CN115140400A - 保持大黄鱼体色的周转箱及方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于水产品贮存技术领域，具体设计一种保持大黄鱼体色的周转箱及方法，周转箱包括箱体和抽屉组件，抽屉组件的底部设有通孔，箱体的底部设有出液口，在利用周转箱进行保色处理时，封闭出液口注入包括甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶保色液进行保色处理，能够有效减缓大黄鱼储存过程中色素变化，保证其体色的鲜艳。
Description
技术领域
本发明属于水产品贮存技术领域，具体设计一种保持大黄鱼体色的周转箱及方法。
背景技术
大黄鱼(Larimichthys crocea)，属石首鱼科，黄鱼属，也称黄鱼、黄花鱼，因肉质细嫩且富含营养而深受消费者喜爱。野生大黄鱼体呈黄褐色，腹面金黄，而人工养殖的大黄鱼，受高密度环境以及饵料的影响，体色远不如野生大黄鱼鲜艳，影响了养殖大黄鱼的商品价值。
体色是判断大黄鱼健康和新鲜程度的重要标准，消费者在选购大黄鱼时会更倾向于选择体色黄且鲜亮的个体。为了改善大黄鱼的体色，技术人员进行了大量的研究。如申请号201210178803.7的中国发明专利公开了一种大黄鱼体色增强剂，该增强剂包括有虾青素、叶黄素和角黄素，其作为饲料添加剂在大黄鱼人工配合饲料中使用8周左右就能显著改善人工养殖大黄鱼的体色。再如申请号为201910106216.9的中国发明专利，公开了一种养殖大黄鱼体色金黄、口唇桔红的保持方法，该方法在起捕前20±5天投喂的饲料中添加虾青素含量较高的小虾蟹饲料和胡萝卜素；同时严格配合控制起捕时间，并配合暂养和避光保存运输，在不额外使用添加剂、增色剂的情况下可使起捕的养殖大黄鱼保持体色金黄、口唇桔红。上述方法均适用于养殖过程中使用，但大黄鱼在贮存运输过程中，也会出现体色的变化。如何延缓大黄鱼在贮存运输过程中发生的体色变化，对于提高人工养殖大黄鱼的商品价值而言具有重要意义。
发明内容
为了克服上述现有技术的缺陷，本发明所要解决的技术问题是：提供一种能够保持大黄鱼体色的周转箱及方法。
为了解决上述技术问题，本发明采用的技术方案为：保持大黄鱼体色的周转箱，包括箱体和至少两个抽屉组件；所述抽屉组件沿箱体的高度方向依次设置，所述抽屉组件的底部设有通孔；所述箱体的底部设有出液口，所述抽屉组件可沿箱体的长度方向或宽度方向往复运动。
本发明采用的另一种技术方案为：保持大黄鱼体色的方法，包括以下步骤：
S1、将上述的周转箱的出液口封闭，在箱体的底部铺设碎冰，然后在抽屉组件的底部铺满碎冰后放置大黄鱼；
S2、向箱体内注入保色液并浸泡5～40min；所述保色液包括甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶；
S3、打开出液口排出保色液后封闭出液口，补入碎冰后封闭箱体。
本发明的有益效果在于：本发明提供的周转箱便于盛装保色液，对周转箱内的大黄鱼一同进行护色处理，减少了保鲜护色处理的时间，避免了因处理时间拉长造成的大黄鱼体色变化品质降低的问题；保色液中的溶菌酶能够有效起到抑菌的作用，香菇多糖和竹醋粉共用能够显著减缓大黄鱼储存过程中色素变化，且甘油的存在能够于鱼体表面形成保护膜，一方面避免储存和冷冻过程中水分流失，另一方面避免保色液流失造成无法持续起效的问题。
附图说明
图1所示为本发明的保持大黄鱼体色的周转箱的结构示意图；
图2所示为本发明的保持大黄鱼体色的周转箱的结构示意图；
图3所示为本发明大黄鱼品质检测时的取样点示意图；
图4所示为大黄鱼品质检测时各组总类胡萝卜素含量柱形图；
标号说明：1、箱体；2、盖体；3、抽屉组件；31、栅板；32、挡板；33、支撑板；4、支脚。
具体实施方式
为详细说明本发明的技术内容、所实现目的及效果，以下结合实施方式并配合附图予以说明。
本发明最关键的构思在于：通过周转箱和保色液的结合，减缓大黄鱼储存过程中的体色变化。
请参照图1至图2所示，本发明的一种保持大黄鱼体色的周转箱，包括箱体1和至少两个抽屉组件3；所述抽屉组件3沿箱体1的高度方向依次设置，所述抽屉组件3的底部设有通孔；所述箱体1的底部设有出液口，所述抽屉组件3可沿箱体1的长度方向或宽度方向往复运动。
从上述描述可知，本发明的有益效果在于：本发明提供的周转箱提供可将大黄鱼分层放置的抽屉组件，避免位于下层的大黄鱼受压力较大而影响其品质，同时抽屉组件的底部设有通孔使得抽屉组件之间相互独立但又可连通，方便装箱后通入保色液对周转箱内的大黄鱼一同进行护色处理，且护色处理后能够快速补加碎冰密封对大黄鱼进行运输。减少了保鲜护色处理的时间，避免了因处理时间拉长造成的大黄鱼体色变化品质降低的问题。
进一步地，所述箱体1为长方体状，且顶部开口；所述箱体1的侧面沿箱体1的高度方向设有多个条形通孔；
所述抽屉组件3包括栅板31和挡板32，所述栅板31的一侧与挡板32连接，所述栅板31和挡板32的连接处设有用于密封条形通孔的密封件；所述栅板31的高度小于条形通孔的高度。优选地，为了便于抽拉抽屉组件3，挡板32上设有把手。
从上述描述可知，将抽屉组件的栅板从条形通孔插入箱体中，实现抽屉组件的移动。
进一步地，所述抽屉组件3还包括设置于箱体1的内侧壁上设有两个支撑板33，两个所述支撑板33相对设置且相互平行。
从上述描述可知，支撑板33用于支撑栅板31，使其在箱体1中以及在抽拉过程中处于水平状态。
进一步地，上述的周转箱还包括设置于箱体1顶部的盖体2。
从上述描述可知，盖体2的设置能够避免运输过程中鱼体散落同时起到良好的保冷效果。
进一步地，栅板31的网格为平行四边形，网格的宽度小于或等于3cm，长度小于或等于5cm。网格的尺寸可以为3cm*3cm、3cm*3.5cm、3cm*5cm、3cm*4cm、2cm*3cm、2cm*2cm、2cm*4cm或2cm*5cm。
从上述描述可知，上述尺寸的栅板能够适应大部分市售大黄鱼的尺寸保证其在运输过程中不会卡在网格中，且该尺寸的网格形成的间隙能够允许液体快速通过并允许部分碎冰通过。
进一步地，所述箱体1的底部设有支脚4。优选地，支脚4设置于箱体1底部的四个拐角处。
从上述描述可知，支脚4的设置可以使得箱体1与地面之间形成空隙，便于箱体1内的液体从出液口流出，同时提供空间便于使用叉车进行周转箱的装卸。
本发明提供一种保持大黄鱼体色的方法，包括以下步骤：
S1、将上述的周转箱的出液口封闭，在箱体1的底部(箱体1的下底面和位于最下方的抽屉组件3之间的空间)铺设碎冰，放入抽屉组件，然后在抽屉组件3的底部铺满碎冰后放置大黄鱼，从下至上依次铺设；
S2、向箱体1内注入保色液并浸泡5～40min；所述保色液包括甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶；
其中，浸泡时间优选地10～20min，如15min，18min，也可以是25min，30min；
S3、打开出液口排出保色液后封闭出液口，补入碎冰后封闭箱体1。
从上述描述可知，本发明的有益效果在于：通过使用包括甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶的保色液对大黄鱼进行处理，所用成分均为可食用组分，即使残留也不会造成食品安全问题。保色液中的溶菌酶与香菇多糖和竹醋粉能够有效起到对大黄鱼腐败菌群的杀灭和抑制作用，同时可降低内源性酶活性，减缓色素变化和流失，相较于单一使用，香菇多糖和竹醋粉二者含有的丰富的氨基酸、黄酮和多酚类物质，共同作用能够显著减缓大黄鱼储存过程中色素变化，且甘油的存在能够在鱼体表面形成保护膜，一方面避免储存和冷冻过程中水分流失，另一方面避免保色液流失造成无法持续起效的问题。
进一步地，S1中的大黄鱼为剖肚并去除内脏的大黄鱼。相较于捕捞后直接进行保鲜处理，剖杀后保险处理对于维持大黄鱼的体色更有利，且剖出内脏的腹腔也能与保色液接触，能有效避免鱼肠道中微生物作用，而对体色产生影响。
进一步地，S1中铺设碎冰的总质量和S2中注入保色液的总质量之比为2～3：1。铺冰量过大在浸泡过程中会稀释保色液，降低浸泡保险的效果。铺冰量多少则无法起到保证低温的效果，容易引起质量变化，导致保鲜保色效果变差。
进一步地，所述甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶的质量比为1：0.05～0.1：0.01～0.05：0.01～0.03。竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶的添加量并不是越多越好，由于仅是短时浸泡处理，添加量不足时无法起到良好的保色效果；过高的添加量不仅不会进一步提升保色效果，还会增加成本，影响处理后大黄鱼的外观甚至风味；基于成本和保色效果的考量，竹醋粉的添加量需要多于香菇多糖和溶菌酶，能够维持适宜的pH使各个组分充分发挥其作用。
进一步地，所述保色液的制备方法为：水中加入溶菌酶和香菇多糖，于30～40℃下搅拌，冷却至室温后加入竹醋粉混合均匀后加入甘油，水和甘油的质量比为8～10：1。先将溶菌酶和香菇多糖在一定温度下与溶剂混合，起到活化溶菌酶的效果，冷却后再加入竹醋粉和甘油混合制成保色液，所得保色液混合均匀。
进一步地，所述S3为：打开出液口排出保色液后封闭出液口，补入碎冰和臭氧水后封闭箱体1。少量的补充臭氧水能够进一步提升杀菌效果。也可直接采用臭氧水制成的碎冰代替碎冰，或者代替碎冰和臭氧水。
水、甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶的质量比为8～10：1：0.05～0.1：0.01～0.05：0.01～0.03；可以为9：1：0.06：0.05：0.02、10：1：0.07：0.03：0.01、8：1：0.07：0.04：0.01或者10：1：0.08：0.03：0.03。
进一步地，所述保色液和臭氧水的温度小于10℃。为了避免大量碎冰融化，保色液和臭氧水优选温度低于10℃的。
进一步地，还包括S4、将大黄鱼分级，速冻至中心温度低于-18℃后包装。
实施例1：
保持大黄鱼体色的方法，包括以下步骤：
S0、在夜间捕捞人工养殖的大黄鱼；
S1、将周转箱的出液口封闭，在箱体的底部铺设碎冰，放入最下层的抽屉组件，手持挡板，将栅板插入条形通孔，栅板放置在支撑板上，然后在抽屉组件的栅板上铺满碎冰然后放置大黄鱼，再放入上一层的抽屉组件，并在栅板上铺满碎冰然后放置大黄鱼，以此类推在周转箱所有抽屉组件上放置大黄鱼；
S2、向箱体内注入保色液并浸泡10min；
所述保色液的制备方法为：水中加入溶菌酶和香菇多糖，于40℃下搅拌，冷却至室温后加入竹醋粉混合均匀后加入甘油；水、甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶的质量比为10：1：0.1：0.02：0.02；
S3、打开出液口排出保色液后封闭出液口，补入碎冰后用盖体封闭箱体，进行运输；
S4、运输至加工场地后，将大黄鱼分级，速冻至中心温度低于-18℃后包装；
所用周转箱由箱体、盖体和三个抽屉组件组成；
箱体为长方体状，长*宽*高为135cm*85cm*90cm，顶箱体部开口；箱体的侧面沿箱体的高度方向设有3个条形通孔；箱体1的底部设有出液口；箱体的底部设有4个支脚，支脚设置于箱体底部的四个拐角处；
抽屉组件沿箱体的高度方向依次设置；抽屉组件包括栅板和挡板，以及设置于箱体的内侧壁上的两个支撑板，两个支撑板相对设置且相互平行；栅板的一侧与挡板连接，栅板和挡板的连接处设有用于密封条形通孔的密封圈；栅板的高度小于条形通孔的高度；挡板上设有把手；
抽屉组件可沿箱体的宽度方向往复运动，栅板的网格为2.5cm*4cm的长方形。
实施例2：
S0、在夜间捕捞人工养殖的大黄鱼；大黄鱼放血、剖肚并去除内脏后海水清洗；
S1～S4以及使用的周转箱均与实施例1相同。
实施例3：
S0、在夜间捕捞人工养殖的大黄鱼；
S1、将周转箱的出液口封闭，在箱体的底部铺设碎冰，放入最下层的抽屉组件，然后在抽屉组件的栅板上铺满碎冰然后放置大黄鱼，再放入上一层的抽屉组件，并在栅板上铺满碎冰然后放置大黄鱼，以此类推在周转箱所有抽屉组件上放置大黄鱼；
S2、向箱体内注入保色液并浸泡20min；
所述保色液的制备方法为：水中加入溶菌酶和香菇多糖，于30℃下搅拌，冷却至室温后加入竹醋粉混合均匀后加入甘油；水、甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶的质量比为9：1：0.08：0.05：0.01；
S3、打开出液口排出保色液后封闭出液口，补入碎冰后用盖体封闭箱体，进行运输；
S4、运输至加工场地后，将大黄鱼分级，速冻至中心温度低于-18℃后包装。
实施例4：
S0、在夜间捕捞人工养殖的大黄鱼；
S1、将周转箱的出液口封闭，在箱体的底部铺设碎冰，放入最下层的抽屉组件，然后在抽屉组件的栅板上铺满碎冰然后放置大黄鱼，再放入上一层的抽屉组件，并在栅板上铺满碎冰然后放置大黄鱼，以此类推在周转箱所有抽屉组件上放置大黄鱼；
S2、向箱体内注入保色液并浸泡40min；
所述保色液的制备方法为：水中加入溶菌酶和香菇多糖，于35℃下搅拌，冷却至室温后加入竹醋粉混合均匀后加入甘油；水、甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶的质量比为10：1：0.05：0.01：0.01；
S3、打开出液口排出保色液后封闭出液口，补入碎冰和臭氧水后用盖体封闭箱体，进行运输；
S4、运输至加工场地后，将大黄鱼分级，速冻至中心温度低于-18℃后包装。
实施例5：
S0、在夜间捕捞人工养殖的大黄鱼；
S1、将周转箱的出液口封闭，在箱体的底部铺设碎冰，放入最下层的抽屉组件，然后在抽屉组件的栅板上铺满碎冰然后放置大黄鱼，再放入上一层的抽屉组件，并在栅板上铺满碎冰然后放置大黄鱼，以此类推在周转箱所有抽屉组件上放置大黄鱼；
S2、向箱体内注入保色液并浸泡5min；
所述保色液的制备方法为：水中加入溶菌酶和香菇多糖，于38℃下搅拌，冷却至室温后加入竹醋粉混合均匀后加入甘油；水、甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶的质量比为8：1：0.1：0.05：0.03；
S3、打开出液口排出保色液后封闭出液口，补入臭氧水制成的碎冰后用盖体封闭箱体，进行运输；
S4、运输至加工场地后，将大黄鱼分级，速冻至中心温度低于-18℃后包装。
实施例6：
实施例6与实施例1的区别在于使用等量的竹醋粉代替香菇多糖。
实施例7：
实施例7与实施例1的区别在于使用等量的香菇多糖代替竹醋粉。
实施例8：
实施例8与实施例1的区别在于使用等量的水代替甘油。
所有实施例中大黄鱼均来自同一产地，且养殖过程中使用饲料相同，所有实施例中竹醋粉、溶菌酶(CAS#:12650-88-3)、甘油和香菇多糖均为食品级。竹醋粉采购自江阴中炬生物，香菇多糖采购自湖北鑫鸣泰化学。
实施例1～2和实施例6～8经S3处理后运至同一冷冻厂进行冷冻处理，同时运输的还有同产地的新鲜大黄鱼(活鱼)，取其中50尾新鲜大黄鱼直接进行S4处理作为对照组，剩余新鲜大黄鱼于暂养池暂养作为空白组，暂养期间投喂饲料与养殖过程中相同，且暂养过程中使用遮阴棚遮盖避免强光照射。S4处理后冷冻保存7天，5个实施例组，空白组和对照组，各取15尾于4℃环境中解冻，然后进行品质检测，测试过程中针对同一指标所有鱼体取样位置相同。
(1)对大黄鱼背部(图3圆圈位置)、腹部(图3方块位置)的皮肤的总类胡萝卜素含量进行测定，测试方法参照李欢(李欢.大黄鱼皮肤主成色素分析及光对其体色影响的初步研究[D].宁波大学,2014.)，取平均值，结果见表1和图4所示。可以看出，腹部色素较为集中，但是在冻藏过程中显著下降，背部相较于腹部变化较小，且经保色液处理后色素含量下降明显减缓。
(2)对各组大黄鱼的TVB-N值进行测试，参照GB 5009.228—2016，结果见表2所示。
(3)对各组大黄鱼的TBA值进行测试，测试方法参照蓝蔚青(蓝蔚青,刘嘉莉,许巧玲,等.植酸与竹醋液对冰藏大黄鱼品质,微生物与水分迁移的影响[J].食品与发酵工业,2020,46(7):7)，结果见2所示。
(4)对各组大黄鱼肌肉的保水率进行检测，取位于腹部和背部之间5g肌肉作为样品，记录其初始质量为m0，置于吸水滤纸中包裹，8000r/min离心10min，表面水分沥干后质量为m1。持水力计算按公式(1)所示，结果见表2所示。
表1
表2
| 组别 | TVB-N值(mg/100g) | TBA值(mgMDA/100g) | 保水率(％) |
| 空白组 | 2.88±0.32 | 0.25±0.07 | 89.2±1.3 |
| 对照组 | 9.94±1.01 | 0.71±0.11 | 58.7±2.9 |
| 实施例1 | 5.71±0.71 | 0.48±0.08 | 76.5±2.4 |
| 实施例2 | 5.37±0.82 | 0.47±0.10 | 76.3±2.1 |
| 实施例6 | 7.78±0.68 | 0.57±0.09 | 71.8±2.3 |
| 实施例7 | 7.56±0.90 | 0.55±0.09 | 75.5±2.6 |
| 实施例8 | 8.12±1.10 | 0.62±0.10 | 60.1±3.2 |
综上所述，本发明提供的保持大黄鱼体色的方法，利用周转箱与保色液配合，能够快速完成大黄鱼的保色处理，保色效果佳且处理时间短，保色的同时保证了大黄鱼的品质，该方法的使用有助于提高人工养殖大黄鱼的商品价值。
以上所述仅为本发明的实施例，并非因此限制本发明的专利范围，凡是利用本发明说明书及附图内容所作的等同变换，或直接或间接运用在相关的技术领域，均同理包括在本发明的专利保护范围内。
Claims (10)
1.保持大黄鱼体色的周转箱，其特征在于，包括箱体和至少两个抽屉组件；所述抽屉组件沿箱体的高度方向依次设置，所述抽屉组件的底部设有通孔；所述箱体的底部设有出液口，所述抽屉组件可沿箱体的长度方向或宽度方向往复运动。
2.根据权利要求1所述的保持大黄鱼体色的周转箱，其特征在于，所述箱体的侧面沿箱体的高度方向设有多个条形通孔；
所述抽屉组件包括栅板和挡板，所述栅板的一侧与挡板连接，所述栅板和挡板的连接处设有用于密封条形通孔的密封件；所述栅板的高度小于条形通孔的高度。
3.根据权利要求1所述的保持大黄鱼体色的周转箱，其特征在于，所述抽屉组件还包括设置于箱体1的内侧壁上设有两个支撑板，两个所述支撑板相对设置且相互平行。
4.保持大黄鱼体色的方法，其特征在于，包括以下步骤：
S1、将权利要求1～3任一项所述的周转箱的出液口封闭，在箱体的底部铺设碎冰，然后在抽屉组件的底部铺满碎冰后放置大黄鱼；
S2、向箱体内注入保色液并浸泡5～40min；所述保色液包括甘油、竹醋粉、香菇多糖和溶菌酶；
S3、打开出液口排出保色液后封闭出液口，补入碎冰后封闭箱体。
5.根据权利要求4所述的保持大黄鱼体色的方法，其特征在于，S1中的大黄鱼为剖肚并去除内脏的大黄鱼。
6.根据权利要求4所述的保持大黄鱼体色的方法，其特征在于，S1中铺设碎冰的总质量和S2中注入保色液的总质量之比为2～3：1。
7.根据权利要求4所述的保持大黄鱼体色的方法，其特征在于，所述保色液的制备方法为：水中加入溶菌酶和香菇多糖，于30～40℃下搅拌，冷却至室温后加入竹醋粉混合均匀后加入甘油，水和甘油的质量比为8～10：1。
8.根据权利要求4所述的保持大黄鱼体色的方法，其特征在于，所述S3为：打开出液口排出保色液后封闭出液口，补入碎冰和臭氧水后封闭箱体。
9.根据权利要求8所述的保持大黄鱼体色的方法，其特征在于，所述保色液和臭氧水的温度小于10℃。
10.根据权利要求4所述的保持大黄鱼体色的方法，其特征在于，还包括S4、将大黄鱼分级，速冻至中心温度低于-18℃后包装。
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