CN113577381A - 基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨及其应用 - Google Patents

基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明涉及基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨及其应用。首先将水溶性高分子交联形成微米尺寸的凝胶,冷冻干燥得到微凝胶支架材料。然后将软骨细胞或干细胞接种于微凝胶支架,经体外诱导分化、培养后,即可得到基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨。本发明还提供基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨在整形美容、软骨缺损修复与再生等领域的应用。本发明提供的基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨采用负载软骨细胞的微凝胶进行体外培养获得,大大降低了制备可注射软骨所需的细胞量,从而大幅度降低传统可注射软骨的使用成本。

Description

基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨及其应用
技术领域
本发明涉及生物医学组织工程领域,尤其涉及一种基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨及其应用。
背景技术
可注射软骨在软骨缺损填充与组织再生领域有着重要的应用前景。当前,可注射软骨可以通过取自体软骨制备软骨颗粒用于直接注射;也可以通过膜片技术,将自体软骨种子细胞在体外扩增,制成足够剂量且可用于注射的自体新生软骨微粒,从而实现自体软骨的注射回植。
但是,现在基于软骨膜片技术制备的可注射软骨也面临着一些问题,如力学强度不够、颗粒均质度不够、成本昂贵等。
组织工程理念的兴起为可注射软骨的构建提供了全新的思路,结合可注射型支架材料负载软骨细胞或干细胞有望解决现在可注射软骨技术的一些缺陷。在众多支架材料中,水凝胶材料以其高度含水、合适的力学强度,是组织工程与再生医学领域最为理想的支架材料。但是如何将水凝胶材料应用于可注射软骨制备上仍然存在一定的技术难度。
发明内容
本发明的目的在于提供一种基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨及其应用。
本发明的目的可以通过以下技术方案来实现:
本发明的第一个目的是提供微凝胶支架材料的制备方法。
本发明中,微凝胶支架材料的制备方法为微凝胶经冷冻干燥后,即得到微凝胶支架材料;所述微凝胶是指将水凝胶制备成微米尺寸范围内的凝胶;所述水凝胶材料是由水溶性高分子通过物理交联或化学交联或光交联中的一种或多种交联方式获得。即,微凝胶支架材料的制备方法为:水溶性高分子经一定制备方法交联形成微米尺寸的凝胶,经冷冻干燥,即可得到微凝胶支架材料。
由于制备的微凝胶尺寸较小,往往小于注射器的内径,所以易于实现水凝胶的可注射。
本发明中,所述微凝胶的尺寸可以为1μm-1mm,优选为100μm-500μm。
在本发明的一个实施方式中,所述水凝胶材料是由水溶性高分子通过物理交联或化学交联或光交联中的一种或多种交联方式,或单一交联方式的多种材料组合交联形成。
在本发明的一个实施方式中,所述水溶性高分子选自天然高分子材料或合成高分子材料。
在本发明的一个实施方式中,所述天然高分子材料包括天然多糖类物质及其修饰物或降解物,蛋白及其修饰物或降解物。
在本发明的一个实施方式中,所述天然多糖类物质包括透明质酸、羧甲基纤维素、甲基纤维素、羟乙基纤维素、羟丙基纤维素、海藻酸、葡聚糖、琼脂糖、肝素、硫酸软骨素、乙二醇壳聚糖、丙二醇壳聚糖、壳聚糖乳酸盐、羧甲基壳聚糖或壳聚糖季铵盐。
在本发明的一个实施方式中,所述蛋白包括各种亲水或水溶性动植物蛋白、胶原蛋白、血清蛋白、丝素蛋白、弹性蛋白。
在本发明的一个实施方式中,所述蛋白降解物包括明胶或多肽。
在本发明的一个实施方式中,所述合成高分子材料包括两臂或多臂聚乙二醇、聚乙烯亚胺、树枝体、合成多肽、聚赖氨酸、聚谷氨酸、聚丙烯酸、聚甲基丙烯酸、聚丙烯酸酯、聚甲基丙烯酸酯、聚丙烯酰胺、聚甲基丙烯酰胺、聚乙烯醇、聚乙烯吡咯烷酮。
在本发明的一个实施方式中,所述水凝胶材料优选为天然多糖类或蛋白类高分子,进一步优选为透明质酸、明胶。
本发明中,将水凝胶制备成微米尺寸范围内的凝胶的方法包括机械研磨法、乳液聚合法、微流控技术、自组装、喷雾法等。优选为机械研磨法、微流控技术。
在本发明的一个实施方式中,微凝胶制备可实现的实施方式:将透明质酸溶于去离子水,加入交联剂搅拌反应,然后将交联透明质酸倒入透析袋中,用去离子水透析2-3d,除去多余的交联剂,通过机械研磨的方式制备交联透明质酸的微凝胶,然后冷冻干燥,并筛选合适尺寸的微颗粒,即可得到所述的交联透明质酸微凝胶。
上述交联剂可以选用BDDE(丁二醇缩水甘油醚),DVS(二乙烯基砜),ADH(乙二酸二酰肼),EDC(碳二亚胺),GMA(甲基丙烯酸缩水甘油酯)。进一步优选为BDDE或DVS交联剂。
在本发明的一个实施方式中,微凝胶制备可实现的实施方式:将水凝胶前体溶液作为连续相(水相),以质量比为8:2的液体石蜡和司盘80的混合溶液作为分散相(油相)。利用注射泵将水相和油相从不同的通道注射到微流控芯片中,在两相交汇处,水相被油相剪切得到单乳液液滴,然后在管道中继续被向前推进,通过交联反应形成微凝胶,并收集至烧杯中。然后冷冻干燥,并筛选合适尺寸的微颗粒,即可得到所述的微凝胶。
上述水凝胶可以选用透明质酸、羧甲基纤维素、海藻酸、葡聚糖、硫酸软骨素、乙二醇壳聚糖、羧甲基壳聚糖、胶原蛋白、丝素蛋白、弹性蛋白、明胶、多肽。优选为透明质酸、海藻酸、硫酸软骨素、乙二醇壳聚糖、明胶。
上述交联反应可以选用物理交联或化学交联或光交联,所述物理交联包括热缩合(温敏性):聚异丙基丙烯酰胺(PNIPAAm)、嵌段共聚物(PEO-PPO-PEO、PLGA-PEG-PLGA、PEG-PLLA-PEG、PCL-PEG-PCL等);自组装作用:亲疏水作用、氢键作用、主客体相互作用;离子交联:海藻酸与钙离子;静电相互作用:壳聚糖与磷酸类物质。所述化学交联包括叠氮-炔点击反应、巯基-迈克尔加成反应、酰胺缩合反应、席夫碱反应、狄尔斯-阿尔德反应等。所述光交联是指在光源照射下生成的自由基,引发含甲基丙烯酸酯基的高分子衍生物上双键官能团的聚合反应。
在本发明的一个实施方式中,物理交联水凝胶采用海藻酸与钙离子的交联,即海藻酸与钙离子通过络合作用交联制备水凝胶,即海藻酸水凝胶。所述海藻酸水凝胶可实现的实施方式:将海藻酸高分子溶于生物相容性介质,配成一定浓度的水凝胶前体溶液,加入一定量的钙离子溶液搅拌均匀后,即可获得物理交联的海藻酸水凝胶。
在本发明的一个实施方式中,化学交联水凝胶采用席夫碱反应制备,即含醛基的高分子衍生物与含胺基的高分子衍生物通过席夫碱反应交联制备水凝胶。所述席夫碱水凝胶可实现的实施方式:将含醛基的高分子衍生物和含氨基的高分子衍生物分别溶于生物相容性介质,配成一定浓度的水凝胶前体溶液,混合均匀后,即可获得化学交联的席夫碱水凝胶。
所述含醛基的高分子衍生物的制备方法为邻二醇氧化法,即利用高碘酸钠氧化含邻二醇结构的高分子衍生物得到醛基官能团(参考文献Brendan P.Purcell,David Lobb,Jason A.Burdick,et al.Nat.Mater.2014,13,653.)。所述含醛基的高分子衍生物可实现的实施方式:将含有邻二醇结构的水溶性高分子衍生物于蒸馏水中溶解,加入一定量的高碘酸钠,室温下搅拌反应5-12h,加入乙二醇淬灭反应。然后将反应液倒入透析袋中透析2-3d,然后冷冻干燥,即可得到所述的含醛基的高分子衍生物。反应中,水溶性高分子中的邻二醇结构与高碘酸钠的摩尔比优选为1:0.1-2;高分子溶液的质量浓度优选为1.0%-10%w/v。
所述含醛基的高分子衍生物的制备方法中,含有邻二醇结构的水溶性高分子衍生物可以为多糖类(如葡聚糖、透明质酸、羧甲基纤维素、海藻酸、硫酸软骨素等),优选为透明质酸、硫酸软骨素。
所述含胺基的高分子衍生物可以是天然含胺基多糖类亲水或水溶性高分子及其修饰物或降解物(如乙二醇壳聚糖、丙二醇壳聚糖、壳聚糖乳酸盐、羧甲基壳聚糖、壳寡糖等);也可以是生物或经微生物表达后提取的蛋白及其改性物或降解物(如胶原,血清蛋白及明胶等)。优选为明胶、羧甲基壳聚糖。
在本发明的一个实施方式中,光交联构建的水凝胶材料是通过光引发聚合交联反应制备,即光引发剂在光源照射下生成的自由基,引发含甲基丙烯酸酯基的高分子衍生物上双键官能团的聚合反应,从而制备光交联水凝胶。
在本发明的一个实施方式中,光交联水凝胶可实现的实施方式:将含甲基丙烯酸酯基的高分子衍生物和光引发剂溶于生物相容性介质,配成一定浓度的水凝胶前体溶液,在254nm-450nm(优选为365nm或405nm)波长的光源照射下,即可获得光交联水凝胶。
所述含甲基丙烯酸酯基的高分子衍生物的制备方法:将含羟基或胺基的水溶性高分子溶于去离子水,冷却至0-4℃,加入甲基丙烯酸酐,再缓慢滴加5M NaOH,反应24h,然后将反应液倒入透析袋中,用去离子水透析2-3d,然后冷冻干燥,即可得到所述的含甲基丙烯酸酯基的高分子衍生物。
上述含羟基或胺基的多糖类(如:透明质酸、海藻酸、羧甲基纤维素、羧甲基壳聚糖、葡聚糖、硫酸软骨素等)、含羟基或胺基的蛋白或多肽类(如:明胶等),优选为透明质酸、明胶、海藻酸、羧甲基纤维素、硫酸软骨素,进一步优选为透明质酸、明胶。
上述光交联水凝胶可实现的实施方式中,用于构建光交联水凝胶材料的光引发剂可以选用I 2959(2-羟基-4'-(2-羟乙氧基)-2-甲基苯丙酮)或LAP(苯基-2,4,6-三甲基苯甲酰基膦酸锂)。
在本发明的一个实施方式中,所述生物相容性介质选自蒸馏水、生理盐水、缓冲液或细胞培养基溶液。根据不同的应用,可选取不同的生物相容性介质。
在本发明的一个实施方式中,所述一定浓度的水凝胶前体溶液可以为0.1%w/v-60%w/v,优选为1%w/v-20%w/v。
本发明还提供基于上述方法获得的微凝胶支架材料。
本发明的第二个目的是提供基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的方法。
本发明中,基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的方法:提取自体或异体的软骨细胞或干细胞,在体外诱导分化、扩增并传代,然后接种于微凝胶支架材料,孵育,经一定的培养方式培养一段时间即可获得可注射软骨。
本发明中,所述软骨细胞来源于自体或异体的软骨组织,优选为耳软骨、关节软骨、半月板软骨、肋软骨等。所述干细胞来源于自体或异体的干细胞,优选为骨髓间充质干细胞、脂肪干细胞、胚胎干细胞等。
在本发明的一个实施方式中,孵育的时间为24小时。
本发明中,所述培养方式为静态培养或动态培养,静态培养方式即将负载细胞的凝胶微球放置于孔板中培养,动态培养方式即将负载细胞的微球放置于生物反应器中搅拌或加压培养。
本发明中,所述培养一段时间为1天-12月,优选为2周-12周。
在本发明的一个实施方式中,所述细胞优选自体耳软骨细胞,培养方式优选为搅拌型生物反应器培养,培养时间优选为4周。
在本发明的一个实施方式中,所述基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的可实现的实施方式:通过机械研磨法制备BDDE交联的透明质酸微凝胶,并包裹软骨细胞,通过静态培养方式置于孔板中培养4周,即可获得可注射软骨。
在本发明的一个实施方式中,所述基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的可实现的实施方式:将海藻酸高分子溶于生物相容性介质,配成一定浓度的水凝胶前体溶液,通过微流控技术制备一定尺寸的微凝胶,并加入一定量的钙离子溶液进行交联,并包裹软骨细胞,通过静态培养方式置于孔板中培养4周,即可获得可注射软骨。
在本发明的一个实施方式中,所述基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的可实现的实施方式:将含醛基的高分子衍生物和含氨基的高分子衍生物分别溶于生物相容性介质,配成一定浓度的水凝胶前体溶液,通过微流控技术制备一定尺寸的微凝胶,并包裹软骨细胞,通过静态培养方式置于孔板中培养4周,即可获得可注射软骨。
在本发明的一个实施方式中,所述基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的可实现的实施方式:将标记双键官能团的明胶溶于生物相容性介质,配置一定浓度的水凝胶前体溶液,通过微流控技术在光照下(365nm)制备明胶微凝胶,并包裹骨髓干细胞,通过生物反应器搅拌培养4周,即可获得可注射软骨。
在本发明的一个实施方式中,所述生物相容性介质选自蒸馏水、生理盐水、缓冲液或细胞培养基溶液。根据不同的应用,可选取不同的生物相容性介质。
在本发明的一个实施方式中,所述一定浓度的水凝胶前体溶液可以为0.1%w/v-60%w/v,优选为1%w/v-20%w/v。
本发明基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的原理:水凝胶材料给细胞提供三维的培养环境,结合体外生物反应器培养,能够有效改善水凝胶内的营养物质交换,为细胞构建合适的三维培养体系。经过一段时间培养,负载的软骨细胞逐渐成熟,并且分泌出丰富的细胞外基质,最终形成成熟的软骨组织。另外,选用微凝胶支架材料能够实现组织工程软骨的可注射使用,从而对于软骨缺损实施微创填充。因此,运用本发明提供的方法基本可以通过微凝胶支架材料包裹软骨细胞构建可注射软骨。
本发明的第三个目的是提供基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的方法获得的基于微凝胶材料构建的可注射软骨。
本发明的第四个目的是提供基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨的应用。
本发明提供了基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨在整形美容、软骨缺损修复与再生等方面的应用。
与现有技术相比,本发明具有如下优点及有益效果:
(1)与整块水凝胶相比,微凝胶作为软骨培养的支架材料,具有更大的比表面积,更利于细胞接种及营养物质交换。同时,微凝胶支架材料的制备更能控制粒径的均质度,从而保证可注射软骨的均质度;
(2)本发明提供的基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨,可以通过注射方式进行软骨缺损填充,能够与当前主流的微创手术配合使用;
(3)传统的可注射软骨采用自体软骨颗粒或软骨膜片技术,而本发明提供的基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨采用负载软骨细胞的微凝胶进行体外培养获得,大大降低了制备可注射软骨所需的细胞量,从而大幅度降低传统可注射软骨的使用成本。
附图说明
图1为明胶微凝胶材料的显微镜直观图和粒径分布图。
图2为明胶微凝胶材料负载细胞的扫描电镜图。
图3为基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨的效果直观图。
图4为可注射软骨体内培养8周后的组织学图。
图5为可注射软骨体内培养8周后的PCR图。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例对本发明进行详细说明。
实施例一:基于交联透明质酸微凝胶支架材料构建可注射软骨
交联透明质酸微凝胶构建:将透明质酸(2g,340kDa)溶于100mL去离子水,加入0.1g BDDE(丁二醇缩水甘油醚),并缓慢滴加0.1mL 1M NaOH溶液,继续搅拌反应5h,然后将交联透明质酸倒入透析袋中,用去离子水透析2-3d,除去多余的交联剂,通过机械研磨的方式制备交联透明质酸的微凝胶,然后冷冻干燥,并筛选100μm微颗粒,即可得到交联透明质酸微凝胶支架材料。
可注射软骨构建:从兔子耳朵分离软骨细胞,常规分离培养扩增,传代培养至第二代或第三代,收集并调节细胞悬液终浓度为10×106/mL,接种于上述交联透明质酸微凝胶支架材料,于离心管中孵育24小时后,软骨细胞可以铺展于微凝胶表面。然后,转移至搅拌型生物反应器中,放入培养箱中,于软骨诱导培养基中,继续搅拌培养4周,即可得到可注射软骨。
实施例二:基于海藻酸微凝胶支架材料构建可注射软骨
海藻酸微凝胶构建:配置10%w/v的海藻酸溶液,利用注射泵将其逐渐滴加于0.1MCaCl2溶液,交联形成微凝胶,并收集至烧杯中。然后冷冻干燥,并筛选100μm微颗粒,即可得到海藻酸微凝胶支架材料。
可注射软骨构建:从兔子耳朵分离软骨细胞,常规分离培养扩增,传代培养至第二代或第三代,收集并调节细胞悬液终浓度为10×106/mL,包裹于上述海藻酸微凝胶支架材料,于离心管中孵育24小时后,软骨细胞可以在微凝胶内生长。然后,转移至搅拌型生物反应器中,放入培养箱中,于软骨诱导培养基中,继续搅拌培养4周,即可得到可注射软骨。
实施例三:基于席夫碱微凝胶支架材料构建可注射软骨
氧化透明质酸(HAO)的合成:将透明质酸(2g,340kDa)溶于100mL蒸馏水中至完全溶解,将高碘酸钠(NaIO4,1g)溶于5mL蒸馏水中,然后缓慢滴加上述溶液,于室温下搅拌反应12h。反应结束后,滴加1mL乙二醇继续搅拌30min,然后将反应液倒入透析袋(MWCO 7000)中,用去离子水透析2-3d,冷冻干燥即可得到HAO(1.82g)。根据盐酸羟胺滴定法,可以计算出醛基的含量大约为35%。
Figure BDA0003202539190000081
席夫碱微凝胶构建:分别配置10%w/v的HAO溶液和10%w/v的壳聚糖溶液作为连续相(水相),以质量比为8:2的液体石蜡和司盘80的混合溶液作为分散相(油相)。利用注射泵将水相和油相从不同的通道注射到微流控芯片中,在两相交汇处,水相被油相剪切得到单乳液液滴,然后在管道中继续被向前推进,交联形成微凝胶,并收集至烧杯中。然后冷冻干燥,并筛选100μm微颗粒,即可得到席夫碱微凝胶支架材料。
可注射软骨构建:从兔子耳朵分离软骨细胞,常规分离培养扩增,传代培养至第二代或第三代,收集并调节细胞悬液终浓度为10×106/mL,接种于上述席夫碱微凝胶支架材料,于离心管中孵育24小时后,软骨细胞可以铺展于微凝胶表面。然后,转移至搅拌型生物反应器中,放入培养箱中,于软骨诱导培养基中,继续搅拌培养4周,即可得到可注射软骨。
实施例四:基于光敏明胶微凝胶支架材料构建可注射软骨
甲基丙烯酸酯化明胶(GelMA)的合成:将明胶(1g)溶于10mL PBS(pH=7.4)中,加热至50℃搅拌至完全溶解,加入0.5mL甲基丙烯酸酐,反应2-3h,反应后用40mL PBS稀释反应液,然后倒入透析袋(MWCO 7000)中,用去离子水透析2-3d,冷冻干燥即可得到甲基丙烯酸酯化明胶(0.9g)。根据核磁氢谱图,可计算出双键的含量大约为75%。
Figure BDA0003202539190000091
光敏明胶微凝胶构建:配置10%w/v的GelMA溶液(含0.2%LAP w/v光引发剂)作为连续相(水相),以质量比为8:2的液体石蜡和司盘80的混合溶液作为分散相(油相)。利用注射泵将水相和油相从不同的通道注射到微流控芯片中,在两相交汇处,水相被油相剪切得到单乳液液滴,然后在管道中继续被向前推进,通过光照(365nm),交联形成微凝胶,并收集至烧杯中。然后冷冻干燥,并筛选100μm微颗粒,即可得到明胶微凝胶支架材料(图1所示)。
可注射软骨构建:从兔子骨髓分离骨髓干细胞,常规分离培养扩增,传代培养至第二代或第三代,收集并调节细胞悬液终浓度为10×106/mL,接种于上述光敏明胶微凝胶支架材料,于离心管中孵育24小时后,软骨细胞可以铺展于微凝胶表面(图2所示)。然后,转移至搅拌型生物反应器中,放入培养箱中,于软骨诱导培养基中,继续搅拌培养4周,即可得到可注射软骨(图3所示)。
实施例五:可注射软骨的生物学评价
体外培养4周后,取材,进行大体观、组织学、q-PCR定量等软骨再生指标体外检测。实验结果表明,可注射软骨经培养后呈现白色的外观,逐渐表现为软骨样组织。组织学上可以观察到软骨细胞在支架材料上聚集,并分泌出细胞外基质,番红和二型胶原组织学呈现特异性染色。q-PCR的基因定量数据表明Col2,Aggrecan,SOX9的表达达到正常软骨组织的60%。
实施例六:可注射软骨应用于皮下软骨再生
采用裸鼠,按实施例四构建成熟的可注射软骨,将其注射至裸鼠背部皮下,在体内培养4周,通过静脉注射空气的方法处死实验中的裸鼠,并取样对实验修复效果进行评价。实验结果表明,经体内培养后,再生软骨组织呈现白色的外观,逐渐表现为成熟的软骨样组织。组织学上可以观察到支架材料逐渐降解,并逐渐被再生软骨组织取代,番红和二型胶原组织学呈现特异性染色(图4所示),q-PCR的基因定量数据表明Col2,Aggrecan,SOX9的表达达到正常软骨组织的90%(图5所示)。
实施例七:可注射软骨应用于软骨缺损修复
采用新西兰雄性大白兔,每只兔子均在关节处制造直径为4mm的软骨缺损。实验前按体重随机分组(每组4只):1.可注射软骨修复组;2.不做处理的空白组。手术过程中,首先按实施例四构建成熟的可注射软骨,然后将其注射至缺损部位。在手术3月后,通过静脉注射空气的方法处死实验中的兔子,并取样对实验修复效果进行评价。实验结果表明,使用可注射软骨处理的缺损部位取得了完全的软骨修复,而对照组中骨缺损部位没有得到任何修复。因此,该类可注射软骨对软骨缺损有很好的修复效果。
上述的对实施例的描述是为便于该技术领域的普通技术人员能理解和使用发明。熟悉本领域技术的人员显然可以容易地对这些实施例做出各种修改,并把在此说明的一般原理应用到其他实施例中而不必经过创造性的劳动。因此,本发明不限于上述实施例,本领域技术人员根据本发明的揭示,不脱离本发明范畴所做出的改进和修改都应该在本发明的保护范围之内。

Claims (10)

1.一种微凝胶支架材料,其特征在于,微凝胶经冷冻干燥后即得到微凝胶支架材料;
所述微凝胶是指将水凝胶制备成微米尺寸范围内的凝胶;
所述水凝胶材料是由水溶性高分子通过物理交联或化学交联或光交联中的一种或多种交联方式获得;
所述微凝胶的尺寸可以为1μm-1mm,优选为100μm-500μm。
2.根据权利要求1所述的一种微凝胶支架材料,其特征在于,将水凝胶制备成微米尺寸范围内的凝胶的方法包括机械研磨法、乳液聚合法、微流控技术、自组装、喷雾法。
3.根据权利要求1所述的一种微凝胶支架材料,其特征在于,所述微凝胶支架材料选自以下的一种:
将透明质酸溶于去离子水,加入交联剂搅拌反应,然后将交联透明质酸倒入透析袋中,用去离子水透析2-3d,除去多余的交联剂,通过机械研磨的方式制备交联透明质酸的微凝胶,然后冷冻干燥,并筛选合适尺寸的微颗粒,即得到交联透明质酸微凝胶;或,
将水凝胶前体溶液作为水相,选择分散相,将水相和油相从不同的通道注射到微流控芯片中,在两相交汇处,水相被油相剪切得到单乳液液滴,然后在管道中继续被向前推进,通过交联反应形成微凝胶,并收集,然后冷冻干燥,筛选合适尺寸的微颗粒,即得到微凝胶。
4.基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的方法,其特征在于,提取自体或异体的软骨细胞或干细胞,在体外诱导分化、扩增并传代,然后接种于权利要求1所述微凝胶支架材料,孵育,经一定的培养方式培养一段时间即获得可注射软骨。
5.根据权利要求4所述基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的方法,其特征在于,所述软骨细胞来源于自体或异体的软骨组织,优选为耳软骨、关节软骨、半月板软骨、肋软骨;
所述干细胞来源于自体或异体的干细胞,优选为骨髓间充质干细胞、脂肪干细胞、胚胎干细胞。
6.根据权利要求4所述基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的方法,其特征在于,所述培养方式为静态培养或动态培养,静态培养方式即将负载细胞的凝胶微球放置于孔板中培养,动态培养方式即将负载细胞的微球放置于生物反应器中搅拌或加压培养。
7.根据权利要求4所述基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的方法,其特征在于,所述培养一段时间为1天-12月,优选为2周-12周。
8.根据权利要求4所述基于微凝胶支架材料构建可注射软骨的方法,其特征在于,选择以下方法中的一种:
通过机械研磨法制备BDDE交联的透明质酸微凝胶,并包裹软骨细胞,通过静态培养方式置于孔板中培养,即获得可注射软骨;或,
将海藻酸高分子溶于生物相容性介质,配成水凝胶前体溶液,通过微流控技术制备一定尺寸的微凝胶,并加入钙离子溶液进行交联,并包裹软骨细胞,通过静态培养方式置于孔板中培养,即获得可注射软骨;或,
将含醛基的高分子衍生物和含氨基的高分子衍生物分别溶于生物相容性介质,配成水凝胶前体溶液,通过微流控技术制备一定尺寸的微凝胶,并包裹软骨细胞,通过静态培养方式置于孔板中培养,即获得可注射软骨;或,
将标记双键官能团的明胶溶于生物相容性介质,配置水凝胶前体溶液,通过微流控技术在光照下制备明胶微凝胶,并包裹骨髓干细胞,通过生物反应器搅拌培养,即获得可注射软骨。
9.基于微凝胶材料构建的可注射软骨,其特征在于,采用权利要求4-8中任一项所述方法制备得到。
10.权利要求9所述基于微凝胶材料构建的可注射软骨的应用,其特征在于,基于微凝胶支架材料构建的可注射软骨在制备整形美容、软骨缺损修复与再生材料上的应用。
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