CN113243325B - 中华绒螯蟹白壳品系的构建方法 - Google Patents

中华绒螯蟹白壳品系的构建方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及品系育种方法，公开了一种中华绒螯蟹白壳品系的构建方法，包括以下步骤：(1)筛选白壳的中华绒螯蟹雌雄成蟹作为繁殖亲本，构建家系进行交配、抱卵蟹养殖和幼体培育，获得淡化后的F1大眼幼体；(2)F1大眼幼体养殖到仔蟹III期，挑选白壳个体进行后续的扣蟹养殖和成蟹养殖；(3)获得的成蟹进行筛选，选择体色纯白、规格较大和性腺发育成熟的个体作为白壳亲本，进行家系内自交和人工育苗，待仔蟹III期再次筛选白壳进行扣蟹和成蟹养殖，得到的F2代成蟹为中华绒螯蟹白壳品系。该品系遗传性状稳定，且中华绒螯蟹白壳品系生长速度显著快于正常绿壳品系，其可食率和营养品质和常规绿壳品系相比无显著差异。

Description

中华绒螯蟹白壳品系的构建方法
技术领域
本发明属于品系育种方法，具体为甲壳类水产的新品系构建方法，尤其涉及的是中华绒螯蟹白壳新品系构建方法。
背景技术
中华绒螯蟹(Eriocheir sinensis)简称河蟹，属于甲壳纲，十足目，方蟹科，绒螯蟹属(堵南山,1959)。中华绒螯蟹是东亚地区最重要的淡水经济蟹类，是一种富含类胡萝卜素、多不饱和脂肪酸、风味物质和必需氨基酸的高营养水产食物(Chen et al.,2017；Longet al.,2017)。中华绒螯蟹在中国的年养殖总产量近80万吨，产值超过500亿。
然而，产业高速发展也导致一系列问题出现，例如水系之间的盲目引种和随意杂交，亲本规格的降低和近亲交配，养殖密度的不断增加和病害的频发等，造成长江水系部分中华绒螯蟹养殖群体种质退化(张世勇，2013)。遗传选育是一种重要的种质改良方案。但是现有5个河蟹新品种长江1号(邓燕飞等，2013)、长江2号(董建昌，2016)、江海21号(王成辉&张根玉，2017)、光合1号(郑岩&徐显峰，2013)和诺亚1号(徐跑等，2017)都主要以生长速度和规格为指标进行群体选育产生，这在一定程度上推动了河蟹养殖产业的可持续发展，尚不能满足河蟹养殖产业对良种经济性状多样化的需求，影响着河蟹产业的高质量发展。
色泽是水产动物的一项重要经济性状。许多科研工作者往往将体色作为重要的表型性状选育新品种(系)。国内外根据颜色这一性状对水产动物开展的选择育种工作已取得一定进展，在鱼类、贝类、棘皮动物和虾类上都获得一些不同色泽的新品系/新品种，部分品种已经开始产业化推广应用(吴清江等，1980；林志华等，2015；胡炜等，2016；Zhang etal.,2018))。迄今为止，尚未见以色泽作为主要选育指标的河蟹新品系/新品种。壳色也是甲壳动物重要的经济性状，甲壳动物的壳色通常与其组织中类胡萝卜素组成、含量和存在形式有关(Tume et al.,2015；Wade et al.,2017)，色泽不仅会直接影响甲壳动物的感官品质和市场价格，且不同壳色甲壳动物的营养成份可能有所不同(Long et al,2017；Li etal,2020)。甲壳动物的色泽分为可遗传色泽和不可遗传色泽(Zhang et al.,2018；史文军等,2019)，通过天然种质资源发掘利用和遗传选育手段，培育不同色泽的甲壳动物新品系具有巨大的市场前景和应用价值，可以满足多样化的市场需求。
先前的研究中发现，河蟹池塘养殖群体和野生群体成蟹中均以绿色(80％左右)或淡土黄色为主(15％左右)，但存在极少量白壳和紫壳个体，比例在万分之一以下(李清清,2019；Li et al,2021)。由于自然界中白壳和紫壳河蟹较为罕见，且具有一定的观赏价值，因此，同样体质量条件下，白壳和紫壳河蟹的市场售价均远高于绿壳或黄壳成蟹(Li etal,2020,2021)。但是，目前两者都无法形成稳定的品系，白色壳或紫色壳性状都无法稳定遗传，尤其是紫壳色性状为不可稳定遗传性状(李清清,2019)。
因此，需要建立一种高效的品系构建方法，获得可以稳定遗传的河蟹白壳新品系。
发明内容
本发明要解决的技术问题建立一种高效的河蟹白壳品系构建方法，获得可以稳定遗传的河蟹白壳新品系，可为河蟹养殖产业提供白壳新品系。
本发明技术方案为，一种中华绒螯蟹白壳品系的构建方法，包括以下步骤：
(1)筛选白壳的中华绒螯蟹雌雄成蟹作为繁殖亲本，构建家系进行交配、抱卵蟹养殖和幼体培育，获得淡化后的F1大眼幼体；
(2)将步骤(1)得到的F1大眼幼体养殖到仔蟹III期，挑选白壳个体进行后续的扣蟹养殖和成蟹养殖；
(3)对步骤(2)获得的成蟹进行筛选，选择体色纯白、规格较大和性腺发育成熟的个体作为白壳亲本，进行家系内自交和人工育苗，得到F2代大眼幼体；
(4)淡化后的F2大眼幼体养殖到仔蟹III期，挑选白壳个体进行后续的扣蟹养殖和成蟹养殖，获得的F2子代成蟹为中华绒螯蟹白壳品系。
步骤(4)所获得的F2子代成蟹99％以上个体为纯白壳色，且性状可稳定遗传。
步骤(1)中，所述的白壳的中华绒螯蟹为长江水系中华绒螯蟹。
步骤(3)中，所述的白壳亲本的红度值a≤-1.0。
白壳亲本的选择方法为，用色差仪在亲本甲壳上测定5个点的红度值a，且平均a值≤-1.0。
步骤(3)中，所选择的白壳亲本附肢齐全、活力好，规格为：雌体质量>150g，雄体质量>200g。
步骤(1)中，选择甲壳和附肢均为白色的中华绒螯蟹雌雄成蟹作为繁殖亲本。
步骤(4)中，所获得的F2代大眼幼体养殖到仔蟹III期，肉眼判断挑选白壳个体，白壳个体比例99％以上。将挑选出来的白壳个体进行后续的扣蟹养殖和成蟹养殖，得到的F2代成蟹99％以上个体为白壳，即红度值a≤-1.0。
以F2子代成蟹为亲本，进一步进行家系内自交和人工育苗获得F3代，大眼幼体养殖到仔蟹III期时的白壳个体比例依然能达到99％以上。
进一步评估白壳子代的扣蟹和成蟹阶段的养殖性能、可食率和营养品质，结果显示，所获得的中华绒螯蟹白壳品系生长速度显著快于正常绿壳品系，且其可食率和营养品质和常规绿壳品系相比无显著差异，具有很好的经济价值。
本方法适合中华绒螯蟹遗传育种单位、苗种培育和养殖企业使用，不仅可以获得纯化的河蟹白壳品系和生产白壳苗种，且可以提高商品蟹的养成规格、产量和养殖效益。
本发明的有益效果在于，通过上述方法能获得可以稳定遗传的河蟹白壳品系，进一步可以判断哪些亲本的白壳性状可以遗传给子代，为中华绒螯蟹的遗传研究提供了样本。并且，在此基础上可以将白壳性状的相关基因进一步进行纯化，获得表型稳定的河蟹白壳品系，还可以开发鉴定白壳家系的分子标记。
同时，本方法发现，白壳品系仔蟹III期即表现为白色壳色，其余仔蟹蟹壳为黄色，因此在III期仔蟹就可以准确区分白壳和非白壳个体，这为早期挑选白壳品系个体提供了方便，节省后续的扣蟹和成蟹养殖费用，提高育种效率，降低养殖成本；雌雄亲本壳色均为白色的个体(红度值a≤-1.0)，其繁殖子一代养成后的个体99％以上为白壳个体。
本方法通过家系构建和自交，能够高效建立性状遗传稳定的品系。并且所获得的白壳品系在扣蟹和成蟹阶段的生长速度和体重显著高于常规绿壳品系，出肉率和营养品质和常规绿壳品种/品系接近,具有生长速度快等优点，具有较大的应用潜力和经济价值。
附图说明
图1为白壳和绿壳品系中华绒螯蟹扣蟹室内单养成活率比较
图2为白壳和绿壳品系中华绒螯蟹扣蟹在同池混养的条件下，体质量、成活率和产量比较
图3为白壳和绿壳品系中华绒螯蟹扣蟹的外观比较，A：白壳扣蟹；B：绿壳扣蟹
图4为白壳和绿壳品系中华绒螯蟹成蟹的在室外池塘养殖生殖蜕壳率比较
图5为白壳和绿壳品系中华绒螯蟹成蟹的肝胰腺和性腺指数比较
图6为白壳和绿壳品系中华绒螯蟹成蟹的蟹壳外观比较，A：白壳雄体，B：绿壳雄体，C：白壳雌体，D：绿壳雌体
图7为白壳和绿壳品系中华绒螯蟹成蟹的个体比较，A：绿壳中华绒螯蟹，B：白壳中华绒螯蟹
具体实施方式
下面结合具体实施例，进一步阐述本发明。具体实施例是在以本发明技术方案为前提下进行实施的，给出了详细的实施方式和操作过程。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件进行。
下面结合实施例对本发明作进一步说明：
实施例1中华绒螯蟹白壳品系的构建
从江苏泰州和安徽无为的成蟹养殖池塘中筛选长江水系白壳成蟹(8万多只成蟹中发现有6只白壳母蟹、2只公蟹)，按照以下方法选育：
(1)12月初，将收集的甲壳和附肢均为白色的成熟亲本在黑色PVC水槽(直径1.08米)中交配、抱卵蟹养殖和幼体培育。
交配：将带有数字标记亲本蟹置于PVC圆形水槽(直径为1.08米)中进行交配，每个水槽3只雌体和1只雄体(雌雄性别比＝3:1)桶内水深为60cm，水体盐度为17左右，在桶底部铺10cm厚的细沙以供中华绒螯蟹雌体产卵，同时投入PVC管作为亲本蟹的遮蔽物。每日下午投喂适量亲本配合饲料或鲜活缢蛏作为饵料，每日上午记录各交配水槽中雌体抱卵情况及雌体编号。交配10d左右，剔除公蟹以免影响雌蟹产卵。
抱卵蟹养殖期间水温在14-18度，每日投喂亲本配合饲料或鲜活缢蛏作为饵料，次日上午清除残饵和死亡个体，当抱卵蟹的卵发育至心跳期，心率为150-200/min即可对亲本进行消毒，抱卵蟹在100-200克/升福尔马林中泡1小时杀灭胚胎表面的寄生虫和真菌。孵化桶水温控制在18-20℃，当孵化桶中的幼虫密度达到预设水平时，将抱卵蟹从孵化桶中取出。
幼体培育：挑出抱卵蟹并贴上防水标签在室内进行单独投喂和孵化；准确控制孵化池水温和增氧，并提供足够的饵料(例如藻类、酵母、活轮虫和卤虫无节幼体)。溞状幼体Ⅰ-Ⅱ期，投喂酵母和轮虫；Ⅲ期开始，增加投喂卤虫，并定期换水，获得淡化后的子一代(F1)大眼幼体。
(2)大眼幼体养殖至Ⅲ期仔蟹阶段，此时肉眼容易区分白壳仔蟹和非白壳仔蟹，故在仔蟹III期时挑选白壳个体进行后续的扣蟹和成蟹养殖，获得子一代白壳亲本蟹(F1)。
扣蟹养殖：池塘养殖每亩投放大眼幼体不超过2.5斤，若网箱养殖密度则不宜超过每平方400只。养殖水体中需要种植伊乐藻以供螃蟹隐蔽和吃食。每天17:00投喂配合饲料，投喂量占总体重的1％-6％，具体根据水温、残饵和体质量确定。
成蟹养殖：室外池塘养殖每亩不超过1500只，可以种植伊乐藻和轮叶黑藻。每天17:00投喂成蟹专用配合饲料，投喂量占总体重的1％-6％。具体投喂量视吃食情况而定。
(3)用色差仪在成蟹的甲壳上测定5个点的红度值(a)，平均a值≤-1认定为纯白壳。挑选其中生长快和成活率高的白壳家系子一代(F1)亲本进行家系内自交和人工育苗(要求亲本附肢齐全、活体较好，雌体质量>150g，雄体质量>200g)，获得F2子代。
(4)F2子代的大眼幼体培育、扣蟹和成蟹养殖条件与工艺流程同F1代。肉眼观察F2子代的仔蟹III期均为白壳。用红度值a≤-1.0的标准判断纯白壳子代，结果显示，所得到F2代成蟹99％以上个体为纯白色壳。、
经过2次高强度标准化选育后，获得F2代纯白色新品系成蟹，每代的白色壳个体达到99％以上，说明白壳性状可以稳定遗传，获得了中华绒螯蟹白壳新品系。每一代的选留率为5％以下，生长速度与规格较正常绿壳蟹有显著优势。
实施例2白壳品系的扣蟹养殖性能评估
苗种均来自实施例1中选育的F2扣蟹；养殖地点位于上海，试验分为室内单养和室外同池混养。室内单养设计为每个盒子中养殖1只蟹，每种壳色雌雄各15只蟹，初始规格一致；养殖周期为6月上旬至当年11月中旬，每日投喂扣蟹颗粒饲料并记录蜕壳情况，每次蜕壳后等2-3天(待蟹壳硬化后)后测定体质量和头胸甲的长和宽。室外同池塘混养采用2m×2m×1m(长×宽×高)的网箱进行养殖。
白色新品系扣蟹阶段养殖性能的评估方法包括：在单养条件下，比较白壳和非白壳品系的成活率、体重、每次蜕壳间隔、增重率和色泽参数，在池塘同池混养条件下测定和比较成活率和养殖产量。效果评价如下：
(1)与绿壳品系相比，白壳品系的生长性能优势明显
白壳和绿壳扣蟹室内单养成活率比较如图1。最终两种壳色品系扣蟹平均成活率均在70％，两组间无显著差异(P>0.05)(图1)。
白壳和绿壳品系中华绒螯蟹扣蟹蜕壳后的体质量变化见表1，无论雌雄，白壳扣蟹每次蜕壳后的体重均略高于绿壳。尤其第五次蜕壳后，白壳雌蟹和雄蟹的体重均显著高于绿壳组(P<0.05)；大部分时期蜕壳间隔较绿壳略短，值得一提的是第四次蜕壳时，白壳雌体蜕壳间隔显著低于绿壳，而白壳雄体显著高于绿壳(P<0.05)(表2)。白壳和绿壳扣蟹室外同池混养条件下，趋势和室内单养基本一致，白壳组体质量、成活率和产量也均要比绿壳组高，如图2所示。
白壳和绿壳品系扣蟹的外观比较如图3所示，其中A为白壳扣蟹，B为绿壳扣蟹。同样的养殖条件下，白壳品系的扣蟹个体平均规格大于绿壳品系的扣蟹。
表1白壳和绿壳中华绒螯蟹扣蟹蜕壳后的体质量比较(单位/克)
Figure BDA0003090346170000061
Figure BDA0003090346170000071
注释：同列标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
表2白壳和绿壳中华绒螯蟹扣蟹蜕壳间隔比较(单位/天)
Figure BDA0003090346170000072
注释：同列标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
(2)体色遗传稳定
白壳和绿壳扣蟹室内单养色泽测定见表3。养殖结束后，白壳品系无论雌雄，红度值a*均＜-1.0，黄度值b*＞12，亮度值L*＞50，符合白壳色选育指标。可见，白壳色与绿壳品系的蟹壳色泽存在显著差异，且白壳色具有可遗传性，能够稳定传代，所得到的子代中，白壳个体的比例超过99％。
表3白壳和绿壳品系扣蟹在室内单养条件下的色泽参数比较
Figure BDA0003090346170000073
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
实施例3成蟹养殖性能评估
采用同池混养两种壳色品系的河蟹，选择4个面积等大(实际水面长×宽×深＝10.4m×7.6m×1.2m)的小型室外实验池塘，四周设有50cm高的防逃围网，围网内外侧顶部缝有35cm高的塑料防逃板，防止实验蟹逃逸或混杂。试验周期为3月至同年11月中旬，白壳和绿壳初始放养密度为每种壳色雌雄各45个/塘，每天17：00投喂成蟹养殖饲料，定时检测水质和打开增氧机，经常检查防逃网等设施，其余日常管理同正常河蟹养殖要求一致。
白色新品系成蟹阶段养殖性能的评估方法包括：在同池混养条件下，测定和比较白壳和非白壳品系成蟹养殖阶段的成活率、平均体重(雌雄分开统计)、产量、生殖蜕壳时间、性腺和肝胰腺指数。成蟹的效果评估如下：
从3月初养殖至11月中旬，白壳和绿壳成蟹室外池塘养殖体质量的变化见表4。3-5月，虽然白壳组略高于绿壳组，但差异不显著(P>0.05)；7-11月，白壳组无论雌雄，体质量均显著高于绿壳组(P<0.05)。增重率和特定生长率方面，白壳雌体在7-9月显著高于绿壳组(P<0.05)(表5，表6)。
表4室外池塘养殖条件下白壳和绿壳品系成蟹养殖阶段的体质量变化(g)
Figure BDA0003090346170000081
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
表5室外池塘养殖条件下白壳和绿壳品系成蟹养殖阶段的体重增重率变化(％)
Figure BDA0003090346170000082
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
表6室外池塘养殖条件下白壳和绿壳品系成蟹养殖阶段的特定增长率变化(％)
Figure BDA0003090346170000083
注释：同列标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
肝胰腺指数(hepatosomatic index,HSI,％)＝肝胰脏重/体重×100
性腺指数(gonadosomatic index,GSI,％)＝性腺重/体重×100
白壳和绿壳成蟹室外池塘养殖生殖蜕壳率、肝胰腺和性腺指数见图4和图5。白壳无论雌雄，生殖蜕壳均要略慢于绿壳组，但差异不显著(P>0.05)。整体上，两种壳色河蟹的肝胰腺指数随着性腺指数的增加而呈逐渐降低趋势，两种壳色间无显著性差异(P>0.05)。
产量和规格方面见表7和表8。结果表明，白壳和绿壳组的成活率接近，无显著性差异(P>0.05)；因为白壳雌雄体平均体质量显著高于绿壳组(P<0.05)，且大规格比例较高(表8)，所以无论雌雄，白壳组的产量(产量＝成活率×体质量/单位面积)均要显著高于绿壳组(P<0.05)。
表7白壳和绿壳品系成蟹最终养殖效果比较
Figure BDA0003090346170000091
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
表8白壳和绿壳收获时的规格分布(％)
Figure BDA0003090346170000092
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
白壳和绿壳品系中华绒螯蟹成蟹的蟹壳外观比较如图6所示，其中A-D分别为白壳雄体、绿壳雄体、白壳雌体和绿壳雌体。两者的个体对比如图7所示，其中A、B分别为正常的绿壳色中华绒螯蟹和白壳的中华绒螯蟹。
实施例4可食率和营养品质
1.商品蟹的可食率评估：随机挑取规格基本一致的两种壳色成蟹各10只，解剖获得全部肌肉、性腺和肝胰腺进行称量，结果见表9。
可食率的指标包括出肉率、性腺指数和肝胰腺指数。其中测定出肉率的成蟹需要在-40冰箱中保存24小时以上，解冻后采用解剖工具取出全部肌肉(大螯、附肢以及体内所有肌肉)。
出肉率(meat yield,MY,％)＝肌肉重/体重×100
总可食率(total edible yield,TEY,％)＝肝胰腺指数+性腺指数+出肉率
肝胰腺指数(hepatosomatic index,HSI,％)＝肝胰脏重/体重×100
性腺指数(gonadosomatic index,GSI,％)＝性腺重/体重×100
结果表明，无论雌雄，白壳与绿壳的出肉率、性腺指数、肝胰腺指数、可食率和饱满度均接近，无显著性差异(P>0.05)(表9)。
表9白壳和绿壳品系成蟹可食率和肥满度的比较
Figure BDA0003090346170000101
2.营养品质评价(色泽，类胡萝卜素组成，常规生化和脂肪酸)
(1)色泽：使用Lovibond-RT200表面色度计(Salisbury,England)和CIE1976L*a*b*成像系统测量每只蟹蟹壳湿样和干样、生肝胰腺和冻干卵巢的色泽。
(2)类胡萝卜素含量：用丙酮提取蟹壳、肝胰腺和卵巢的总类胡萝卜素，用高效液相色谱检测主要类胡萝卜素。
白壳和绿壳品系的蟹壳、肝胰腺和卵巢色泽L*a*b*值测定结果见表10，类胡萝卜素含量测定见表11。结果表明：色泽和类胡萝卜素指标上，虽然两种壳色蟹壳存在显著颜色差异，蟹壳的类胡萝卜素含量也存在显著差异(P<0.05)，但是主要的可食组织肝胰腺和卵巢部分均无显著差异(P>0.05)，说明蟹壳颜色差异对可食部分色泽和类胡萝卜素的含量影响不显著(P>0.05)。
表10白壳和绿壳蟹壳、肝胰腺和卵巢色泽L*a*b*值测定
Figure BDA0003090346170000111
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
表11白壳和绿壳不同组织类胡萝卜素含量测定mg/kg(干重)
Figure BDA0003090346170000112
Figure BDA0003090346170000121
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
(3)常规生化、脂肪酸和氨基酸：采用本发明规定的测定方法测定两种壳色三种可食用组织(肌肉、性腺和肝胰腺)的水份、蛋白、脂肪、灰分和脂肪酸。
采用冷冻干燥法测定水分，采用AOAC(1995)的方法测定蛋白质和灰分含量；采用氯仿：甲醇(V/V＝2:1)法提取和测定各组织中的总脂含量。脂肪酸组成分析：采用14％的三氟化硼-甲醇溶液对总脂进行甲酯化处理，用气相色谱仪进行脂肪酸定性和定量分析。氨基酸分析：色氨酸测定采用碱性水解法，甲硫氨酸和半胱氨酸测定采用酸性水解法。根据FAO等(1985)方法计算必需氨基酸的分值(essential amino acid score,EAAS):EAAS＝样品中必需氨基酸含量/FAO参考蛋白中必需氨基酸含量×100。
具体结果见表12-14。
结果表明，白壳和绿壳常规生化接近，无显著性差异(P>0.05)。雌雄体的大部分脂肪酸成分也无显著性差异(P>0.05)，值得一提的是，白壳雌体三种可食用组织(肌肉、性腺和肝胰腺)的EPA和n-3/n-6略高。雄体中，白壳的三种可食用组织中ARA和DHA/EPA略高于绿壳，但都差异不显著(P>0.05)。氨基酸方面，除白壳组雌体中异亮氨酸和酪氨酸显著低于绿壳组，其余氨基酸指标均无显著性差异(P>0.05)。
表12白壳和绿壳可食用组织(肝胰、性腺和肌肉)常规生化比较(％)
Figure BDA0003090346170000122
Figure BDA0003090346170000131
表13白壳和绿壳雌蟹主要脂肪酸百分含量比较(％)
Figure BDA0003090346170000132
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
表14白壳和绿壳雄蟹主要脂肪酸百分含量比较(％)
Figure BDA0003090346170000133
Figure BDA0003090346170000141
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
表15白壳和绿壳组肌肉中氨基酸含量比较(湿重/mg/g)
Figure BDA0003090346170000142
注释：同行标有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)
表16白壳和绿壳雌雄体肌肉的必需氨基酸分值
Figure BDA0003090346170000143
Figure BDA0003090346170000151
实施例5
实施例1所获得的F2代成蟹作为亲本，用同样的方法构建家系进行交配、抱卵蟹养殖和幼体培育，获得的大眼幼体养殖到仔蟹III期，基本都是白壳(99％以上)，继续进行白色扣蟹养殖获得的F3代扣蟹也均为白色壳体，99％以上个体壳色的红度值a≤-1.0。
与常规的绿壳中华绒螯蟹相比，通过上述方法所构建白壳品系的扣蟹质量、成活率和产量更高。
说明通过上述方法所构建中华绒螯蟹白壳品系的壳色、生长速度快、体重高等性状都可以稳定遗传。
以上显示和描述了本发明的基本原理和主要特征和本发明的优点。本行业的技术人员应该了解，本发明不受上述实施例的限制，上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理，在不脱离本发明精神和范围的前提下，本发明还会有各种变化和改进，这些变化和改进都落入要求保护的本发明范围内。本发明要求保护范围由所附的权利要求书及其等效物界定。

Claims (4)

1.一种中华绒螯蟹白壳品系的构建方法，其特征在于，包括以下步骤：
（1）筛选甲壳和附肢均为白色的中华绒螯蟹雌雄成蟹作为繁殖亲本，构建家系进行交配、抱卵蟹养殖和幼体培育，获得淡化后的F1大眼幼体；其中幼体培育包括：挑出抱卵蟹并贴上防水标签在室内进行单独投喂和孵化；
（2）将步骤（1）得到的F1大眼幼体养殖到仔蟹III期，挑选白壳个体进行后续的扣蟹养殖和成蟹养殖；
（3）对步骤（2）获得的成蟹进行筛选，选择体色纯白、规格较大和性腺发育成熟的白壳家系个体，进行家系内自交和人工育苗，得到的F2代大眼幼体；所述的白壳家系个体的红度值a≤ -1.0；
（4）淡化后的F2大眼幼体养殖到仔蟹III期，挑选白壳个体进行后续的扣蟹养殖和成蟹养殖，获得的F2子代成蟹为中华绒螯蟹白壳品系。
2.根据权利要求1所述中华绒螯蟹白壳品系的构建方法，其特征在于，所述的白壳的中华绒螯蟹为长江水系中华绒螯蟹。
3.根据权利要求1所述中华绒螯蟹白壳品系的构建方法，其特征在于，白壳亲本的选择方法为，用色差仪在亲本甲壳上测定5个点的红度值a，且平均a值≤-1.0。
4.根据权利要求1所述中华绒螯蟹白壳品系的构建方法，其特征在于，步骤（3）中，所选择的亲本附肢齐全、活体好，规格为：雌体质量>150g，雄体质量>200g。
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