CN112708573A - 特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素b12检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,涉及食品检测技术领域,通过首先制备菌种,并制备标准工作溶液及标准系列,然后试样提取液的制作,再制备样品测定液,然后培养,最后测定与计算出特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的含量。
Description
技术领域
本发明涉及食品检测技术领域,尤其涉及一种特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法。
背景技术
特殊食品是指为满足某些特殊人群的生理需要,或某些疾病患者的营养需要,按照特殊配方而专门加工的食品。
叶酸是一种水溶性维生素,因绿叶中含量十分丰富而得名,又名喋酰谷氨酸。在自然界中有几种存在形式,其母体化合物是由喋啶、对氨基苯甲酸和谷氨酸3种成分结合而成。
生物素又称维生素H、辅酶R,是水溶性维生素,也属于维生素 B族,B7。它是合成维生素C的必要物质,是脂肪和蛋白质正常代谢不可或缺的物质。是一种维持人体自然生长、发育和正常人体机能健康必要的营养素。
维生素B12又叫钴胺素,是唯一含金属元素的维生素。自然界中的维生素B12都是微生物合成的,高等动植物不能制造维生素B12。维生素B12是唯一的一种需要一种肠道分泌物(内源因子)帮助才能被吸收的维生素。有的人由于肠胃异常,缺乏这种内源因子,即使膳食中来源充足也会患恶性贫血。
现有技术中,较国家标准提供的方法能够提高检测的灵敏度和选择性,但是其检出限仍有待提高,且功能饮料食品基质、成分单一,杂质少,对于特殊食品中的生物素、叶酸和维生素B12的检测无法适应。
发明内容
本发明提出了一种特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素 B12的检测方法。
为了实现上述目的,本发明采用了如下技术方案:
一种特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,包括以下步骤:
(1)制备菌种:
分别制备植物乳杆菌、莱士曼氏乳酸杆菌、鼠李糖乳杆菌,并配成三种菌悬液;
(2)制备标准工作溶液及标准系列:
生物素标准曲线工作液浓度为0.1ng/mL;维生素B12标准曲线工作液浓度为0.01ng/mL;叶酸标准曲线工作液浓度为0.200ng/mL;将上述三种标准曲线工作液用蒸馏水分别配制成若干个标准系列;
(3)试样提取液的制作:
对生物素、维生素B12、叶酸三种样品进行稀释,分别制成生物试样素提取液、维生素B12试样提取液、叶酸试样提取液;
(4)制备样品测定液:
将若干份不同浓度的生物素试样提取液、维生素B12试样提取液、叶酸试样提取液分别放入不同的试管中,并分别加入对应的测定用培养液,并混匀;
(5)培养:
给所有的试管盖上试管帽,放入灭菌釜内进行灭菌处理;
在相对应的灭菌后的试管中加入相对应种类的菌悬液,混匀,置于37℃±1℃恒温培养箱中;生物素、维生素B12培养19h~20h,叶酸培养20h~48h,直至获得最大混浊度,即再培养2h透光率无明显变化,从而得到若干培养好的测定管;
(6)测定与计算:
将培养好的测定管用漩涡混匀器混匀,用厚度为1cm比色杯在相应波长处,生物素、维生素B12:550nm;叶酸:540nm;以接种空白管调节吸光度为0,依次测定标准系列管、试样系列管吸光值;平行测试管之间吸光值偏差小于10%的为有效数值;
以标准系列管的含量为横坐标,吸光度为纵坐标作标准曲线;
从标准曲线查得样液相应含量(CX);
样液中维生素浓度c=测样液含量CX/试样稀释液体积VX;
f为样品稀释倍数;m为样品质量。
进一步地,所述植物乳杆菌的制备方法为:将菌种植物乳杆菌转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在37℃±1℃恒温培养箱中培养20h~ 24h;用接种环将活化的菌株转种至已灭菌的乳酸杆菌肉汤中,于37℃±1℃恒温培养箱中培养16h~20h,取出后将菌悬液离心弃去上清液,再用氯化钠溶液(0.85%)振匀并离心弃去上清液,如此三次;最后用氯化钠溶液(0.85%)稀释至透光率60%~80%;将调好透光率的菌悬液按照1:1的比例加入甘油,分装在1.5mL的PP小管中,-80℃冻存备用。
进一步地,所述莱士曼氏乳酸杆菌的制备方法为:将菌种莱士曼氏乳酸杆菌转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在37℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h;用接种环将活化的菌株转种至已灭菌的乳酸杆菌肉汤中,于37℃±1℃恒温培养箱中培养16h~20h,取出后将菌悬液离心弃去上清液,再用氯化钠溶液振匀并离心弃去上清液,如此三次;最后用氯化钠溶液稀释至透光率60%~80%;将调好透光率的菌悬液按照1:1的比例加入甘油,分装在1.5mL的PP小管中,-80℃冻存备用。
进一步地,所述鼠李糖乳杆菌的制备方法为:将菌种鼠李糖乳杆菌转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在37℃±1℃恒温培养箱中培养 20h~24h;用接种环将活化的菌株转种至含2mL叶酸标准工作液与 4mL叶酸测定用培养液的灭菌管中,于37℃土1℃恒温培养箱中培养 20h~24h;取出后将种子培养液混悬,无菌操作下用无菌移液器吸取 0.5mL转种至另两支已消毒但不含叶酸的培养液中,于37℃士1℃再培养6h;振荡混匀,制成接种液;接种液按照1:1的比例加入甘油,分装在1.5mL的PP小管中,-80℃冻存备用。
进一步地,所述生物试样素提取液的制备方法为:准确称取适量样品,所述样品含0.2μg~0.5μg生物素,加入生物素提取液100mL, 121℃水解30min,冷却后、调节pH,过滤,稀释,使稀释后试样提取液中生物素含量在0.01ng/mL~0.1ng/mL范围内。
进一步地,所述维生素B12试样提取液的制备方法为:称一定量的样品,所述样品含50ng~100ng维生素B12,用10mL维生素B12提取液,再加150mL水,于121℃水解10min,冷却后调pH,过滤,稀释,使稀释后试样提取液中维生素B12的质量浓度约在0.01ng/mL~0.02ng/mL范围内。
进一步地,所述叶酸试样提取液的制备方法为:准确称取固体试样0.1g~0.5g,加入80mL叶酸提取液,具塞,超声振荡2h~4h至试样完全溶解或分散,用水定容至刻度,稀释,使试样稀释液中叶酸含量在0.2ng/mL~0.6ng/mL范围内。
进一步地,所述生物素、维生素B12测定液:取4支试管,分别加入1.0mL、2.0mL、3.0mL、4.0mL试样提取液,补水至5.0mL,加入5.0mL生物素或B12测定用培养液,混匀。
进一步地,所述叶酸测定液:取3支试管,分别加入0.5mL、1.0mL、 2.0mL试样提取液,补水至5.0mL,加入5.0mL叶酸测定用培养液,混匀。
本发明具有以下有益之处:本发明通过首先制备菌种,并制备标准工作溶液及标准系列,然后试样提取液的制作,再制备样品测定液,然后培养,最后测定与计算出特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的含量。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。
在本发明的描述中,需要理解的是,术语“上”、“下”、“前”、“后”、“左”、“右”、“顶”、“底”、“内”、“外”等指示的方位或位置关系为基于所示的方位或位置关系,仅是为了便于描述本发明和简化描述,而不是指示或暗示所指的装置或元件必须具有特定的方位、以特定的方位构造和操作,因此不能理解为对本发明的限制。
一种特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法:
材料:
试验菌株:生物素试验菌株为植物乳杆菌 Lactobacillusplantarum(ATCC8014);B12试验菌株为莱士曼氏乳酸杆菌 (Lactobacillusleichmannii)ATCC7830;叶酸是试验菌株为鼠李糖乳杆菌Lactobacilluscaseispp.rhamnosus(ATCC7469)。
培养基:MRS培养基、乳酸杆菌琼脂培养基、乳酸杆菌肉汤培养基、生物素测定用培养基、维生素B12测定用培养基、叶酸测定用培养液。
标准品:生物素(d-Biotin或VitaminH)标准品(C10H16N2O3S):纯度≥ 99%;
维生素B12(VitaminB12或Cyanocobalamin)标准品(C63H88CoN14O14P):纯度≥99%;
叶酸标准品(C19H19N706):纯度≥99%。
提取液:
生物素提取液:硫酸溶液(3%):量取30mL硫酸加入到1000mL水混匀。
维生素B12提取液:称取无水磷酸氢二钠1.3g,无水偏重亚硫酸钠1.0g,柠檬酸(含一个结晶水)1.2g,用100mL水溶解。
叶酸提取液:氢氧化钠乙醇溶液(0.01mol/L):称取0.4g氢氧化钠,用乙醇溶液溶解并稀释至1L,混匀。
主要仪器:高压蒸汽灭菌锅、离心机:转速≥2000转/分钟;恒温培养箱:36℃±1℃、冰箱:2℃~5℃;紫外可见分光光度计。
菌种的制备:
将菌种植物乳杆菌Lactobacillusplantarum(ATCC8014)转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在37℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h。用接种环将活化的菌株转种至已灭菌的乳酸杆菌肉汤中,于37℃±1℃恒温培养箱中培养16h~20h,取出后将菌悬液离心弃去上清液,再用氯化钠溶液(0.85%)振匀并离心弃去上清液,如此三次。最后用氯化钠溶液(0.85%)稀释至透光率60%~80%。将调好透光率的菌悬液按照1: 1的比例加入甘油,分装在1.5mL的PP小管中,-80℃冻存备用。
所述莱士曼氏乳酸杆菌的制备方法为:将菌种莱士曼氏乳酸杆菌转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在37℃±1℃恒温培养箱中培养 20h~24h;用接种环将活化的菌株转种至已灭菌的乳酸杆菌肉汤中,于37℃±1℃恒温培养箱中培养16h~20h,取出后将菌悬液离心弃去上清液,再用氯化钠溶液振匀并离心弃去上清液,如此三次;最后用氯化钠溶液稀释至透光率60%~80%;将调好透光率的菌悬液按照1: 1的比例加入甘油,分装在1.5mL的PP小管中,-80℃冻存备用
所述鼠李糖乳杆菌的制备方法为:将菌种鼠李糖乳杆菌转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在37℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h;用接种环将活化的菌株转种至含2mL叶酸标准工作液与4mL叶酸测定用培养液的灭菌管中,于37℃土1℃恒温培养箱中培养20h~24h;取出后将种子培养液混悬,无菌操作下用无菌移液器吸取0.5mL转种至另两支已消毒但不含叶酸的培养液中,于37℃士1℃再培养6h;振荡混匀,制成接种液;接种液按照1:1的比例加入甘油,分装在 1.5mL的PP小管中,-80℃冻存备用。
标准工作溶液和标准系列制备:
生物素标准曲线工作液浓度为0.1ng/mL;维生素B12标准曲线工作液浓度为0.01ng/mL;叶酸标准曲线工作液浓度为0.200ng/mL。将3种标准曲线工作液用蒸馏水配置成8个标准系列,具体溶度如下表所示:
3种维生素标准系列浓度
取试管,每管中加入5mL标准系列浓度的溶液,加入5mL测定用培养基,平行样3份,同时做空白试验。
样品的处理:
生物素:准确称取适量样品(约含0.2μg~0.5μg生物素),加入生物素提取液100mL,121℃水解30min,冷却后、调节pH,过滤,稀释,使稀释后试样提取液中生物素含量在0.01ng/mL~0.1ng/mL范围内。
维生素B12:称一定量的样品(约含50ng~100ng维生素B12),用10mL维生素B12提取液,再加150mL水,于121℃水解10min,冷却后调pH,过滤,稀释,使稀释后试样提取液中维生素B12的质量浓度约在0.01ng/mL~0.02ng/mL范围内。
叶酸:准确称取固体试样0.1g~0.5g,加入80mL叶酸提取液,具塞,超声振荡2h~4h至试样完全溶解或分散,用水定容至刻度,稀释,使试样稀释液中叶酸含量在0.2ng/mL~0.6ng/mL范围内。
样品测定液的制备:
生物素、维生素B12测定液:取4支试管,分别加入1.0mL、2.0mL、 3.0mL、4.0mL试样提取液,补水至5.0mL,加入5.0mL生物素或B12 测定用培养液,混匀。每个梯度做3个平行。
叶酸测定液:取3支试管,分别加入0.5mL、1.0mL、2.0mL试样提取液,补水至5.0mL,加入5.0mL叶酸测定用培养液,混匀。每个梯度做3个平行。
培养:
灭菌:所有的试管盖上试管帽,放入灭菌釜内,121℃灭菌5min。
将存有试验接种用菌悬液的PP小管恢复到室温,在每只灭菌试管中加入100μL菌悬液,混匀,置于37℃±1℃恒温培养箱中。生物素、维生素B12培养19h~20h,叶酸培养20h~48h,直至获得最大混浊度,即再培养2h透光率无明显变化。
测定与计算:
将培养好的测定管用漩涡混匀器混匀,用厚度为1cm比色杯在相应波长处(生物素、维生素B12:550nm;叶酸:540nm),以接种空白管调节吸光度为0,依次测定标准系列管、试样系列管吸光值。平行测试管之间吸光值偏差小于10%的为有效数值:
以标准系列管的含量为横坐标,吸光度为纵坐标作标准曲线;
从标准曲线查得样液相应含量(CX);
样液中维生素浓度c=测样液含量CX/试样稀释液体积VX;
f为样品稀释倍数;m为样品质量。
以上所述,仅为本发明较佳的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变,都应涵盖在本发明的保护范围之内。
Claims (9)
1.特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,其特征在于:包括以下步骤:
(1)制备菌种:
分别制备植物乳杆菌、莱士曼氏乳酸杆菌、鼠李糖乳杆菌,并配成三种菌悬液;
(2)制备标准工作溶液及标准系列:
生物素标准曲线工作液浓度为0.1ng/mL;维生素B12标准曲线工作液浓度为0.01ng/mL;叶酸标准曲线工作液浓度为0.200ng/mL;将上述三种标准曲线工作液用蒸馏水分别配制成若干个标准系列;
(3)试样提取液的制作:
生物素、维生素B12、叶酸三种样品进行稀释,分别制成生物试样素提取液、维生素B12试样提取液、叶酸试样提取液;
(4)制备样品测定液:
将若干份不同浓度的生物素试样提取液、维生素B12试样提取液、叶酸试样提取液分别放入不同的试管中,并分别加入对应的测定用培养液,并混匀;
(5)培养:
给所有的试管盖上试管帽,放入灭菌釜内进行灭菌处理;在相对应的灭菌后的试管中加入相对应种类的菌悬液,混匀,置于37℃±1℃恒温培养箱中;生物素、维生素B12培养19h~20h,叶酸培养20h~48h,直至获得最大混浊度,即再培养2h透光率无明显变化,从而得到若干培养好的测定管;
(6)测定与计算:
将培养好的测定管用漩涡混匀器混匀,用厚度为1cm比色杯在相应波长处,生物素、维生素B12:550nm;叶酸:540nm;以接种空白管调节吸光度为0,依次测定标准系列管、试样系列管吸光值;平行测试管之间吸光值偏差小于10%的为有效数值;
以标准系列管的含量为横坐标,吸光度为纵坐标作标准曲线;
从标准曲线查得样液相应含量(CX);
样液中维生素浓度c=测样液含量CX/试样稀释液体积VX;
f为样品稀释倍数;m为样品质量。
2.根据权利要求1所述的特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,其特征在于,所述植物乳杆菌的制备方法为:将菌种植物乳杆菌转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在37℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h;用接种环将活化的菌株转种至已灭菌的乳酸杆菌肉汤中,于37℃±1℃恒温培养箱中培养16h~20h,取出后将菌悬液离心弃去上清液,再用氯化钠溶液振匀并离心弃去上清液,如此三次;最后用氯化钠溶液稀释至透光率60%~80%;将调好透光率的菌悬液按照1:1的比例加入甘油,分装在1.5mL的PP小管中,-80℃冻存备用。
3.根据权利要求1所述的特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,其特征在于,所述莱士曼氏乳酸杆菌的制备方法为:将菌种莱士曼氏乳酸杆菌转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在37℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h;用接种环将活化的菌株转种至已灭菌的乳酸杆菌肉汤中,于37℃±1℃恒温培养箱中培养16h~20h,取出后将菌悬液离心弃去上清液,再用氯化钠溶液振匀并离心弃去上清液,如此三次;最后用氯化钠溶液稀释至透光率60%~80%;将调好透光率的菌悬液按照1:1的比例加入甘油,分装在1.5mL的PP小管中,-80℃冻存备用。
4.根据权利要求1所述的特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,其特征在于,所述鼠李糖乳杆菌的制备方法为:将菌种鼠李糖乳杆菌转接至乳酸杆菌琼脂培养基中,在37℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h;用接种环将活化的菌株转种至含2mL叶酸标准工作液与4mL叶酸测定用培养液的灭菌管中,于37℃土1℃恒温培养箱中培养20h~24h;取出后将种子培养液混悬,无菌操作下用无菌移液器吸取0.5mL转种至另两支已消毒但不含叶酸的培养液中,于37℃士1℃再培养6h;振荡混匀,制成接种液;接种液按照1:1的比例加入甘油,分装在1.5mL的PP小管中,-80℃冻存备用。
5.根据权利要求1所述的特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,其特征在于,所述生物试样素提取液的制备方法为:准确称取适量样品,所述样品含0.2μg~0.5μg生物素,加入生物素提取液100mL,121℃水解30min,冷却后、调节pH,过滤,稀释,使稀释后试样提取液中生物素含量在0.01ng/mL~0.1ng/mL范围内。
6.根据权利要求1所述的特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,其特征在于,所述维生素B12试样提取液的制备方法为:称一定量的样品,所述样品含50ng~100ng维生素B12,用10mL维生素B12提取液,再加150mL水,于121℃水解10min,冷却后调pH,过滤,稀释,使稀释后试样提取液中维生素B12的质量浓度约在0.01ng/mL~0.02ng/mL范围内。
7.根据权利要求1所述的特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,其特征在于,所述叶酸试样提取液的制备方法为:准确称取固体试样0.1g~0.5g,加入80mL叶酸提取液,具塞,超声振荡2h~4h至试样完全溶解或分散,用水定容至刻度,稀释,使试样稀释液中叶酸含量在0.2ng/mL~0.6ng/mL范围内。
8.根据权利要求1所述的特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,其特征在于,所述生物素、维生素B12测定液:取4支试管,分别加入1.0mL、2.0mL、3.0mL、4.0mL试样提取液,补水至5.0mL,加入5.0mL生物素或B12测定用培养液,混匀。
9.根据权利要求1所述的特殊医学用途食品中叶酸、生物素、维生素B12的检测方法,其特征在于,所述叶酸测定液:取3支试管,分别加入0.5mL、1.0mL、2.0mL试样提取液,补水至5.0mL,加入5.0mL叶酸测定用培养液,混匀。
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CN114834865A (zh) * | 2022-04-11 | 2022-08-02 | 石家庄学院 | 一种食品中叶酸的快速检测试剂、其制备方法及应用 |
CN115656060A (zh) * | 2022-08-10 | 2023-01-31 | 广东产品质量监督检验研究院(国家质量技术监督局广州电气安全检验所、广东省试验认证研究院、华安实验室) | 一种食品和乳品中叶酸的快速测定方法 |
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2020
- 2020-07-29 CN CN202010741323.1A patent/CN112708573A/zh not_active Withdrawn
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN114834865A (zh) * | 2022-04-11 | 2022-08-02 | 石家庄学院 | 一种食品中叶酸的快速检测试剂、其制备方法及应用 |
CN115656060A (zh) * | 2022-08-10 | 2023-01-31 | 广东产品质量监督检验研究院(国家质量技术监督局广州电气安全检验所、广东省试验认证研究院、华安实验室) | 一种食品和乳品中叶酸的快速测定方法 |
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