CN115385979B - 一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法 - Google Patents

一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法,包括:活化菌株,初级培养,次级培养,菌体研磨,乙酸乙酯萃取,浓缩得粗提物,将粗提物进行反相硅胶柱层析,以甲醇:水梯度洗脱,再通过多次200‑300目硅胶柱层析纯化,收集洗脱液浓缩,得到目标产物。经1H NMR、13C NMR、COSY、HMBC、HSQC谱图分析证明藿烷型三萜类化合物首次在该菌种代谢物中提取到。

Description

一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的 方法
技术领域
本发明涉及一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法。
背景技术
Raffaelea lauricola是食菌小蠹(Ambrosia beetle)所携带的高致病性伴生真菌,该病原真菌可致使树木枯萎,各国学者长期致力于其致病机理的研究,随着研究的不断深入,在该属其他物种中已分离获得一些抑制植物生长、抗菌等活性物质,这彰显出该菌在生物农药或医药上有极大应用前景。
A'-Neogammacerane-15α,22-diol是藿烷型三萜类物质,而藿烷型三萜类物质大多有抗肿瘤、抗炎和抗菌等活性。可借助修饰A'-Neogammacerane-15α,22-diol的结构进而获得多种新的活性物质。目前,尚未见在Raffaelea lauricola中分离出A'-Neogammacerane-15α,22-diol的报道。
发明内容
本发明的目的是公开一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法,以促进其进一步在医药领域的研究和开发,为人类造福。
本发明采取的技术方案如下:
一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法,包括以下步骤:
1)将Raffaelea lauricola活化后,取菌块接种到PDB 培养基中,在160~180r/min、20~28℃条件下连续培养5~10天,按15wt%~20wt%接种量转接到改良的大米培养基中,继续在20~28℃条件下静置培养28~40天,得到菌丝体;
2)将步骤1)得到的菌丝体在35~40℃下干燥后研磨成粉状,用1~2倍体积的乙酸乙酯浸泡12~24小时,超声40~60分钟,收集萃取液,残渣中再加入菌丝体1~2倍体积的乙酸乙酯,超声40~60分钟,收集萃取液,重复以上步骤,共得到三份萃取液合并浓缩得到粗提物浸膏;
3)将浸膏用氯仿或二氯甲烷溶解,然后用反相硅胶C18进行拌样,干法装柱,以甲醇:水自体积比1:9→9:1梯度洗脱,收集甲醇:水体积比为9:1部分洗脱液,旋蒸浓缩得组分A;
4)用1倍体积的氯仿溶解组分A,过200-300目硅胶柱,石油醚:乙酸乙酯体积比为30:1开始梯度洗脱,收集石油醚:乙酸乙酯体积比为10:1部分洗脱液,旋蒸浓缩得浸膏,再过200-300目硅胶柱,以石油醚:氯仿体积比为8:1开始梯度洗脱,收集石油醚:氯仿体积比为4:1部分洗脱液,再过200-300目硅胶柱层析,以石油醚:乙酸乙酯体积比为20:1开始梯度洗脱,收集石油醚:乙酸乙酯体积比为6:1部分洗脱液,旋蒸得到白色粉末状藿烷型三萜类化合物A'-Neogammacerane-15α,22-diol,结构如下所示:
进一步地,所述步骤1)中改良的大米培养基:大米100g,木屑10g,加入纯水120mL,121℃高压灭菌20min备用。
进一步地,所述步骤1)中接种菌块的大小为0.5×0.5cm,接种量为4 块。
进一步地,所述步骤2)中超声的功率为400 W,频率为35 KHz。
进一步地,所述步骤3)中使用的反相硅胶C18粒径40-60μm,孔径120Å。
进一步地,所述步骤3)中梯度洗脱比例为甲醇:水体积比1:9, 2:8,3:7, 4:6, 6:4, 7:3, 8:2,9:1。
进一步地,所述步骤4)中梯度洗脱比例为石油醚:乙酸乙酯体积比30:1,20:1,10:1,8:1,6:1,石油醚:氯仿体积比8:1,6:1,4:1。
本发明的显著优点:
(1)分离纯化简单,成本低;
(2)过程简便,易操作;
(3)制得的化合物纯度高,且重复性好。
附图说明
图1为A'-Neogammacerane-15α,22-diol化合物的1H NMR谱(CDCl3);
图2为A'-Neogammacerane-15α,22-diol化合物的13C NMR谱(CDCl3);
图3为A'-Neogammacerane-15α,22-diol化合物的DEPT135谱(CDCl3);
图4为A'-Neogammacerane-15α,22-diol化合物的COSY谱(CDCl3);
图5为A'-Neogammacerane-15α,22-diol化合物的HMBC谱(CDCl3);
图6为A'-Neogammacerane-15α,22-diol化合物的HSQC谱(CDCl3)。
具体实施方式
为让本发明的上述特征和优点能更明显易懂,下文特举实施例,作详细说明。本发明的方法如无特殊说明,均为本领域常规方法。
本发明所使用的Raffaelea lauricola菌株编号为Hulcr7161。
实施例1
1)取Raffaelea lauricola为材料,无菌条件下挑取大小为0.5×0.5cm的菌块4块接种到PDB培养基(马铃薯葡萄糖粉3.9g,纯水100 mL,装入250mL锥形瓶,在121℃高压下灭菌20min)中,在160r/min、25℃条件下连续培养7天即初级培养,按10wt%接种量转接到改良的大米培养基(大米100g,木屑10g,加入纯水120 mL,121℃高压灭菌20min)中,继续在25℃条件下静置培养35天即次级培养。
2)收集培养35天后得到的菌丝体在室温下干燥之后研磨粉碎,加1倍体积的乙酸乙酯浸泡12小时,超声40分钟,过滤得萃取液,残渣中再加入菌丝体1倍体积的乙酸乙酯,超声40分钟,收集萃取液,再次重复上述步骤,共得到三份萃取液合并浓缩得到粗提物浸膏。
3)将浸膏溶解于氯仿,使用40-60μm粒径反相C18硅胶拌样,干法装柱,以甲醇:水自1:9体积比开始梯度洗脱(甲醇:水体积比为1:9, 2:8,3:7, 4:6, 6:4, 7:3, 8:2,9:1),收集甲醇:水体积比为9:1部分旋蒸得粗品。
4)用1倍体积的氯仿溶解粗品,上200-300目硅胶柱,石油醚:乙酸乙酯体积比30:1开始梯度洗脱(梯度洗脱比例为30:1,20:1,10:1),收集石油醚:乙酸乙酯体积比10:1部分洗脱液,旋蒸浓缩得浸膏,再过200-300目硅胶柱,以石油醚:氯仿体积比为8:1开始梯度洗脱(梯度洗脱比例为8:1,6:1,4:1),收集石油醚:氯仿体积比4:1部分洗脱液,再过200-300目硅胶柱层析,以石油醚:乙酸乙酯体积比为20:1开始梯度洗脱(梯度洗脱比例为20:1,10:1,8:1,6:1),收集石油醚:乙酸乙酯体积比为6:1部分洗脱液,旋蒸得到白色粉末状藿烷型三萜类化合物。
经计算其提取率为1.320%(提取率%=重量/菌丝体浸膏总量×100%)。
本实施例中,步骤2)中超声的功率为400 W,频率为35 KHz。
实施例2
1)取Raffaelea lauricola(本实验室保存菌株)为材料,无菌条件下挑取大小为0.5×0.5cm的菌块4块接种到PDB培养基(马铃薯葡萄糖粉3.9g,纯水100 mL,装入250 mL锥形瓶,在121℃高压下灭菌20min)中,在140r/min、20℃条件下连续培养5天即初级培养,按20wt%接种量转接到改良的大米培养基(大米100g,木屑10g,加入纯水120 mL,121℃高压灭菌,20min)中,继续在20℃条件下静置培养25天即次级培养。
2) 收集培养25天菌丝体在室温下干燥之后研磨粉碎,加1倍体积的乙酸乙酯浸泡12小时,超声40分钟,过滤得萃取液,残渣中再加入菌丝体1倍体积的乙酸乙酯,超声40分钟,收集萃取液,再次重复上述步骤,共得到三份萃取液合并浓缩得到粗提物浸膏。
3) 将浸膏溶解于氯仿,使用40-60μm粒径反相C18硅胶拌样,干法装柱,以甲醇:水自1:9体积比开始梯度洗脱(甲醇:水比例为1:9, 2:8,3:7, 4:6, 6:4, 7:3, 8:2,9:1),收集甲醇:水体积比为9:1部分旋蒸得粗品。
4) 用1倍体积的氯仿溶解粗品,上200-300目硅胶柱,石油醚:乙酸乙酯体积比为30:1开始梯度洗脱(梯度洗脱比例为30:1,20:1,10:1),收集石油醚:乙酸乙酯体积比10:1部分洗脱液,旋蒸浓缩得浸膏,再过200-300目硅胶柱,以石油醚:氯仿体积比为8:1开始梯度洗脱(梯度洗脱比例为8:1,6:1,4:1),收集石油醚:氯仿体积比4:1部分洗脱液,再过200-300目硅胶柱层析,以石油醚:乙酸乙酯体积比为20:1开始梯度洗脱(梯度洗脱比例为20:1,10:1,8:1,6:1),收集石油醚:乙酸乙酯体积比为6:1部分洗脱液,旋蒸得到白色粉末状藿烷型三萜类化合物。
经计算其提取率为1.246%(提取率%=重量/菌丝体浸膏总量×100%)。
本实施例中,步骤2)中超声的功率为400 W,频率为35 KHz。
实施例3
1)取Raffaelea lauricola(本实验室保存菌株)为材料,无菌条件下挑取大小为0.5×0.5cm的菌块4块接种到PDB培养基(马铃薯葡萄糖粉3.9g,纯水100 mL,装入250 mL锥形瓶,在121℃高压下灭菌20min)中,在180r/min、28℃条件下连续培养10天即初级培养,按25wt%接种量转接到改良的大米培养基(大米100g,木屑10g,加入纯水120 mL,121℃高压灭菌,20min)中,继续在28℃条件下静置培养40天即次级培养。
2) 收集培养40天菌丝体在室温下干燥之后研磨粉碎,加1倍体积的乙酸乙酯浸泡12小时,超声90分钟,过滤得萃取液,残渣中再加入菌丝体1倍体积的乙酸乙酯,超声90分钟,收集萃取液,再次重复上述步骤,共得到三份萃取液合并浓缩得到粗提物浸膏。
3) 将浸膏溶解于氯仿,使用40-60μm粒径反相C18硅胶拌样,干法装柱,以甲醇:水自1:9体积比开始梯度洗脱(甲醇:水比例为1:9, 2:8,3:7, 4:6, 6:4, 7:3, 8:2,9:1),收集甲醇:水体积比为9:1部分旋蒸得粗品。
4) 用1倍体积的氯仿溶解粗品,上200-300目硅胶柱,石油醚:乙酸乙酯体积比为30:1开始梯度洗脱(梯度洗脱比例为30:1,20:1,10:1),收集石油醚:乙酸乙酯体积比10:1部分洗脱液,旋蒸浓缩得浸膏,再过200-300目硅胶柱,以石油醚:氯仿体积比为8:1开始梯度洗脱(梯度洗脱比例为8:1,6:1,4:1),收集石油醚:氯仿体积比4:1部分洗脱液,再过200-300目硅胶柱层析,以石油醚:乙酸乙酯体积比为20:1开始梯度洗脱(梯度洗脱比例为20:1,10:1,8:1,6:1),收集石油醚:乙酸乙酯体积比为6:1部分洗脱液,旋蒸得到白色粉末状藿烷型三萜类化合物。
经计算其提取率为1.298%(提取率%=重量/菌丝体浸膏总量×100%)。
本实施例中,步骤2)中超声的功率为400 W,频率为35 KHz。
以上所述仅为本发明的较佳实施例,凡依本发明申请专利范围所做的均等变化与修饰,皆应属本发明的涵盖范围。

Claims (6)

1.一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)将Raffaelea lauricola活化后,取菌块接种到PDB 培养基中,在160~180r/min、20~28℃条件下连续培养5~10天,按15wt%~20wt%接种量转接到改良的大米培养基中,继续在20~28℃条件下静置培养28~40天;
2)将步骤1)得到的菌丝体在35~40℃下干燥后研磨成粉状,用1~2倍体积的乙酸乙酯浸泡12~24小时,超声40~60分钟,收集萃取液,残渣中再加入菌丝体1~2倍体积的乙酸乙酯,超声40~60分钟,收集萃取液,重复以上步骤,共得到三份萃取液合并浓缩得到粗提物浸膏;
3)将浸膏用氯仿或二氯甲烷溶解,然后用反相硅胶C18进行拌样,干法装柱,以甲醇:水自体积比为1:9梯度洗脱,收集甲醇:水体积比为9:1部分洗脱液,旋蒸浓缩得组分A;
4)用1倍体积的氯仿溶解组分A,过200-300目硅胶柱,石油醚:乙酸乙酯体积比为30:1开始梯度洗脱,收集石油醚:乙酸乙酯体积比为10:1部分洗脱液,旋蒸浓缩得浸膏,再过200-300目硅胶柱,以石油醚:氯仿体积比为8:1开始梯度洗脱,收集石油醚:氯仿体积比为4:1部分洗脱液,再过200-300目硅胶柱层析,以石油醚:乙酸乙酯体积比为20:1开始梯度洗脱,收集石油醚:乙酸乙酯体积比为6:1部分洗脱液,旋蒸得到白色粉末状藿烷型三萜类化合物;
所述步骤1)中改良的大米培养基:大米100g,木屑10g,加入纯水120 mL,121℃高压灭菌,20min;
所述藿烷型三萜类化合物的结构式如下:
2.根据权利要求1所述的一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法,其特征在于:所述步骤1)中接种菌块的大小为0.5×0.5cm,接种量为4块。
3.根据权利要求1所述的一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法,其特征在于:所述步骤2)中超声的功率为400W,频率为35KHz。
4.根据权利要求1所述的一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法,其特征在于:所述步骤3)中使用的反相硅胶C18粒径40-60μm,孔径120Å。
5.根据权利要求1所述的一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法,其特征在于:所述步骤3)中梯度洗脱比例为甲醇:水体积比为1:9, 2:8,3:7, 4:6,6:4, 7:3, 8:2,9:1。
6.根据权利要求1所述的一种从Raffaelea lauricola中提取藿烷型三萜类化合物的方法,其特征在于:所述步骤4)中梯度洗脱比例为石油醚:乙酸乙酯体积比30:1,20:1,10:1,8:1,6:1,石油醚:氯仿体积比8:1,6:1,4:1。
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Inventor before: Ren Guanru

Inventor before: Liu Sen

Inventor before: Chen Yuxi