CN112745287B - 一种荧光探针hm及其制备方法和应用 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种荧光探针HM及其制备方法和应用。所述的荧光探针是7‑(二乙氨基)‑3‑[3‑(2‑羟基‑5‑甲氧基苯基)‑3‑氧代‑1‑丙烯基]香豆素。其制备方法:将7‑(二乙氨基)香豆素‑3‑甲醛和1‑(2‑羟基‑5‑甲氧基苯基)乙酮按等摩尔比溶解于乙腈中,滴入哌啶,加热回流20个小时,冷却至室温,减压抽滤,收集滤渣,真空干燥后,得到产物,为红色固体。该荧光探针对ClO‑的检测是增强型的,并且显示了高的灵敏性、以及良好的选择性和稳定性,并且具有检测过程简便、快速,检测结果准确等优点。此外,通过结合激光共聚焦扫描显微技术和生物活体成像技术,该新型荧光探针成功应用于细胞和肝癌小鼠模型中的ClO‑的检测。
Description
技术领域
本发明涉及荧光探针,具体属于一种荧光探针及其制备方法,以及该探针应用于生物样品中ClO-的检测。
背景技术
活性氧(ROS)是氧的高活性代谢产物,例如过氧化氢(H2O2),次氯酸/次氯酸根(HOCl/ClO-),单线态氧(1O2),过氧亚硝酸盐(ONOO-),羟基自由基(OH·)和臭氧(O3)。正常水平的ROS可以维持细胞和组织中的氧化还原稳态,而过量的ROS引起的氧化应激是涉及人类多种疾病的发生发展与人体衰老的一个重要因素。作为由髓过氧化物酶(MPO)催化H2O2和氯离子(Cl-)反应产生的氧化产物,ClO-是一种具有强氧化性的ROS。ClO-可以与DNA,蛋白质和脂质相互作用,并涉及多种生物学过程,通常是消灭入侵微生物。另外,ClO-在许多病理过程中也起着至关重要的作用,包括肾脏疾病、糖尿病、肝损伤、动脉粥样硬化,甚至癌症。据报道,正常组织中ClO-的生理浓度为5-25μM,而在病理条件下ClO-的浓度远高于100μM。内源性ClO-的变化被认为是一个ROS耦合疾病发展的重要指标。因此,精确检测体内ClO-的变化是及时诊断ClO-相关疾病的一种潜在策略。
目前已经存在的检测次氯酸或次氯酸盐的方法有色谱法,化学发光法,电分析法等。然而,这些方法灵敏度低,操作复杂,更重要的是,不能应用于体内HClO/ClO-的检测。而荧光探针作为最有力的检测分析物的工具之一,因为它们具有高灵敏度,操作简单不需要借助复杂仪器就可实现对分析物的检测,并且还具有易于可视化细胞内动力学和高分辨率定位感兴趣的生物分子的优点。通过细胞、组织和活体内的荧光成像,可实现生物体内次氯酸盐的检测。因此,这就迫切需要合成具有简单、灵敏度高、选择性好、检出限低、光稳定性好的荧光探针用于检测生物样品的ClO-。
发明内容
本发明的目的之一是提供一种荧光探针HM。目的之二是提供该探针HM的制备方法,该制备工艺简单,成本低廉。目的之三是提供该探针的用途,即应用于细胞外源性和肝癌小鼠模型中内源性ClO-的检测。该探针应具有响应迅速、灵敏度高、选择性高、以及生物相容性好等优点。
本发明提供的一种荧光探针HM,其是7-(二乙氨基)-3-[3-(2-羟基-5-甲氧基苯基)-3-氧代-1-丙烯基]香豆素,结构式为:
本发明提供的一种的荧光探针HM的制备方法,包括如下步骤:
(1)将7-(二乙氨基)香豆素-3-甲醛和1-(2-羟基-5-甲氧基苯基)乙酮按等摩尔比溶解于乙腈中,滴入哌啶,加热回流20小时,过程中不断有红色固体析出;
(2)反应结束后,冷却至室温,红色固体大量析出;
(3)减压抽滤,洗涤沉淀,干燥,得到红色的固体产物。
其合成路线如下:
本发明提供的一种定量荧光检测ClO-的方法,其步骤为:
(1)用DMSO配制2mM的荧光探针HM储备液;
(2)将2.0mL C2H5OH/PBS(2/3,v/v)体系以及10.0μL荧光探针储备液加入荧光比色皿中,在荧光分光光度仪上进行滴定实验,随着ClO-的加入,605nm处的荧光强度逐渐增强;
(3)以ClO-浓度为横坐标,以605nm处的荧光强度为纵坐标绘制图并进行Sigmoidal拟合,线性回归方程为:F=26.382*[ClO-]+333.235,ClO-浓度的单位为10-6mol/L;线性相关系数为R2=0.9937,最佳线性响应范围为0μM–29.48μM。
稳定性实验证明荧光探针对ClO-的测定具有良好的光稳定性。
经实验验证,常见阴离子和生物硫醇不干扰体系对ClO-的测定。
本发明的荧光探针HM通过细胞外源性和肝癌小鼠模型中内源性的ClO-成像实验,证明了可用于检测生物样品内ClO-变化。
与现有荧光探针相比,本发明合成荧光探针HM具有以下优点:1、本发明的荧光探针合成步骤简单,成本低廉。2、检测手段简单,只需要借助荧光光谱仪即可实现。3、荧光探针HM对ClO-响应具有响应时间短、灵敏度高和选择性好等特点,并且不受常见阴离子和生物硫醇的干扰。4、荧光探针HM的检测限极低,有利于对生物样品中微量ClO-的检测。5、荧光探针HM可用于细胞外源性和肝癌小鼠模型中内源性ClO-的检测。
附图说明
图1实施例2荧光探针随ClO-变化的紫外吸收光谱图
图2实施例3荧光探针随ClO-变化的荧光滴定图
图3实施例3荧光探针对ClO-响应的工作曲线
图4实施例4荧光探针对常见阴离子的响应情况
图5实施例5HeLa细胞成像图
图6实施例6肝癌小鼠模型成像图
具体实施方式
实施例1荧光探针的制备
(1)将7-(二乙氨基)香豆素-3-甲醛(0.1225g,0.5mmol)和1-(2-羟基-5-甲氧基苯基)乙酮(0.083,0.5mmol)溶解于乙腈(10mL)中,滴入哌啶(0.1mL,1mmol),加热回流20个小时,过程中不断有红色固体析出;
(2)反应结束后,冷却至室温,红色固体大量析出;
(3)减压抽滤,洗涤沉淀,干燥,得到0.063g的红色固体产物,产率为32%。
荧光探针用1H NMR表征,结果如下:
1H NMR(600MHz,DMSO-d6,δ/ppm):δ11.98(s,1H),8.55(s,1H),8.07(d,J=15.4Hz,1H),7.77(d,J=15.3Hz,1H),7.52(d,J=9.0Hz,1H),7.44(d,J=3.0Hz,1H),7.21(dd,J=9.0,3.0Hz,1H),6.95(d,J=9.0Hz,1H),6.82(dd,J=9.0,2.2Hz,1H),6.62(d,J=1.9Hz,1H),3.80(s,3H),3.50(q,J=7.0Hz,4H),1.15(t,J=7.0Hz,6H).
13C NMR(150MHz,DMSO-d6,δ/ppm):193.13,160.54,157.15,156.09,152.61,152.11,146.17,140.52,139.54,131.14,129.85,123.58,121.59,121.05,119.15,113.42,110.55,108.88,96.71,96.03,56.27,44.85,12.87.
实施例2荧光探针HM随ClO-变化的紫外吸收光谱图
在2.0mL C2H5OH/PBS(2/3,v/v)体系中加入10.0μL荧光探针储备液,进行ClO-紫外滴定实验,并记录其紫外吸收光谱(图1)。随着ClO-量的增加,在400nm处的紫外吸收值上升,在490nm处的紫外吸收值下降。
实施例3荧光探针HM随ClO-变化的荧光滴定图
在2.0mL C2H5OH/PBS(2/3,v/v)的体系中加入10.0μL荧光探针储备液进行ClO-荧光滴定实验,在荧光分光光度仪上检测,随着ClO-的增加,605nm处的荧光强度逐渐增强(图2)。仪器参数:激发波长和发射波长的狭缝宽度分别为5.0nm、5.0nm,电压为600V,荧光探针溶液的最大激发波长λex为485nm,最大发射波长λem为605nm。以荧光强度值F为纵坐标绘制图,得到ClO-浓度的工作曲线,线性回归方程为F=26.382*[NaClO]+333.235,NaClO浓度的单位为10-6mol/L;线性相关系数为R2=0.9937,最佳线性响应范围为0μM–29.48μM(图3)。
实施例4荧光探针HM对常见阴离子和生物硫醇的响应情况
在2.0mL C2H5OH/PBS(2/3,v/v)的体系中加入10.0μL荧光探针储备液,再分别加入其它阴离子和生物硫醇(Cl-、Br-、I-、NO2 -、NO3 -、Ac-、SO4 2-、SO3 2-、S2O3 2-、HSO3 -、CO3 2-、HS-、P2O7 2-、ATP、Cys、Hcy、GSH),使其最终浓度为100μM,再加入ClO-,使其最终浓度为10.0μM。分别测其荧光光谱,绘制不同阴离子以及生物硫醇对应605nm处荧光强度值的柱状图。经试验验证,其它阴离子和生物硫醇都不影响体系对ClO-的检测(图4)。
实施例5HeLa细胞成像图
将HeLa细胞在DMEM培养基,5%CO2,37℃环境中培养。在CLSM成像之前,将细胞接种在14mm玻璃盖玻片上并孵育12小时,使用前把细胞分置于多个小培养皿中。将两个小培养皿的培养液抽出,并用pH=7.40的PBS缓冲液洗涤,然后向两个小培养皿中分别加入含有10.0μL探针(1mM,用DMSO溶解)的2.0mLPBS(pH 7.40)缓冲溶液孵育10min左右,后抽出,在用pH=7.40的PBS缓冲液洗涤三次。向其中一个小培养皿中加入含有10.0μL(1×10-3M)ClO-的2.0mL pH=7.40的PBS缓冲溶液孵育10min左右,后抽出,再用pH=7.40的PBS缓冲溶液进行洗涤。最后将只孵过探针和孵过探针又孵过次氯酸盐的细胞分别置于小培养皿中加入2.0mL pH=7.40的PBS溶液在激光共聚焦显微镜下观察。固定激发波长为488nm,收集发射波段为红色通道(580-650nm)。从图5可看出,在只加入探针时,细胞内呈现微弱的红色荧光(A1-B1),加入ClO-后红色荧光明显增强(A2-B2)。
实施例6肝癌小鼠模型成像图
随机选取一只肝癌荷瘤鼠,称取0.0016g探针,溶解到2mL DMSO中,随后向小鼠肿瘤部位注射20μL探针溶液。设置激发波长为480nm,分别收集该小鼠加入探针后15min、30min、45min、60min的红色通道图像(580-650nm)。从图6可以看出,加入探针后15min、30min、45min、60min,小鼠瘤体部位的红色荧光逐渐增强(A-D)。
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