CN114438024A - 一种干细胞制剂的制备方法 - Google Patents
一种干细胞制剂的制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN114438024A CN114438024A CN202210156311.1A CN202210156311A CN114438024A CN 114438024 A CN114438024 A CN 114438024A CN 202210156311 A CN202210156311 A CN 202210156311A CN 114438024 A CN114438024 A CN 114438024A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- umbilical cord
- cells
- cell
- preparation
- culture
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims abstract description 27
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 title claims abstract description 13
- 210000003954 umbilical cord Anatomy 0.000 claims abstract description 55
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 47
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 claims abstract description 26
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims abstract description 20
- 210000002901 mesenchymal stem cell Anatomy 0.000 claims abstract description 13
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims abstract description 10
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims abstract description 10
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 claims abstract description 4
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 claims abstract description 4
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims abstract description 4
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 claims description 12
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 claims description 11
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 claims description 9
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 claims description 9
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 claims description 9
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 claims description 9
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 claims description 7
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 7
- 230000029087 digestion Effects 0.000 claims description 6
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims description 6
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 6
- 238000005086 pumping Methods 0.000 claims description 6
- 239000000654 additive Substances 0.000 claims description 3
- 238000010009 beating Methods 0.000 claims description 3
- 238000001514 detection method Methods 0.000 claims description 3
- 230000004927 fusion Effects 0.000 claims description 3
- PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N gold Chemical compound [Au] PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 3
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 3
- 238000003753 real-time PCR Methods 0.000 claims description 3
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 3
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims description 3
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims description 3
- 239000000872 buffer Substances 0.000 claims 1
- 239000010419 fine particle Substances 0.000 claims 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 abstract description 3
- 238000005054 agglomeration Methods 0.000 abstract description 2
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 abstract description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 6
- 210000004271 bone marrow stromal cell Anatomy 0.000 description 4
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 2
- 206010067484 Adverse reaction Diseases 0.000 description 1
- 102000008100 Human Serum Albumin Human genes 0.000 description 1
- 108091006905 Human Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- 230000006838 adverse reaction Effects 0.000 description 1
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 1
- 230000001684 chronic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 210000002865 immune cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 208000020431 spinal cord injury Diseases 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0662—Stem cells
- C12N5/0668—Mesenchymal stem cells from other natural sources
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2509/00—Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2509/00—Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes
- C12N2509/10—Mechanical dissociation
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种干细胞制剂的制备方法,包括以下步骤:选取脐带样品、脐带样品处理、设置初始培养基、设置完整培养基、离心收集细胞悬液、细胞悬液再培养、加入血白蛋白等等。本发明与现有技术相比的优点在于:本发明提供的干细胞制剂的制备方法的P4代脐带间充质干细胞具有细胞数量多且表型稳定,用细胞筛过滤细胞制剂,将成团细胞过滤掉,防止细胞成团,大大提高了细胞活率。
Description
技术领域
本发明涉及免疫细胞细胞实验领域,具体是指一种干细胞制剂的制备方法。
背景技术
近来,脐带间充质干细胞成为研究的热点。脐带MSCs来源广泛,易获得,并具有MSCs的所有特性。与骨髓来源的MSCs进行对比,脐带间充质干细胞更高水平表达CD146,一种代表MSCs的多向分化能力的标志物,且分化增殖能力更强。脐带间充质干细胞在慢性脊髓损伤的临床治疗研究结果显示,接受治疗的患者改善明显,生活质量得到很大提高,而不良反应发生率低,是非常安全的治疗方法。
发明内容
本发明要解决的技术问题是克服现有技术的不足之处,提供一种干细胞制剂的制备方法。
为解决上述技术问题,本发明提供的技术方案为:一种干细胞制剂的制备方法,包括以下步骤:
步骤一、选取脐带样品,将脐带与胶体金、荧光定量PCR混合后,检测脐带血清成分;
步骤二、脐带样品处理,脐带样品从采集瓶中取出并置于无菌器皿中,用无菌手术剪剪成1-4cm的脐带小段样品后分别放入无菌烧杯中进行表面清洗,清洗完成后放入弯盘并用无菌手术剪剪成1-3mm的脐带小块样品,并将脐带小块样品均匀铺设在培养皿底部;
步骤三、设置初始培养基,将带有脐带小块样品的培养皿放入干燥箱干燥40min,拿出后向培养皿内放入富含15%添加物的培养基,保证每周更换一次培养基并在期间观察组织贴块边缘细胞生长情况,待多数组织块细胞爬出且每个块组织块周围的细胞生长至75%融合值时,进行脐带间充质干细胞的原代传代;
步骤四、设置完整培养基,观察步骤三中的间充质干细胞细胞传至P3代时,6500cells/cm2的密度接种于T175培养瓶中,加入35ml的DF12完全培养基;待细胞长至90%左右融合时,用10mL PBS缓冲液冲洗细胞表面3次;
步骤五、将步骤四的PBS缓冲液清理干净后加入5mL胰蛋白酶消化,轻轻晃动培养瓶使胰蛋白酶覆盖瓶底,迅速在镜下观察,待细胞皱缩成球状时轻轻拍打培养瓶外侧使细胞漂浮起来;用移液管移取两倍胰蛋白酶量的培养基至培养皿中,终止消化;
步骤六、离心收集细胞悬液,选用1600rpm的离心机进行10min离心处理,选用移液管将离心后的上清液去除并用40mL生理盐水重悬细胞,得到细胞筛过滤细胞悬液;
步骤七、细胞悬液再培养,取0.4mL过滤后的细胞悬液,用血球计数板计数,计算所需细胞量的细胞悬液体积,并取1*106细胞悬液做流式,用注射器抽出与所需细胞悬液体积相等的生理盐水,将细胞悬液打回100mL生理盐水袋中,轻轻颠倒生理盐水袋混匀细胞;
步骤八、加入血白蛋白,分别在0h、4h计数,计算细胞活率;制剂在8℃条件下分别储存0h、2h、4h、6h、24h并计算相应的细胞活率。
本发明与现有技术相比的优点在于:本发明提供的干细胞制剂的制备方法的P4代脐带间充质干细胞具有细胞数量多且表型稳定,用细胞筛过滤细胞制剂,将成团细胞过滤掉,防止细胞成团,大大提高了细胞活率。
进一步的,步骤一的成分检测包括抗-HCV、HCV-RNA、抗-HDV、抗HEV、抗-HIV-1/2、HIV-1-RNA 及CMV-DNA。
进一步的,步骤二中选用PBS缓冲液对脐带小段样品内外进行反复冲洗,直至PBS缓冲液冲洗后无血色。
进一步的,步骤三中培养基用量标准为浸没培养皿底部的脐带小块样品上沿且保证液面平齐。
具体实施方式
下面对本发明做进一步的详细说明。
本发明在具体实施时,提出一种干细胞制剂的制备方法,包括以下步骤:
步骤一、选取脐带样品,将脐带与胶体金、荧光定量PCR混合后,检测脐带血清成分;
步骤二、脐带样品处理,脐带样品从采集瓶中取出并置于无菌器皿中,用无菌手术剪剪成1-4cm的脐带小段样品后分别放入无菌烧杯中进行表面清洗,清洗完成后放入弯盘并用无菌手术剪剪成1-3mm的脐带小块样品,并将脐带小块样品均匀铺设在培养皿底部;
步骤三、设置初始培养基,将带有脐带小块样品的培养皿放入干燥箱干燥40min,拿出后向培养皿内放入富含15%添加物的培养基,保证每周更换一次培养基并在期间观察组织贴块边缘细胞生长情况,待多数组织块细胞爬出且每个块组织块周围的细胞生长至75%融合值时,进行脐带间充质干细胞的原代传代;
步骤四、设置完整培养基,观察步骤三中的间充质干细胞细胞传至P3代时,6500cells/cm2的密度接种于T175培养瓶中,加入35ml的DF12完全培养基;待细胞长至90%左右融合时,用10mL PBS缓冲液冲洗细胞表面3次;P4代脐带间充质干细胞具有细胞数量多,表型稳定。
步骤五、将步骤四的PBS缓冲液清理干净后加入5mL胰蛋白酶消化,轻轻晃动培养瓶使胰蛋白酶覆盖瓶底,迅速在镜下观察,待细胞皱缩成球状时轻轻拍打培养瓶外侧使细胞漂浮起来;用移液管移取两倍胰蛋白酶量的培养基至培养皿中,终止消化;
步骤六、离心收集细胞悬液,选用1600rpm的离心机进行10min离心处理,选用移液管将离心后的上清液去除并用40mL生理盐水重悬细胞,得到细胞筛过滤细胞悬液;用细胞筛过滤细胞制剂,将成团细胞过滤掉,防止细胞成团。
步骤七、细胞悬液再培养,取0.4mL过滤后的细胞悬液,用血球计数板计数,计算所需细胞量的细胞悬液体积,并取1*106细胞悬液做流式,用注射器抽出与所需细胞悬液体积相等的生理盐水,将细胞悬液打回100mL生理盐水袋中,轻轻颠倒生理盐水袋混匀细胞;
步骤八、加入血白蛋白,分别在0h、4h计数,计算细胞活率;制剂在8℃条件下分别储存0h、2h、 4h、6h、24h并计算相应的细胞活率。加入一定量的人血白蛋白可以提高细胞活率。完成后8℃储存,短期内细胞活率不会大幅度变化
步骤一的成分检测包括抗-HCV、HCV-RNA、抗-HDV、抗HEV、抗-HIV-1/2、HIV-1-RNA及CMV-DNA。
步骤二中选用PBS缓冲液对脐带小段样品内外进行反复冲洗,直至PBS缓冲液冲洗后无血色。
步骤三中培养基用量标准为浸没培养皿底部的脐带小块样品上沿且保证液面平齐。
以上显示和描述了本发明的基本原理和主要特征以及本发明的优点,本行业的技术人员应该了解,本发明不受上述实施例的限制,上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理,在不脱离本发明精神和范围的前提下,本发明还会有各种变化和改进,这些变化和改进都落入要求保护的本发明范围内。本发明要求保护范围由所附的权利要求书及其等效物界定。
Claims (4)
1.一种干细胞制剂的制备方法,其特征在于包括以下步骤:
步骤一、选取脐带样品,将脐带与胶体金、荧光定量PCR混合后,检测脐带血清成分;
步骤二、脐带样品处理,脐带样品从采集瓶中取出并置于无菌器皿中,用无菌手术剪剪成1-4cm的脐带小段样品后分别放入无菌烧杯中进行表面清洗,清洗完成后放入弯盘并用无菌手术剪剪成1-3mm的脐带小块样品,并将脐带小块样品均匀铺设在培养皿底部;
步骤三、设置初始培养基,将带有脐带小块样品的培养皿放入干燥箱干燥40min,拿出后向培养皿内放入富含15%添加物的培养基,保证每周更换一次培养基并在期间观察组织贴块边缘细胞生长情况,待多数组织块细胞爬出且每个块组织块周围的细胞生长至75%融合值时,进行脐带间充质干细胞的原代传代;
步骤四、设置完整培养基,观察步骤三中的间充质干细胞细胞传至P3代时,6500cells/cm2的密度接种于T175培养瓶中,加入35ml的DF12完全培养基;待细胞长至90%左右融合时,用10mL PBS缓冲液冲洗细胞表面3次;
步骤五、将步骤四的PBS缓冲液清理干净后加入5mL胰蛋白酶消化,轻轻晃动培养瓶使胰蛋白酶覆盖瓶底,迅速在镜下观察,待细胞皱缩成球状时轻轻拍打培养瓶外侧使细胞漂浮起来;用移液管移取两倍胰蛋白酶量的培养基至培养皿中,终止消化;
步骤六、离心收集细胞悬液,选用1600rpm的离心机进行10min离心处理,选用移液管将离心后的上清液去除并用40mL生理盐水重悬细胞,得到细胞筛过滤细胞悬液;
步骤七、细胞悬液再培养,取0.4mL过滤后的细胞悬液,用血球计数板计数,计算所需细胞量的细胞悬液体积,并取1*106细胞悬液做流式,用注射器抽出与所需细胞悬液体积相等的生理盐水,将细胞悬液打回100mL生理盐水袋中,轻轻颠倒生理盐水袋混匀细胞;
步骤八、加入血白蛋白,分别在0h、4h计数,计算细胞活率;制剂在8℃条件下分别储存0h、2h、4h、6h、24h并计算相应的细胞活率。
2.根据权利要求1所述的一种干细胞制剂的制备方法,其特征在于:所述步骤一的成分检测包括抗-HCV、HCV-RNA、抗-HDV、抗HEV、抗-HIV-1/2、HIV-1-RNA及CMV-DNA。
3.根据权利要求1所述的一种干细胞制剂的制备方法,其特征在于:所述步骤二中选用PBS缓冲液对脐带小段样品内外进行反复冲洗,直至PBS缓冲液冲洗后无血色。
4.根据权利要求1所述的一种干细胞制剂的制备方法,其特征在于:所述步骤三中培养基用量标准为浸没培养皿底部的脐带小块样品上沿且保证液面平齐。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202210156311.1A CN114438024A (zh) | 2022-02-21 | 2022-02-21 | 一种干细胞制剂的制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202210156311.1A CN114438024A (zh) | 2022-02-21 | 2022-02-21 | 一种干细胞制剂的制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN114438024A true CN114438024A (zh) | 2022-05-06 |
Family
ID=81374464
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202210156311.1A Pending CN114438024A (zh) | 2022-02-21 | 2022-02-21 | 一种干细胞制剂的制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN114438024A (zh) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105524877A (zh) * | 2014-09-29 | 2016-04-27 | 四川新生命干细胞科技股份有限公司 | 一种脐带间充质干细胞的分离方法 |
CN106566803A (zh) * | 2016-10-18 | 2017-04-19 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种培养液及其应用和培养脐带间充质干细胞的方法 |
CN107779431A (zh) * | 2016-08-30 | 2018-03-09 | 天津市康婷生物工程有限公司 | 干细胞制剂的制备方法 |
-
2022
- 2022-02-21 CN CN202210156311.1A patent/CN114438024A/zh active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105524877A (zh) * | 2014-09-29 | 2016-04-27 | 四川新生命干细胞科技股份有限公司 | 一种脐带间充质干细胞的分离方法 |
CN107779431A (zh) * | 2016-08-30 | 2018-03-09 | 天津市康婷生物工程有限公司 | 干细胞制剂的制备方法 |
CN106566803A (zh) * | 2016-10-18 | 2017-04-19 | 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 | 一种培养液及其应用和培养脐带间充质干细胞的方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
李志刚 等: "不同保存液及放置时间对脐带源间充质干细胞存活率的影响", 《中国组织工程研究》, vol. 19, no. 23, pages 3664 - 3668 * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN107299082A (zh) | 从组织中分离胎盘间质细胞并培养成间充质干细胞的方法 | |
CN113136364B (zh) | 一种壁蜕膜间充质干细胞的制备方法、复苏方法 | |
CN107581186A (zh) | 细胞冻存液及其制备方法与应用 | |
CN114438024A (zh) | 一种干细胞制剂的制备方法 | |
CN110791474A (zh) | 一种髓核细胞的分离及体外培养方法 | |
CN106399236A (zh) | 一种促进脂肪干细胞生长的培养方法 | |
CN110964693A (zh) | 一种脐带间充质干细胞的分离方法 | |
CN108192864A (zh) | 一种人羊膜间充质干细胞体外分离培养方法 | |
CN111235091A (zh) | 一种人自体脂肪血管基质成分svf的提取试剂及提取方法 | |
JP2002087971A (ja) | 生体組織再生用細胞の分離方法及び装置 | |
CN110484498A (zh) | 一种利用脐带血制备血清替代物的方法 | |
CN107779431A (zh) | 干细胞制剂的制备方法 | |
CN113322228B (zh) | 用于治疗肿瘤的壁蜕膜间充质干细胞培养基、共培方法 | |
CN110885784A (zh) | 一种临床应用级脂肪干细胞及其制备方法 | |
CN112779214B (zh) | 一种临床级svf的制备方法 | |
CN109288867A (zh) | 一种复合羊膜粉制剂的制备方法 | |
CN112393957B (zh) | 一种简易的鱼类染色体核型制备方法 | |
CN116790487A (zh) | 一种高效制备高活性脐带间充质干细胞的方法 | |
CN209048767U (zh) | 一种干细胞体外富集筛选系统 | |
CN112280733A (zh) | 一种羊膜干细胞的提取方法 | |
CN108728407A (zh) | 一种利用外置式超声波高效富集基质血管片段细胞材料的制备方法 | |
CN112029716A (zh) | 一种胎盘羊膜间充质干细胞的分离制备方法 | |
CN110592005A (zh) | 间充质干细胞的分离方法 | |
CN114990060B (zh) | 一种促脐带组织块贴壁的方法 | |
CN113262239A (zh) | 一种将自体脂肪间充至干细胞应用到治疗皮肤损伤的方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20220506 |