CN115852006A - 基于era技术的对虾肝肠胞虫快速检测方法及引物与探针组合 - Google Patents
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Abstract
本发明提出了基于ERA技术的对虾肝肠胞虫快速检测方法及引物与探针组合,包括一对ERA特异性引物和一条特异性荧光探针,所述引物的核苷酸序列如SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2所示,所述探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.3和SEQ ID NO.4所示。本发明建立的ERA技术的对虾肝肠胞虫快速检测方法,可以明显缩短对虾肝肠胞虫的检测时间;同时操作简单,灵敏度高、特异性强,可满足快速检测的需求,且检测成本低。
Description
技术领域
本发明涉及病原体检测技术领域,特别涉及基于ERA技术的对虾肝肠胞虫快速检测方法及引物与探针组合。
背景技术
肝肠胞虫(Enterocytozoon hpatopenaei,EHP)又称肠胞虫,隶属于真菌界(Fungi)、微孢子门(Microsporidia),肠胞虫属(Enterocytozoon),是一种胞内寄生虫,主要寄生于对虾的肝胰腺上皮细胞,具有高度传染性。EHP最早于2003年在泰国斑节对虾(Penaeus monodon)中发现,随后国内外对其开展大量相关研究。近年来,EHP引起对虾生长缓慢的现象在东南亚频繁报道。从2013年开始,我国多个省市的虾类养殖基地先后发现了EHP感染,并且感染率呈上涨趋势。被感染的对虾虽不影响饲养和存活率,但对虾通常表现为生长缓慢,个体大小不均,免疫力低下,易被其他病原体感染,已成为我国对虾养殖的重要病原之一。由于目前尚无治疗EHP的有效方法,只能通过即时检测和综合防控,才能避免病原体的流行与扩散。
EHP个体微小,被感染的对虾症状不明显,因此,很难在现场确诊。传统的组织切片方法制作时间长,流程复杂,在肝肠胞虫含量低的条件下不易发现,不适合作为判断是否感染发病的技术手段。现有免疫学检测方法,虽可以检测不同种类的微孢子虫,但是灵敏度不高,易出现假阳性,抗体筛查过程缓慢,且价格昂贵。而分子生物学方法具有快速、简便和灵敏度高等特点,已成为实验室检测EHP的常规手段。目前常用的检测方法有普通PCR、巢式PCR、qRT-PCR、原位杂交、环介导等温扩增技术(LAMP)等方法。这些方法普遍存在耗时长,操作复杂,成本高昂的特点。其中LAMP技术可在恒温条件进行,但引物体系复杂,易产生假阳性。这些特点限制了上述方法的现场检测使用。因此,需开发一种快速简便的检测方法,对EHP的预防具有重要意义。本发明建立了ERA恒温荧光检测EHP的方法,快速方便,准确可靠,满足养殖场现场检测需求。
酶促重组等温扩增(Enzymatic Recombinase Amplification,ERA)是一种恒温扩增技术,反应体系中的重组酶与引物结合形成蛋白-DNA复合物,与核酸模板上的同源序列结合,同时在单链DNA结合蛋白(SSB)协助下,DNA聚合酶引导产生解链和DNA合成,最终形成新的DNA双链,从而实现高效扩增。与其他恒温扩增技术相比,ERA可在25~45℃条件下进行扩增反应,不需要热变性,对硬件设备要求低,并且核酸扩增速度较快,可在20min内获得目的扩增产物,能够在现场检测快速出具报告,极大缩短了检测时间。
发明内容
本发明为解决现有技术中出现的问题,提供了一种对虾肝肠胞虫ERA恒温荧光检测方法及引物与探针组合,可以明显缩短对虾肝肠胞虫的检测时间;同时操作简单,灵敏度高、特异性强,满足快速检测的需求,为对虾养殖中肝肠胞虫的监测提供了一种有效手段。
为了实现上述目的,本发明采用了如下技术方案:
本发明目的之一是,提供基于ERA技术的对虾肝肠胞虫的引物与探针组合,包括一对ERA特异性引物和一条特异性荧光探针:
正向引物:5'TTGCAGAGTGTTGTTAAGGGTTTAAGTA3'(SEQ ID NO.1)
反向引物:5'CTTCTTTAAGCTGTTTGTCTCCAACTGTATT 3'(SEQ ID NO.2)
探针:5'AGAGACGATATTTACACAGACACAGCATTT 3'(SEQ ID NO.3)(THF)5'TAGGATATGAGCTTTC 3'(SEQ ID NO.4)(C3-SPACER)
优选地,核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示的所述探针的3'端标记荧光报告基团,核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示的所述探针的5'端标记荧光淬灭基团;在所述荧光报告基团和荧光淬灭基团之间插入一个四氢呋喃。
优选地,所述荧光报告基团为FAM,荧光淬灭基团为BHQ1;在ERA体系中引入带荧光标记的探针,配合相应扩增引物,可以有效提高ERA检测的特异性。
优选地,核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示的所述探针,自5'端起第30位碱基T标记荧光报告基团(6FAM-dT),核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示的所述探针,自5'端起第1位碱基T标记荧光淬灭基团(BHQ1-dT);核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示的所述探针,3'端还标记阻抑聚合酶延伸或扩增的修饰基团(C3-SPACER)。
本发明目的之二是,提供上述的引物与探针组合用于ERA技术的对虾肝肠胞虫的快速检测方法,包括如下步骤:
1)提取待测样本对虾的DNA;
2)以该DNA为模板,采用上述引物对和荧光探针进行ERA扩增,用荧光检测装置检测扩增体系中荧光信号的变化,判断待测样本对虾是否感染肝肠胞虫。
优选地,所述样本为成虾,则提取肝胰腺组织,所述样本为虾苗,则提取甲壳下组织。
优选地,所述ERA扩增的温度为36~42℃;推荐温度为42℃。
优选地,所述ERA扩增的反应时间为20min,共40个循环。
优选地,所述ERA扩增的反应体系包括所述引物对、所述探针、溶解剂、DNA模板和激活剂;所述引物的加量为2.0~3.0μL,探针加量为0.6-1.0μL。
优选地,ERA扩增结果判定方法如下:
ERA荧光扩增曲线呈“S”型且CT值≤35,判断为对虾肝肠胞虫阳性结果;
ERA荧光扩增曲线不呈“S”型或CT值>35,判断为对虾肝肠胞虫阴性结果。
与现有技术相比,本发明的有益效果为:
(1)操作简便。本发明涉及的检测方法可摆脱对大型仪器及专业检测实验室的依赖,在36~42℃下完成检测,无需专业操作人员,可在户外进行,有实际的使用需求。
(2)高效快速。本发明涉及的检测方法整个过程可在半小时内完成,提高对虾肝肠胞虫检测的效率。
(3)高特异及灵敏性。本发明涉及的检测方法对对虾常见病原基因组DNA,包括急性肝胰腺坏死病(Acute hepatopancreatic necrosis disease,AHPND)病原菌、传染性表皮与造血组织坏死症病毒(Infectious hypodermal and hematopoietic necrosisvirus,IHHNV)、白斑综合症病毒(white spot syndrome virus,WSSV),均不发生非特异性扩增;检测灵敏性为101copies/μL。
(4)成本低。本发明所使用的设备结构简单,检测成本低,适合水产类对成本敏感的客户,适合推广使用。
附图说明
图1为最佳ERA引物对的筛选结果。其中,第一组引物对为EHP-F1/R1,第二组引物对为EHP-F2/R2。
图2为ERA扩增条件温度优化结果。其中,温度梯度为:30℃、33℃、36℃、39℃、42℃、45℃。
图3为ERA反应体系引物浓度优化结果。其中,反应体系中引物加量分别为1.5μL,2.0μL,2.5μL,3.0μL。
图4为ERA反应体系探针浓度优化结果。其中,反应体系中探针加量分别为0.6μL,0.8μL,1.0μL。
图5为本发明的灵敏性检测结果。其中,模板浓度分别为105copies/μL、104copies/μL、103copies/μL、102copies/μL、101copies/μL、100copies/μL;NTC为阴性对照。
图6为本发明的特异性检测结果。其中,包含对虾白斑综合症病毒(WSSV)、传染性皮下及造血组织坏死病毒(IHHNV)、急性肝胰腺坏死病(AHPND)病原菌和健康对虾的DNA;NTC为阴性对照。
具体实施方式
下面结合具体附图及实施例对本发明进行具体的描述,有必要在此指出的是以下实施例只用于对本发明的进一步说明。
下述实施例中所使用的实验方法无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
下述实施例中的定量实验,均设置三次重复实验,结果取平均值。
下述实施例中的ERA荧光型核酸扩增试剂盒是苏州先达基因科技有限公司的产品,产品货号:KS103。
实施例1-引物探针设计及筛选结果
本发明以对虾肝肠胞虫胞壁蛋白SWP基因为检测靶基因,Genebank数据库中登录号为KX258197。首先在NCBI上找到SWP基因的保守区,使用primer premier 5.0软件设计了2组引物和探针,并在NCBI数据库中进行BLAST比对,引物和探针的序列如表1所示。上述引物和探针均由生工生物工程(上海)股份公司合成。
表1引物和探针序列
使用ERA荧光型核酸扩增试剂盒,对表1中设计合成的引物进行筛选。
反应体系为50μL,包含各2.1μL(10μM)的正、反向引物,0.6μL(10μM)的探针,20μL的溶解剂,2μL的阳性标准品,加无菌水至48μL。混匀后,将48μL预混液转移至每管冻干粉中,振荡混匀并短暂离心,使冻干粉充分溶解。对于每份样本,在反应管盖上加上2μL激活剂,通过短暂离心使激活剂进入预混液中,短暂振荡混匀并再次快速离心。将反应管迅速放入实时荧光定量PCR仪中,在40℃下反应20min,每30秒采集一次FAM通道荧光值。
该体系中所涉及的阳性标准品为包含EHP检测靶基因的重组质粒,将质粒进行10倍梯度稀释,选择浓度为105copies/μL作为反应模板。
引物的筛选结果如图1所示,根据比较Ct值大小及荧光强度高低,选定EHP-F1/R1为最佳引物对并进行后续实验。
实施例2-ERA扩增条件温度优化
为确定ERA扩增反应的最适温度,使用EHP-F1/R1引物对进行反应试验,操作如实施例1,分别在30℃、33℃、36℃、39℃、42℃、45℃条件下进行扩增。
温度优化结果如图2所示。结果表明,ERA反应体系在36~42℃能进行较好扩增,推荐温度为42℃。
实施例3-ERA反应体系中引物探针浓度优化
为确定ERA扩增反应中引物探针最适浓度,我们测试了不同引物浓度(1.5μL,2.0μL,2.5μL,3.0μL)和探针浓度(0.6μL,0.8μL,1.0μL),操作如实施例1,反应在42℃下进行。
引物探针浓度优化结果分别如图3,4。结果表明,ERA反应体系中引物最适浓度为400nM,探针最适浓度为120nM。
实施例4-ERA检测灵敏性试验
为确定对虾肝肠胞虫ERA扩增反应的灵敏性,以阳性标准品为模板,并将其10倍梯度稀释(1×105~1×100copies/μL),以这6个浓度梯度进行扩增试验。
检测结果如5所示。结果表明:本发明的对虾肝肠胞虫ERA检测方法的灵敏性为101copies/μL。
实施例5-ERA检测特异性试验
为确定对虾肝肠胞虫ERA扩增反应的特异性,分别以对虾白斑综合症病毒(WSSV)、传染性皮下及造血组织坏死病毒(IHHNV)、急性肝胰腺坏死病(AHPND)病原菌和健康对虾的DNA进行检测。
检测结果如6所示。结果表明:本发明的对虾肝肠胞虫ERA检测方法仅对EHP样品出现正常扩增,WSSV、IHHNV、AHPND、健康对虾样品及阴性对照(无菌水)均未出现扩增。上述结果说明,本发明的设计的引物与探针不与其他病原发生交叉反应,不会出现假阴性,特异性强。
实施例6-肝肠胞虫的ERA恒温荧光检测方法
步骤如下:
1)提取待测样本对虾的DNA;
1.1样本选择:若为成虾则取肝胰腺,若为虾苗则取甲壳下组织。
1.2样本DNA提取:采用核酸快提试剂盒、海洋动物组织DNA提取试剂盒或者传统方法提取。
2)以该DNA为模板,采用上述引物对和荧光探针进行ERA扩增,用荧光检测装置检测扩增体系中荧光信号的变化;
2.1按照下表2所述制备每份样本的预混液:
ERA反应体系组分 | 每管加样量/μL |
溶解剂 | 20 |
正向引物(10μM) | 2 |
反向引物(10μM) | 2 |
探针(10μM) | 0.6 |
模板DNA | 2 |
无菌水 | 21.4 |
体积 | 48 |
将预混液充分振荡混匀并短暂离心。
2.2对于每份样本,将48μL预混液转移至每管冻干粉中。振荡混匀并短暂离心。
2.3对于每份样本,在反应管盖上加上2μL激活剂,小心盖紧管盖,通过短暂离心使激活剂进入预混液中。短暂振荡混匀并再次快速离心
2.4将反应管放入荧光检测装置,在42℃下反应20min,每30秒采集一次FAM通道荧光值。(检测设备:任何能激发和检测所选荧光团,并能将温度稳定于36-42℃的荧光检测仪都适用,如GS8荧光恒温扩增仪,ABI 7500,LightCycler480,CFX 96等荧光定量PCR仪等。)
2.5反应结束后,保存数据并弃置样本管。
3)结果判定。根据比较Ct值大小及荧光强度高低对对虾中肝肠胞虫进行定性检测。
其结果判定根据最终荧光扩增曲线分析待测样本,荧光曲线呈“S”型且CT值≤35,判断为对虾肝肠胞虫阳性结果;当待测样本曲线不呈“S”型或CT值>35,判断为对虾肝肠胞虫阴性结果。
本发明选取肝肠胞虫的SWP基因作为检测的靶基因,针对靶基因序列设计了ERA检测专用引物和探针,并建立肝肠胞虫的ERA检测方法。通过实验证明:本发明的肝肠胞虫ERA检测方法可在36~42℃下30min内完成检测,灵敏性为101copies/μL,与我国水产行业标准推荐的nest PCR、qPCR的检测水平相当,并与WSSV、IHHNV、AHPND、健康对虾样品及阴性对照(无菌水)均未出现非特异性扩增,快速方便,准确可靠,可满足养殖场现场检测需求。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.基于ERA技术的对虾肝肠胞虫的引物与探针组合,其特征在于,包括一对ERA特异性引物和一条特异性荧光探针,所述引物的核苷酸序列如SEQ IDNO.1和SEQ ID NO.2所示,所述探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.3和SEQ IDNO.4所示。
2.根据权利要求1的基于ERA技术的对虾肝肠胞虫的引物与探针组合,其特征在于,核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示的所述探针的3'端标记荧光报告基团,核苷酸序列如SEQ IDNO.4所示的所述探针的5'端标记荧光淬灭基团;在所述荧光报告基团和荧光淬灭基团之间插入一个四氢呋喃。
3.根据权利要求2的基于ERA技术的对虾肝肠胞虫的引物与探针组合,其特征在于,所述荧光报告基团为FAM,荧光淬灭基团为BHQ1。
4.根据权利要求2的基于ERA技术的对虾肝肠胞虫的引物与探针组合,其特征在于,核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示的所述探针,自5'端起第30位碱基T标记荧光报告基团,核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示的所述探针,自5'端起第1位碱基T标记荧光淬灭基团;核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示的所述探针,3'端还标记阻抑聚合酶延伸或扩增的修饰基团。
5.根据权利要求1~4任意一项所述的引物与探针组合用于ERA技术的对虾肝肠胞虫的快速检测方法,其特征在于,包括如下步骤:
1)提取待测样本对虾的DNA;
2)以该DNA为模板,采用上述引物对和荧光探针进行ERA扩增,用荧光检测装置检测扩增体系中荧光信号的变化,判断待测样本对虾是否感染肝肠胞虫。
6.根据权利要求5所述的引物与探针组合用于ERA技术的对虾肝肠胞虫的快速检测方法,其特征在于,所述样本为成虾,则提取肝胰腺组织,所述样本为虾苗,则提取甲壳下组织。
7.根据权利要求5所述的引物与探针组合用于ERA技术的对虾肝肠胞虫的快速检测方法,其特征在于,所述ERA扩增的温度为36~42℃。
8.根据权利要求5所述的引物与探针组合用于ERA技术的对虾肝肠胞虫的快速检测方法,其特征在于,所述ERA扩增的反应时间为20min,共40个循环。
9.根据权利要求5所述的引物与探针组合用于ERA技术的对虾肝肠胞虫的快速检测方法,其特征在于,所述ERA扩增的反应体系包括所述引物对、所述探针、溶解剂、DNA模板和激活剂;所述引物的加量为2.0~3.0μL,探针加量为0.6~1.0μL。
10.根据权利要求5所述的引物与探针组合用于ERA技术的对虾肝肠胞虫的快速检测方法,其特征在于,ERA扩增结果判定方法如下:
ERA荧光扩增曲线呈“S”型且CT值≤35,判断为对虾肝肠胞虫阳性结果;
ERA荧光扩增曲线不呈“S”型或CT值>35,判断为对虾肝肠胞虫阴性结果。
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