CN113046282A - 一种高转化率的l-苏氨酸的生产菌株及其构建方法与应用 - Google Patents

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Abstract

本发明属于生物工程技术领域,公开了一种高转化率的L‑苏氨酸的生产菌株及其构建方法与应用。本发明所述高转化率的L‑苏氨酸的生产菌株,具有L‑苏氨酸生产能力并且其细胞内在ptsG位点过表达肌醇转移酶iolT1或iolT2。本发明所述高转化率的L‑苏氨酸的生产菌株在ptsG处插入谷氨酸棒杆菌来源的iolT,失活PTS系统的同时引入谷氨酸棒杆菌中编码肌醇转移酶的iolT1/iolT2基因,提高L‑苏氨酸菌株的转化率。实验表明本发明所述高转化率的L‑苏氨酸的生产菌株进行发酵生产,L‑苏氨酸产量以及转化率明显提高,为L‑苏氨酸的工业化生产奠定了基础,具有广泛的工业应用前景。

Description

一种高转化率的L-苏氨酸的生产菌株及其构建方法与应用
技术领域
本发明属于生物工程技术领域,具体涉及一种高转化率的L-苏氨酸的生产菌株及其构建方法与应用。
背景技术
苏氨酸(Threonine)是w.C.Ro在在1935年发现于纤维蛋白水解物之中,并证明它是最后被发现的必需氨基酸,其化学名称是α-氨基-β-羟基丁酸,分子式为NH2-CH(COOH)-CHOH-CH3,有四种立体异构,具有生物学活性的只有L-型。L-苏氨酸白色晶体或结晶性粉末,含1/2结晶水。无臭,味微甜。是人和动物生长所必需的8种氨基酸之一,其广泛应用于饲料、食品添加剂及药物辅助材料制备等。
L-苏氨酸是畜禽的第二或第三限制性氨基酸,它在动物体内具有极其重要的生理作用。如促进生长、提高免疫机能等;平衡日粮氨基酸,使氨基酸比例更接近于理想蛋白质,从而降低畜禽对饲料中蛋白含量的要求。缺乏苏氨酸,可导致动物采食量降低、生长受阻、饲料利用率下降、免疫机能抑制等症状。近几年来,苏氨酸、蛋氨酸合成品在饲料中得到了广泛应用,苏氨酸逐渐成为影响动物生产性能的限制性因素,对苏氨酸的进一步研究,有助于有效地指导畜禽生产。苏氨酸(L-苏氨酸)是动物本身不能合成,但又十分需要的氨基酸,能用来精确平衡饲料的氨基酸组成,满足动物生长维持需要,提高增重和瘦肉率,降低料肉比;可改善氨基酸消化率低的饲料原料的营养价值,提高低能量饲料生产性能;可降低饲料粗蛋白水平,提高饲料氮利用率,降低饲料成本;可用于猪、鸡、鸭和高级水产的饲养和养殖。
L-苏氨酸的工业生产方法主要有:①合成法;②发酵法;③蛋白质水解法三种,目前L-苏氨酸主要通过微生物发酵生产。多种细菌可用于L-苏氨酸生产,如大肠杆菌、棒状杆菌属、沙雷氏菌属等的野生型诱导获得的突变株作为生产菌株。具体实例包括抗氨基酸类似物突变株或甲硫氨酸、赖氨酸、异亮氨酸等多种营养缺陷型(日本专利申请公开号224684/83;韩国专利申请公开号8022/87)。然而,传统诱变育种由于随机突变造成菌株生长缓慢及产生较多副产物,不易获得高产菌株。
发明内容
有鉴于此,本发明的目的在于针对现有技术存在的缺陷,提供一种高产苏氨酸的大肠杆菌及其构建方法与应用。
为实现本发明的目的,本发明采用如下技术方案:
一种高转化率的L-苏氨酸的生产菌株,具有L-苏氨酸生产能力并且其细胞内在ptsG位点过表达肌醇转移酶iolT1或iolT2。
本发明通过在基因组上进行相关改造,使更多的前体物流向L-苏氨酸合成代谢通路,如:在ptsG处插入谷氨酸棒杆菌来源的iolT,失活PTS系统的同时引入谷氨酸棒杆菌中编码肌醇转移酶的iolT1/iolT2基因。菌株PTS系统失活使得更多的磷酸烯醇式丙酮酸用于合成L-苏氨酸,肌醇转移酶可以向胞内运输葡萄糖,过表达iolT基因以恢复或增强菌株对葡萄糖的利用能力,从而获得高转化率的L-苏氨酸的基因工程菌。
在本发明中,所述过表达肌醇转移酶iolT1或iolT2为启动子的替换或核糖体结合位点(ribosomalbinding site,RBS)序列的强化;
在本发明中,所述生产菌株为大肠杆菌(Escherichia coli)。
在一些实施方案中,所述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株其基因型为W3110(thrA*(S345P),tdh::thrA*BC,Ptac-pntAB,△iclR,ptsG::Ptac-iolT1)。
在一些实施方案中,所述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株其基因型为W3110(thrA*(S345P),tdh::thrA*BC,Ptac-pntAB,△iclR,ptsG::Ptac-iolT2)。
本发明还提供了所述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株的构建方法,制备失活ptsG同时强化iolT1基因重组载体的质粒,转化大肠杆菌获得生产菌株。
在一些实施方案中,所述高产苏氨酸的大肠杆菌的构建方法中所述载体为pTargetT载体。
在一些实施方案中,所述高产苏氨酸的大肠杆菌的构建方法中所述大肠杆菌为大肠杆菌MHZ-0214-2菌株。本领域技术人员预先将pCas质粒电转入MHZ-0214-2感受态细胞中,转化方法及感受态制备方法均参照《分子克隆III》。
在一些实施方案中,所述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株的构建方法中所述制备失活ptsG同时强化iolT1基因的重组载体质粒的方法具体为:以pTargetT质粒为模板,利用引物对gRNAiolT-f/gRNAiolT-r扩增得到ptsG的sgRNA-ptsG片段①;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-1f/iolT-1r扩增得到ptsG左半段②;以ATCC13032基因组为模板,利用引物对tac-2f/iolT1-R扩增获得iolT1片段③;以③为模版,利用引物对tac-1f/iolT1-R进行扩增得到Ptac-iolT1片段④;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-2f/iolT-2r扩增得到ptsG右半段⑤;以①②④⑤为模板,利用引物对gRNAiolT-f/iolT-2r进行OE-PCR获得全长片段gRNA-ptsG::Ptac-iolT1与pTargetT载体连接获得pTargetT-ptsG::Ptac-iolT1质粒。
在一些实施方案中,所述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株的构建方法中所述制备失活ptsG同时强化iolT2基因的重组载体质粒的方法具体为:以pTargetT质粒为模板,利用引物对gRNAiolT-f/gRNAiolT-r扩增得到ptsG的sgRNA片段①;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-1f/iolT-1r扩增得到ptsG左半段②;以ATCC13032基因组为模板,利用引物对tac-3f/iolT2-R扩增获得iolT2片段③;以③为模版,利用引物对tac-1f/iolT2-R进行扩增得到Ptac-iolT2片段④;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-2f/iolT-2r扩增得到ptsG右半段⑤;以①②④⑤为模板,利用引物对gRNAiolT-f/iolT-2r进行OE-PCR获得全长片段gRNA-ptsG::Ptac-iolT2,与pTargetT载体连接获得pTargetT-ptsG::Ptac-iolT2质粒。
其中,所述gRNAiolT-f的序列如SEQ ID No.1所示;
所述gRNAiolT-r的序列如SEQ ID No.2所示;
所述iolT-1f的序列如SEQ ID No.3所示;
所述iolT-1r的序列如SEQ ID No.4所示;
所述tac-1f的序列如SEQ ID No.5所示;
所述tac-2f的序列如SEQ ID No.6所示;
所述tac-3f的序列如SEQ ID No.7所示;
所述iolT1-R的序列如SEQ ID No.8所示;
所述iolT2-R的序列如SEQ ID No.9所示;
所述iolT-2f的序列如SEQ ID No.10所示;
所述iolT-2r的序列如SEQ ID No.11所示;
所述ptsG-up的序列如SEQ ID No.12所示;
所述ptsG-dn的序列如SEQ ID No.13所示。
在一些实施方案中,重组载体质粒电转入MHZ-0214-2(pCas)感受态细胞中,涂布于含壮观霉素和卡那霉素的LB平板上30℃静置培养至单菌落可见。
进一步的,通过PCR扩增目的序列,核苷酸测序分析,构建相关质粒丢失获得改造的菌株命名为MHZ-0214-3(ptsG::Ptac-iolT1)菌株和MHZ-0214-4(ptsG::Ptac-iolT2)菌株。
本发明还提供了所述构建方法获得的高转化率的L-苏氨酸的生产菌株。
利用本发明获得的上述改造的菌株进行发酵生产,L-苏氨酸产量以及转化率明显提高,为L-苏氨酸的工业化生产奠定基础。因此本发明还提供了所述菌株在发酵生产L-苏氨酸中的应用。
进一步的,本发明还提供了一种L-苏氨酸的生产方法,将上述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株接种于种子培养基进行种子培养,然后将种子培养物转入发酵培养基发酵培养。
在本发明中,所述种子培养基为玉米浆25g/L,葡萄糖25g/L,豆粕水解液7.7g/L,酵母膏2.5g/L,KH2PO41.4g/L,硫酸镁0.5g/L,FeSO4、MnSO4 20mg/L,pH7.0。
进一步的,在本发明中,所述种子培养为37℃、90rpm培养5h。
在本发明中,所述发酵培养基为葡萄糖50g/L\玉米浆5g/L,豆粕水解液7.7g/L,KH2PO41.0g/L,硫酸镁0.5g/L,天冬氨酸10g/L,FeSO4、MnSO4 30mg/L,生物素50μg/L,硫胺素500μg/L,pH7.2。
进一步的,在本发明中,所述发酵培养为37℃、100rpm培养至残糖耗尽。
由上述技术方案可知,本发明提供了一种高转化率的L-苏氨酸的生产菌株及其构建方法与应用。本发明所述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株,具有L-苏氨酸生产能力并且其细胞内在ptsG位点过表达肌醇转移酶iolT1或iolT2。本发明所述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株在ptsG处插入谷氨酸棒杆菌来源的iolT,失活PTS系统的同时引入谷氨酸棒杆菌中编码肌醇转移酶的iolT1/iolT2基因,提高L-苏氨酸菌株的转化率。实验表明本发明所述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株进行发酵生产,L-苏氨酸产量以及转化率明显提高,为L-苏氨酸的工业化生产奠定了基础,具有广泛的工业应用前景。
具体实施方式
本发明公开了一种高转化率的L-苏氨酸的生产菌株及其构建方法与应用。本领域技术人员可以借鉴本文内容,适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明。本发明已经通过较佳实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。
为了进一步理解本发明,下面结合具体实施例对本发明进行详细阐述,如无特殊说明,本发明实施例中所涉及的试剂均为市售产品,均可以通过商业渠道购买获得。其中,本实验出发菌株MHZ-0214-2为公开号为CN106591209A中国专利中的公开菌株。
大肠杆菌的基因组编辑,主要借鉴了Jiang Y等报道的CRISPR-Cas9基因编辑技术(Multigene Editing in the Escherichia coli Genome via the CRISPR-Cas9 System,Jiang Y,Chen B,et al.Appl.Environ Microbiol,2015)
以下实施例中,所述卡那霉素(Kanamycin)在培养基中的终浓度为50μg/mL,所述壮观霉素(spectinomycin)在培养基中的终浓度为50μg/ml。
以下实施例中,所用试剂均可由市场购得。本发明提供的高转化率苏氨酸生产菌种的亲代菌株为MHZ-0214-2,属于W3110(埃希氏菌属(Escherichia))。
实施例中所使用引物序列见下表。
Figure BDA0002339093470000051
Figure BDA0002339093470000061
本发明中涉及的基因名称解释如下:
iolT1:肌醇转移酶;
iolT2:肌醇转移酶;
ptsG:PTS系统EIIBCGlc
下面结合实施例,进一步阐述本发明:
实施例1:制备失活ptsG同时强化iolT1基因的菌株MHZ-0214-3(ptsG::Ptac-iolT1)
(1)构建pTargetT-ptsG::Ptac-iolT1质粒
以pTargetT质粒为模板(来源于文献Multigene Editing in the Escherichiacoli Genome via the CRISPR-Cas9 System,Jiang Y,Chen B,et al.Appl.EnvironMicrobiol,2015),利用引物对gRNAiolT-f/gRNAiolT-r扩增得到ptsG的sgRNA-ptsG片段①;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-1f/iolT-1r扩增得到ptsG左半段②;以ATCC13032基因组为模板,利用引物对tac-2f/iolT1-R扩增获得iolT1片段③;以③为模版,利用引物对tac-1f/iolT1-R进行扩增得到Ptac-iolT1片段④;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-2f/iolT-2r扩增得到ptsG右半段⑤;以①②④⑤为模板,利用引物对gRNAiolT-f/iolT-2r进行OE-PCR获得全长片段gRNA-ptsG::Ptac-iolT1;
使用SpeI/PstI对获得的gRNA-Ptac-iolT1片段和pTargetT载体进行双酶切,利用T4 DNA连接酶将目的片段与载体进行连接,并转化大肠杆菌DH5α感受态细胞中,用以扩增和筛选,最终获得pTargetT-ptsG::Ptac-iolT1质粒。
(2)感受态细胞制备及电转化pTargetT-ptsG::Ptac-iolT1质粒
将pCas质粒(来源于文献Multigene Editing in the Escherichia coli Genomevia the CRISPR-Cas9 System,Jiang Y,Chen B,et al.Appl.Environ Microbiol,2015)电转入MHZ-0214-2感受态细胞中(转化方法及感受态制备方法均参照《分子克隆III》);
挑取MHZ-0214-2(pCas)单菌落于5mL含卡那霉素和终浓度为10mM阿拉伯糖的LB试管中,30℃200r/min培养至OD650为0.4后制备电转感受态细胞(感受态制备方法参照《分子克隆III》)。
将pTargetT-ptsG::Ptac-iolT1质粒电转入MHZ-0214-2(pCas)感受态细胞中(电转化条件:2.5kV,200Ω,25μF),涂布于含壮观霉素和卡那霉素的LB平板上,30℃静置培养至单菌落可见。
(3)重组验证
使用引物对ptsG-up/ptsG-dn对上述单菌落进行菌落PCR验证(阳性片段约0.9kb);菌落PCR验证正确的菌株,进一步测序验证。
(4)构建相关质粒丢失
挑取测序验证正确的单菌落接种于5mL含卡那霉素及终浓度为0.5mM IPTG的LB试管中,30℃过夜培养后划线于含卡那霉素的LB平板上;挑取单菌落对点于含卡那霉素、壮观霉素LB平板和只含卡那霉素的LB平板上,30℃过夜培养,若在含卡那霉素、壮观霉素的LB平板上不能生长,在卡那霉素的LB平板上生长,表明pTargetT-ptsG::Ptac-iolT1质粒已丢失;挑取pTargetT-ptsG::Ptac-iolT1质粒丢失的阳性菌落,接种于无抗LB试管中,42℃培养8h后划线于LB平板上,37℃过夜培养;挑取单菌落对点于含卡那霉素LB平板和无抗LB平板上,若在含卡那霉素的LB平板上不能生长,在无抗LB平板上生长,表明pCas质粒丢失,得到MHZ-0214-3(ptsG::Ptac-iolT1)菌株。
实施例2:制备失活ptsG同时强化iolT2基因的菌株MHZ-0214-4(ptsG::Ptac-iolT2)
(1)构建pTargetT-ptsG::Ptac-iolT2质粒
以pTargetT质粒为模板(来源于文献Multigene Editing in the Escherichiacoli Genome via the CRISPR-Cas9 System,Jiang Y,Chen B,et al.Appl.EnvironMicrobiol,2015),利用引物对gRNAiolT-f/gRNAiolT-r扩增得到ptsG的sgRNA片段①;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-1f/iolT-1r扩增得到ptsG左半段②;以ATCC13032基因组为模板,利用引物对tac-3f/iolT2-R扩增获得iolT2片段③;以③为模版,利用引物对tac-1f/iolT2-R进行扩增得到Ptac-iolT2片段④;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-2f/iolT-2r扩增得到ptsG右半段⑤;以①②④⑤为模板,利用引物对gRNAiolT-f/iolT-2r进行OE-PCR获得全长片段gRNA-ptsG::Ptac-iolT2;
使用SpeI/PstI对获得的gRNA-ptsG::Ptac-iolT2片段和pTargetT载体进行双酶切,利用T4DNA连接酶将目的片段与载体进行连接,并转化大肠杆菌DH5α感受态细胞中,用以扩增和筛选,最终获得pTargetT-ptsG::Ptac-iolT2质粒。
(2)感受态细胞制备及电转化pTargetT-ptsG::Ptac-iolT2质粒
将pCas质粒(来源于文献Multigene Editing in the Escherichia coli Genomevia the CRISPR-Cas9 System,Jiang Y,Chen B,et al.Appl.Environ Microbiol,2015)电转入MHZ-0214-2感受态细胞中(转化方法及感受态制备方法均参照《分子克隆III》);
挑取MHZ-0214-2(pCas)单菌落于5mL含卡那霉素和终浓度为10mM阿拉伯糖的LB试管中,30℃200r/min培养至OD650为0.4后制备电转感受态细胞(感受态制备方法参照《分子克隆III》)。
将pTargetT-ptsG::Ptac-iolT2质粒电转入MHZ-0214-2(pCas)感受态细胞中(电转化条件:2.5kV,200Ω,25μF),涂布于含壮观霉素和卡那霉素的LB平板上,30℃静置培养至单菌落可见。
(3)重组验证
使用引物对ptsG-up/ptsG-dn对上述单菌落进行菌落PCR验证(阳性片段约0.9kb);菌落PCR验证正确的菌株,进一步测序验证。
(4)构建相关质粒丢失
挑取测序验证正确的单菌落接种于5mL含卡那霉素及终浓度为0.5mM IPTG的LB试管中,30℃过夜培养后划线于含卡那霉素的LB平板上;挑取单菌落对点于含卡那霉素、壮观霉素LB平板和只含卡那霉素的LB平板上,30℃过夜培养,若在含卡那霉素、壮观霉素的LB平板上不能生长,在卡那霉素的LB平板上生长,表明pTargetT-ptsG::Ptac-iolT2质粒已丢失;挑取pTargetT-ptsG::Ptac-iolT2质粒丢失的阳性菌落,接种于无抗LB试管中,42℃培养8h后划线于LB平板上,37℃过夜培养;挑取单菌落对点于含卡那霉素LB平板和无抗LB平板上,若在含卡那霉素的LB平板上不能生长,在无抗LB平板上生长,表明pCas质粒丢失,得到MHZ-0214-4(ptsG::Ptac-iolT2)菌株。
实施例1-2所获得的产苏氨酸基因改造菌株如表1所示。
表1本发明构建的基因工程菌
菌株编号 基因型
MHZ-0214-2 W3110(thrA*(S345P),tdh::thrA*BC,Ptac-pntAB,△iclR)
MHZ-0214-3 W3110(thrA*(S345P),tdh::thrA*BC,Ptac-pntAB,△iclR,ptsG::Ptac-iolT1)
MHZ-0214-4 W3110(thrA*(S345P),tdh::thrA*BC,Ptac-pntAB,△iclR,ptsG::Ptac-iolT2)
实施例3、产L-苏氨酸基因工程菌摇瓶发酵验证
从冻存管中取MHZ-0214-2、MHZ-0214-3、MHZ-0214-4共3株,在LB平板上划线活化,37℃培养18-24h;
将菌体从平板上刮下一环,接种到装有50mL种子培养基(见表2)的摇瓶中,37℃,转速90rpm,培养约5小时,使OD650控制在2以内;
将2mL种子液转接到含20mL发酵培养基(见表3)的摇瓶中,往复摇床37℃,100rpm发酵培养直至残糖耗尽,发酵结束后测定样品OD650,并用使用HPLC测定L-苏氨酸含量,用生物传感仪方法测定残糖量。产酸及转化率结果见表4。
表2种子培养基(g/L)
成分 浓度
葡萄糖 25
玉米浆 25
豆粕水解液 7.7
酵母膏 2.5
KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> 1.4
七水硫酸镁 0.5
FeSO<sub>4</sub>、MnSO<sub>4</sub> 20mg/L
pH 7.0
表3发酵培养基(g/L)
Figure BDA0002339093470000091
Figure BDA0002339093470000101
表4产苏氨酸基因工程菌生产力比较
菌株编号 产酸(g/L) 转化率(%)
MHZ-0214-2 13.2 26.4
MHZ-0214-3 17.5 35
MHZ-0214-4 15.3 30.6
由表4可知,本发明所述新型大肠杆菌L-苏氨酸产量均高于对照菌株,其中MHZ-0214-3菌株L-苏氨酸产量最高达到17.5g/L、转化率35%,较出发菌提高了8.6个百分点;MHZ-0214-4菌株L-苏氨酸的产量为15.3g/l、转化率为30.6略次于MHZ-0214-4,但其转化率比出发菌高4.2个百分点。由此可见,改造菌株的产酸以及转化率均优于出发菌,其中ptsG失活得同时过表达iolT1对于提高菌株的转化率的效果优于iolT2。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
序列表
<110> 新疆梅花氨基酸有限责任公司
<120> 一种高转化率的L-苏氨酸的生产菌株及其构建方法与应用
<130> MP1721859
<160> 13
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 49
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 1
aatactagtt ttgctaacct gcaaaaggtg ttttagagct agaaatagc 49
<210> 2
<211> 57
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 2
tctcttttcc tcgatgcggt accggcgcat tcaaaaaaag caccgactcg gtgccac 57
<210> 3
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 3
tgcgccggta ccgcatcgag 20
<210> 4
<211> 56
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 4
cgagccgatg attaattgtc aacagctccc ttttgcaggt tagcaaatgc attctt 56
<210> 5
<211> 57
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 5
gagctgttga caattaatca tcggctcgta taatgtgtgg tcacacagga aacagcg 57
<210> 6
<211> 59
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 6
gtataatgtg tggtcacaca ggaaacagcg atggctagta ccttcattca ggccgacag 59
<210> 7
<211> 59
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 7
gtataatgtg tggtcacaca ggaaacagcg atgacggaca tcaaggccac atcaagtac 59
<210> 8
<211> 59
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 8
ctcggttttc aggcatcagc gatttaccga ttagtgcacc tttccttttc ggatgtcct 59
<210> 9
<211> 58
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 9
ctcggttttc aggcatcagc gatttaccga ttaagccttc ttgaagatct ggccggtg 58
<210> 10
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 10
tcggtaaatc gctgatgcct g 21
<210> 11
<211> 29
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 11
aactgcagaa ctggcagctg acatttggc 29
<210> 12
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 12
caactgcgcg atgctgcgcg ttat 24
<210> 13
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence )
<400> 13
tacacctatc cccggcagca a 21

Claims (11)

1.一种高转化率的L-苏氨酸的生产菌株,其特征在于,具有L-苏氨酸生产能力并且其细胞内在ptsG位点过表达肌醇转移酶iolT1或iolT2。
2.根据权利要求1所述的生产菌株,其特征在于,所述过表达肌醇转移酶iolT1或iolT2为启动子的替换或核糖体结合位点序列的强化;所述生产菌株为大肠杆菌。
3.权利要求1或2所述的生产菌株,其特征在于,其基因型为W3110(thrA*(S345P),tdh::thrA*BC,Ptac-pntAB,△iclR,ptsG::Ptac-iolT1)或W3110(thrA*(S345P),tdh::thrA*BC,Ptac-pntAB,△iclR,ptsG::Ptac-iolT2)。
4.权利要求1-3任一项所述的生产菌株的构建方法,其特征在于,制备失活ptsG同时强化iolT1基因的重组载体质粒,转化大肠杆菌获得生产菌株。
5.根据权利要求4所述的构建方法,所述载体为pTargetT载体;所述大肠杆菌为大肠杆菌MHZ-0214-2菌株。
6.根据权利要求5所述的构建方法,其特征在于,所述制备失活ptsG同时强化iolT1基因的重组载体质粒的方法具体为:
(1)以pTargetT质粒为模板,利用引物对gRNAiolT-f/gRNAiolT-r扩增得到ptsG的sgRNA-ptsG片段①;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-1f/iolT-1r扩增得到ptsG左半段②;以ATCC13032基因组为模板,利用引物对tac-2f/iolT1-R扩增获得iolT1片段③;以③为模版,利用引物对tac-1f/iolT1-R进行扩增得到Ptac-iolT1片段④;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-2f/iolT-2r扩增得到ptsG右半段⑤;以①②④⑤为模板,利用引物对gRNAiolT-f/iolT-2r进行OE-PCR获得全长片段gRNA-ptsG::Ptac-iolT1,;与pTargetT载体连接获得pTargetT-ptsG::Ptac-iolT1质粒;或
(2)以pTargetT质粒为模板,利用引物对gRNAiolT-f/gRNAiolT-r扩增得到ptsG的sgRNA片段①;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-1f/iolT-1r扩增得到ptsG左半段②;以ATCC13032基因组为模板,利用引物对tac-3f/iolT2-R扩增获得iolT2片段③;以③为模版,利用引物对tac-1f/iolT2-R进行扩增得到Ptac-iolT2片段④;以W3110基因组为模板,利用引物对iolT-2f/iolT-2r扩增得到ptsG右半段⑤;以①②④⑤为模板,利用引物对gRNAiolT-f/iolT-2r进行OE-PCR获得全长片段gRNA-ptsG::Ptac-iolT2,与pTargetT载体连接获得pTargetT-ptsG::Ptac-iolT2质粒。
7.根据权利要求6所述的构建方法,其特征在于,
所述gRNAiolT-f的序列如SEQ ID No.1所示;
所述gRNAiolT-r的序列如SEQ ID No.2所示;
所述iolT-1f的序列如SEQ ID No.3所示;
所述iolT-1r的序列如SEQ ID No.4所示;
所述tac-1f的序列如SEQ ID No.5所示;
所述tac-2f的序列如SEQ ID No.6所示;
所述tac-3f的序列如SEQ ID No.7所示;
所述iolT1-R的序列如SEQ ID No.8所示;
所述iolT2-R的序列如SEQ ID No.9所示;
所述iolT-2f的序列如SEQ ID No.10所示;
所述iolT-2r的序列如SEQ ID No.11所示;
所述ptsG-up的序列如SEQ ID No.12所示;
所述ptsG-dn的序列如SEQ ID No.13所示。
8.权利要求5-7任一项所述构建方法获得的生产菌株。
9.权利要求1-3或8任一项所述生产菌株在发酵生产L-苏氨酸中的应用。
10.一种L-苏氨酸的生产方法,其特征在于,权利要求1-3或8任一项所述高转化率的L-苏氨酸的生产菌株接种于种子培养基进行种子培养,然后将种子培养物转入发酵培养基发酵培养。
11.根据权利要求10所述生产方法,其特征在于,所述种子培养基为玉米浆25g/L,葡萄糖25g/L,豆粕水解液7.7g/L,酵母膏2.5g/L,KH2PO4 1.4g/L,硫酸镁0.5g/L,FeSO4、MnSO420mg/L,pH 7.0;所述发酵培养基为葡萄糖50g/L\玉米浆5g/L,豆粕水解液7.7g/L,KH2PO41.0g/L,硫酸镁0.5g/L,天冬氨酸10g/L,FeSO4、MnSO4 30mg/L,生物素50μg/L,硫胺素500μg/L,pH 7.2;所述种子培养为37℃、90rpm培养5h;所述发酵培养为37℃、100rpm培养至残糖耗尽。
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