CN111378772A - 检测乳房链球菌的特异性lamp引物、试剂盒及方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种检测乳房链球菌的特异性LAMP引物、试剂盒及方法。所述试剂盒包括6条环介导等温扩增引物:外引物F3和B3、内引物FIP和BIP及环引物LB和LF,6条引物针对乳房链球菌KX389960.1基因的保守序列设计;FIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.1所示,BIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.2所示,F3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.3所示,B3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.4所示,LB的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.5所示,LF的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.6所示。本发明解决了现有的乳房链球菌检测技术周期长、检测成本高、不能应用于现场快速检测等问题。
Description
技术领域
本发明涉及微生物检测领域,更具体地,涉及检测乳房链球菌的特异性LAMP引物、试剂盒及方法。
背景技术
乳房链球菌(Streptococcus uberis)是引起奶牛乳腺炎最常见的致病菌之一,可引起牛的临床、亚临床性乳腺炎,造成乳腺组织慢性感染,具有高度传染性,最终导致奶牛产奶量下降甚至停乳。严重制约奶牛养殖业、乳品加工业的发展,并危害公共卫生安全及人类健康。
通常,临床样本中乳房链球菌的检测仍是通过细菌分离、生化试验和CAMP试验等经典方法。但是,由于经典方法有操作繁琐、耗时长、检出率低等缺点,影响对该菌快速准确检测及所致乳房炎的治疗;现有检测乳房链球菌的聚合酶链反应(polymerase chainreaction,PCR)技术有普通PCR、多重PCR、实时荧光定量PCR等,其中这些方法特异性、灵敏度较高,但需要昂贵的仪器设备、对检测人员技术要求较高而使其不适于基层普及和推广应用。因此,建立一种简便、快速、特异、灵敏、经济可靠的乳房链球菌检测方法对奶牛乳房炎的防控非常重要。
环介导等温扩增技术(Loop-mediated Isothermal Amplification,LAMP)是由日本学者Notomi等人在2000年建立的一种新型核酸扩增技术,其原理是链置换型聚合酶在合成新链的同时置换出原链,从而为下一轮扩增制备模板,因此扩增不需要变性步骤,在等温条件下即可完成。经过二十年的发展,该技术具备了特异性强、灵敏度高、反应时间短、可视化判读检测结果、便携式操作等优势,在致病菌或疾病的临床快速检测诊断中具有良好的应用前景。
发明内容
本发明建立的可视化LAMP检测方法不仅灵敏度高,特异性强,而且反应完成后无需开盖,直接裸眼观察反应结果即可。另外,本发明的方法可避免气溶胶污染,快速得到检测结果,操作简便,只需按建立的体系加样在恒温条件下孵育30min即可裸眼判读反应结果。
本发明提供了一种检测乳房链球菌的环介导等温扩增(LAMP)引物,6条引物针对乳房链球菌KX389960.1基因的保守序列设计;包括外引物F3和B3、内引物FIP和BIP及环引物LB和LF,FIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.1所示,BIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.2所示,F3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.3所示,B3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.4所示,LB的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.5所示,LF的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.6所示。
本发明还提供了一种检测乳房链球菌的环介导等温扩增(LAMP)试剂盒,包括:10×thermpol Amplification buffer、8U反应Bst DNA聚合酶、10mM dNTPs、100mM MgSO4、5M甜菜碱、40uM F3、40uM B3、100uM FIP、100uM BIP、80uM LF、80uM LB以及16mM钙黄绿素荧光试剂;10×thermpol Amplification buffer包括:20mM Tris-HCl、10mM(NH4)2SO4、10mMKCl、2mM MgSO4、0.1%Ttiton X-100;
FIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.1所示,BIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.2所示,F3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.3所示,B3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.4所示,LB的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.5所示,LF的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.6所示。
在上述检测乳房链球菌的环介导等温扩增(LAMP)试剂盒中,包括:2uL(10×)thermpol Amplification buffer、1.0uL 8U/反应Bst DNA聚合酶、2.4uL 10mM dNTPs、1uL100mM MgSO4、0.8uL 5M甜菜碱、0.08uL 40mM F3、0.08uL 40mM B3、0.32uL 100mM FIP、0.32uL 100mM BIP、0.1uL 80mM LB、0.1uL 80mM LF以及1uL钙黄绿素荧光试剂。
本发明提供了一种检测乳房链球菌的方法,包括:
提取待检测样品基因组DNA;
构建包括以下引物的反应体系:F3和B3、FIP和BIP以及LB和LF,其中,FIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.1所示,BIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.2所示,F3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.3所示,B3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.4所示,LB的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.5所示,LF的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.6所示;
进行扩增反应;
通过荧光染料的颜色变化来确定是否存在乳房链球菌。
本发明具有以下优点:本发明针对乳房链球菌的KX389960.1基因保守序列设计筛选得到特异性LAMP引物组,对乳房链球菌的目标基因进行检测。在所检测非目标菌株中均未出现非特异性扩增,说明该发明具有高特异性;灵敏度比普通PCR高100倍;且不依赖任何专门的仪器设备即可实现现场快速检测,检测成本远低于PCR技术;检测结果可视化,肉眼判定即可(阳性结果为翠绿色,阴性结果为浅橘色)。
另外,常规的LAMP方法,需在反应结束后开盖加入SYBRGreen1荧光染料达到可视化显色(阳性结果为亮绿色,阴性结果为浅橘色),容易出现假阳性结果。而本发明使用反应体系中加入钙黄绿素作荧光染料,65℃恒温条件下孵育30min即可通过颜色变化来判读反应结果。
本发明解决了现有检测技术所需时间长、工作量大、操作复杂等不足,且有比普通检测方法更特异、灵敏的特点,适用于现场检测,具有较好的应用前景。
附图说明
图1是应用本发明乳房链球菌可视化LAMP检测方法特异性试验结果图。图中:1.阳性质粒(PUC57-KX389960.1);2.乳房链球菌ATCC700407;3.停乳链球菌ATCC12388;4.无乳链球菌ATCC13813;5.金黄色葡萄球菌CVCC545;6.肺炎链球菌ATCC13883;7.表皮葡萄球菌ATCC12228;8.白色念珠球菌ATCC10231;9.白色念珠菌ACTT90028;10.奇异变形杆菌CVCC1969;11.大肠杆菌ATCC 8739;12.大肠杆菌ETECC83922;13.绿脓假单胞菌ATCC15442;14.伤寒沙门氏菌ATCC14028;15.军团菌ATCC33152;16.宋内志贺菌ATCC 25931;17.乙型溶血性链球CMCC 3221;18.副溶血弧菌CICC 21528;19.沙门氏菌CICC 2150;20.产气荚膜梭菌ATCC13124;21.单细胞增生李斯特菌ATCC 19114;N.阴性对照(去核酸的无菌水);
图2是应用本发明乳房链球菌可视化LAMP检测方法灵敏度试验(pUC57-KX389960.1阳性质粒为模板)结果图,图中:1-7分别不同浓度乳房链球菌阳性质粒,依次为:5.0×106copies/uL、5.0×105copies/uL、5.0×104copies/uL、5.0×103copies/uL、5.0×102copies/uL、5.0×101copies/uL、5.0×100copies/uL,N阴性对照(去核酸的无菌水)。
图3是PCR方法检测乳房链球菌灵敏度试验(pUC57-KX389960.1阳性质粒为模板)结果图,图中:1-7分别不同浓度乳房链球菌阳性质粒,依次为:5.0×106copies/uL、5.0×105copies/uL、5.0×104copies/uL、5.0×103copies/uL、5.0×102copies/uL、5.0×101copies/uL、5.0×100copies/uL,N阴性对照(去核酸的无菌水)。
具体实施方式
下面的实施例可以使本领域技术人员更全面地理解本发明,但不以任何方式限制本发明。
本发明提供一种特异性强、灵敏度高、对仪器设备要求低、操作快速简单且成本低的可视化LAMP试剂盒检测乳房链球菌,以满足基层现场快速检测乳房链球菌的需要。
本发明第一个目的在于提供一种乳房链球菌特异性LAMP检测引物组。
本发明第二个目的在于提供一种乳房链球菌可视化LAMP检测试剂盒。
本发明第三个目的在于提供一种乳房链球菌可视化LAMP检测方法。不仅降低检测成本,同时提高检测的准确性。
本发明采用以下技术方案:乳房链球菌可视化LAMP检测试剂盒,包括:10×thermpol Amplification buffer,8U/reaction Bst DNA聚合酶,10mM dNTPs,100mM Mg2+,5M甜菜碱,40uM F3,40uM B3,100uM FIP,100uM BIP,80uM LF,80uM LB以及钙黄绿素;10×thermpol Amplification buffer包括:20mM Tris-HCl、10mM(NH4)2SO4、10mM KCl、2mMMgSO4、0.1%Ttiton X-100。
本发明的检测乳房链球菌的特异性LAMP引物组包括以下3对引物:外引物F3和B3、内引物FIP和BIP以及环引物LB和LF;FIP的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.1所示,BIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.2所示,F3的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.3所示,B3的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.4所示,LB的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.5所示,LF的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.6所示。
检测乳房链球菌LAMP引物组序列如下:
SEQ.ID.NO.1:AGCGGGCATCGGGATGTCAATTTTAGCGGTGGAGCATGTGGTT
SEQ.ID.NO.2:AGATAGAGCTTTACTTCGGTACATCGGTTTTACATCTCACGACACGAGCTGAC
SEQ.ID.NO.3:GCAAGGTTGAAACTCAAAGGAA
SEQ.ID.NO.4:GATGGCAACTAACAATAGGGGTT
SEQ.ID.NO.5:CAGGTGGTGCATGGTTGTCG
SEQ.ID.NO.6:CCTGGTAAGGTTCTTCGCGTT
检测乳房链球菌的LAMP检测方法,包括以下步骤:
(1)提取待检样品基因组DNA;
(2)将以下组份进行混合,构建包括3对引物包括F3和B3、FIP和BIP以及LB和LF的20μL LAMP反应体系:
表1:乳房链球菌可视化LAMP最优检测体系
(3)加样进行扩增反应;
(4)将LAMP反应体系在65℃加热30min即可完成扩增;反应于PCR仪或水浴锅或恒温金属浴。
(5)待反应完成后进行结果的判定:
扩增完成,通过观察LAMP反应体系是否有颜色变化来判断是否是乳房链球菌,若LAMP反应体系颜色发生变化(浅橘色变为翠绿色)则为阳性反应,表明在待检测对象中检测到乳房链球菌;若LAMP反应体系颜色未发生变化(仍为浅橘色)则为阴性反应,表明在待检测对象中未检测到乳房链球菌。
下面结合具体的实例进行说明,以更好地理解本发明。
(1)BLAST分析:从NCBI(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)中下载乳房链球菌KX389960.1基因序列,对所选的基因序列保守性进行比对分析。
(2)根据乳房链球菌保守基因序列(GenBank号:KX389960.1),在NCBI上进行BLAST比对分析后,基于KX389960.1基因选取一段高度保守区域,利用LAMP在线引物设计软件Primer Explorer5(http://primerexplorer.jp/e/index.html/)包括4条特异性引物和2条环引物。引物交由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。具体序列见SEQ.ID.NO.1、SEQ.ID.NO.2、SEQ.ID.NO.3、SEQ.ID.NO.4、SEQ.ID.NO.5、SEQ.ID.NO.6。
(3)实验用菌株
包括1株乳房链球菌(ATCC 700407);19株其他非目标菌株:停乳链球菌(ATCC12388);无乳链球菌(ATCC 13813);金黄色葡萄球菌(CVCC 545);肺炎链球菌(ATCC13883);表皮葡萄球菌(ATCC 12228);白色念珠球菌(ATCC 10231);白色念珠菌(ACTT90028);奇异变形杆菌(CVCC 1969);大肠杆菌(ATCC 8739);大肠杆菌(ETEC C83922);绿脓假单胞菌(ATCC 15442);伤寒沙门氏菌(ATCC 14028);军团菌(ATCC 33152);宋内志贺菌(ATCC 25931);乙型溶血性链球(CMCC 3221);副溶血弧菌(CICC 21528);沙门氏菌(CICC2150);产气荚膜梭菌(ATCC 13124);单细胞增生李斯特菌(ATCC 19114);本发明所用所有ATCC菌株均购自美国菌种保藏中心,CVCC菌株均购自中国林业微生物菌种保藏管理中心,CMCC菌株均购自中国医学微生物菌种保藏管理中心,CICC菌株均购自中国微生物菌种保藏管理中心。
(4)重组质粒的构建与扩增
根据GenBank中公布的乳房链球菌的KX389960.1基因序列,由上海生工公司进行基因合成,并该将目的基因连接至pUC57载体,质粒命名为pUC57-KX389960.1,并通过双酶切和测序验证构建质粒的准确性。将重组质粒转化到大肠杆菌DH5α感受态细胞,于添加100mg/mL Amp抗性的LB固体平板上过夜培养,挑取单克隆,并在添加100mg/mL Amp抗性的LB液体培养基中37℃、180r/min培养,一部分保存于灭菌甘油中,于-80℃保存,其余用于质粒提取。
(5)细菌DNA提取
A.取1.0mL过夜培养的菌液,置于1.5mL离心管中,12000r/min离心5min,弃上清液;
B.加入1.0mL去核酸的无菌水,混匀,12000r/min离心5min,弃上清液;
C.加入100uL去核酸的无菌水,混匀,100℃沸水浴10min;
D.12000r/min离心10min,取上清液至一个新的1.5mL离心管中,即为待检模板DNA。
(6)乳房链球菌可视化检测试剂盒配制
表2:乳房链球菌可视化LAMP检测体系
其中,10×thermpol Amplification buffer包括:20mM Tris-HCl、10mM(NH4)2SO4、10mM KCl、2mM MgSO4、0.1%Ttiton X-100;
内引物FIP序列为AGCGGGCATCGGGATGTCAATTTTAGCGGTGGAGCATGTGGTT(序列表SEQ.ID.NO.1)
内引物BIP序列为AGATAGAGCTTTACTTCGGTACATCGGTTTTACATCTCACGACACGAGCTGAC(序列表SEQ.ID.NO.2)
外引物F3序列为GCAAGGTTGAAACTCAAAGGAA(序列表SEQ.ID.NO.3)
外引物B3序列为GATGGCAACTAACAATAGGGGTT(序列表SEQ.ID.NO.4)
环引物LB序列为CAGGTGGTGCATGGTTGTCG(序列表SEQ.ID.NO.5)
环引物LF序列为CCTGGTAAGGTTCTTCGCGTT(序列表SEQ.ID.NO.6)
(7)乳房链球菌可视化LAMP反应
按照上述配制含有10×thermpol Amplification buffer 2uL、引物MIX 1uL、MgSO4(100mM)1uL、dNTPs(10mM)2.4uL、甜菜碱(5M)0.8uL、钙黄绿素荧光试剂1uL、Bst2.0DNA聚合酶1uL、模板DNA 1uL、去核酸的无菌水9.8uL,构建20uL反应体系,涡旋混匀、瞬时离心;LAMP反应程序如下:65℃反应30min。根据LAMP反应体系是否有颜色变化来判断是否有乳房链球菌。若LAMP反应体系颜色发生变化(浅橘色变为翠绿色)则为阳性反应,表明在待检测对象中检测到乳房链球菌;若LAMP反应体系颜色未发生变化(仍为浅橘色)则为阴性反应,表明在待检测对象中未检测到乳房链球菌。
(8)特异性实验
以上述乳房链球菌阳性质粒(PUC57-KX389960.1)、1株乳房链球菌ATCC 700407标准株及其他19株非目标菌株进行特异性试验。采用上述乳房链球菌可视化LAMP试剂盒进行特异性检测,以去核酸的无菌水为阴性对照,按照前述乳房链球菌LAMP反应体系和反应条件进行反应。
结果见图1,可视化结果显示只有乳房链球菌阳性质粒(PUC57-KX389960.1)及乳房链球菌ATCC 700407标准株的基因组DNA检测结果为阳性(呈翠绿色),其他非目标菌株基因组DNA及阴性对照均为阴性(呈橙黄色)。
(9)灵敏度实验
用质粒提取试剂盒提取乳房链球菌阳性质粒(PUC57-KX389960.1),Nanodrop8000核酸浓度测定仪测定其浓度和纯度。根据基因拷贝数计算公式计算初始浓度,并将初始浓度调整为5.0×106copies/uL。然后,用去核酸的无菌水进行10倍倍比梯度稀释得到不同浓度的质粒作为扩增模板进行灵敏度试验,浓度分别为5.0×106copies/uL、5.0×105copies/uL、5.0×104copies/uL、5.0×103copies/uL、5.0×102copies/uL、5.0×101copies/uL、5.0×100copies/uL。结果见图2。
乳房链球菌可视化LAMP检测方法检出限与PCR方法对比,乳房链球菌PCR反应组成如下:20uL反应体系中2×Ex TaqMix 10uL,上游引物(10uM)0.25uL,下游引物(10uM)0.25uL,模板DNA 1uL,去核酸无菌水8.5uL。扩增程序为:95℃预变性5min,95℃变性20s,65℃退火20s共进行30个循环,最后再经72℃延伸7min。将PCR产物在1%琼脂糖凝电泳中进行电泳,结果见图3。
乳房链球菌LAMP方法的检测限为5.0×101copies/uL,常规PCR检测限为5.0×103copies/uL。LAMP方法灵敏度比普通PCR高100倍。
(10)临床样本的检测
149份牛奶样本采集于宁夏回族自治区银川市周边3家规模化奶牛养殖场。采用上述已建立的可视化LAMP方法和普通PCR方法,分别对所采集的149份牛奶样本进行乳房链球菌核酸检测。如表3所示,结果表明,在149份样本中,可视化LAMP检测方法对乳房链球菌的检出率为18.8%,而普通PCR方法对乳房链球菌的检出率仅为2.7%。
表3:LAMP方法和PCR方法检测实际样品结果
本领域技术人员应理解,以上实施例仅是示例性实施例,在不背离本申请的精神和范围的情况下,可以进行多种变化、替换以及改变。
序列表
<110> 宁夏大学
<120> 检测乳房链球菌的特异性LAMP引物、试剂盒及方法
<130> HP191212LZ
<160> 6
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 43
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
agcgggcatc gggatgtcaa ttttagcggt ggagcatgtg gtt 43
<210> 2
<211> 53
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
agatagagct ttacttcggt acatcggttt tacatctcac gacacgagct gac 53
<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 3
gcaaggttga aactcaaagg aa 22
<210> 4
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 4
gatggcaact aacaataggg gtt 23
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 5
caggtggtgc atggttgtcg 20
<210> 6
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 6
cctggtaagg ttcttcgcgt t 21
Claims (4)
1.一种检测乳房链球菌的环介导等温扩增(LAMP)引物,其特征在于,6条引物针对乳房链球菌KX389960.1基因的保守序列设计;包括外引物F3和B3、内引物FIP和BIP及环引物LB和LF,FIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.1所示,BIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.2所示,F3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.3所示,B3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.4所示,LB的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.5所示,LF的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.6所示。
2.一种检测乳房链球菌的环介导等温扩增(LAMP)试剂盒,其特征在于,包括:10×thermpol Amplification buffer、8U反应Bst DNA聚合酶、10mM dNTPs、100mM MgSO4、5M甜菜碱、40uM F3、40uM B3、100uM FIP、100uM BIP、80uM LF、80uM LB以及16mM钙黄绿素荧光试剂;10×thermpol Amplification buffer包括:20mM Tris-HCl、10mM(NH4)2SO4、10mMKCl、2mM MgSO4、0.1%Ttiton X-100;
FIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.1所示,BIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.2所示,F3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.3所示,B3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.4所示,LB的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.5所示,LF的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.6所示。
3.根据权利要求2所述的检测乳房链球菌的环介导等温扩增(LAMP)试剂盒,其特征在于,包括:2uL(10×)thermpolAmplification buffer、1.0uL 8U/反应Bst DNA聚合酶、2.4uL 10mM dNTPs、1uL 100mM MgSO4、0.8uL 5M甜菜碱、0.08uL 40mM F3、0.08uL 40mMB3、0.32uL 100mM FIP、0.32uL 100mM BIP、0.1uL 80mM LB、0.1uL 80mM LF以及1uL钙黄绿素荧光试剂。
4.一种检测乳房链球菌的方法,包括:
提取待检测样品基因组DNA;
构建包括以下引物的反应体系:F3和B3、FIP和BIP以及LB和LF,其中,FIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.1所示,BIP的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.2所示,F3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.3所示,B3的核苷酸序列如SEQ.ID.N0.4所示,LB的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.5所示,LF的核苷酸序列如SEQ.ID.NO.6所示;
进行扩增反应;
通过荧光染料的颜色变化来确定是否存在乳房链球菌。
Priority Applications (1)
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