂布在含有10％蔗糖的普通固体脑心浸液培养基上，33℃静置培养48h。蔗糖培养基上长出的菌株在其基因组中不携带插入的载体序列。通过PCR扩增目的序列，核苷酸测序分析，获得目的突变菌株命名为SMCT300。
获得的菌株如表2所示：
表2
菌株名称 基因型
SMCT286 ATCC13032,Psod-aspB
SMCT289 SMCT286,Psod-lysCg1a-T311I
SMCT291 SMCT289,Psod-thrCg1a
SMCT294 SMCT291,gltAa1g
SMCT297 SMCT294,ramBa1g
SMCT298 SMCT294,△ramB
SMCT299 SMCT298,icda1t
SMCT300 SMCT299,Psod-mqo
实施例3构建菌株摇瓶验证
1.培养基
种子活化培养基：BHI 3.7％，琼脂2％，pH7。
种子培养基：蛋白胨5/L，酵母抽提物5g/L，氯化钠10g/L，硫酸铵16g/L，尿素8g/L，磷酸二氢钾10.4g/L，磷酸氢二钾21.4g/L，生物素5mg/L，硫酸镁3g/L。葡萄糖50g/L，pH7.2。
发酵培养基：玉米浆50mL/L，葡萄糖30g/L，硫酸铵4g/L，MOPS 30g/L，磷酸二氢钾10g/L，尿素20g/L，生物素10mg/L，硫酸镁6g/L，硫酸亚铁1g/L，VB1·HCl 40mg/L，泛酸钙50mg/L，烟酰胺40mg/L，硫酸锰1g/L，硫酸锌20mg/L，硫酸铜20mg/L，pH 7.2。
2.工程菌摇瓶发酵生产L-苏氨酸
(1)种子培养：挑取工程菌斜面种子1环接至装有20mL种子培养基的500mL三角瓶中，30℃、220r/min振荡培养16h。
(2)发酵培养：将2mL种子液接种至装有20mL发酵培养基的500mL三角瓶中，33℃、220r/min振荡培养24h。
(3)取1mL发酵液离心(12000rpm，2min)，收集上清液，用HPLC检测工程菌与对照菌发酵液中的L-苏氨酸(表3)。
表3谷氨酸棒状杆菌生产苏氨酸的能力
菌株编号 OD562 L-苏氨酸(g/L) 菌株编号 OD562 L-苏氨酸(g/L)
ATCC13032 25.0 — SMCT297 22.3 3.5
SMCT286 24.5 0.8 SMCT298 22.0 3.6
SMCT289 23.9 1.8 SMCT299 21.5 4.2
SMCT291 23.8 2.3 SMCT300 21.5 4.9
SMCT294 22.3 3.0
由表3可以看出，天冬氨酸转氨酶、天冬氨酸激酶、苏氨酸合酶、柠檬酸合酶、异柠檬酸脱氢酶、HTH转录调节因子和苹果酸醌氧化还原酶等的叠加改造，对苏氨酸产量增加有正效果，苏氨酸产量提高到4.9g/L，表明本发明的叠加组合有效，可显著提高苏氨酸的产量。
虽然，上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述，但在本发明基础上，可以对之做一些修改或改进，这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此，在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进，均属于本发明要求保护的范围。
序列表
<110> 廊坊梅花生物技术开发有限公司
<120> 苏氨酸生产菌株的构建方法
<130> KHP211124945.9
<160> 5
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 1266
<212> DNA
<213> 谷氨酸棒状杆菌(Corynebacterium glutamicum)
<400> 1
gtggccctgg tcgtacagaa atatggcggt tcctcgcttg agagtgcgga acgcattaga 60
aacgtcgctg aacggatcgt tgccaccaag aaggctggaa atgatgtcgt ggttgtctgc 120
tccgcaatgg gagacaccac ggatgaactt ctagaacttg cagcggcagt gaatcccgtt 180
ccgccagctc gtgaaatgga tatgctcctg actgctggtg agcgtatttc taacgctctc 240
gtcgccatgg ctattgagtc ccttggcgca gaagcccaat ctttcacggg ctctcaggct 300
ggtgtgctca ccaccgagcg ccacggaaac gcacgcattg ttgatgtcac tccaggtcgt 360
gtgcgtgaag cactcgatga gggcaagatc tgcattgttg ctggtttcca gggtgttaat 420
aaagaaaccc gcgatgtcac cacgttgggt cgtggtggtt ctgacaccac tgcagttgcg 480
ttggcagctg ctttgaacgc tgatgtgtgt gagatttact cggacgttga cggtgtgtat 540
accgctgacc cgcgcatcgt tcctaatgca cagaagctgg aaaagctcag cttcgaagaa 600
atgctggaac ttgctgctgt tggctccaag attttggtgc tgcgcagtgt tgaatacgct 660
cgtgcattca atgtgccact tcgcgtacgc tcgtcttata gtaatgatcc cggcactttg 720
attgccggct ctatggagga tattcctgtg gaagaagcag tccttaccgg tgtcgcaacc 780
gacaagtccg aagccaaagt aaccgttctg ggtatttccg ataagccagg cgaggctgcg 840
aaggttttcc gtgcgttggc tgatgcagaa atcaacattg acatggttct gcagaacgtc 900
tcttctgtag aagacggcac caccgacatc accttcacct gccctcgttc cgacggccgc 960
cgcgcgatgg agatcttgaa gaagcttcag gttcagggca actggaccaa tgtgctttac 1020
gacgaccagg tcggcaaagt ctccctcgtg ggtgctggca tgaagtctca cccaggtgtt 1080
accgcagagt tcatggaagc tctgcgcgat gtcaacgtga acatcgaatt gatttccacc 1140
tctgagattc gtatttccgt gctgatccgt gaagatgatc tggatgctgc tgcacgtgca 1200
ttgcatgagc agttccagct gggcggcgaa gacgaagccg tcgtttatgc aggcaccgga 1260
cgctaa 1266
<210> 2
<211> 1446
<212> DNA
<213> 谷氨酸棒状杆菌(Corynebacterium glutamicum)
<400> 2
gtggactaca tttcgacgcg tgatgccagc cgtacccctg cccgcttcag tgatattttg 60
ctgggcggtc tagcaccaga cggcggcctg tacctgcctg caacctaccc tcaactagat 120
gatgcccagc tgagtaaatg gcgtgaggta ttagccaacg aaggatacgc agctttggct 180
gctgaagtta tctccctgtt tgttgatgac atcccagtag aagacatcaa ggcgatcacc 240
gcacgcgcct acacctaccc gaagttcaac agcgaagaca tcgttcctgt caccgaactc 300
gaggacaaca tttacctggg ccacctttcc gaaggcccaa ccgctgcatt caaagacatg 360
gccatgcagc tgctcggcga acttttcgaa tacgagcttc gccgccgcaa cgaaaccatc 420
aacatcctgg gcgctacctc tggcgatacc ggctcctctg cggaatacgc catgcgcggc 480
cgcgagggaa tccgcgtatt catgctgacc ccagctggcc gcatgacccc attccagcaa 540
gcacagatgt ttggccttga cgatccaaac atcttcaaca tcgccctcga cggcgttttc 600
gacgattgcc aagacgtagt caaggctgtc tccgccgacg cagaattcaa aaaagacaac 660
cgcatcggtg ccgtgaactc catcaactgg gcacgcctta tggcacaggt tgtgtactac 720
gtttcctcat ggatccgcac cacaaccagc aatgaccaaa aggtcagctt ctccgtacca 780
accggcaact tcggtgacat ttgcgcaggc cacatcgccc gccaaatggg acttcccatc 840
gatcgcctca tcgtggccac caacgaaaac gatgtgctcg acgagttctt ccgtaccggc 900
gactaccgag tccgcagctc cgcagacacc cacgagacct cctcaccttc gatggatatc 960
tcccgcgcct ccaacttcga gcgtttcatc ttcgacctgc tcggccgcga cgccacccgc 1020
gtcaacgatc tatttggtac ccaggttcgc caaggcggat tctcactggc tgatgacgcc 1080
aactttgaga aggctgcagc agaatacggt ttcgcctccg gacgatccac ccatgctgac 1140
cgtgtggcaa ccatcgctga cgtgcattcc cgcctcgacg tactaatcga tccccacacc 1200
gccgacggcg ttcacgtggc acgccagtgg agggacgagg tcaacacccc aatcatcgtc 1260
ctagaaactg cactcccagt gaaatttgcc gacaccatcg tcgaagcaat tggtgaagca 1320
cctcaaactc cagagcgttt cgccgcgatc atggatgctc cattcaaggt ttccgaccta 1380
ccaaacgaca ccgatgcagt taagcagtac atagtcgatg cgattgcaaa cacttccgtg 1440
aagtaa 1446
<210> 3
<211> 1314
<212> DNA
<213> 谷氨酸棒状杆菌(Corynebacterium glutamicum)
<400> 3
atgtttgaaa gggatatcgt ggctactgat aacaacaagg ctgtcctgca ctaccccggt 60
ggcgagttcg aaatggacat catcgaggct tctgagggta acaacggtgt tgtcctgggc 120
aagatgctgt ctgagactgg actgatcact tttgacccag gttatgtgag cactggctcc 180
accgagtcga agatcaccta catcgatggc gatgcgggaa tcctgcgtta ccgcggctat 240
gacatcgctg atctggctga gaatgccacc ttcaacgagg tttcttacct acttatcaac 300
ggtgagctac caaccccaga tgagcttcac aagtttaacg acgagattcg ccaccacacc 360
cttctggacg aggacttcaa gtcccagttc aacgtgttcc cacgcgacgc tcacccaatg 420
gcaaccttgg cttcctcggt taacattttg tctacctact accaggacca gctgaaccca 480
ctcgatgagg cacagcttga taaggcaacc gttcgcctca tggcaaaggt tccaatgctg 540
gctgcgtacg cacaccgcgc acgcaagggt gctccttaca tgtacccaga caactccctc 600
aatgcgcgtg agaacttcct gcgcatgatg ttcggttacc caaccgagcc atacgagatc 660
gacccaatca tggtcaaggc tctggacaag ctgctcatcc tgcacgctga ccacgagcag 720
aactgctcca cctccaccgt tcgtatgatc ggttccgcac aggccaacat gtttgtctcc 780
atcgctggtg gcatcaacgc tctgtccggc ccactgcacg gtggcgcaaa ccaggctgtt 840
ctggagatgc tcgaagacat caagagcaac cacggtggcg acgcaaccga gttcatgaac 900
aaggtcaaga acaaggaaga cggcgtccgc ctcatgggct tcggacaccg cgtttacaag 960
aactacgatc cacgtgcagc aatcgtcaag gagaccgcac acgagatcct cgagcacctc 1020
ggtggcgacg atcttctgga tctggcaatc aagctggaag aaattgcact ggctgatgat 1080
tacttcatct cccgcaagct ctacccgaac gtagacttct acaccggcct gatctaccgc 1140
gcaatgggct tcccaactga cttcttcacc gtattgttcg caatcggtcg tctgccagga 1200
tggatcgctc actaccgcga gcagctcggt gcagcaggca acaagatcaa ccgcccacgc 1260
caggtctaca ccggcaacga atcccgcaag ttggttcctc gcgaggagcg ctaa 1314
<210> 4
<211> 1425
<212> DNA
<213> 谷氨酸棒状杆菌(Corynebacterium glutamicum)
<400> 4
atgggaaaga catatgtggg gtccaggctg cgccaactgc gccgcgaaag agacctgagc 60
caggcatcct tagcagcaac ccttggctta tctgcaagtt atgtaaatca gattgagcac 120
gacgtacgcc cgctcaccgt accggtgtta ttgcgcatca ccgaggcgtt cggcgtagac 180
gcaacgtttt tctcccgcga cgatgactcc cgcctgctcg ccgaggtcca agacgtcatg 240
ctggaccggg agatcaatcc tgcgaacgtg gagctgcaag agctttcgga gatggtgtac 300
aaccaccccc aactagcgcg cgcgatggtg gaaatgcacc agcgttaccg aaacgtgcgc 360
gataagttct ccatcgcagt ggataatcgc accaacacgc ctgaggaacg ccgtcccatc 420
gcggaggccg tgagcatgcc gcacgaagag gtccgcgatt tcatttacgc ccgccaaaac 480
tacttcgatg cccttgaccg ccgcgccgaa gccatcgccg cgcaactggg ctggcagccg 540
tacgattccc gcgccatgga agattcgatc gcccgccgcc tgcaaatgga tcacgatgtc 600
accatcacct cctccaaaga ggaatccggc acgctgcacc acttcgaccc cgagacgcgt 660
ctgctgacaa tccacgcacg cctcaacccc gggcaacgcg ccttccgcat ggccaccgaa 720
ctcggctacc tagaagccaa cgacctcatc gaaggtatcg ttgacgacgg catctggtcc 780
acccccgaag cccgcaccct agccatccgc ggtgtggcct cctacttcgc cgccgccgtg 840
atgctgccct acaaaatctt ccactccgag gccgaaaaat ccggctacga catcgagtac 900
ctaggccaac tctttggcgt gggctatgag acaaccgccc accgcttgtc caccctgcag 960
cgccccaacc tgcgcggcat cccctttacc ttcgtgcgcg tcgaccgcgc cggcaacatg 1020
tccaaacgcc aatccgccac cggcttccac ttcacccact acggcggcac ctgccccctg 1080
tggaacgtgt ttgaaacctt caccaacccc ggccaagtgc tccgccaatt cgcgcaaatg 1140
cccgacggac gcaactacct gtggatctca cgcaccgtgc gacaccacga agcccggttc 1200
ggcgaagtag acaaaatgtt cgccatcggc ctgggctgcg aagcgcgcca cgccgaccgc 1260
actgtgtact cccgcggttt caacctccag gacctctcca ccgccacccc catcgggtcc 1320
ggctgccgag tgtgcacccg cgagaactgc gcgcagcgcg cattcccatc cgtccacggc 1380
cgcatcaaca tcgacgcgca cgaatccact atcgcgccgt actaa 1425
<210> 5
<211> 777
<212> DNA
<213> 谷氨酸棒状杆菌(Corynebacterium glutamicum)
<400> 5
atgagcgaac gtcagctgga aaagtcaatt gagcacgccg tcgagttagc ccgcgaagcc 60
cgaaacatcg aagtttttac cggagccgga atgagcgccg actccgggtt ggaaacgtat 120
cgtgatgata aaaccgggct gtggagcaac gtagatccac aagcgatggc aagtatcgat 180
gcatggcgca aagatccaga gccaatgtgg gcgtggtatc gctggcgcgc cggggtggca 240
gctagggcag aacccaacgc ggggcatcaa gctatttcct actgggaggg gagtgacacc 300
gtcgaacacg ttcacatcac cacccagaac attgacaacc tgcacgagcg agctggctct 360
agcgatgtga cacatcttca tggcagcttg tttgaataca ggtgctctga ttgtgcgact 420
ccatgggaag acgataaaaa ctatccgcaa gaacccattg cacgccttgc tcctccacaa 480
tgtgaaaagt gcggagggct gattagacca ggtgtggtgt ggtttggtga gaacctgccc 540
gtagaagagt gggatattgc agagcaacgc atcgcagaag ccgatctcat gatcattgtg 600
ggtacctccg ggattgttca tcctgcagca gcactcccgc aattagccca acaacgcggc 660
gttcccatcg tggagatctc cccaacgcgc accgaactta gccggatcgc agacttcacc 720
tggatgtcca ccgcagccca agcgctacca gcgttgatgc gaggtttgag cgcctaa 777

Claims (8)

1.一种修饰的棒状杆菌属微生物，其特征在于，所述微生物相比于未修饰的微生物，其与苏氨酸合成途径相关的酶活性增强，且与三羧酸循环相关的酶活性发生改变以提高苏氨酸合成途径中前体物质的供应，且所述微生物相比于未修饰的微生物具有增强的苏氨酸生产能力；
其中，与苏氨酸合成途径相关的酶选自天冬氨酸转氨酶、天冬氨酸激酶、苏氨酸合酶中的至少一种；
与三羧酸循环相关的酶选自柠檬酸合酶、异柠檬酸脱氢酶、HTH转录调节因子RamB、苹果酸醌氧化还原酶中的至少一种。
2.根据权利要求1所述的微生物，其特征在于，酶活性增强是由选自以下1)～6)，或任选的组合实现的：
1)通过导入具有所述酶的编码基因的质粒而增强；
2)通过增加染色体上所述酶的编码基因的拷贝数而增强；
3)通过改变染色体上所述酶的编码基因的启动子序列而增强；
4)通过将强启动子与所述酶的编码基因可操作地连接而增强；
5)通过对酶的氨基酸序列进行改变而增强；
6)通过改变编码上述酶的核苷酸序列而增强；
酶活性降低或丧失是由选自以下1)-5)，或任选的组合实现的：
1)通过改变所述酶的编码基因的启动子序列而降低或丧失；
2)通过改变所述酶的编码基因的核糖体结合位点而降低或丧失；
3)通过改变所述酶的氨基酸序列而降低或丧失；
4)通过改变编码所述酶的核苷酸序列而降低或丧失；
5)通过敲除所述酶的编码序列而丧失。
3.根据权利要求2所述的微生物，其特征在于，采用诱变、定点突变或同源重组的方法来改变苏氨酸合成途径和三羧酸循环中酶的活性。
4.根据权利要求1所述的微生物，其特征在于，所述微生物与未修饰的微生物相比，其体内天冬氨酸转氨酶、天冬氨酸激酶、苏氨酸合酶和苹果酸醌氧化还原酶活性增强，且柠檬酸合酶、异柠檬酸脱氢酶和HTH转录调节因子RamB活性降低或丧失。
5.根据权利要求4所述的微生物，其特征在于，天冬氨酸氨基转移酶活性的增强是通过在aspB基因起始密码子上游插入sod启动子来实现的；和/或
天冬氨酸激酶活性的增强是通过在lysC基因起始密码子上游插入sod启动子，同时将起始密码子GTG突变为ATG，并将lysC基因编码的第311位氨基酸由苏氨酸突变为异亮氨酸来实现的；和/或
苏氨酸合酶活性的增强是通过在thrC基因起始密码子上游插入sod启动子，并将起始密码子GTG突变为ATG来实现的；和/或
苹果酸醌氧化还原酶活性的增强是通过在mqo基因起始密码子上游插入sod启动子来实现的；和/或
柠檬酸合酶活性降低或丧失是通过将gltA基因的起始密码子由ATG突变为GTG来实现的；和/或
异柠檬酸脱氢酶活性降低或丧失是通过将icd基因的起始密码子由ATG突变为TTG来实现的；和/或
HTH转录调节因子RamB活性降低或丧失是通过将ramB基因的起始密码子由ATG突变为GTG，或者对ramB基因编码区进行敲除来实现的。
6.根据权利要求1-5任一项所述的微生物，其特征在于，所述微生物为谷氨酸棒状杆菌(Corynebacterium glutamicum)。
7.苏氨酸生产菌株的构建方法，其特征在于，所述方法包括：利用基因工程手段，增强具有氨基酸生产能力的棒杆菌中的与苏氨酸合成途径相关的基因，并改造与三羧酸循环相关的基因以提高苏氨酸合成途径中前体物质的供应；
其中，所述与苏氨酸合成途径和三羧酸循环相关的基因选自aspB、lysC、thrC、mqo、gltA、icd、ramB中的至少一种；
所述增强的途径选自以下1)～6)，或任选的组合：
1)通过导入具有所述酶的编码基因的质粒而增强；
2)通过增加染色体上所述酶的编码基因的拷贝数而增强；
3)通过改变染色体上所述酶的编码基因的启动子序列而增强；
4)通过将强启动子与所述酶的编码基因可操作地连接而增强；
5)通过对酶的氨基酸序列进行改变而增强；
6)通过改变编码上述酶的核苷酸序列而增强；
酶活性降低或丧失是由选自以下1)-5)，或任选的组合实现的：
1)通过改变所述酶的编码基因的启动子序列而降低或丧失；
2)通过改变所述酶的编码基因的核糖体结合位点而降低或丧失；
3)通过改变所述酶的氨基酸序列而降低或丧失；
4)通过改变编码所述酶的核苷酸序列而降低或丧失；
5)通过敲除所述酶的编码序列而丧失。
8.一种生产苏氨酸的方法，其特征在于，所述方法包括如下步骤：
a)培养权利要求1-6任一项所述的微生物，以获得所述微生物的培养物；
b)从步骤a)中获得的所述培养物中收集所产生的苏氨酸。
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