CN112662822A - 一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的引物组、试剂及其方法 - Google Patents
一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的引物组、试剂及其方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的引物组、试剂及其方法,所述引物组包括特异性引物PSR‑FPVF和PSR‑FPVR,加速引物PSR‑FPVF FJ和PSR‑FPVF RJ,特异性引物PSR‑FPVF的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,特异性引物PSR‑FPVR的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示,加速引物PSR‑FPVF FJ的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示,加速引物PSR‑FPVF RJ的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。通过该引物组构建的PSR检测方法操作简单,对检测仪器要求低,极大缩短了检测时间,67℃恒温条件下45min内即可完成,扩增结束后向体系中加入终浓度为20×SYBR Green I核酸染料,在可见光下肉眼即可判定检测结果,极大提高了检测效率。
Description
技术领域
本发明涉及分子生物技术领域,具体涉及一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的引物组、试剂及其方法。
背景技术
猫细小病毒(feline parvovirus,FPV)又称猫泛白细胞减少症病毒或猫瘟病毒,可引起一种猫的急性高度接触性传染病。FPV属细小病毒科,单股无囊膜的DNA病毒。FPV可经唾液等分泌物直接进行传播,在室内环境也可以经衣服、鞋子等媒介物间接传播,所以家猫极易感染FPV,其中幼龄猫的感染率可高达90%以上。FPV引起的症状与肠道冠状病毒等其他病毒感染的症状十分相似,因此,建立一种快速、准确、特异和灵敏的检测方法对于FPV的诊断和治疗有重要意义。
目前,最常用的病毒检测方法为聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction,PCR),以及在PCR原理基础上衍生出了荧光定量PCR、巢氏 PCR 等技术。但这一系列PCR技术无法摆脱反应热循环的限制,且需要复杂的变温仪器和熟练的实验人员,导致检测成本高,检测时间长。
发明内容
为了解决上述问题,本发明提供一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的引物组、试剂及其方法。
本发明采用的技术方案之一为:
一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的引物组,所述引物组包括特异性引物PSR-FPVF和PSR-FPVR,加速引物PSR-FPVF FJ和PSR-FPVF RJ,特异性引物PSR-FPVF的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,特异性引物PSR-FPVR的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示,加速引物PSR-FPVF FJ的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示,加速引物PSR-FPVF RJ的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。
具体核苷酸序列表如下所示:
5’-CTGTCAGCACACTTTACACTTAAGTACTGATTCTGGTTGGA-3’(SEQ ID NO.1)
5’-CTGTCAGCACACTTTACACTCCTGTGCTGTCGTCACTGTGG-3’(SEQ ID NO.2)
5’-TGTCTGTCTTGATACTTC-3’(SEQ ID NO.3)
5’-CAGCACACTTTACACTG-3’(SEQ ID NO.4)
本发明采用的技术方案之二为:
一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的试剂,所述试剂包括上述特异性引物和加速引物。
进一步地,本发明一个实施例中,所述试剂还包括:10×Bst buffer,Bst X DNA聚合酶,dNTP Mix,MgSO4,甜菜碱,DNA模板,灭菌水。
进一步地,本发明一个实施例中,所述试剂还包括SYBR Green I核酸染料。
本发明采用的技术方案之三为:
本发明提供的试剂在制备检测猫细小病毒的检测产品中的应用。
本发明采用的技术方案之四为:
一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的检测方法,采用特异性引物PSR-FPVF和PSR-FPVR,加速引物PSR-FPVF FJ和PSR-FPVF RJ进行PSR恒温扩增反应,检测待检测样品中的FPV。
进一步地,所述检测方法具体包括以下步骤:
S1:提取待检测样品中的FPV基因组核酸并测定浓度、计算拷贝数;
S2:以提取的FPV基因组核酸为模板,构建PSR反应体系:10×Bst buffer 2.5μL,Bst X DNA聚合酶 8U,10mM each的dNTP Mix 1.75μL,2-14mmol/L的MgSO4 1.5μL,0.2-1.6mol/L甜菜碱4.8μL,特异性引物PSR-FPVF和PSR-FPVR各1μL,加速引物PSR-FPV-FJ和PSR-FPV-RJ各1μL,DNA模板1μL,用灭菌水补至25μL;
S3:将PSR反应体系进行恒温反应;每次反应均设灭菌水为阴性对照;
S4:反应完成后加入SYBR Green I核酸染料进行显色反应,若为绿色,则说明待检测样品为阳性,若为橙色,则说明待检测样品为阴性。
步骤S4中的SYBR Green I核酸染料的终浓度为20×;
进一步地,其中一个实施例中,所述恒温反应的温度为67℃
本发明的有益效果:
本发明的试剂采用Bst X DNA聚合酶,该酶缺失了5'-3'和3'-5'的核酸外切酶活性,比传统的Bst DNA聚合酶具有更强的链置换活性,其热稳定性高,抗逆性好,对非离子表面活性剂和高盐环境的耐受性更高。
本发明所述方法与传统的PCR检测方法相比,操作简单,对检测仪器要求低,只需要离心机、水浴锅等简单设备便可直接完成扩增,降低了检测成本,极大缩短了检测时间,67℃恒温条件下45min内即可完成,扩增结束后向体系内加入终浓度为20×SYBR Green I核酸染料,在可见光下肉眼即可判定检测结果,极大提高了检测效率。
且本发明的PSR检测方法特异性良好,对FCoV和FNV均呈阴性。PSR检测的灵敏度为6.75×103拷贝/μL,比常规PCR检测灵敏度略低10倍。
利用本发明的方法进行组内组间重复试验,结果显示组内与组间检测结果一致,均为阳性,重复性好。应用本发明PSR方法对50份疑似感染FPV的猫粪便样品进行检测,结果显示PSR方法检测结果与常规PCR方法检测结果基本一致,表明本研究建立的PSR方法可用于检测FPV临床样品,本方法简便、廉价、特异性强、灵敏度和重复性高,且可见光下肉眼即可判定结果,适合市县级宠物医院FPV感染的快速诊断。
除了上面所描述的目的、特征和优点之外,本发明还有其它的目的、特征和优点。下面将参照图,对本发明作进一步详细的说明。
附图说明
构成本申请的一部分的附图用来提供对本发明的进一步理解,本发明的示意性实施例及其说明用于解释本发明,并不构成对本发明的不当限定。
图1是本发明实施例的 PSR反应温度(A)、Mg2+浓度(B)、甜菜碱浓度(C)条件的筛选和PSR产物酶切鉴定结果(D);
图2是本发明实施例的引入加速引物可提高PSR扩增效率;
图3是本发明实施例的 PSR法特异性试验和可视化检测结果;
图4是本发明实施例的PSR法和PCR法检测FPV灵敏度比较。
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合附图及实施例,对本发明进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
本发明实施例采用的FPV、FCoV、FNV粪便样品均为2018-2020年间采集于兰州市部分宠物医院。病毒核酸提取试剂盒、10000×SYBR Green I、Bst X DNA聚合酶、10×BstBuffer、MgSO4溶液均购自北京索莱宝科技有限公司;甜菜碱购自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;dNTP Mix(10mM each)、2×Taq Master Mix(Dye Plus)均购自南京诺唯赞生物科技股份有限公司。
实施例1
1.引物设计
应用Oligo 6.0软件针对FPV NS1基因的保守区域设计1对PCR引物:FPV-F和FPV-R,扩增片段大小约为403bp,在该扩增片段内依据PSR原理设计1对PSR特异性引物:PSR-FPVF、PSR-FPVR,和1对PSR加速引物:PSR-FPV-FJ、PSR-FPV-RJ。PSR扩增产物为一系列梯形条带。所有引物由北京擎科生物科技有限公司西安分公司合成。具体引物名称及序列见表1。
表1 检测FPV的PCR和PSR引物
2.核酸提取和拷贝数计算
利用病毒核酸提取试剂盒分别将FPV阳性样品、猫冠状病毒(FCoV)阳性样品和猫诺如病毒(FNV)阳性样品提取病毒核酸,使用超微量分光光度计测定FPV核酸浓度,并计算其拷贝数。以FPV基因组DNA作为后续实验的反应模板,保存于-80℃冰箱。
3.PSR反应体系的构建及优化
以提取的FPV基因组核酸为模板,构建如下PSR反应体系:10×Bst buffer 2.5μL,Bst X DNA聚合酶 8U,dNTP Mix(10mM each) 1.75μL,MgSO4(100mmol/L) 1.5μL,甜菜碱(4.17mol/L) 4.8μL,PSR-FPVF和PSR-FPVR引物各1μL,PSR-FPV-FJ和PSR-FPV-RJ引物各1μL,DNA模板1μL,用灭菌水补至25μL。65℃下恒温反应90min,结束后进行电泳观察。每次实验均设以灭菌水为模板的阴性对照。
为了对反应体系进行优化:
基于上述PSR反应体系,利用方阵法进行退火温度(70℃、67℃、64℃、61℃、58℃)、反应时间(45min、60min、75min、90min)、MgSO4浓度(2 mmol/L、4 mmol/L、6 mmol/L、8mmol/L、10 mmol/L、12 mmol/L、14 mmol/L)和甜菜碱浓度(0.2 mol/L、0.4 mol/L、0.8mol/L、1.2mol/L、1.6mol/L)的筛选,确定最优的反应条件。同时,以最优条件进行试验,在反应结束后取10μL扩增产物用1%琼脂糖凝胶电泳进行检测。其余扩增产物内加入终浓度为20×SYBR Green I核酸染料,观察反应管是否发生颜色变化。
结果如下:
以提取的FPV基因组DNA为模板,利用方阵法优化PSR检测方法,首先使用PSR-FPVF和PSR-FPVR引物在不同温度下(58℃、61℃、64℃、67℃、70℃)分别进行PSR恒温扩增90min。结果见图1A,从图中可以看出,当反应90 min,反应温度为67℃时,梯状条带最清晰图。以67℃为最优反应温度进行PSR扩增,结果见图1B,结果表明在设立的MgSO4浓度梯度中6mmol/L MgSO4为最优反应浓度。再以67℃、6mmol/L MgSO4为反应条件进行PSR扩增,优化甜菜碱浓度,结果见图1C,结果显示甜菜碱浓度变化对反应结果影响差异不明显,故取中间浓度0.8mol/L作为甜菜碱最佳浓度。
为验证PSR扩增的梯度条带为FPV特异性靶基因,我们选取靶基因上唯一的酶切位点Sca I对PSR产物进行酶切鉴定,结果见图1D,电泳结果显示,在100bp处可见唯一一条预期目标基因条带,该条带切胶回收后送于测序公司,测序结果显示,本PSR法扩增产物为特异性FPV基因片段。
实施例2
为了验证加速引物PSR-FPVF FJ和PSR-FPVF RJ对实验结果的影响,设置四组反应体系,第一组不加任何加速引物,第二组只加PSR-FPVF FJ,第三组只加PSR-FPVF RJ,第四组同时加入PSR-FPVF FJ和PSR-FPVF RJ。检测方法采用实施例1优化后的结果。
结果见图2,第一组未引入加速引物组在反应75 min时可观察到清晰的梯状条带,引入加速引物组在反应45min时便有PSR扩增产物,但同时引入两条加速引物组的第四组在反应45min时电泳条带比引入单条加速引物组的第二、三组都明亮,说明引入两条加速引物组提高了PSR扩增效率,把检测时间缩减到45min。
实施例3
以实施例提取的FPV、FCoV和FNV基因组核酸为模板,利用实施例1的检测方法并加入加速引物PSR-FPVF FJ和PSR-FPVF RJ,进行特异性试验,同时设立以灭菌水为模板的阴性对照。
结果见图3,结果显示,灭菌水、FCoV和FNV三组均未发生基因扩增,而FPV、FPV+FCoV、FPV+FNV、FPV+FCoV+FNV四组有基因扩增,见图3A,反应结束后加入终浓度为20×SYBRGreen I核酸染料,在可见光下肉眼观察,发现灭菌水、FCoV和FNV三组为橙色,FPV、FPV+FCoV、FPV+FNV、FPV+FCoV+FNV四组的颜色由橙色变为绿色,这说明SYBR Green I染色结果与电泳结果一致,见图3B(由于说明书附图不能提供彩色附图,图中没有示出绿色和橙色,但是实际实验中肉眼可区分出绿色和橙色)。因此说明建立的PSR检测方法不仅具有良好的特异性,而且可用肉眼直观判读结果。
实施例4
将所提取的FPV基因组DNA进行10倍梯度稀释,以稀释的各浓度的病毒基因组为模板进行PSR和PCR扩增, PCR体系成分占比为:2×Taq Master Mix(Dye Plus)12.5μL、常规引物FPV-F和FPV-R各1μL、DNA模板1μL,用水补齐至25μL。扩增程序:94℃初始变性4min; 94℃ 30 S、51℃ 30 S、72℃ 30 S ,35个循环;72℃延伸8 min。反应结束后PCR扩增组进行琼脂糖凝胶电泳检测,PSR反应管中加入SYBR Green I核酸染料观察反应液的颜色变化,比较两种检测方法的灵敏度。
其中,常规引物FPV-F的核苷酸序列SEQ ID NO.5所示,常规引物FPV-R的核苷酸序列SEQ ID NO.6所示;
具体核苷酸序列如下:
5’-ATGGTTGGTGACTCTTTGTT-3’(SEQ ID NO.5)
5’-TACATTTGATTGACACTTCC-3’(SEQ ID NO.6)
结果见图4,结果显示,提取的FPV基因组DNA计算出拷贝数后进行10倍梯度稀释,即从6.75×108拷贝/μL稀释到6.75×101拷贝/μL,再以各浓度的病毒基因组为模板进行PSR和PCR扩增,结果显示,PSR法可检测到的病毒DNA最低值6.75×103拷贝/μL,见图4A(由于说明书附图不能提供彩色附图,图中没有示出绿色和橙色,但是实际实验中肉眼可区分出绿色和橙色),PCR法可检测的最低值6.75×102拷贝/μL,见图4B,这表明本研究建立的PSR检测方法虽比PCR法敏感度低10倍,但仍具有可接受的敏感性。
实施例5 临床实验
利用建立的PSR方法和常规PCR方法分别对取自兰州的50份疑似感染FPV猫粪便样品进行检测,同时设立阴阳性对照,反应结束后对检测结果进行分析。
对50份疑似感染FPV猫粪便样品、2份FPV阳性猫粪便样品进行PSR和PCR检测。结果显示,2份阳性样品PSR和PCR检测均为阳性,而50份猫粪便样品中,PSR检测出42份为阳性,阳性率为84%,PCR检测出44份为阳性,阳性率为88%,两种检测方法的结果基本相符。表明建立的PSR检测方法能够进行临床应用。
以上所述仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
SEQUENCE LISTING
<110> 甘肃农业大学
<120> 一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的引物组、试剂及其方法
<130> 1
<160> 6
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 41
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
ctgtcagcac actttacact taagtactga ttctggttgg a 41
<210> 2
<211> 41
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
ctgtcagcac actttacact cctgtgctgt cgtcactgtg g 41
<210> 3
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
tgtctgtctt gatacttc 18
<210> 4
<211> 17
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
cagcacactt tacactg 17
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
atggttggtg actctttgtt 20
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
tacatttgat tgacacttcc 20
Claims (8)
1.一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的引物组,其特征在于,所述引物组包括特异性引物PSR-FPVF和PSR-FPVR,加速引物PSR-FPVF FJ和PSR-FPVF RJ,特异性引物PSR-FPVF的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,特异性引物PSR-FPVR的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示,加速引物PSR-FPVF FJ的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示,加速引物PSR-FPVF RJ的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。
2.一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的试剂,其特征在于,所述试剂包括权利要求1所述引物组。
3.根据权利要求2所述的基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的试剂,其特征在于,所述试剂还包括:10×Bst buffer,Bst X DNA聚合酶,dNTP Mix,MgSO4,甜菜碱,DNA模板,灭菌水。
4.根据权利要求2所述的基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的试剂,其特征在于,所述试剂还包括SYBR Green I核酸染料。
5.一种权利要求2-4任一所述的试剂在制备检测猫细小病毒的检测产品中的应用。
6.一种基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的检测方法,其特征在于,采用特异性引物PSR-FPVF和PSR-FPVR,加速引物PSR-FPVF FJ和PSR-FPVF RJ进行PSR恒温扩增反应,检测待检测样品中的FPV。
7.根据权利要求6所述的基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的检测方法,其特征在于,包括:
S1:提取待检测样品中的FPV基因组核酸并测定浓度、计算拷贝数;
S2:以提取的FPV基因组核酸为模板,构建PSR反应体系:10×Bst buffer 2.5μL,Bst XDNA聚合酶 8U,10mM each的dNTP Mix 1.75μL,2-14mmol/L的MgSO4 1.5μL,0.2-1.6mol/L甜菜碱4.8μL,特异性引物PSR-FPVF和PSR-FPVR各1μL,加速引物PSR-FPV-FJ和PSR-FPV-RJ各1μL,DNA模板1μL,用灭菌水补至25μL;
S3:将PSR反应体系进行恒温反应;每次反应均设灭菌水为阴性对照;
S4:反应完成后加入SYBR Green I核酸染料进行显色反应,若为绿色,则说明待检测样品为阳性,若为橙色,则说明待检测样品为阴性。
8.根据权利要求7所述的基于聚合酶螺旋反应检测猫细小病毒的检测方法,其特征在于,所述恒温反应的温度为67℃。
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PB01 | Publication | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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