CN114540516B - 金黄色葡萄球菌的lamp双链检测探针、试剂盒及检测方法 - Google Patents

金黄色葡萄球菌的lamp双链检测探针、试剂盒及检测方法 Download PDF

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Abstract

本发明提供一种金黄色葡萄球菌的LAMP双链检测探针、试剂盒及检测方法,属于生物技术领域。该双链检测探针包括发光探针和淬灭探针;发光探针包括依次连接的保守序列和环引物LF,保守序列的5’端标记有荧光发光基团;淬灭探针与发光探针的保守序列互补,淬灭探针的3’端标记有荧光淬灭基团。LAMP检测试剂盒包括这种双链检测探针,该试剂盒及检测方法,以金黄色葡萄球菌isdD基因为检测靶标,采用双链探针‑恒温变色体系,可兼具荧光定量PCR图谱分析及肉眼观察法来判读结果,探针特异性强,变色颜色对比明显,不易产生误判,双重体系互相映照,检测的准确性高。

Description

金黄色葡萄球菌的LAMP双链检测探针、试剂盒及检测方法
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种金黄色葡萄球菌的LAMP双链检测探针、试剂盒及检测方法。
背景技术
金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性,是一种无芽孢、鞭毛、乳酸发酵、兼性厌氧的球状细菌,为一种常见的食源性致病微生物,常寄生于人和动物的皮肤、鼻腔、咽喉、肠胃、疮口中,环境中也无处不在,往往对人体造成侵害。
目前常用的金黄色葡萄球菌检测方法包括显色培养基培养法、荧光定量PCR、LAMP恒温PCR法等,均可以有效地检测。但显色培养法存在耗时长、人为因素大等缺点,检测一个样本往往需要一周,还存在结果不一致性等缺陷。荧光定量PCR通量大,检测时间短,只需要2-4小时,但需要精密昂贵的仪器及专业检测人员,成本高,不利于推广。LAMP环介导恒温扩增法借助6条特异性引物和一种具有链置换特性的DNA聚合酶,可在等温条件下快速,高特异性和灵敏的扩增靶序列,该方法目前因其设备简单、检测时间短已广泛应用到病原菌检测领域。
环介导恒温扩增法结果判读方法主要有1:浊度法,可通过反应后肉眼观察是否存在白色絮状沉淀,判定检测结果,主观因素较强,灵敏度低。2、显色法,反应结束后加入核酸染料SYBR GREEN、HNB、钙黄绿素等,在紫外灯或肉眼条件下显示不同的颜色,结果判定简单,但需要反应结束后开盖,极易造成气溶胶污染。3、荧光检测法,该方法通过向反应体系中加入荧光染料SYBR GREEN,通过荧光PCR仪可实时观察体系中荧光变化,生成荧光曲线,通过曲线观察扩增结果,该方法闭管检测,杜绝气溶胶污染,但因SYBR GREEN染料特性,能和任意的双链DNA结合,并发生荧光,特异性低易出现假阳性。
发明内容
本发明针对现有环介导恒温扩增法结果判读上的缺陷,提供一种金黄色葡萄球菌的LAMP双链检测探针、试剂盒及检测方法,其针对金黄色葡萄球菌的isdD基因设计引物组和双链检测探针,能够快速、高效的检测出金黄色葡萄球菌存在与否,灵敏度高,特异性强,且不易出现假阳性。
本发明通过以下技术方案实现:
一方面,本发明提供一种金黄色葡萄球菌的LAMP双链检测探针,双链检测探针包括发光探针和淬灭探针;
发光探针包括依次连接的保守序列和环引物LF,保守序列的5’端标记有荧光发光基团,发光探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;
淬灭探针与发光探针的保守序列互补,淬灭探针的3’端标记有荧光淬灭基团,淬灭探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
进一步地,在本发明较佳的实施例中,上述荧光发光基团包括FAM、VIC、TET;优选为,FAM。
荧光淬灭基团包括TAMRA、QSY、BHQ,优选为TAMRA。
具体地:
发光探针:FAM-ACGCAGAGGACCCGCATGCCAATGCGGATGCGCATGCCGACAACAAGACAGTAATAAAAAG(SEQ ID NO.1);
淬灭探针:TCGGCATGCGCATCCGCATTGGCATGCGGGTCCTCTGCG T-TAMRA(SEQ IDNO.2)。
第二方面,本发明提供一种金黄色葡萄球菌的LAMP检测试剂盒,其包括上述LAMP双链检测探针。
进一步地,在本发明较佳的实施例中,上述试剂盒还包括检测引物组,检测引物组针对金黄色葡萄球菌的isdD基因编码序列设计,检测引物组包括外引物F3、外引物B3、内引物FIP、内引物BIP;
外引物F3的核苷酸序列为GCCTTTTTACTGAAAAAGGATT,如SEQ ID NO.3所示;
外引物B3的核苷酸序列为GTAACGCTTTTTCTTTTTCAACT,如SEQ ID NO.4所示;
内引物FIP的核苷酸序列为ATGCTTTAGGTCGCTCATTTTCAATTATTCCTGTACAAAAAGATAAAGTG,如SEQ ID NO.5所示;
内引物BIP的核苷酸序列为ATAGCCCTCCAACAGTAAAAAAGGTGATTTTTCATCTTTATGTTTCGGT,如SEQ ID NO.6所示。
进一步地,在本发明较佳的实施例中,上述双链检测探针中发光探针和淬灭探针的浓度比为1:1.2~1.8。
进一步地,在本发明较佳的实施例中,上述外引物F3和外引物B3的浓度均为0.15~0.25μM,内引物FIP和内引物BIP的浓度均为1.5~1.7μM。
进一步地,在本发明较佳的实施例中,上述试剂盒还包括以下一种或多种组分:DNA聚合酶、dNTPs、显色剂、甜菜碱、pH调节剂、ddH2O、阳性对照品、阴性对照品。
进一步地,在本发明较佳的实施例中,上述显色剂为酚红、甲酚或中性红。
第三方面,本发明还提供一种金黄色葡萄球菌的LAMP检测方法,其包括:利用外引物F3、外引物B3、内引物FIP、内引物BIP以及发光探针和淬灭探针在LAMP反应体系下,扩增目的基因;
发光探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;
淬灭探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;
外引物F3的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;
外引物B3的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示;
内引物FIP的核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示;
内引物BIP的核苷酸序列如SEQ ID NO.6所示。
进一步地,在本发明较佳的实施例中,在上述LAMP反应体系配制之前,还包括将发光探针和淬灭探针混合,于92~97℃下加热4~6min后,置于冰上骤冷。
进一步地,在本发明较佳的实施例中,上述LAMP反应温度为60~65℃下,反应时间为50~70min。
与现有技术相比,本发明至少具有如下技术效果:
本发明提供一种金黄色葡萄球菌的LAMP双链检测探针,相比于Taqman探针及分子信标探针法,探针序列固定,无需特别设计,极大的降低了探针设计难度,降低探针合成成本,更适用于LAMP探针应用;同时,在LAMP检测中使用这种LAMP双链检测探针,相比于SYBRGreen染料法,特异性强,无假阳性。
分子生物学方面常用来检测金黄色葡萄球菌的目的基因多为nuc耐热核酸酶基因、脱氢酶基因aroE等,但现实研究过程中发现其他菌种也具有nuc等基因,存在假阳性隐患,本申请通过比对筛选出金黄色葡萄球菌特异性靶点基因isdD基因,IsdD是金黄色葡萄球菌细胞膜表面的一种蛋白,是金黄色葡萄球菌ISD系统中的重要成员,在转运铁离子过程中发挥着重要作用,具有高度菌种特异性,适合作为检测靶标。
该试剂盒及检测方法,以金黄色葡萄球菌isdD基因为检测靶标,这种isdD基因相比于nuc基因兼具特异性及保守型,所设计引物具有良好的特异性,和其它种属细菌的同源性非常低,无交叉反应。同时,采用双链探针-恒温变色体系,可兼具荧光定量PCR图谱分析及肉眼观察法来判读结果,可适用不同的仪器,检测过程中不需要开盖,避免气溶胶污染,利于在基层使用。通过采用双链探针-恒温变色双重检测体系,探针特异性强,变色颜色对比明显,不易产生误判,双重体系互相映照,检测的准确性高。
说明书附图
图1为本发明实施例1中引物及双链探针的设计原则及位置示意图;
图2为本发明实施例3中LAMP扩增结果目视图;
图3为本发明实施例3中LAMP扩增结果荧光检测图;
图4为本发明实施例4中双链探针-恒温变色扩增体系灵敏度检测图;
图5为本发明实施例5中双链探针-恒温变色扩增体系特异性检测。
具体实施方式
下面将结合实施例对本发明的实施方案进行详细描述,但是本领域技术人员将会理解,下列实施例仅用于说明本发明,而不应视为限制本发明的范围,实施例中未注明的具体条件,按照常规条件或者制造商建议的条件进行,所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市售购买获得的常规产品。
以下对本发明的具体实施方式进行详细说明。应当理解的是,此处所描述的具体实施方式仅用于说明和解释本发明,并不用于限制本发明。
实施例1LAMP双链检测探针以及引物设计
通过查阅文献、对比筛选出金黄色葡萄球菌特有的特异性靶点基因isdD基因,应用专门的LAMP引物设计软件以isdD基因为靶标序列进行引物和探针设计,在Primer-blast上对设计好的引物和探针进行分析和优化,引物及探针设计原则及位置如图1所示,最终确定的探针和引物序列如下:
发光探针由两部分组成,5’端为一段30-45bp的保守序列,在保守序列的5’端标记荧光发光基团,如FAM、VIC、TET等,3’端为环引物LF,核苷酸序列为:FAM-ACGCAGAGGACCCGCATGCCAATGCGGATGCGC ATGCCGA-CAACAAGACAGTAATAAAAAG(SEQ ID NO.1);其中环引物LF的序列为CAACAAGACAGTAATAAAAAG(SEQ ID NO.7)。
淬灭探针的3’端标记有淬灭光基团如TAMRA、QSY、BHQ等,并和发光探针的5’端的保守序列互补:TCGGCATGCGCATCCGCATTGGCATGCGGGTCCTCTGCG T-TAMRA(SEQ ID NO.2)。
外引物F3:GCCTTTTTACTGAAAAAGGATT(SEQ ID NO.3)。
外引物B3:GTAACGCTTTTTCTTTTTCAACT(SEQ ID NO.4)。
内引物FIP:ATGCTTTAGGTCGCTCATTTTCAATTATTCCTGTACAAAAAGATAAAGTG(SEQ IDNO.5)。
内引物BIP:ATAGCCCTCCAACAGTAAAAAAGGTGATTTTTCATCTTTATGTTTCGGT(SEQ IDNO.6)。
实施例2建立金黄色葡萄球菌的LAMP检测反应体系
本实施例中构建的LAMP检测反应体系总体积为25μL,将待测样品的模板DNA加入到如表1所示的LAMP反应体系中,在60-65℃下,反应50-70min。
表1.LAMP反应体系
Figure BDA0003537096080000071
Figure BDA0003537096080000081
其中,buffer为100mmKCl、100mm(NH4)2SO4、100mmMgSO4、1%triton-100);pH调节剂为Tris-HCl。
结果判定:
(1)目视法,直接观察颜色变化,从而判定LAMP扩增的情况及样品中金黄色葡萄球菌的存在与否。
(2)荧光曲线法,利用荧光定量PCR仪收集发光基团荧光,给出扩增曲线,判断LAMP扩增的情况及样品中金黄色葡萄球菌的存在与否。
实施例3样本检测
本发明提供的试剂盒检测的真实样品,适用范围包括食品样品、粪便、呕吐物、环境拭子、水样等标本或需要对细菌存在进行检测的生物样本。
(1)样本处理:增菌后,取1ml增菌液,低速离心收集沉淀,加入200ul chelex100裂解液,震荡混匀,100℃煮沸5min,取上清作为待测模板DNA。
(2)LAMP扩增:采用如表2所示的LAMP检测反应体系,反应温度为63℃,反应时间为60min。
表2.LAMP检测反应体系
Figure BDA0003537096080000082
Figure BDA0003537096080000091
(3)结果判定:
A.目视法判定:结果如图2所示,反应结束后直接观察反应体系颜色变化,当反应体系由红色变为亮黄色(如管1和管5所示),说明成功发生了特异性扩增,待测样本中含有金黄色葡萄球菌;当反应体系保持红色(如管2~4和管6~8所示),说明未发生扩增,待测样本中不含金黄色葡萄球菌。
B.荧光曲线判定:结果如图3所示,检测到典型的扩增曲线,说明待测样本中含有金黄色葡萄球菌,由此证实了双链探针检测的可行性。
实施例3灵敏度评价
将金黄色葡萄球菌增菌液进行十倍梯度稀释后,浓度依次为:106cfu/mL、105cfu/mL、104cfu/mL、103cfu/mL、102cfu/mL按照实施例2的样本处理和反应体系对各稀释度金黄色葡萄球菌样本进行LAMP检测,以确定检测方法的灵敏度。
结果如图4所示,由图可以看出,将金黄色葡萄球菌增菌液进行10倍梯度稀释后,建立的金黄色葡萄球菌双链探针-恒温变色检测体系灵敏度可达到102cfu/mL。
实施例4特异性评价
将金黄色葡萄球菌和常见的食源性微生物(大肠杆菌O157:H7、志贺氏菌、单增李斯特氏菌、副溶血弧菌、溶血链球菌、沙门氏菌、蜡样芽胞杆菌、铜绿假单胞杆菌等)的基因组DNA,按照实施例2的反应体系和条件进行特异性实验。
结果如图5所示,由图可以看出,只有金黄色葡萄球菌对应的反应体系颜色发生变化,出现典型的荧光扩增曲线,呈现阳性反应。
最后应说明的是:以上所述仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明的保护范围。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
序列表
<110> 河南中检食安生物科技有限公司(null)
<120> 金黄色葡萄球菌的LAMP双链检测探针、试剂盒及检测方法
<160> 7
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 61
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
acgcagagga cccgcatgcc aatgcggatg cgcatgccga caacaagaca gtaataaaaa 60
g 61
<210> 2
<211> 45
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
tcggcatgcg catccgcatt ggcatgcggg tcctctgcgt tamra 45
<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
gcctttttac tgaaaaagga tt 22
<210> 4
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
gtaacgcttt ttctttttca act 23
<210> 5
<211> 50
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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atgctttagg tcgctcattt tcaattattc ctgtacaaaa agataaagtg 50
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<212> DNA
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atagccctcc aacagtaaaa aaggtgattt ttcatcttta tgtttcggt 49
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<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
caacaagaca gtaataaaaa g 21

Claims (10)

1.一种金黄色葡萄球菌的LAMP双链检测探针,其特征在于,所述双链检测探针包括发光探针、淬灭探针、外引物F3、外引物B3、内引物FIP和内引物BIP;
所述发光探针包括依次连接的保守序列和环引物LF,所述保守序列的5’端标记有荧光发光基团,所述发光探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;
所述淬灭探针与所述发光探针的保守序列互补,所述淬灭探针的3’端标记有荧光淬灭基团,所述淬灭探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;
所述外引物F3的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;
所述外引物B3的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示;
所述内引物FIP的核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示;
所述内引物BIP的核苷酸序列如SEQ ID NO.6所示。
2.根据权利要求1所述的金黄色葡萄球菌的LAMP双链检测探针,其特征在于,所述荧光发光基团包括FAM、VIC、TET;
所述荧光淬灭基团包括TAMRA、QSY、BHQ。
3.一种金黄色葡萄球菌的LAMP检测试剂盒,其特征在于,其包括如权利要求1或2所述的LAMP双链检测探针。
4.根据权利要求3所述的金黄色葡萄球菌的LAMP检测试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括检测引物组,所述检测引物组针对金黄色葡萄球菌的isdD基因编码序列设计,所述检测引物组包括外引物F3、外引物B3、内引物FIP、内引物BIP;
所述外引物F3的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;
所述外引物B3的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示;
所述内引物FIP的核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示;
所述内引物BIP的核苷酸序列如SEQ ID NO.6所示。
5.根据权利要求3所述的金黄色葡萄球菌的LAMP检测试剂盒,其特征在于,所述双链检测探针中所述发光探针和淬灭探针的浓度比为1:1.2~1.8。
6.根据权利要求4所述的金黄色葡萄球菌的LAMP检测试剂盒,其特征在于,所述外引物F3和外引物B3的浓度均为0.15~0.25μM,所述内引物FIP和所述内引物BIP的浓度均为1.5~1.7μM。
7.根据权利要求3~6任一项所述的金黄色葡萄球菌的LAMP检测试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括以下一种或多种组分:DNA聚合酶、dNTPs、显色剂、甜菜碱、pH调节剂、ddH2O、阳性对照品、阴性对照品。
8.一种金黄色葡萄球菌的LAMP检测方法,其特征在于,其包括:利用外引物F3、外引物B3、内引物FIP、内引物BIP以及发光探针和淬灭探针在LAMP反应体系下,扩增目的基因;
所述发光探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示;
所述淬灭探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示;
所述外引物F3的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;
所述外引物B3的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示;
所述内引物FIP的核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示;
所述内引物BIP的核苷酸序列如SEQ ID NO.6所示;
其中,所述LAMP检测方法是以非疾病诊断的目的检测。
9.根据权利要求8所述的金黄色葡萄球菌的LAMP检测方法,其特征在于,在所述LAMP反应体系配制之前,还包括将所述发光探针和淬灭探针混合,于92~97℃下加热4~6min后,置于冰上骤冷。
10.根据权利要求8所述的金黄色葡萄球菌的LAMP检测方法,其特征在于,所述LAMP反应的反应温度为60~65℃下,反应时间为50~70min。
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