CN114807360A - 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒 - Google Patents

检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒 Download PDF

Info

Publication number
CN114807360A
CN114807360A CN202210732815.3A CN202210732815A CN114807360A CN 114807360 A CN114807360 A CN 114807360A CN 202210732815 A CN202210732815 A CN 202210732815A CN 114807360 A CN114807360 A CN 114807360A
Authority
CN
China
Prior art keywords
dna
fmr1
artificial sequence
mutations
pcr amplification
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN202210732815.3A
Other languages
English (en)
Other versions
CN114807360B (zh
Inventor
孟万利
詹嘉晗
毛爱平
李佳琪
卢玉林
张丽
任志林
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Berry Genomics Co Ltd
Original Assignee
Berry Genomics Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Berry Genomics Co Ltd filed Critical Berry Genomics Co Ltd
Priority to CN202210732815.3A priority Critical patent/CN114807360B/zh
Publication of CN114807360A publication Critical patent/CN114807360A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN114807360B publication Critical patent/CN114807360B/zh
Priority to PCT/CN2023/087226 priority patent/WO2024001404A1/zh
Priority to TW112123635A priority patent/TW202400807A/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6883Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/686Polymerase chain reaction [PCR]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6869Methods for sequencing
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/156Polymorphic or mutational markers

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明涉及一种检测脆性X综合征突变的方法和试剂盒。其中所述试剂盒包括以下试剂:(1)用于长片段PCR扩增的试剂;(2)用于高GC区域PCR扩增的试剂;和(3)用于构建三代测序文库的试剂。其中所述方法包括以下步骤:(1)获取受试者样本;(2)对所述样本进行长片段PCR扩增和高GC PCR扩增;(3)构建三代测序文库;(4)测序并分析FMR1基因突变类型。

Description

检测脆性X综合征突变的方法和试剂盒
技术领域
本发明涉及一种利用三代长读长测序平台检测FXS多种突变的引物和方法,以及适用于此方法的试剂盒。
背景技术
脆性X综合征(Fragile X syndrome, FXS)是一种X连锁不完全外显性遗传病,也是常见的染色体病之一,因细胞中X染色体末端在特殊培养基中经诱变剂作用后可显示如同断裂的脆性部位而得名。
FXS是最常见的遗传性智力缺陷的原因,男性的发病率为1/4000,而女性的携带率为1/8000-1/4000。在大多数情况下,FXS是由X染色体上FMR1基因5’-UTR区域三核苷酸(CGG)重复扩张引起的(Crawford D C等,Genetics In Medicine, 2001, 3(5): 359-371)。三核苷酸(CGG)根据重复数可分为前突变(55-200)和完全突变(>200);前突变是非甲基化的,可以产生表达量略低于正常值的FMR1蛋白,完全突变的患者中高CGG重复将伴随着高甲基化,这通常会造成FMR1基因转录沉默和FMR1蛋白的缺失(Kenneson A等,Hum MolGenet, 2001; 10:1449–1454;Pieretti M等,Cell, 1991, 66(4): 817-822)。除此之外,也有报道其他影响FMR1基因表达的突变:如FMR1基因点突变和大片段的FMR1基因缺失也将造成FXS的症状(Gedeon A K等,Nature Genetics, 1992, 1(5): 341-344;Handt M等,MCB, 2014, 28(5-6): 279-283;Collins S C等,AM J MED GENET A, 2010, 152(10):2512-2520)。FXS临床表型广泛:包括智力发育迟缓,发育和语言迟缓,身体异常;FXS的行为表型还以大约25%至33%的自闭症症状为特征,包括社交和沟通障碍,对感官刺激的异常反应等(Hagerman RJ等,Baltimore: Johns Hopkins University Press; 2002. p3–109)。
完全突变的传播只发生在携带完全突变或者前突变的母亲身上,并且母亲携带前突变CGG重复数越高,遗传给后代完全突变的几率越大(Fernandez-Carvajal I等,JMD,2009, 11(4): 306-310)。大多数携带前突变的人智力正常,但男性容易出现注意力问题、执行功能障碍、社交缺陷和强迫症行为;完全突变的成年男性平均智商(IQ)约为40,因为FXS为X连锁疾病,因此女性通常比男性收到更轻微的影响,完全突变的女性通常智商正常或接近正常,大多数人会有相关的学习障碍和情绪问题(Merenstein S A等,AM J MEDGENET, 1996, 64(2): 388-394;Freund L S等,Pediatrics, 1993, 91(2): 321-329;Garber K B等,EJHG, 2008, 16(6): 666-672)。
目前分子检测FXS的CGG重复扩张最常见的方法是通过毛细管电泳法(CE)的聚合酶链式反应(PCR)来检测是否含有大于200的CGG重复扩张,该方法还可以判断小于200的CGG重复数(Filipovic-Sadic S等,Clinical Chemistry, 2010, 56(3): 399-408)。可是该方法受检测长度的影响无法确认更高的CGG重复数;由于CE只能从PCR产物的长度去推断CGG重复数,因此该方法的准确性主要取决于标准品选取的准确性,同时检测信号中的噪音也会对结果判断造成不利的影响(Grasso M等,JMD, 2014, 16(1): 23-31)。除此之外,FMR1的DNA印迹杂交法(Southern blot)即用于检测CGG重复性太大而无法通过PCR的样品,也用于确定FMR1基因的甲基化状态,可是该方法工作流程复杂,成本高,需要更多的时间和精力,并且需要更多的样品DNA量,因此无法适应于大批量样品的检测(Hagerman RJ等,Baltimore: Johns Hopkins University Press; 2002. p3–109)。
一代测序(Sanger)和二代测序(Next-generation sequencing, NGS)无法检测FXS中CGG的重复扩张,但是可以检测FMR1基因的点突变(Collins S C等,AM J MED GENETA, 2010, 152(10): 2512-2520);Sanger测序检测FMR1点突变通量低,且无法检测未知的突变;而NGS需要对FMR1基因构建NGS测序文库才能检测FMR1基因的点突变,不能与其他基因检测兼容,且流程比较繁琐。多重连接探针扩增技术(multiplex ligation-dependentprobe amplification, MLPA)可以检测FMR1基因的大片段缺失,可是该方法需要同时检测FMR1基因上下游不同的位点,操作繁琐且无法检测大批量样本(Hayward B E等,HumanGenetics, 2017, 136(10): 1313-1327)。
目前基于CE、Southern blot、Sanger测序或二代测序以及MLPA的方法,可以实现FXS的部分CGG重复扩张检测以及FMR1基因点突变和大片段缺失检测,但检测存在有以下几方面局限性:
1、无法实现在同一体系内同时检测所有的突变类型;
2、由于FXS的CGG重复扩张可能存在一定比例的嵌合体,因此CE和Southern blot可能会漏掉一些低比例的嵌合;
3、CE和Southern blot只能检测大于200的CGG重复数,无法确定更高的CGG重复数数目;
4、CE对于小于200的CGG重复数目的判断依赖于已知结果的标准品,无法直接准确判断CGG重复数;
5、无法准确判断CGG重复中的AGG插入类型;
6、MLPA无法判断大片段缺失的准确位点;
7、目前的方法无法直接检测未知的CGG重复区域附近的微缺失。
发明内容
鉴于此,本发明提供了一种基于长片段PCR和高GC PCR扩增和三代测序的方法来检测FXS相关的多种突变。长片段PCR扩增和高GC PCR扩增被分在一个或者两个反应管中实现;其中长片段PCR扩增用于检测FMR1基因的点突变和大片段缺失;高GC PCR扩增FMR1基因5’-UTR的CGG重复区域用于检测由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入以及5’-UTR区域发生的微小缺失。结合读长测长的三代测序平台读长测长等特点,可以实现准确、快速并高通量地检测FXS相关基因突变。本发明涉及的方法操作简便,长片段PCR以及高GC PCR和三代文库质量可靠且重复性强,有利于三代测序技术在临床检测上的应用。
本发明的目的在于解决现阶段FXS致病基因检测覆盖不全、CGG重复扩张和CGG重复中的AGG插入无法准确判断、无法确定低比例的嵌合突变会导致临床上存在漏检和误检的问题。通过长片段PCR和高GC PCR相结合同时扩增FXS相关的致病基因FMR1以及FXS中易发生CGG重复扩张和缺失的FMR1的5’-UTR区域及制备三代测序文库,实现全面、精确和快速检测多个样品FXS多种突变的目标。
本发明的第一方面,本发明涉及一种用于FXS多种突变的引物组,包括选自以下的一对或多对引物:
(1)FMR1-E1-F与FMR1-E1-R,其中所述FMR1-E1-F选自SEQ ID NO:1-4,FMR1-E1-R选自SEQ ID NO:5-8;
(2)FMR1-E2-F与FMR1-E9-R,其中所述FMR1-E2-F选自SEQ ID NO:9-11,FMR1-E9-R选自SEQ ID NO:12-14;
(3)FMR1-E10-F与FMR1-E17-R,其中所述FMR1-E10-F选自SEQ ID NO:15-17,FMR1-E17-R选自SEQ ID NO:18-20;
(4)FMR1-Gap-Mix,其中所述FMR1-Gap-Mix选自SEQ ID NO:21-220;
其中,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、大片段缺失、点突变和微缺失。
其中,所述引物位置如图1 A至图1B所示。所述引物可以扩增基因组上引物范围内的完整全部序列,包括引物范围内任何类型的突变序列。优选地,每个引物的扩增产物约为2.7kb(FMR1-E1)、11.6kb(FMR1-E2-9)和15.2kb(FMR1-E10-17)。优选地,如果引物位置有SNP,则使用简并碱基引物。
根据一个优选的实施方案,所述引物组包括以下多对引物:
(1)FMR1-E1-F与FMR1-E1-R,其中所述FMR1-E1-F选自SEQ ID NO:1-4,FMR1-E1-R选自SEQ ID NO:5-8;
(2)FMR1-E2-F与FMR1-E9-R,其中所述FMR1-E2-F选自SEQ ID NO:9-11,FMR1-E9-R选自SEQ ID NO:12-14;
(3)FMR1-E10-F与FMR1-E17-R,其中所述FMR1-E10-F选自SEQ ID NO:15-17,FMR1-E17-R选自SEQ ID NO:18-20;和
(4)FMR1-Gap-Mix,其中所述FMR1-Gap-Mix选自SEQ ID NO:21-220。
根据一个优选的实施方案,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的5’-UTR区域内由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入和微缺失;FMR1的FMR1-Gap-Mix引物范围内的大片段缺失和所有点突变。
根据一个优选的实施方案,本发明的引物组可以同时检测FXS的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、确定5’-UTR区域的微小缺失的准确位点;检测FMR1的全部SNV和FMR1-Gap-Mix引物范围内的大片段缺失。
在一个实施方案中,可以在所述引物的5’端加上5-50nt不同序列的DNA,即DNA条形码(Barcode),用于区分不同的样本;优选地,F和R引物的5’端的Barcode可以相同或者不同,本领域技术人员可以根据需要选择。
根据一个优选的实施方案,其中所述引物组可以用于1个或2个体系的PCR扩增包括FMR1基因和FMR1基因5’-UTR区域的所有范围内突变类型的FXS相关致病基因片段。再结合后续的PacBio或Nanopore测序平台,可以检测FMR1基因和FMR1基因5’-UTR区域内所有基因片段的突变类型。
本发明第二方面提供了本发明第一方面的引物组在制备用于检测FXS多种突变的试剂盒中的用途,其中所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、大片段缺失、点突变和微缺失。
本发明第三方面提供了一种用于检测FXS多种突变的试剂盒,包括以下试剂:
(1)用于长片段PCR扩增的试剂;
(2)用于高GC PCR扩增的试剂;
(3)用于构建三代测序文库的试剂。
在一个实施方案中,其中所述用于长片段PCR扩增和高GC PCR扩增的试剂包括DNA聚合酶、反应缓冲液和引物组。
根据一个优选的实施方案,所述试剂盒中的引物组选自以下的一对或多对引物:
(1)FMR1-E1-F与FMR1-E1-R,其中所述FMR1-E1-F选自SEQ ID NO:1-4,FMR1-E1-R选自SEQ ID NO:5-8;
(2)FMR1-E2-F与FMR1-E9-R,其中所述FMR1-E2-F选自SEQ ID NO:9-11,FMR1-E9-R选自SEQ ID NO:12-14;
(3)FMR1-E10-F与FMR1-E17-R,其中所述FMR1-E10-F选自SEQ ID NO:15-17,FMR1-E17-R选自SEQ ID NO:18-20;
(4)FMR1-Gap-Mix,其中所述FMR1-Gap-Mix选自SEQ ID NO:21-220;
其中,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、大片段缺失、点突变和微缺失。
其中,所述引物位置如图1 A至图1B所示。所述引物可以扩增基因组上引物范围内的完整全部序列,包括引物范围内任何类型的突变序列。优选地,每个引物的扩增产物约为2.7kb(FMR1-E1)、11.6kb(FMR1-E2-9)和15.2kb(FMR1-E10-17)。优选地,如果引物位置有SNP,则使用简并碱基引物。
根据一个优选的实施方案,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的5’-UTR区域内由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入和微缺失;FMR1的FMR1-Gap-Mix引物范围内的大片段缺失和所有点突变。
根据一个优选的实施方案,本发明的引物组可以同时检测FXS的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、确定5’-UTR区域的微小缺失的准确位点、检测FMR1的全部SNV和FMR1-Gap-Mix引物范围内的大片段缺失。
在一个实施方案中,可以在所述试剂盒中的引物的5’端加入5-50nt不同序列的DNA(Barcode),用于区分不同的样本;优选地,F和R引物的5’端Barcode可以一样或者不一样,本领域技术人员可以根据需要选择。
在一个实施方案中,对于所述试剂盒, PCR扩增产物在进行下一步反应前,可以纯化或者不纯化,本领域技术人员可以根据需要选择。
在一个实施方案中,其中所述试剂盒中,用于构建三代测序文库的试剂包括末端修复酶、接头、连接酶、DNA纯化磁珠、反应缓冲液和外切酶。
在一个实施方案中,其中对于所述试剂盒,长片段PCR扩增和高GC PCR扩增在一个或两个反应管中完成。
在一个实施方案中,三代测序选自Pacific Biosciences公司的PacBio测序或ONT公司的Nanopore测序。
根据一个优选的实验方案,其中所述用于构建三代PacBio测序文库的试剂包括末端修复酶、接头、连接酶、DNA纯化磁珠、80%乙醇、反应缓冲液和外切酶。
根据一个优选的实施方案,PacBio文库接头连接可以使用平末端连接或TA连接的方式。
根据一个优选的实施方案,PacBio通用平末端接头序列为5’-pATCTCTCTCTTTTCCTCCTCCTCCGTTGTTGTTGTTGAGAGAGAT-3’(SEQ ID NO: 221),通过退火形成平末端茎环状结构接头适配子。可以在茎部加上5-50nt不同序列的DNA(Barcode)形成不同带Barcode的接头适配子。带有不同Barcode的PacBio文库可以混合在一起测序。
根据一个优选的实施方案,PacBio通用TA接头序列为5’-pATCTCTCTCTTTTCCTCCTCCTCCGTTGTTGTTGTTGAGAGAGATT-3’(SEQ ID NO: 222),通过退火形成平末端茎环状结构接头适配子。可以在茎部加上5-50nt不同序列的DNA(Barcode)形成不同带Barcode的接头适配子。带有不同Barcode的PacBio文库可以混合在一起测序。
根据一个优选的实施方案,PacBio接头可以带或者不带Barcode。优选地,PacBio接头带PacBio公司设计的Barcode或者自行设计的Barcode,本领域技术人员可以根据需要选择。
根据一个优选的实施方案,所述PacBio文库与Pacific Biosciences公司测序平台匹配。
根据一个优选的实施方案,其中所述用于构建三代Nanopore文库的试剂包括末端修复酶、接头、连接酶、DNA纯化磁珠、80%乙醇和反应缓冲液。
根据一个优选的实施方案,Nanopore文库接头连接可以使用平末端连接或TA连接的方式。
根据一个优选的实施方案,Nanopore接头可以带或者不带Barcode。优选地,Nanopore接头带ONT公司设计的Barcode或者自行设计的Barcode,本领域技术人员可以根据需要选择。
根据一个优选的实施方案,所述Nanopore文库与ONT公司测序平台匹配。
本发明第四方面提供了一种用于检测FXS多种突变的系统,包括以下模块:
(1)采集模块:获取受试者样本;
(2)扩增模块:对所述样本进行长片段PCR扩增和高GC PCR扩增;
(3)文库构建模块:构建三代测序文库;
(4)测序模块:测序并分析FMR1基因突变类型。
其中,所述步骤(2)中的PCR扩增采用本发明第一方面所述的引物组进行;
其中,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、大片段缺失、点突变和微缺失。
其中,所述引物位置如图1 A至图1B所示。所述引物可以扩增基因组上引物范围内的完整全部序列,包括引物范围内任何类型的突变序列。优选地,每个引物的扩增产物约为2.7kb(FMR1-E1)、11.6kb(FMR1-E2-9)和15.2kb(FMR1-E10-17)。优选地,如果引物位置有SNP,则使用简并碱基引物。
在一个实施方案中,其中所述长片段PCR扩增为扩增样本中的FMR1 E2-9、FMR1E10-17片段。
在一个实施方案中,其中所述高GC PCR扩增为扩增样本中的FMR1 E1片段。
根据一个优选的实施方案,本发明的引物组可以同时检测FXS的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、确定5’-UTR区域的微小缺失的准确位点、检测FMR1的全部SNV和FMR1-Gap-Mix引物范围内的大片段缺失。
在一个实施方案中,可以在所述试剂盒中的引物的5’端加入5-50nt不同序列的DNA(Barcode),用于区分不同的样本;优选地,F和R引物的5’端Barcode可以一样或者不一样,本领域技术人员可以根据需要选择。
在一个实施方案中,其中所述方法中,长片段PCR和高GC PCR扩增在一个或两个反应管中完成。
在一个实施方案中,其中所述样本选自生物样本或样本提取的gDNA。其中生物样本选自培养的细胞系、血液、羊水、绒毛、配子、囊胚细胞、关节液、尿液、汗液、唾液、粪便、脑脊液、腹水、胸水、胆汁或胰腺液等。
在一个实施方案中,其中所述方法的三代测序选自Pacific Biosciences公司的PacBio测序或ONT公司的Nanopore测序。
根据一个优选的实验方案,其中所述用于构建三代PacBio测序文库的试剂包括末端修复酶、接头、连接酶、DNA纯化磁珠、80%乙醇、反应缓冲液和外切酶。
根据一个优选的实施方案,PacBio文库接头连接可以使用平末端连接或TA连接的方式。
根据一个优选的实施方案,PacBio通用平末端接头序列为5’-pATCTCTCTCTTTTCCTCCTCCTCCGTTGTTGTTGTTGAGAGAGAT-3’(SEQ ID NO: 221),通过退火形成平末端茎环状结构接头适配子。可以在茎部加上5-50nt不同序列的DNA(Barcode)形成不同带Barcode的接头适配子。带有不同Barcode的PacBio文库可以混合在一起测序。
根据一个优选的实施方案,PacBio通用TA接头序列为5’-pATCTCTCTCTTTTCCTCCTCCTCCGTTGTTGTTGTTGAGAGAGATT-3’(SEQ ID NO: 222),通过退火形成平末端茎环状结构接头适配子。可以在茎部加上5-50nt不同序列的DNA(Barcode)形成不同带Barcode的接头适配子,带有不同Barcode的PacBio文库可以混合在一起测序。
根据一个优选的实施方案,PacBio接头可以带或者不带Barcode。在优选的实施方案中,PacBio接头带PacBio公司设计的Barcode或者自行设计的Barcode。本领域技术人员可以根据需要选择。
根据一个优选的实施方案,所述PacBio文库与Pacific Biosciences公司测序平台匹配。
根据一个优选的实施方案,其中所述用于构建三代Nanopore文库的试剂包括末端修复酶、接头、连接酶、DNA纯化磁珠、80%乙醇和反应缓冲液。
根据一个优选的实施方案,Nanopore文库接头连接可以使用平末端连接或TA连接的方式。
根据一个优选的实施方案,Nanopore接头可以带或者不带Barcode,本领域技术人员可以根据需要选择。优选地,Nanopore接头带ONT公司设计的Barcode或者自行设计的Barcode,本领域技术人员可以根据需要选择。
根据一个优选的实施方案,所述Nanopore文库与ONT公司测序平台匹配。
本发明第五方面提供了一种用于检测FXS多种突变的方法,包括以下步骤:
(1)获取受试者样本;
(2)对所述样本进行长片段PCR扩增和高GC PCR扩增;
(3)构建三代测序文库;
(4)测序并分析FMR1基因突变类型。
其中,所述步骤(2)中的PCR扩增采用本发明第一方面所述的引物组进行;
其中,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、大片段缺失、点突变和微缺失。
其中,所述引物位置如图1 A至图1B所示。所述引物可以扩增基因组上引物范围内的完整全部序列,包括引物范围内任何类型的突变序列。优选地,每个引物的扩增产物约为2.7kb(FMR1-E1)、11.6kb(FMR1-E2-9)和15.2kb(FMR1-E10-17)。优选地,如果引物位置有SNP,则使用简并碱基引物。
在一个实施方案中,其中所述长片段PCR扩增为扩增样本中的FMR1 E2-9、FMR1E10-17片段。
在一个实施方案中,其中所述高GC PCR扩增为扩增样本中的FMR1 E1片段。
根据一个优选的实施方案,本发明的引物组可以同时检测FXS的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、确定5’-UTR区域的微小缺失的准确位点、检测FMR1的全部SNV和FMR1-Gap-Mix引物范围内的大片段缺失。
在一个实施方案中,可以在所述试剂盒中的引物的5’端加入5-50nt不同序列的DNA(Barcode),用于区分不同的样本;优选地,F和R引物的5’端Barcode可以一样或者不一样,本领域技术人员可以根据需要选择。
在一个实施方案中,其中所述方法中,长片段PCR和高GC PCR扩增在一个或两个反应管中完成。
在一个实施方案中,其中所述样本选自生物样本或样本提取的gDNA。其中生物样本选自培养的细胞系、血液、羊水、绒毛、配子、囊胚细胞、关节液、尿液、汗液、唾液、粪便、脑脊液、腹水、胸水、胆汁或胰腺液等。
在一个实施方案中,其中所述方法的三代测序选自Pacific Biosciences公司的PacBio测序或ONT公司的Nanopore测序。
根据一个优选的实验方案,其中所述用于构建三代PacBio测序文库的试剂包括末端修复酶、接头、连接酶、DNA纯化磁珠、80%乙醇、反应缓冲液和外切酶。
根据一个优选的实施方案,PacBio文库接头连接可以使用平末端连接或TA连接的方式。
根据一个优选的实施方案,PacBio通用平末端接头序列为5’-pATCTCTCTCTTTTCCTCCTCCTCCGTTGTTGTTGTTGAGAGAGAT-3’(SEQ ID NO: 221),通过退火形成平末端茎环状结构接头适配子。可以在茎部加上5-50nt不同序列的DNA(Barcode)形成不同带Barcode的接头适配子。带有不同Barcode的PacBio文库可以混合在一起测序。
根据一个优选的实施方案,PacBio通用TA接头序列为5’-pATCTCTCTCTTTTCCTCCTCCTCCGTTGTTGTTGTTGAGAGAGATT-3’(SEQ ID NO: 222),通过退火形成平末端茎环状结构接头适配子。可以在茎部加上5-50nt不同序列的DNA(Barcode)形成不同带Barcode的接头适配子,带有不同Barcode的PacBio文库可以混合在一起测序。
根据一个优选的实施方案,PacBio接头可以带或者不带Barcode。在优选的实施方案中,PacBio接头带PacBio公司设计的Barcode或者自行设计的Barcode。本领域技术人员可以根据需要选择。
根据一个优选的实施方案,所述PacBio文库与Pacific Biosciences公司测序平台匹配。
根据一个优选的实施方案,其中所述用于构建三代Nanopore文库的试剂包括末端修复酶、接头、连接酶、DNA纯化磁珠、80%乙醇和反应缓冲液。
根据一个优选的实施方案,Nanopore文库接头连接可以使用平末端连接或TA连接的方式。
根据一个优选的实施方案,Nanopore接头可以带或者不带Barcode,本领域技术人员可以根据需要选择。优选地,Nanopore接头带ONT公司设计的Barcode或者自行设计的Barcode,本领域技术人员可以根据需要选择。
根据一个优选的实施方案,所述Nanopore文库与ONT公司测序平台匹配。
基于长片段PCR和高GC PCR扩增和第三代高通量测序特定组合的本发明所述的方法可高特异性地、准确和快速地实现同时检测多个样品FXS相关致病基因的多种突变。
本发明所述方法和试剂盒的优异技术效果主要在于以下几个方面:
(1)检测范围广:本发明可以同时检测目前已研究发现的FXS的CGG重复扩张类型,以及可以检测发生在CGG重复区域的缺失;可以检测FMR1基因的全部SNV和FMR1基因上下游约2MB区域内的大片段缺失。
(2)多种突变类型单个试剂盒检测:传统的方法针对每种突变类型都需要设置一种检测体系,而本发明在两个反应引物体系里同时检测多种突变,包括由CGG扩张引起的前突变和全突变、判断CGG重复中的AGG插入、微缺失、SNV和大片段缺失。
(3)检测误检和漏检率低:目前通用的检测FXS的CGG扩张最常见的方法是结合CE的PCR反应检测,对于一些低比例的嵌合突变由于信号噪音的影响容易判断为阴性,或者将阴性判断为突变患者,而本发明的高GC PCR体系结合三代测序的方式可以排除噪音的影响,更准确的确认FXS中的CGG扩张类型;而目前并没有对FMR1基因5’-UTR区域的微缺失和FMR1基因的SNV检测形成有效的方案,因此,一些由于这些原因造成的突变无法被检测发现,本发明的两个反应引物体系可以同时检测上述突变类型。
(4)样本多样化:用于PCR的模板可以是外周血、干血斑或经提取的基因组DNA,也可以是人源细胞系或其他特定的组织。
(5)高通量检测:三代测序可实现384种Barcode接头,实际还可以根据需要设计更多种Barcode接头。或者利用引物带Barcode和接头带Barcode的双Barcode系统实现更多种Barcode组合。三代测序平台的高通量特性决定可以实现高通量样品检测。
(6)精确度高:PacBio的哑铃状文库在测序时可进行多轮解读,矫正后测序结果碱基精确度大于99%。而且PacBio测序错误是随机的,再通过测序深度矫正碱基精确度大于99.9%。因此可以精确解读引物检测范围内的基因突变。
(7)检测时间灵活:Nanopore平台可在数分钟内产生数据,可根据实际数据量需求在数分钟或数小时内开启数据分析。当对检测时效要求比较高时,Nanopore平台具有时间优势。
附图说明
图1A-1B:PCR引物设计示意图,其中图1A表示FXS相关FMR1 E1检测引物设计示意图,和图1B表示FXS相关FMR1基因和大片段缺失检测引物设计示意图。
图2A-2B:FXS扩增片段凝胶电泳示意图,其中图2A表示长片段PCR扩增FMR1 E2-9和FMR1 E10-17的DNA凝胶电泳示意图,和图2B表示高GC PCR扩增FMR1 E1的DNA凝胶电泳示意图。
图3A-3L:代表性的FXS相关基因突变样本PacBio测序结果图,其中图3A表示正常人样本CGG扩张(29),图3B表示前突变携带者样本CGG扩张(29/87),图3C表示全突变携带者样本CGG扩张(36/439),图3D表示正常人样本CGG扩张(30),图3E表示前突变携带者样本CGG扩张(29/118),图3F表示全突变样本CGG扩张(203/342/725),图3G表示前突变携带者样本CGG扩张(29/61),图3H表示全突变样本CGG扩张(335/659),图3I表示前突和全突变嵌合样本CGG扩张(69/191/221/336),图3J表示FMR1点突变样本,图3K表示FMR1 5’-UTR微缺失样本,和图3L表示FMR1大片段缺失样本。
具体实施方式
实施例1:利用本发明涉及的PCR方法扩增并构建PacBio测序文库
步骤1:长片段和高GC PCR扩增
按照下表1(长片段PCR)和表2(高GC PCR)制备反应体系,扩增外周血、干血斑和基因组DNA样本:
Figure 359371DEST_PATH_IMAGE001
Figure 135566DEST_PATH_IMAGE002
在PCR仪上,按照下表3所示条件进行预扩增:
Figure 118566DEST_PATH_IMAGE003
扩增完成后,每个样本取5 ul,在1%的DNA凝胶上检测,结果如图2A和图2B所示,以不同样本为模板,FMR1基因不同片段均能得到有效地扩增;同时,将扩增产物放入离心机中,10000rpm,离心20min。离心结束后水平静置放置,取4μL上清加入新的管内,进行下一步实验。
步骤2:构建PacBio测序文库
按照下表4制备反应体系:
Figure 405453DEST_PATH_IMAGE004
在PCR仪上,按如下条件进行反应:37ºC 20 min; 25ºC 15 min; 65ºC 10 min。反应完成后,加入0.5 μL Exonuclease III(NEB, Cat#M0206L)和0.5 μL Exonuclease VII(NEB, Cat#M0379L),继续在37ºC反应1小时。用0.6x Ampure PB磁珠(PacBio, Cat#100-265-900)依照制造商的说明书纯化两次,最后用10uL Elution Buffer洗脱DNA。所得DNA洗脱液即是目标DNAPacBio测序文库。用Qubit dsDNA HS试剂(ThermoFisher, Cat# Q32851)在Qubit 3 Fluoromter (ThermoFisher, Cat#Q33216)上测定DNA浓度。当有多个样本PacBio测序文库时,可以取等量的文库混合在一起,制备成混合文库。
步骤3:PacBio上机测序和分析
根据文库的总浓度与摩尔浓度,将适当体积的文库与结合试剂(PacBio,Cat#101-820-200)和引物(PacBio, Cat#100-970-100)反应,制备成最终可上机文库。代表性测序结果如下所示,图3A表示正常人样本(CGG重复数为29),图3B表示前突变携带者样本(CGG重复数为29和87), 图3C表示全突变携带者样本CGG扩张(36/439)。
实施例2:利用本发明涉及的PCR方法构建PacBio测序文库
步骤1:长片段和高GC PCR扩增
按照下表5(长片段PCR)和表6(高GC PCR)制备反应体系,扩增不同类型FXS相关基因突变的外周血样本:
Figure 875617DEST_PATH_IMAGE005
Figure 846548DEST_PATH_IMAGE006
在PCR仪上,按照下表7所示条件进行预扩增:
Figure 316844DEST_PATH_IMAGE007
扩增完成后,将扩增产物放入离心机中,10000rpm,离心20min。离心结束后水平静置放置,取4μL上清加入新的管内。
步骤2:构建PacBio测序文库
按照下表8制备反应体系:
Figure 171536DEST_PATH_IMAGE008
在PCR仪上,按如下条件进行反应:37ºC 20 min; 25ºC 15 min; 65ºC 10 min。反应完成后,加入0.5 μL Exonuclease III(NEB, Cat#M0206L)和0.5 μL Exonuclease VII(NEB, Cat#M0379L),继续在37ºC反应1小时。用0.6x Ampure PB磁珠(PacBio, Cat#100-265-900)依照制造商的说明书纯化两次,最后用10uL Elution Buffer洗脱DNA。所得DNA洗脱液即是目标DNAPacBio测序文库。用Qubit dsDNA HS试剂(ThermoFisher, Cat# Q32851)在Qubit 3 Fluoromter (ThermoFisher, Cat#Q33216)上测定DNA浓度。当有多个样本PacBio测序文库时,可以取等量的文库混合在一起,制备成混合文库。
步骤3:PacBio上机测序和分析
根据文库的总浓度与摩尔浓度,将适当体积的文库与结合试剂(PacBio,Cat#101-820-200)和引物(PacBio, Cat#100-970-100)反应,制备成最终可上机文库。代表性测序结果如下所示,图3D表示正常人样本CGG扩张(30),图3E表示前突变携带者样本CGG扩张(29/118),图3F表示全突变样本CGG扩张(203/342/725)。
实施例3:利用本发明涉及的PCR方法构建PacBio测序文库
步骤1:长片段和高GC PCR扩增
按照下表9(长片段PCR)和表10(高GC PCR)制备反应体系,扩增不同类型FXS相关基因突变的外周血样本:
Figure 732093DEST_PATH_IMAGE009
Figure 663139DEST_PATH_IMAGE010
在PCR仪上,按照下表11所示条件进行预扩增:
Figure 869999DEST_PATH_IMAGE011
扩增完成后,将扩增产物放入离心机中,10000rpm,离心20min。离心结束后水平静置放置,取4μL上清加入新的管内。
步骤2:构建PacBio测序文库
按照下表12制备反应体系:
Figure 747956DEST_PATH_IMAGE012
在PCR仪上,按如下条件进行反应:37ºC 20 min; 25ºC 15 min; 65ºC 10 min。反应完成后,加入0.5 μL Exonuclease III(NEB, Cat#M0206L)和0.5 μL Exonuclease VII(NEB, Cat#M0379L),继续在37ºC反应1小时。用0.6x Ampure PB磁珠(PacBio, Cat#100-265-900)依照制造商的说明书纯化两次,最后用10uL Elution Buffer洗脱DNA。所得DNA洗脱液即是目标DNAPacBio测序文库。用Qubit dsDNA HS试剂(ThermoFisher, Cat# Q32851)在Qubit 3 Fluoromter (ThermoFisher, Cat#Q33216)上测定DNA浓度。当有多个样本PacBio测序文库时,可以取等量的文库混合在一起,制备成混合文库。
步骤3:PacBio上机测序和分析
根据文库的总浓度与摩尔浓度,将适当体积的文库与结合试剂(PacBio,Cat#101-820-200)和引物(PacBio, Cat#100-970-100)反应,制备成最终可上机文库。代表性测序结果如下所示,图3G表示前突变携带者样本CGG扩张(29/61),图3H表示全突变样本CGG扩张(335/659),图3I表示前突和全突变嵌合样本CGG扩张(69/191/221/336),图3J表示FMR1点突变样本,图3K表示FMR1 5’-UTR微缺失样本,图3L表示FMR1大片段缺失样本。
实施例4:FXS基因突变的检测和验证
收集24个受试者的外周血基因组DNA作为验证样品24例,参照实施例3,利用本发明方法(和试剂盒)同时检测FXS相关基因的多种突变。同时用PCR-CE的方法检测FXS的CGG重复扩张,结合Sanger测序的方法检测相关基因的点突变和缺失。利用本发明得到的结果和对照结果相对比,结果如表13所示,24例样本结果完全一致。
Figure 222406DEST_PATH_IMAGE013
Figure 42464DEST_PATH_IMAGE014
因此,利用本发明方法检测的结果,经过与PCR-CE结合PCR-Sanger测序方法对比,特异性和灵敏度均达到100%。本发明方法可以直接检测CGG重复序列,而不是通过其他方式进行推测;因此,本发明方法的准确性优于PCR-CE法;而且24例样本中,有7例样本通过本发明的方法确定全突变样本的CGG重复数。本发明方法可以直接检测未知的FMR1的全部SNV和大片段缺失,而PCR-sanger法只能对已知结果进行验证。
应当理解,尽管本发明已根据其优选实施例进行了示例性描述,但不应限于上述实施例,对于本领域的技术人员来说,本发明可以有各种更改和变化。长片段PCR和高GCPCR反应和三代测序文库构建中所涉及的反应试剂、反应条件等等可以根据具体的需要进行相应的调整和改变。因此对于本领域技术人员来说,在不脱离本发明的构思和原则之内,还可做出若干简单替换,这些均应包含在本发明的保护范围之内。
参考文献
[1] Crawford D C, Acuña J M, Sherman S L. FMR1 and the fragile Xsyndrome: human genome epidemiology review. Genetics in medicine, 2001, 3(5):359-371. doi:10.1097/00125817-200109000-00006.
[2] Kenneson A, Zhang F, Hagedorn CH, Warren ST. Reduced FMRP andincreased FMR1 transcription is proportionally associated with CGG repeatnumber in intermediate-length and premutation carriers. Hum Mol Genet. 2001;10:1449–1454. doi:10.1093/hmg/10.14.1449.
[3] Pieretti M, Zhang F, Fu Y H, et al. Absence of expression of theFMR-1 gene in fragile X syndrome. Cell, 1991, 66(4): 817-822. doi:10.1016/0092-8674(91)90125-I.
[4]. Gedeon A K, Baker E, Robinson H, et al. Fragile X syndromewithout CCG amplification has an FMR1 deletion. Nature genetics, 1992, 1(5):341-344. doi:10.1038/ng0892-341.
[5] Handt M, Epplen A, Hoffjan S, et al. Point mutation frequency inthe FMR1 gene as revealed by fragile X syndrome screening. Molecular andcellular probes, 2014, 28(5-6): 279-283. doi:10.1016/j.mcp.2014.08.003.
[6] Collins S C, Bray S M, Suhl J A, et al. Identification of novelFMR1 variants by massively parallel sequencing in developmentally delayedmales. American Journal of Medical Genetics Part A, 2010, 152(10): 2512-2520.doi:10.1002/ajmg.a.33626.
[7] Hagerman RJ. The physiological and behavioral phenotype. In:Hagerman RJ, Hagerman PJ, eds. Fragile X syndrome: diagnosis, treatment, andresearch. 3rd ed. Baltimore: Johns Hopkins University Press; 2002. p 3–109.
[8] Fernandez-Carvajal I, Posadas B L, Pan R, et al. Expansion of anFMR1 grey-zone allele to a full mutation in two generations. The Journal ofMolecular Diagnostics, 2009, 11(4): 306-310. doi: 10.2353/jmoldx.2009.080174.
[9] Merenstein S A, Sobesky W E, Taylor A K, et al. Molecularclinical correlations in males with an expanded FMR1 mutation. Americanjournal of medical genetics, 1996, 64(2): 388-394. doi:10.1002/(SICI)1096-8628(19960809)64:2<388::AID-AJMG31>3.0.CO;2-9.
[10] Freund L S, Reiss A L, Abrams M T. Psychiatric disordersassociated with fragile X in the young female[J]. Pediatrics, 1993, 91(2):321-329. doi:10.1542/peds.91.2.321.
[11] Garber K B, Visootsak J, Warren S T. Fragile X syndrome.European journal of human genetics, 2008, 16(6): 666-672. doi:10.1038/ejhg.2008.61.
[12] Filipovic-Sadic S, Sah S, Chen L, et al. A novel FMR1 PCR methodfor the routine detection of low abundance expanded alleles and fullmutations in fragile X syndrome. Clinical chemistry, 2010, 56(3): 399-408.doi:10.1373/clinchem.2009.136101.
[13] Grasso M, Boon E M J, Filipovic-Sadic S, et al. A novelmethylation PCR that offers standardized determination of FMR1 methylationand CGG repeat length without southern blot analysis. The Journal ofMolecular Diagnostics, 2014, 16(1): 23-31. doi:10.1016/j.jmoldx.2013.09.004.
[14] Hayward B E, Kumari D, Usdin K. Recent advances in assays forthe fragile X-related disorders. Human genetics, 2017, 136(10): 1313-1327.doi:org/10.1007/s00439-017-1840-5.
序列表
<110> 北京贝瑞和康生物技术有限公司
<120> 检测脆性X综合征突变的方法和试剂盒
<130> CID220036
<160> 222
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 1
ggaccctgta gggactgata tgacaatg 28
<210> 2
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 2
caacacaggt tgagtgtggc ttgtag 26
<210> 3
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 3
gagttgagga aaggcgagta cgtgg 25
<210> 4
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 4
acctgtcacc gcccttcagc cttcc 25
<210> 5
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 5
ggtgccgact accgcttctt actac 25
<210> 6
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 6
ccgaaatcca caaagagaag ccac 24
<210> 7
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 7
tttagacgct gaagcatgtg cattcc 26
<210> 8
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 8
ctgaaaggtg ttagttgatc tgcaatgg 28
<210> 9
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 9
ctggactttt tagtgttgtt tgcagc 26
<210> 10
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 10
caatatatgg ctgatatatg gttctggaac 30
<210> 11
<211> 31
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 11
ggagagaaag gtaggttaca atatatggct g 31
<210> 12
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 12
gctgggcaag atttatcctt tcagg 25
<210> 13
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 13
ccttctgaaa atgtaacctt tgagcatc 28
<210> 14
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 14
tttgtatgct gtaagaacag atcgattg 28
<210> 15
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 15
gcaagtatta atcaactctg gtacctgacc 30
<210> 16
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 16
cctgaccaaa ggagtttaaa caatgatg 28
<210> 17
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 17
cagattaacc atcttgttga aaagagtctc 30
<210> 18
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 18
ggtagaacac tgacactgtc acctctcc 28
<210> 19
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 19
aggaggctgt ctagcatcat tttgg 25
<210> 20
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 20
ccaggcacat tctacctaca aacctctc 28
<210> 21
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 21
gcatttgatt tcccacgcca ctgag 25
<210> 22
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 22
gaactggttg caggatgtct gagg 24
<210> 23
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 23
gtatcagtcc tcctgtccat gcag 24
<210> 24
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 24
gccattgagt tgcatacctt cagatgat 28
<210> 25
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 25
tccatcctat ggtctagtgg ctagga 26
<210> 26
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 26
caccaaggcc ataaatattg caacact 27
<210> 27
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 27
cctagtgaaa tgtgtaccag agcact 26
<210> 28
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 28
gtggcttgag gctcttaaga aagttgac 28
<210> 29
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 29
gtatccgtat ccgtgtacct gcttg 25
<210> 30
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 30
cggcaagctt gatagagtca ttgtg 25
<210> 31
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 31
ccagttgtta cctccatgac cttgag 26
<210> 32
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 32
ctactatctg tgttggccaa gcatagc 27
<210> 33
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 33
gcaggaagtg ccatactcag cac 23
<210> 34
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 34
ctgaaggagc agtgagagtg tgtattc 27
<210> 35
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 35
gtgtctgcta tgctcctgat tcagc 25
<210> 36
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 36
gtcgctgaga ttgtggagct acc 23
<210> 37
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 37
ccactagaca catgtagcag agcac 25
<210> 38
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 38
ctctccagag tcctgcatgt ggtac 25
<210> 39
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 39
cagttctgag aattggagct gcttgac 27
<210> 40
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 40
gaagtgacgg aaccagaagg tagac 25
<210> 41
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 41
cagcatctct cgatcctcat tgcc 24
<210> 42
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 42
cagcatatac ctatcacacc aacagctc 28
<210> 43
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 43
ccaagcattg ctatgtgtgg ttgtag 26
<210> 44
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 44
cttgtgtctc cacgtcattg gagc 24
<210> 45
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 45
ctgctcttca cctcattgat gagg 24
<210> 46
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 46
cagtcacctg tagcaccagc tac 23
<210> 47
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 47
gagcagatga ctgatgggtg tagtag 26
<210> 48
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 48
ccatcaattc cactgcttgg cac 23
<210> 49
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 49
cggtgatcaa ggcaacatca gtag 24
<210> 50
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 50
caggcagtat gagtgagtga gcattc 26
<210> 51
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 51
ctgtagtgcc caaggtctca cttac 25
<210> 52
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 52
cttactacat gaggcagaat aggatcac 28
<210> 53
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 53
gcctgagcac catctagtgt aaatgc 26
<210> 54
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 54
gctcatgatg tgtcattagg gaactgc 27
<210> 55
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 55
cagcatttga ttggaggctg tactag 26
<210> 56
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 56
cagcagtaga gtgaggcaga gag 23
<210> 57
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 57
gtgatgtggg agagtagtgt ggac 24
<210> 58
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 58
catccagttc gtagcatggt gtctg 25
<210> 59
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 59
gccttaatgt cagagcctgc ctg 23
<210> 60
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 60
ccatgacaag catcagtact aggtttag 28
<210> 61
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 61
caactcatga gtgtgcatca ctttc 25
<210> 62
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 62
catatgccag tcactaggcc agatag 26
<210> 63
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 63
ctaaatacat cccgactaat acagcctg 28
<210> 64
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 64
gctgcagtat gtgtagcatg aatatgtg 28
<210> 65
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 65
cctagttcct ctagatacgg tgttagg 27
<210> 66
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 66
cacaagggca tgacccagga ac 22
<210> 67
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 67
cttatggcaa tagcaatgtg aggagg 26
<210> 68
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 68
ggataacctc gcttgctggg tc 22
<210> 69
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 69
acaggtagtt acacagccat gagc 24
<210> 70
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 70
tgaacatcga acgccagcaa cac 23
<210> 71
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 71
cagacagcat cgttctgagg tgc 23
<210> 72
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 72
gtgtatttgt gtggctcaag gtaacttc 28
<210> 73
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 73
gctgatgcaa ttgtgtgtaa gtactgac 28
<210> 74
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 74
ggcccacatg caccaattag aagg 24
<210> 75
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 75
cccatctata tgccctttat ttggc 25
<210> 76
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 76
cgtccacagg ccataggtgc caac 24
<210> 77
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 77
taatgtgtac acatgggcct acagag 26
<210> 78
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 78
gaggtgttag taaactctaa aatgcc 26
<210> 79
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 79
ccagtaccca tagtgacccc caagg 25
<210> 80
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 80
ctagttcata tctgaatgga gagctgt 27
<210> 81
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 81
ctggctggga atctggtaat ggctg 25
<210> 82
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 82
gcaatgcata aagggataag actagagac 29
<210> 83
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 83
ggatattagc ttcagcttgg gtccaag 27
<210> 84
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 84
ctgtgcacag ccacaatcag tttaacag 28
<210> 85
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 85
cctgttcccc tatctcctaa tcaagag 27
<210> 86
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 86
gagtccctct aagtcttgag ttatgc 26
<210> 87
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 87
cacttgcttt gtatgaaaca gttaagag 28
<210> 88
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 88
gccactttga atgtctgaca gctt 24
<210> 89
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 89
gccaggagaa ataagctagg ccaa 24
<210> 90
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 90
gagtgggtgc acaggatgca aaac 24
<210> 91
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 91
gcgattttgg gactgagata tttccc 26
<210> 92
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 92
ccaaaacagc atggtactgg taccaaaac 29
<210> 93
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 93
ggcatttcag acacctctgc agt 23
<210> 94
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 94
gaccagggtg tctgggctgc a 21
<210> 95
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 95
cagcctctgg atattaagcc actgg 25
<210> 96
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 96
cctggagaat gttctttgtg ctgatga 27
<210> 97
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 97
ctgaacttct ctctccgtgg agcaag 26
<210> 98
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 98
ggtatctttt gtgtgatgag acagtcag 28
<210> 99
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 99
gtttggcata tgtcaaggaa tgaacaagg 29
<210> 100
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 100
gcaagtcaag acaaccacac atttaag 27
<210> 101
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 101
gcaatcctac agtagtagtg ggagac 26
<210> 102
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 102
ccaggaatcc cacttacaat tgcc 24
<210> 103
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 103
cactctatta acgcttgtgt ctgcacc 27
<210> 104
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 104
cccaccacat accttaagca tcttgg 26
<210> 105
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 105
gtggtggtaa caatgagata gtcatgtag 29
<210> 106
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 106
cagggaaaaa taaatgaaaa ccgcgatg 28
<210> 107
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 107
tccagcaact tgggccaaat tatg 24
<210> 108
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 108
ggaacagttt gcagggctca aaag 24
<210> 109
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 109
ttccaccatc ctgccttcac agtg 24
<210> 110
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 110
ggttcaagcg attctttagt ctcaacc 27
<210> 111
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 111
tgtaagcaat caatctttgg atcttgc 27
<210> 112
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 112
ggcatagaat tatgcaagct caatgc 26
<210> 113
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 113
gtagtgacag aactaaacca tgtttctc 28
<210> 114
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 114
ggttcagctc tgctggcaat gatacc 26
<210> 115
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 115
gggaaactgc cacacagtct ttc 23
<210> 116
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 116
gaagtgctgg tacggaaggt cg 22
<210> 117
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 117
ctggacaagc aagagaagtc caagc 25
<210> 118
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 118
gaggtttagc tggacttaca gttcaatatg 30
<210> 119
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 119
gagaccagca taatcccatt gtcaaag 27
<210> 120
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 120
gagctaagcc cttacctggg aaatcg 26
<210> 121
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 121
ctaccagtct ggtgactagg tacag 25
<210> 122
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 122
ggagatcaac taagcaagct caatgttc 28
<210> 123
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 123
ctcttgtgca tgacttgatc gcctag 26
<210> 124
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 124
caatgccaac tctatcaaca ttccaatg 28
<210> 125
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 125
ctctttgact gtgggtggac cttg 24
<210> 126
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 126
caatttcaca atactgggtc agtgactg 28
<210> 127
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 127
ggaaatatgg aacaggtaga ggtgaag 27
<210> 128
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 128
cttcattaac gacttgatga ggcagg 26
<210> 129
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 129
gacgactaga tctagggctc taagg 25
<210> 130
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 130
gcatgcctac gagatctaca aactag 26
<210> 131
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 131
ggagggtcta atccttcacg ttcttg 26
<210> 132
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 132
gctaaggttg cctgattact tgcca 25
<210> 133
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 133
caccatacca caacatatgg gattcagtg 29
<210> 134
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 134
cttggcactc aaagctgcag ag 22
<210> 135
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 135
ccagtgcaat cactgatgtt cagaatg 27
<210> 136
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 136
gactaataca agcaggtcca gagcc 25
<210> 137
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 137
ggccacaaga acagctaaca tttatg 26
<210> 138
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 138
gccacgctga actcattaag tgttg 25
<210> 139
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 139
ccaagagggc aggtattcaa gac 23
<210> 140
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 140
ctcgagtaag tcacttttac ctcttcg 27
<210> 141
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 141
gtatccctgg gagttgtgat gaaag 25
<210> 142
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 142
ctcaagctta caggctgatg cttgc 25
<210> 143
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 143
gtcccatcca agttcagaca catg 24
<210> 144
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 144
gtcctcaact acgatttgct tacaagac 28
<210> 145
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 145
ctatggttct ccattgattt gcagattg 28
<210> 146
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 146
gtctctcagt gacacatcca tgac 24
<210> 147
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 147
gcattgttct aggtactaca gactgc 26
<210> 148
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 148
gctctaaggt ggcagaggag atag 24
<210> 149
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 149
ggctgtccct agtgactttt ctcc 24
<210> 150
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 150
gcaacccaca taagcatcat ttctctg 27
<210> 151
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 151
gcctgtgctt gtgagctatt actc 24
<210> 152
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 152
ctgtctctca aaggagttct gggttc 26
<210> 153
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 153
ctgtagcaac ctactgcctg gac 23
<210> 154
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 154
gcatgaaacc ctccttgtga caga 24
<210> 155
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 155
gtgctgtgct gtgagatacc tttg 24
<210> 156
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 156
cttgaggcag cctgcctact tcc 23
<210> 157
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 157
gtatcaggca gagaaggcag aagc 24
<210> 158
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 158
ggctagagta gctgggaagc ag 22
<210> 159
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 159
gctgatggca tgatattact cattccac 28
<210> 160
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 160
cttccattct acaaactctg ccagg 25
<210> 161
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 161
gtgcgtgcta tggcacaatc tc 22
<210> 162
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 162
gacatgtcac aaatgtgggc aagg 24
<210> 163
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 163
ggttctgcct tctactccat tggtc 25
<210> 164
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 164
gtgagttgta gttcattcac aatttggc 28
<210> 165
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 165
gaaccatcaa actgcatgac accttg 26
<210> 166
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 166
gcgtggatag ggtaacctga cac 23
<210> 167
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 167
ccagcccaga gactctagtg atg 23
<210> 168
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 168
cattgctgct atatagaagt gctgctg 27
<210> 169
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 169
gacagctaat gcagaagaat gcatacag 28
<210> 170
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 170
ggacttgcta gaggatagca tgtagg 26
<210> 171
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 171
gtaagagagg atggttgtct tgtgatg 27
<210> 172
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 172
ctcatgtctc tacccattca gctg 24
<210> 173
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 173
gtcatgtcct tcatcatcct atctcaag 28
<210> 174
<211> 22
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 174
catgggcagt acacagagta gc 22
<210> 175
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 175
atctatgcct ggacatttcc actgcc 26
<210> 176
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 176
ccttggggaa cgatggcaga gag 23
<210> 177
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 177
cctaagtact catgggtcaa ctcaggc 27
<210> 178
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 178
gcaggtgagg aaaccaaggc ttcaag 26
<210> 179
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 179
gaaataaagc tgccccttta agagttcc 28
<210> 180
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 180
ggtcaccaag tgaaccagta tctgc 25
<210> 181
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 181
cacactgata gtcaaggtgg ctctc 25
<210> 182
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 182
gaagaaagaa atcaacagga gaaatggg 28
<210> 183
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 183
gaatggatct cggtaaaagg tcctgg 26
<210> 184
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 184
agcatagtaa ctggcccaca gtg 23
<210> 185
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 185
gggatttacc ttcagctaca gttagg 26
<210> 186
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 186
ccaagcaaac agaattgccc tccatc 26
<210> 187
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 187
gatactcaag acagtgagtg gtctatgc 28
<210> 188
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 188
gcctacccca ttagattgaa tgaagag 27
<210> 189
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 189
gatatatcac atcccctgag gagttagtc 29
<210> 190
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 190
catgatccag aggtattgca aagtcctg 28
<210> 191
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 191
caaggagtaa acataaggcg agtgtg 26
<210> 192
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 192
accttcagaa tccagtcctt cctatc 26
<210> 193
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 193
ctgagccact agccaatctg agcac 25
<210> 194
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 194
cattggtcac ctttccttag gactgc 26
<210> 195
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 195
gactaatgtg ctaggaggct attgtacc 28
<210> 196
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 196
gcaactggat ggccttccat tcattg 26
<210> 197
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 197
gctttacaac aagaagcact gtgc 24
<210> 198
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 198
gatgctttgc acatctgaat gtagtcag 28
<210> 199
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 199
gaagtggcag tctacccaaa aattgcc 27
<210> 200
<211> 29
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 200
caaatgtgag ttgcattcat gaactatgg 29
<210> 201
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 201
ctgcatttag aaatcccctc tgatatgc 28
<210> 202
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 202
gtctgggcac ttgactggta aacag 25
<210> 203
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 203
gatgcggtga ccagggaaca cttc 24
<210> 204
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 204
gtctgcctat agcactatca cacattac 28
<210> 205
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 205
gtttcaactt cagttgttct gccccac 27
<210> 206
<211> 31
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 206
cttaggaagg aaatctacaa ccttcacaag g 31
<210> 207
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 207
gcttcactgg caaatggggc taacc 25
<210> 208
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 208
cgaaagcaaa aacagctgaa ttcagtc 27
<210> 209
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 209
ctagagccat agcaatccag gagac 25
<210> 210
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 210
gccagttttt aagtaagtct cctggtc 27
<210> 211
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 211
agcatttaga gcatgctgct ctcc 24
<210> 212
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 212
ataatccaga tctcaagccc ctgtgc 26
<210> 213
<211> 28
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 213
gaactagtta aaatgtggga aacaagcc 28
<210> 214
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 214
gcagcatgaa acatccagaa acatgc 26
<210> 215
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 215
caactaacag tgaaaagcat ccctgc 26
<210> 216
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 216
gaggtgcaca ctgcctggat tgc 23
<210> 217
<211> 26
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 217
catttcattc cacttcttcc ctgacc 26
<210> 218
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 218
cagtgtgcat cacaggtatc agg 23
<210> 219
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 219
aagtctgttc tagaagactt aggttatcac 30
<210> 220
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 220
gagggtgcct cattatcttg aaatgag 27
<210> 221
<211> 45
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 221
atctctctct tttcctcctc ctccgttgtt gttgttgaga gagat 45
<210> 222
<211> 46
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 222
atctctctct tttcctcctc ctccgttgtt gttgttgaga gagatt 46

Claims (14)

1.一种用于扩增FXS多种突变的引物组,包括选自以下的一对或多对引物:
(1)FMR1-E1-F与FMR1-E1-R,其中所述FMR1-E1-F选自SEQ ID NO:1-4,FMR1-E1-R选自SEQ ID NO:5-8;
(2)FMR1-E2-F与FMR1-E9-R,其中所述FMR1-E2-F选自SEQ ID NO:9-11,FMR1-E9-R选自SEQ ID NO:12-14;
(3)FMR1-E10-F与FMR1-E17-R,其中所述FMR1-E10-F选自SEQ ID NO:15-17,FMR1-E17-R选自SEQ ID NO:18-20;和
(4)FMR1-Gap-Mix,其中所述FMR1-Gap-Mix选自SEQ ID NO:21-220;
其中,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、大片段缺失、点突变和微缺失。
2.根据权利要求1所述的引物组,其中,所述引物在5’端包括5-50nt不同序列的DNA条形码。
3.权利要求1-2任一项所述的引物组在制备用于检测FXS多种突变种的试剂盒中的用途,其中,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、大片段缺失、点突变和微缺失。
4.一种用于检测FXS多种突变的试剂盒,包括以下试剂:
(1)用于长片段PCR扩增的试剂;
(2)用于高GC PCR扩增的试剂;
(3)用于构建三代测序文库的试剂;
其中,所述用于PCR扩增的试剂包含权利要求1-2任一项所述的引物组;
其中,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、大片段缺失、点突变和微缺失。
5.根据权利要求4所述的试剂盒,其中,所述长片段PCR扩增和高GC PCR扩增在一个或者两个反应管中完成。
6.根据权利要求4所述的试剂盒,其中,所述用于长片段PCR扩增的试剂包括DNA聚合酶、反应缓冲液和引物。
7.根据权利要求4所述的试剂盒,其中,所述用于高GC PCR扩增的试剂包括DNA聚合酶、反应缓冲液和引物。
8.根据权利要求4所述的试剂盒,其中,所述用于构建三代测序文库的试剂包括末端修复酶、接头、连接酶、DNA纯化磁珠、反应缓冲液和外切酶。
9.根据权利要求4所述的试剂盒,其中,所述三代测序选自Pacific Biosciences公司的PacBio测序或Oxford Nanopore Technologies公司的Nanopore测序。
10.一种用于检测FXS多种突变的系统,包括以下模块:
(1)采集模块:获取受试者样本;
(2)扩增模块:对所述样本进行长片段PCR扩增和高GC PCR扩增;
(3)文库构建模块:构建三代测序文库;
(4)测序模块:测序并分析FMR1基因突变类型;
其中,所述模块(2)中的PCR扩增采用权利要求1-2任一项所述的引物组进行;
其中,所述FXS多种突变至少包括以下的一种或多种:FMR1的由CGG扩张引起的前突变和全突变、CGG重复中的AGG插入、大片段缺失、点突变和微缺失。
11.根据权利要求10所述的系统,其中,所述长片段PCR扩增样本中的FMR1 E2-9、FMR1E10-17片段。
12.根据权利要求10所述的系统,其中,所述高GC PCR扩增样本中的FMR1 E1片段。
13.根据权利要求10所述的系统,其中,所述长片段PCR扩增和高GC PCR扩增在一个或者两个反应管中完成。
14.根据权利要求10所述的系统,其中,所述三代测序选自Pacific Biosciences公司的PacBio测序或Oxford Nanopore Technologies公司的Nanopore测序。
CN202210732815.3A 2022-06-27 2022-06-27 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒 Active CN114807360B (zh)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202210732815.3A CN114807360B (zh) 2022-06-27 2022-06-27 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒
PCT/CN2023/087226 WO2024001404A1 (zh) 2022-06-27 2023-04-10 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒
TW112123635A TW202400807A (zh) 2022-06-27 2023-06-26 檢測脆性x綜合征突變的方法和試劑盒

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202210732815.3A CN114807360B (zh) 2022-06-27 2022-06-27 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN114807360A true CN114807360A (zh) 2022-07-29
CN114807360B CN114807360B (zh) 2022-09-02

Family

ID=82523023

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202210732815.3A Active CN114807360B (zh) 2022-06-27 2022-06-27 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒

Country Status (3)

Country Link
CN (1) CN114807360B (zh)
TW (1) TW202400807A (zh)
WO (1) WO2024001404A1 (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2024001404A1 (zh) * 2022-06-27 2024-01-04 北京贝瑞和康生物技术有限公司 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011046518A1 (en) * 2009-10-16 2011-04-21 National University Of Singapore Screening method for trinucleotide repeat sequences
WO2013131981A1 (en) * 2012-03-08 2013-09-12 Novartis Ag Predictive markers useful in the diagnosis and treatment of fragile x syndrome (fxs)
CN110157782A (zh) * 2019-03-08 2019-08-23 北京华瑞康源生物科技发展有限公司 一种用于快速检测fmr1基因cgg重复序列的引物群及pcr试剂盒
CN112746102A (zh) * 2020-12-31 2021-05-04 广州市达瑞生物技术股份有限公司 一种检测脆性x综合征fmr1基因型的试剂盒
US20210241850A1 (en) * 2020-01-30 2021-08-05 Laboratory Corporation Of America Holdings Fragile X Syndrome AGG Interruption Genotyping

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2009045467A1 (en) * 2007-10-02 2009-04-09 Fred Hutchinson Cancer Research Center Methods and compositions for identifying increased risk of developing fragile x-associated disorders
CN103981253A (zh) * 2014-03-27 2014-08-13 江苏佰龄全基因生物医学技术有限公司 一种用于检测脆性x染色体综合征的cgg重复数及agg插入信息的pcr试剂盒
CN109750092B (zh) * 2017-11-03 2022-12-06 北京贝瑞和康生物技术有限公司 一种靶向富集高gc含量目标dna的方法和试剂盒
US20210381035A1 (en) * 2019-02-15 2021-12-09 Takara Bio Usa, Inc. Methods of Preparing and Analyzing Nucleic Acid Libraries
CN110129422B (zh) * 2019-05-29 2021-06-29 浙江大学 基于长片段pcr和单分子测序解析多核苷酸重复突变疾病突变结构的方法
CN111197086A (zh) * 2020-03-18 2020-05-26 上海欧易生物医学科技有限公司 一种基于三代测序的fmr1的检测引物、体系及方法
CN113215228A (zh) * 2021-02-07 2021-08-06 迈基诺(重庆)基因科技有限责任公司 脆性x综合征fmr1基因检测引物、试剂盒及其应用
CN114807360B (zh) * 2022-06-27 2022-09-02 北京贝瑞和康生物技术有限公司 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011046518A1 (en) * 2009-10-16 2011-04-21 National University Of Singapore Screening method for trinucleotide repeat sequences
WO2013131981A1 (en) * 2012-03-08 2013-09-12 Novartis Ag Predictive markers useful in the diagnosis and treatment of fragile x syndrome (fxs)
CN110157782A (zh) * 2019-03-08 2019-08-23 北京华瑞康源生物科技发展有限公司 一种用于快速检测fmr1基因cgg重复序列的引物群及pcr试剂盒
US20210241850A1 (en) * 2020-01-30 2021-08-05 Laboratory Corporation Of America Holdings Fragile X Syndrome AGG Interruption Genotyping
CN112746102A (zh) * 2020-12-31 2021-05-04 广州市达瑞生物技术股份有限公司 一种检测脆性x综合征fmr1基因型的试剂盒

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ERICK W. LOOMIS等: "Sequencing the unsequenceable: Expanded CGG-repeat alleles of the fragile X gene", 《GENOME RESEARCH》 *
何文智等: "三核苷酸重复引物PCR和甲基化特异性多重连接探针扩增技术在脆性X综合征产前诊断中的应用", 《中华生殖与避孕杂志》 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2024001404A1 (zh) * 2022-06-27 2024-01-04 北京贝瑞和康生物技术有限公司 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒

Also Published As

Publication number Publication date
CN114807360B (zh) 2022-09-02
WO2024001404A1 (zh) 2024-01-04
TW202400807A (zh) 2024-01-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6664025B2 (ja) まれな変異およびコピー数多型を検出するためのシステムおよび方法
US20240102101A1 (en) Systems and methods to detect rare mutations and copy number variation
CN108004301B (zh) 基因目标区域富集方法及建库试剂盒
CN106086162B (zh) 一种用于检测肿瘤突变的双标签接头序列及检测方法
JP5972448B2 (ja) コピー数変異を検出する方法及びシステム
CN110628880B (zh) 一种同步使用信使rna与基因组dna模板检测基因变异的方法
CN106906211B (zh) 一种分子接头及其应用
CN110719958B (zh) 构建核酸文库的方法和试剂盒
CN110079592B (zh) 用于检测基因突变和已知、未知基因融合类型的高通量测序靶向捕获目标区域的探针和方法
WO2017219512A1 (zh) 一种游离dna文库构建方法及试剂盒
CN113564247B (zh) 同时检测先天性肾上腺皮质增生症相关9个基因多种突变的引物组和试剂盒
CN110628891A (zh) 一种对胚胎进行基因异常筛查的方法
CN114317728B (zh) 用于检测sma中多种突变的引物组、试剂盒、方法和系统
CN109182454A (zh) 一种捕获基因组特定dna片段的方法
CN114807360B (zh) 检测脆性x综合征突变的方法和试剂盒
KR20170133270A (ko) 분자 바코딩을 이용한 초병렬 시퀀싱을 위한 라이브러리 제조방법 및 그의 용도
CN112779320A (zh) 多区域dna甲基化检测探针设计及其检测方法
CN113889187A (zh) 单样本等位基因拷贝数变异检测方法、探针组和试剂盒
CN109628573B (zh) 一种用于无创产前检测12种染色体微缺失微重复综合征的试剂盒及其专用探针组
CN104726604B (zh) 一种腐败检材降解dna的检测方法及其应用
CN114438210B (zh) 一种基于高通量测序子宫内膜癌分子分型的文库构建方法
CN114277114B (zh) 一种扩增子测序添加唯一性标识符的方法及应用
CN115851905A (zh) 检测耳聋相关基因108个多态性位点突变的引物组及方法
CN108642173B (zh) 一种无创检测slc26a4基因突变的方法和试剂盒
CN109593839A (zh) 一种dna突变及甲基化状况检测方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
REG Reference to a national code

Ref country code: HK

Ref legal event code: DE

Ref document number: 40077998

Country of ref document: HK