CN116333186A - 一种无花果果胶及其制备方法和在化妆品中的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明属于化妆品技术领域，具体涉及一种无花果果胶及其制备方法和在化妆品中的应用。本发明提供了一种无花果果胶的制备方法：将无花果和低级醇‑水溶剂混合，加热回流脱色后除溶剂，得到的脱色后的无花果残渣、纤维素酶、木瓜蛋白酶和水混合，加热进行酶解，得到的无花果酶解料液升温加热进行浸提，收集液相组分，得到的无花果水提液浓缩，得到的无花果浓缩液和乙醇混合进行醇沉，得到无花果果胶。本发明获得的无花果果胶性质稳定、具有皮肤美白、抗衰老、抗皱效果，且提取率和纯度高。同时，本发明提供的制备方法操作方便，成本低，无有害溶剂，适合工业化生产。且制备的无花果果胶天然安全，可在化妆品的制备过程中添加。

Description

一种无花果果胶及其制备方法和在化妆品中的应用
技术领域
本发明属于化妆品技术领域，具体涉及一种无花果果胶及其制备方法和在化妆品中的应用。
背景技术
皮肤老化是一个非常复杂的过程，受到多种因素的影响，其中黑色素的生成和自由基引起皮肤弹性纤维的变性是两大主要因素。外界环境影响也会导致人体抗自由基的能力下降，自由基通过攻击生命大分子物质及各种细胞，会造成机体的各种损伤，加速机体的衰老进程，表现出逐渐衰老的变化，如老年色素沉积、皮肤起皱等。因此，在美白的同时，加强抗氧化非常重要。市面上的化妆品大多数宣称单一性功效，不能满足消费的需求，因此，研发兼具美白、抗衰老、抗皱作用的产品显得很有必要。
以植物提取物作为活性成分配制的化妆品与传统化妆品相比，具有很多优点，诸如：克服了传统化妆品依赖化学合成品的缺点，使产品的安全性能更高；天然组分更容易被皮肤吸收，使产品的作用效果更显著等。因此，植物提取物应用于化妆品中是市场发展的必然趋势。
果胶是食品、生物医学、药物、化妆品行业不可或缺的成分，不仅因为其具有生物活性，而且作为可溶性纤维具有促进健康的作用。现有技术常见的果胶提取方法有：水提法、酸提法、碱提法、酶提法、超声提取法、微波提取法，目前研究中通常采用的方法是水提取法，因为这种方法具有不需要特殊设备、成本低等优点，但现有技术所述的水提法，植物细胞壁不能完全破坏，果胶提取率低。
发明内容
本发明的目的在于提供一种无花果果胶及其制备方法和在化妆品中的应用，本发明提供的制备方法对无花果果胶的提取率高，且制得的无花果果胶纯度高，具有较高抗氧化、抑制酪氨酸酶和弹性蛋白酶的活性，应用于美白、抗衰老、抗皱化妆品中效果好。
为了实现上述目的，本发明提供如下技术方案：
本发明提供了一种无花果果胶的制备方法，包括以下步骤：
将无花果和低级醇-水溶剂混合，加热回流后除溶剂，得到脱色后的无花果残渣；
将所述脱色后的无花果残渣、纤维素酶、木瓜蛋白酶和水混合，加热进行酶解，得到无花果酶解料液；
将所述无花果酶解料液升温加热进行浸提，收集液相组分，得到无花果水提液；
将所述无花果水提液浓缩，第一固液分离后收集液相组分，得到无花果浓缩液；
将所述无花果浓缩液和乙醇混合进行醇沉，第二固液分离后收集固相组分，得到无花果果胶。
优选的，所述纤维素酶的酶活为400U/mg，所述脱色后的无花果残渣和纤维素酶的质量比为1:(0.005～0.03)。
优选的，所述木瓜蛋白酶的酶活为800U/mg；所述脱色后的无花果残渣和木瓜蛋白酶的质量比为1:(0.005～0.03)。
优选的，所述酶解的温度为35～45℃，所述酶解的保温时间为60～120min。
优选的，所述低级醇-水溶剂为乙醇-水溶剂，所述无花果和所述低级醇-水溶剂的固液比为1:3。
优选的，所述热水的温度为80～100℃。
优选的，所述浓缩比为1:(10～20)；所述无花果浓缩液和乙醇的体积比为1:4；所述醇沉的温度为1～4℃，所述醇沉的保温时间为24h。
本发明提供了上述加护方案所述的制备方法制备得到的无花果果胶，所述无花果果胶的纯度≥73％。
本发明提供了上述技术方案所述的无花果果胶在具有皮肤美白、抗衰老和抗皱的化妆品中的应用。
本发明提供了一种具有皮肤美白、抗衰老和抗皱的化妆品组合物，包括活性组分和化妆品基质，所述活性组分包括上述技术方案所述的无花果果胶。
本发明提供了一种无花果果胶的制备方法，包括以下步骤：将无花果和低级醇-水溶剂混合，加热回流脱色后除溶剂，得到脱色后的无花果残渣；将所述脱色后的无花果残渣、纤维素酶、木瓜蛋白酶和水混合，加热进行酶解，得到无花果酶解料液；将所述无花果酶解料液升温加热进行浸提，收集液相组分，得到无花果水提液；将所述无花果水提液浓缩，第一固液分离后收集液相组分，得到无花果浓缩液；将所述无花果浓缩液和乙醇混合进行醇沉，第二固液分离后收集固相组分，得到无花果果胶。本发明提供的制备方法将无花果依次经脱色、复合酶水解结合热水提取、乙醇沉淀，其中，复合酶水解步骤中，本发明采用纤维素酶和木瓜蛋白酶作为复合酶解破壁水解蛋白，在纤维素酶的作用下，破坏了无花果细胞壁，得到无花果粉的酶解溶液。同时加入木瓜蛋白酶，促进与果胶结合型的蛋白水解，进而将游离性的蛋白分解成小分子氨基酸类，达到除去果胶中的蛋白质的目的。因此本发明获得的无花果果胶提取率和纯度高，同时，本发明提供的制备方法操作方便，成本低，无有害溶剂，适合工业化生产。且制备的无花果果胶天然安全，所得果胶稳定性好且使用方便，可在化妆品的制备过程中添加。
本发明提供了上述加护方案所述的制备方法制备得到的无花果果胶，所述无花果果胶的纯度≥73％。本发明提供的制备方法得到的无花果果胶进行抗自由基、酪氨酸酶活性和弹性蛋白酶活性抑制试验，发现本发明制备的无花果果胶具有较高抗氧化、抑制酪氨酸酶和弹性蛋白酶的活性，同时加快皮肤表层细胞更新，紧致皮肤，减少黑色素生成，延缓皮肤衰老。将本发明制备的无花果果胶作为化妆品添加剂或者活性成分，能够制备出性质稳定、具有皮肤美白、抗衰老、抗皱效果的化妆品，且没有皮肤刺激。
附图说明
图1为本发明实施例提供的不同浓度无花果果胶对DPPH自由基清除率图；
图2为本发明实施例提供的不同浓度无花果果胶对羟基自由基清除率图；
图3为本发明实施例提供的不同浓度无花果果胶对酪氨酸酶活性抑制(体外法)图；
图4为本发明实施例提供的不同浓度无花果果胶对斑马鱼胚黑色素沉着影响图；
图5为本发明实施例提供的不同浓度无花果果胶对斑马鱼胚黑色素和酪氨酸酶抑制率图；
图6为本发明实施例提供的不同浓度无花果果胶对弹性蛋白酶抑制率图。
具体实施方式
本发明提供了一种无花果果胶的制备方法，包括以下步骤：
将无花果和低级醇-水溶剂混合，加热回流后除溶剂，得到脱色后的无花果残渣；
将所述脱色后的无花果残渣、纤维素酶、木瓜蛋白酶和水混合，加热进行酶解，得到无花果酶解料液；
将所述无花果酶解料液升温加热进行浸提，收集液相组分，得到无花果水提液；
将所述无花果水提液浓缩，第一固液分离后收集液相组分，得到无花果浓缩液；
将所述无花果浓缩液和乙醇混合进行醇沉，第二固液分离后收集固相组分，得到无花果果胶。
在本发明中，若无特殊说明，所有制备原料/组分均为本领域技术人员熟知的市售产品。
本发明将将无花果和低级醇-水溶剂混合，加热回流后除溶剂，得到脱色后的无花果残渣。
在本发明中，所述无花果和低级醇-水溶剂混合之前，本发明优选对所述无花果进行前处理，在本发明中，所述前处理优选包括依此进行粉碎和筛分。本发明对所述粉碎的具体试试过程没有特殊要求。在本发明中，所述筛分优选过20目筛。
在本发明中，所述无花果的粒径优选≤0.85mm。
在本发明中，所述低级醇-水溶剂为乙醇-水溶剂，所述乙醇-水溶剂中乙醇的体积百分含量优选为95％。
在本发明中，所述无花果和所述低级醇-水溶剂的固液比优选为1:3。
本发明优选通过加热回流的方式对所述无花果进行脱色。
在本发明中，所述除溶剂的具体实施方式优选为抽滤。
在本发明中，所述除溶剂得到湿物料，所述除溶剂后，本发明优选还包括将所述湿物料进行干燥，得到所述脱色后的无花果残渣。在本发明中，所述干燥的温度优选为50～60℃，具体优选为50℃、55℃或60℃，所述干燥优选为烘干。
得到脱色后的无花果残渣后，本发明将所述脱色后的无花果残渣、纤维素酶、木瓜蛋白酶和水混合，加热进行酶解，得到无花果酶解料液。
在本发明中，所述纤维素酶的酶活优选为400U/mg，所述脱色后的无花果残渣和纤维素酶的质量比优选为1:(0.005～0.03)，具体优选为1:0.005、1:0.02或1:0.03。
在本发明中，所述木瓜蛋白酶的酶活优选为800U/mg；所述脱色后的无花果残渣和木瓜蛋白酶的质量比优选为1:(0.005～0.03)，具体优选为1:0.005、1:0.02或1:0.03。
在本发明中，所述脱色后的无花果残渣和所述水的质量比优选为1:(10～20)，具体优选为1:10、1:15或1:20。
在本发明中，所述酶解的温度优选为35～45℃，具体优选为35℃、40℃或45℃。
在本发明中，所述酶解的保温时间优选为60～120min，具体优选为60min、80min或120min。
得到无花果酶解料液后，本发明将所述无花果酶解料液升温加热进行浸提，收集液相组分，得到无花果水提液。
在本发明中，升温加热的温度优选为80～100℃，具体优选为80℃、90℃、95℃或100℃。
在本发明中，所述浸提的次数优选为2次。每次浸提的时间优选为1～4h，具体优选为1h、2h或4h。本发明优选合并每次浸提得到的提取液，得到所述无花果水提液。
得到无花果水提液后，本发明将所述无花果水提液浓缩，第一固液分离后收集液相组分，得到无花果浓缩液。
在本发明中，所述所述浓缩比优选为1:(10～20)。
在本发明中，所述浓缩的具体实施方式优选为旋转蒸发。所述第一固液分离优选为离心分离。
得到无花果浓缩液后，本发明将所述无花果浓缩液和乙醇混合进行醇沉，第二固液分离后收集固相组分，得到无花果果胶。
在本发明中，所述无花果浓缩液和乙醇的体积比优选为1:4；所述醇沉的温度优选为1～4℃，更优选为4℃；所述醇沉的保温时间优选为24h。所述醇沉优选在冰箱中静置进行。
在本发明中，所述第二固液分离优选为抽滤。在本发明中，所述第二固液收集得到固相组分，所述第二固液分离后，本发明优选还包括：将所述固相组分进行后处理，得到所述无花果果胶。在本发明中，所述后处理优选包括依此进行洗涤和干燥。在本发明中，所述洗涤的洗液优选为无水乙醇。所述干燥优选为冻干。
在本发明中，所述无花果果胶的提取率优选为178.5～199.2mg/g。
本发明提供了上述加护方案所述的制备方法制备得到的无花果果胶，所述无花果果胶的纯度≥73％，优选为73.9～78.5％。
本发明提供了上述技术方案所述的无花果果胶在具有皮肤美白、抗衰老和抗皱的化妆品中的应用。
本发明提供了一种具有皮肤美白、抗衰老和抗皱的化妆品组合物，包括活性组分和化妆品基质，所述活性组分包括上述技术方案所述的无花果果胶。本发明对所述化妆品基质的种类没有特殊要求。
在本发明中，所述具有皮肤美白、抗衰老和抗皱的化妆品组合物中，所述无花果果胶的质量百分含量优选为0.1～0.5％。
为了进一步说明本发明，下面结合附图和实施例对本发明提供的技术方案进行详细地描述，但不能将它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1
取干燥的无花果150g，粉碎，过20目筛，然后加入95％乙醇450mL回流脱色，抽滤除去溶剂，于烘箱中50℃烘干，得到脱色后的无花果残渣。称取无花果残渣100g，分别加入为无花果残渣的质量分数2％的纤维素酶(400U/mg)和木瓜蛋白酶(800U/mg)，再加入15倍质量的水，40℃恒温90min，制得无花果粉水溶液。然后升温至95℃热水浸提2h，提取2次，合并提取液，将提取液3000mL减压蒸馏浓缩至浓缩液200mL，离心。取上清液加入800mL无水乙醇，4℃冰箱放置24h，离心抽滤，将沉淀用无水乙醇多次洗涤后，冻干得无花果果胶，果胶提取率为199.2mg/g。以半乳糖醛酸为对照品，用咔唑为显色剂对提取的无花果果胶进行含量测定，果胶纯度为78.5％。
实施例2
取干燥的无花果150g，粉碎，过20目筛，然后加入95％乙醇450mL回流脱色，抽滤除去溶剂，于烘箱中60℃烘干，得到脱色后的无花果残渣。称取无花果残渣100g，分别加入为无花果残渣的质量分数0.5％的纤维素酶(400U/mg)和木瓜蛋白酶(800U/mg)，再加入10倍质量的水，35℃恒温120分钟；制得无花果粉水溶液。然后升温至100℃热水浸提1h，提取2次，合并提取液，将提取液2000mL减压蒸馏浓缩至浓缩液200mL，离心。取上清液加入800mL无水乙醇，4℃冰箱放置24h，离心抽滤，将沉淀用无水乙醇多次洗涤后，冻干得无花果果胶，果胶提取率为178.5mg/g。以半乳糖醛酸为对照品，用咔唑为显色剂对提取的无花果果胶进行含量测定，果胶纯度为74.4％。
实施例3
取干燥的无花果150g，粉碎，过20目筛，然后加入95％乙醇450mL回流脱色，抽滤除去溶剂，于烘箱中55℃烘干，得到脱色后的无花果残渣。称取无花果残渣100g，分别加入为无花果残渣的质量分数3％的纤维素酶(400U/mg)和木瓜蛋白酶(800U/mg)，再加入20倍质量的水，45℃恒温60分钟；制得无花果粉水溶液。然后升温至80℃热水浸提4h，提取2次，合并提取液，将提取液4000mL减压蒸馏浓缩至浓缩液200mL，离心。取上清液加入800mL无水乙醇，4℃冰箱放置24h，离心抽滤，将沉淀用无水乙醇多次洗涤后，冻干得无花果果胶，果胶提取率为183.6mg/g。以半乳糖醛酸为对照品，用咔唑为显色剂对提取的无花果果胶进行含量测定，果胶纯度为73.9％。
对比例1
取干燥的无花果150g，粉碎，过20目筛，然后加入95％乙醇450mL回流脱色，抽滤除去溶剂，于烘箱中50℃烘干；得到脱色后的无花果残渣。称取无花果残渣100g，加入15倍质量的水，95℃下热水浸提2h，提取2次，合并提取液，将提取液3000mL减压蒸馏浓缩至浓缩液200mL，离心。取上清液加入800mL无水乙醇，4℃冰箱放置24h，离心抽滤，将沉淀用无水乙醇多次洗涤后，冻干得无花果果胶，果胶提取率为116.3mg/g。以半乳糖醛酸为对照品，用咔唑为显色剂对提取的无花果果胶进行含量测定，果胶纯度为62.7％。
对比实施例1、2、3和对比例1，可知本发明采用复合酶结合热水浸提法提取的无花果果胶与传统热水浸提法相比，提取率和纯度均提高，提取率提高至1.71倍、1.53倍和1.58倍；纯度提高至1.25倍、1.19倍和1.18倍。综合果胶得率和纯度结果，后续采用实施例1中制得的无花果果胶进行本发明中涉及的生物活性实验。
实施例5
无花果果胶体外抗氧化活性测定：
1.DPPH自由基清除率的测定方法
DPPH自由基清除活性的测定：向96孔板中加入不同溶度的无花果果胶样品溶液和0.1mmo1/L的DPPH溶液各100μL，漩涡振荡混匀，在暗室中反应30min，测517nm波长处的吸光度值并计算DPPH自由基清除率，DPPH自由基清除率的计算公式如式1所示。
Figure BDA0004139025530000081
式1中：Ai为待测溶液+DPPH溶液的吸光度；Aj为待测溶液+稀释液的吸光度；A0为稀释液+DPPH溶液的吸光度。
2.羟自由基(·OH)清除率的测定
H2O2与Fe2+发生芬顿反应生成·OH，向反应体系中加入水杨酸，水杨酸能快速捕捉到羟自由基并与其发生反应生成紫色化合物(2,3-二羟基苯甲酸)，该物质在510nm处有最大吸收峰值。
实验方法：按表1加样之后，37℃反应15min后，510nm处测其吸光度。
表1羟自由基(·OH)清除率实验样品加液要求
Figure BDA0004139025530000082
Figure BDA0004139025530000091
羟基自由基清除率的计算公式如式2所示：
Figure BDA0004139025530000092
式2中：A组作为空白对照的吸光度，B组作为加入待测溶液后的吸光度，C组作为待测溶液的本底吸收值(不加双氧水)。
DPPH自由基清除实验和羟基自由基清除实验是为了验证所制备的无花果果胶的抗氧化性功效，其实验结果如图1-2所示，从图1和图2可看出，无花果果胶对DPPH自由基的清除能力和羟基自由基清除能力随着试样浓度的增加而增强，当浓度为10mg/mL时，DPPH和羟基自由基清除率分别可达85.4％和71.7％。结果说明无花果果胶具有较好的抗氧化清除自由基的能力。
实施例6
无花果果胶美白活性测定
1.酪氨酸酶抑制实验
加入1mL不同溶度的无花果果胶样品溶液和0.5mL酪氨酸酶溶液(100U/mL)，充分混匀后，置37℃水浴槽孵育10min。再加入2mL的左旋多巴溶液(1mg/mL)，反应5min，475nm处测定吸光值。酪氨酸酶溶液、左旋多巴溶液和样品溶液均用pH 6.8的磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液配制，样品浓度梯度为4、6、8、10、15、20和25mg/mL。
酪氨酸酶抑制率的计算公式如式3所示：
Figure BDA0004139025530000093
式3中：A为不含样品的反应溶液的吸光度；B为不含样品和酶的反应溶液的吸光度；C为含有样品和酶的反应溶液的吸光度；D为含有样品不含酶的反应溶液的吸光度。
结果如图3所示，从图3可以看出，随着无花果果胶的浓度增大，酪氨酸酶的抑制率提高。当无花果果胶浓度达25mg/mL时，酪氨酸酶抑制率达73.7％。
2.斑马鱼美白模型实验
2.1实验动物分组和模型的建立
根据机构动物护理和委员会协议，在28±0.5℃，夜(14h)/昼(10h)循环，在装有充气淡水的流通池中进行培养。斑马鱼交配产卵后6h在显微镜下挑选发育正常胚胎，以6孔板为实验容器，每孔放20枚胚胎，养殖水培养的胚胎作为空白对照组，不同浓度的无花果果胶溶液(梯度为0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、2.0mg/mL)培养的胚胎作为试验样品组，浓度为0.5mg/mL的熊果苷溶液培养的胚胎作为阳性对照组。每隔24h换一次药液，72h后拍照。
2.2无花果果胶对斑马鱼胚黑色素抑制和酪氨酸酶抑制作用
72h时将鱼胚用斑马鱼养殖系统的养殖水清洗2遍，转移至1.5mL离心管。加入150μL脱氧胆酸钠(5.0mg/mL)溶液，混匀，在4℃水温下，用超声破碎仪将鱼胚破碎，置于超低温离心机(4℃，10000×g)离心5min。取上清液100μL加至96孔细胞培养板中，每孔加入100μL左旋多巴溶液(5.0mmol/L)；另取100μL脱氧胆酸钠溶液(5.0mg/mL)，100μL左旋多巴溶液(5.0mmol/L)，做为调零对照组。置于37℃恒温培养箱，孵育1h。取出，置于酶标仪475nm下测试吸光度计算酪氨酸酶抑制率。
将离心后剩余的上清液弃去，加入150μL氢氧化钠(1.0mol/L)使沉淀完全溶解后，取100μL实验溶液到96孔细胞培养板中，另取100μL氢氧化钠作为调零对照组，于酶标仪405nm下测试吸光度计算黑色素抑制率。
黑色素抑制率的计算公式如式4所示：
Figure BDA0004139025530000101
式4中：OD为酶标仪下测试样品吸光度。
采用Graphpadprism 8统计软件对数据进行处理，实验结果以平均值±SD表示。
3.实验结果及分析
3.1无花果果胶对斑马鱼胚黑色素和酪氨酸酶抑制影响
如图4所示，与空白对照相比，无花果果胶浓度为0.2、0.4mg/mL时幼鱼眼部黑色素沉积无明显变化，背脊两侧和背脊部黑色素略有减少；无花果果胶浓度为0.6～1.0mg/mL时，随着浓度增加，幼鱼眼部、卵黄囊、背脊两侧和背脊部黑色素沉积逐渐减少；2mg/mL时，黑色素沉积明显减少程度与0.5mg/mL的熊果苷阳性对照接近。
如图5所示，无花果果胶的黑色素生成和酪氨酸酶抑制能力在0.2～2mg/mL浓度范围内随浓度的升高而增强，2mg/mL时抑制率分别达到80.8％和76.1％。且此浓度下无花果果胶的黑色素生成和酪氨酸酶抑制能力仅略低于0.5mg/mL熊果苷阳性对照组(分别为86.1％和78.4％)。由此可以说明，2mg/mL的无花果果胶对斑马鱼胚的黑色素生成和酪氨酸酶具有很强的抑制能力。
实施例7
无花果果胶抗皱活性测定
1.弹性蛋白酶抑制实验
采用50mmol/L Tris-HCl的缓冲液(pH 8.0)配制弹性蛋白酶溶液和N-琥珀酰基-三-丙氨酸-对硝基苯胺(AAA-pNA)溶液。取85μL 50mmol/LTris-HCl缓冲液(pH 8.0)与15μL不同质量浓度的样品溶液混合后加入25μL弹性蛋白酶溶液(60mU/mL)，在25℃下孵育15min，随后加入25μL1.015mmol/L AAA-pNA溶液，15min后在410nm处测定吸光度值。样品浓度梯度为2、4、6、8、10、20mg/mL，计算样品对弹性蛋白酶的抑制率。
弹性蛋白酶的抑制率的计算公式如式5所示：
Figure BDA0004139025530000111
式5中：A为底物溶液、Tris-HCl缓冲液和酶混合物的吸光度；B为底物溶液和Tris-HCl缓冲液的吸光度；C为样品溶液、底物溶液、Tris-HCl缓冲液和酶混合物的吸光度；D为样品溶液、底物溶液和Tris-HCl缓冲液混合物的吸光度。
从图6可以得出，随着无花果果胶的浓度增大，弹性蛋白酶的抑制率增加。当无花果果胶浓度达20mg/mL时，弹性蛋白酶抑制率达68.7％。
本发明经水提醇沉制备得到纯度较高的无花果果胶，首次发现无花果果胶具有抗衰、美白、抗皱功能，可大大扩展无花果的使用范围。
本发明采用斑马鱼胚美白模型，该模型为首次使用在无花果的功效研究方面，考察黑色素抑制率、酪氨酸酶抑制率等指标，区别于其他文献资料。
尽管上述实施例对本发明做出了详尽的描述，但它仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部实施例，还可以根据本实施例在不经创造性前提下获得其他实施例，这些实施例都属于本发明保护范围。

Claims (10)

1.一种无花果果胶的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
将无花果和低级醇-水溶剂混合，加热回流后除溶剂，得到脱色后的无花果残渣；
将所述脱色后的无花果残渣、纤维素酶、木瓜蛋白酶和水混合，加热进行酶解，得到无花果酶解料液；
将所述无花果酶解料液升温加热进行浸提，收集液相组分，得到无花果水提液；
将所述无花果水提液浓缩，第一固液分离后收集液相组分，得到无花果浓缩液；
将所述无花果浓缩液和乙醇混合进行醇沉，第二固液分离后收集固相组分，得到无花果果胶。
2.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述纤维素酶的酶活为400U/mg，所述脱色后的无花果残渣和纤维素酶的质量比为1:(0.005～0.03)。
3.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述木瓜蛋白酶的酶活为800U/mg；所述脱色后的无花果残渣和木瓜蛋白酶的质量比为1:(0.005～0.03)。
4.根据权利要求1～3所述的制备方法，其特征在于，所述酶解的温度为35～45℃，所述酶解的保温时间为60～120min。
5.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述低级醇-水溶剂为乙醇-水溶剂，所述无花果和所述低级醇-水溶剂的固液比为1:3。
6.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述升温加热的温度为80～100℃。
7.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述浓缩比为1:(10～20)；所述无花果浓缩液和乙醇的体积比为1:4；所述醇沉的温度为1～4℃，所述醇沉的保温时间为24h。
8.权利要求1～7任一项所述的制备方法制备得到的无花果果胶，其特征在于，所述无花果果胶的纯度≥73％。
9.权利要求8所述的无花果果胶在美白、抗衰老和抗皱化妆品中一种或多种中的应用。
10.一种美白、抗衰老和抗皱的化妆品组合物，其特征在于，包括活性组分和化妆品基质，所述活性组分包括权利要求8所述的无花果果胶。
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