CN112626142B - 利用生物多酶偶联法制备l-草铵膦的方法 - Google Patents

Abstract

本申请涉及一种利用生物多酶偶联法制备L‑草铵膦的方法，其包括：a)在(R)‑转氨酶和氨基受体的存在下，使D,L‑草铵膦发生转氨反应得到2‑羰基‑4‑[羟基(甲基)膦酰基]丁酸和氨基受体的加氨基产物；b)在(S)‑转氨酶和氨基供体的存在下，使步骤a)中得到的2‑羰基‑4‑[羟基(甲基)膦酰基]丁酸发生转氨反应得到L‑草铵膦和氨基供体的脱氨基产物。本申请的方法能够实现高浓度D,L‑草铵膦的高效拆分来制备L‑草铵膦。

Description

利用生物多酶偶联法制备L-草铵膦的方法

技术领域

本申请涉及生物技术领域，特别是涉及一种利用生物多酶偶联法制备L-草铵膦的方法。

背景技术

草铵膦(又名双丙氨膦、草丁膦，商品名包括保试达、百速顿等，英文名为phosphinothricin(简称PPT)，化学名为2-氨基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸)是德国赫斯特公司(现属于拜耳公司)在20世纪80年代开发的一种具有低毒、高效、非选择性触杀型有机磷除草剂。草铵膦作用机制是，草铵膦作用植株后，可以抑制谷氨酰胺合成酶，从而中断植物体内谷氨酸的可逆反应，造成代谢紊乱，堆积过量的氨，使植物中毒，同时导致植物无法合成叶绿素，叶绿体解体，植物的光合作用就会受到抑制，导致植物死亡。草铵膦主要用于果园、马铃薯田、非耕地等防治一年生和多年生的禾本科及双子叶杂草，如马唐、狗尾草、野小麦；多年生的禾本科杂草和莎草，如羊茅、鸭芽等。

草铵膦有两种光学异构体，分别为L-草铵膦和D-草铵膦，但只有L-型具有除草活性，且在土壤中易分解，对人类和动物的毒性较小，除草谱广，对环境的破坏力小。

目前，市场上销售的草铵膦一般都是外消旋混合物。若草铵膦产品能以L-构型的纯光学异构体形式使用，可显著降低草铵膦的使用量，这对于提高原子经济性、降低使用成本、减轻环境压力具有重要意义。

现有制备手性纯L-草铵膦的方法主要两种：化学法和生物法。

其中化学法包括化学拆分法和化学合成法。

化学拆分法是通过手性拆分试剂拆分外化学法合成的消旋D,L-草铵膦或其衍生物，从而制得光学纯的L-草铵膦。Hoechst公司于1998年报道了利用奎宁作为拆分剂拆分草铵膦消旋体，实现了D-和L-草铵膦的分离(美国专利US5767309)。然而该工艺存在需要使用手性拆分试剂、D-草铵膦需要消旋再利用，需要多次拆分等缺点，难以规模工业化生产。

化学合成法以天然手性氨基酸或者不对称法合成L-草铵膦。例如Hoechst公司报道了利用L-谷氨酸或L-天冬氨酸为手性源合成L-草铵膦(Hoffmann M G,Zeiss H J.Anovel and convenient route to L-homoserine lactones and L-phosphinothricinfrom L-aspartic acid[J].Tetrahedron Letters,1992,33(19):2669-2672.和欧洲专利EP0530506)。但是该过程氨基保护与脱保护过程复杂，步骤较多，多见于实验室研究中。L-草铵膦工业化是明治制果采用不对称催化加氢法率先实现的(国际专利WO 2006104120)。但该路线所使用的催化剂价格昂贵，反应路线较长，工业化成本较高。

相比之下，生物催化法具有反应条件温和、立体选择性高、收率高等优点，是工业化制备L-草铵膦的重要趋势。

生物催化法制备L-草铵膦的方法目前大多是2-氧代-4-(羟基甲基氧膦基)丁酸(PPO)为底物，经氨化反应，不对称合成L-草铵膦。其中CN1349561A描述了将天冬氨酸作为氨基供体，利用筛选的天冬氨酸转氨酶(Asp-TA)通过转氨作用将PPO合成L-草铵膦。该工艺使用与PPO大约等摩尔量的氨基供体，生成的草酰乙酸在水中水解成丙酮酸，经酶促反应去除，不存在可逆反应。然而此工艺效率较低，底物PPO转化率仅有52％，反应条件苛刻(80℃)。专利CN105603015B描述了一种以L-丙氨酸为氨基供体的氨基转移酶生产L-草铵膦的方法。该工艺能够将100mM的PPO完全转化成L-草铵膦，但是为了抑制逆反应，丙氨酸投量过高，反应结束仍有300mM的L-丙氨酸存在体系中，为后续分离纯化造成困难，同时反应温度高达50℃，能耗较高，不利于生产。另外还有的方法在氨基酸脱氢酶的介导下，以无机氨为供体，将PPO还原胺化制备L-精草铵膦，例如CN106978453A，反应过程采用无机氨，转化率能够达到99％以上，然而该工艺需要额外添加辅酶再生系统，提高了分离纯化的难度。

上述工艺都以PPO为原料，但PPO的成本很高，从而导致这些工艺生产L-草铵膦的成本很高，难以实现工业化。因此，国际专利WO2017151573A1描述了一种以D，L-草铵膦为原料生产L-精草铵膦的方法，该工艺采用D-氨基酸氧化酶氧化D-草铵膦获得PPO，再由转氨酶经转氨反应将PPO转化为L-草铵膦。尽管该工艺实现了草铵膦消旋体的动态动力学拆分，但是该工艺存在明显缺陷：一是底物投量难以提升(仅有300mM D,L-草铵膦)；二是转氨酶介导的PPO到L-草铵膦的反应，由于受到可逆反应影响，仅能实现90％的转化率；三是由于胺供体是L-谷氨酸，反应后仍有大量剩余，产物分离纯化困难。

因此迫切需要开发一种能够高效实现动态拆分高浓度D,L-草铵膦来制备L-草铵膦的方法。

发明内容

本申请提供了一种利用生物多酶偶联法氧化还原不对称制备L-草铵膦的方法，其以D,L-草铵膦为原料，经多酶催化体系获得L-草铵膦。该方法原料转化率高、分离精制过程简单、产品收率高、生产成本低，易于工业化。

在一些实施方式中，本申请提供了一种制备L-草铵膦的方法，其包括：

a)在(R)-转氨酶和氨基受体的存在下，使D,L-草铵膦发生转氨反应得到2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸和氨基受体的加氨基产物；

b)在(S)-转氨酶和氨基供体的存在下，使步骤a)中得到的2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸发生转氨反应得到L-草铵膦和氨基供体的脱氨基产物。

在步骤a)中，以外消旋D,L-草铵膦为底物，在微量氨基受体例如丙酮酸(反应后无需分离)存在的条件下，(R)-转氨酶将D-草铵膦的氨基转移到氨基受体上，脱氨生成2-羰基-4-(羟基甲基膦酰基)丁酸(PPO)，而L-草铵膦不参与反应而完全保留。

转氨酶(Amine Transaminase,ATA,EC 2.6.1.X)属于转移酶类，是催化1个氨基供体(氨基酸或简单的胺)上的氨基转移到前手性的受体酮，得到手性胺和副产物酮或者α-酮酸的一类酶，其催化的反应是可逆的。根据氨基被转移到不同位置的氨基受体上，转氨酶又可以被分为α-转氨酶和ω-转氨酶(EC 2.6.1.1)。ω-转氨酶反应过程可分为两步，第一步反应是在ω-转氨酶的作用下将氨基供体上的氨基转移到PLP的羰基上，从而形成5-磷酸吡哆胺(PMP)和与氨基供体对应的酮；第二步反应同样在ω-转氨酶的作用下将PMP上的氨基转移到氨基受体上，PMP又转变为PLP实现循环。转氨酶的立体选择性可在包含手性中心的底物外消旋混合物的外消旋拆分中测定。ω-转氨酶根据立体选择性可分为“(R)-转氨酶”((R)-amine transaminase)和(S)-转氨酶((S)-amine transaminase)。

根据本申请，(R)-转氨酶可以是在存在酮底物(例如丙酮酸)的情况下，优先从外消旋D,L-草铵膦中诱导D-草铵膦的转氨反应的酶。(R)-转氨酶可以为本领域已知的任何具有(R)-转氨酶活性的酶。在一些实施方式中，所述(R)-转氨酶为选自以下中的任一种：APH1(例如NCBI序列号为WP_015938787.1)、HEA-2(例如NCBI序列号为ABX05998.1)、TSP-1(例如NCBI序列号为WP_013128145.1)、DEP-2(例如NCBI序列号为WP_013615256.1)和MPH(例如NCBI序列号为WP_013863226.1)。在一些实施方式中，所述(R)-转氨酶为APH1。在一些实施方式中，所述(R)-转氨酶来自Pseudarthrobacter chlorophenolicus，例如来自Pseudarthrobacter chlorophenolicus的APH1。在一些实施方式中，所述(R)-转氨酶的氨基酸序列与SEQ ID No.1所示的氨基酸序列具有至少70％、80％、90％、91％、91％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％或100％的同一性。在一些实施方式中，所述(R)-转氨酶的核苷酸序列与SEQ ID No.2所示的核苷酸序列具有至少60％、70％、80％、90％、91％、91％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％或100％的同一性。在一些实施方式中，所述(R)-转氨酶的氨基酸序列为SEQ ID No.1。在一些实施方式中，所述(R)-转氨酶的核苷酸序列为SEQ ID No.2。

在一些实施方式中，步骤a)中的所述氨基受体为丙酮酸、丙酮酸甲酯或丙酮酸乙酯。在一些优选的实施方式中，步骤a)中的所述氨基受体为丙酮酸。

在一些实施方式中，步骤a)中所述氨基受体的加氨基产物为D-丙氨酸。

在一些实施方式中，步骤a)中另外存在能够使所述氨基受体的加氨基产物转化为所述氨基受体的催化酶。这样，氨基受体得到氨基转化为的加氨基产物在所述催化酶的作用下又转化回氨基受体，从而在使反应体系具有更好的催化效率的同时实现氨基受体的原位再生，避免了大量氨基受体的使用。

在一些实施方式中，步骤a)中能够使所述氨基受体的加氨基产物转化为所述氨基受体的所述催化酶为D-氨基酸氧化酶，其使得D-丙氨酸转化为丙酮酸。

本申请所述的D-氨基酸氧化酶(EC 1.4.3.3)可以为本领域已知的任何具有D-氨基酸氧化酶活性的酶。在一些实施方式中，所述D-氨基酸氧化酶来自Rhodotorula sp.。在一些实施方式中，所述D-氨基酸氧化酶来自Rhodotorula sp.CCFEE 5036。在一些实施方式中，所述D-氨基酸氧化酶的氨基酸序列与SEQ ID No.3所示的氨基酸序列具有至少70％、80％、90％、91％、91％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％或100％的同一性。在一些实施方式中，所述D-氨基酸氧化酶的核苷酸序列与SEQ ID No.4所示的核苷酸序列具有至少60％、70％、80％、90％、91％、91％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％或100％的同一性。在一些实施方式中，所述D-氨基酸氧化酶的氨基酸序列为SEQ ID No.3。在一些实施方式中，所述D-氨基酸氧化酶的核苷酸序列为SEQ ID No.4。

在一些实施方式中，步骤a)的反应体系中还包括过氧化氢酶(EC 1.11.1.6)。所述过氧化氢酶用于去除副产物过氧化氢，因为过氧化氢积累会对酶催化剂有毒害作用。过氧化氢酶可以为本领域已知的任何具有过氧化氢酶活性的酶，例如购自宁夏夏盛实业集团有限公司，商品编号为CAT-400的过氧化氢酶。

在一些实施方式中，步骤a)的反应在反应缓冲液中进行。优选地，所述反应缓冲液是pH为8-9的磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液。在pH为8-9的磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液中进行反应时可以获得更优的反应效率。

在一些实施方式中，步骤a)的转氨反应的pH值为6-9，例如7-9或8-9。

在一些实施方式中，在步骤a)中，反应开始时氨基受体与D,L-草铵膦的摩尔比为1:500-1:5。

在一些实施方式中，步骤a)的反应体系中还包括辅酶磷酸吡哆醛。在一些实施方式中，磷酸吡哆醛与底物的摩尔比为1:10-1:200。在一些实施方式中，以摩尔浓度计，磷酸吡哆醛的添加量为0.1-2mM；更优选为1mM。

在一些实施方式中，步骤a)的转氨反应的温度为25-45℃，例如30-45℃，35-45℃等；时间为10-48小时，例如14-48小时，24-48小时，例如15小时、30小时等。

在步骤b)中，步骤a)中产生的PPO被(S)-转氨酶催化还原为L-草铵膦，从而实现D,L-草铵膦的原位去消旋化，得到光学纯的L-草铵膦。

根据本发明，(S)-转氨酶是在存在酮底物比如丙酮酸的情况下，优先从外消旋D,L-草铵膦诱导L-草铵膦的转氨反应的酶。本申请所述的(S)-转氨酶可以为本领域已知的任何具有(S)-转氨酶活性的酶。在一些实施方式中，所述(S)-转氨酶为选自以下中的任一种：ATA-0602(例如NCBI序列号为WP_012404126.1)、ATA-0607(例如NCBI序列号为WP_012404467.1)、ATA-0611(EN3)(例如NCBI序列号为WP_012403900.1)、ATA-0701(例如NCBI序列号为WP_013601929.1)和ATA-0801(例如NCBI序列号为WP_013614910.1)。在一些实施方式中，所述(R)-转氨酶为ATA-0611(EN3)。在一些实施方式中，所述(S)-转氨酶来自Paraburkholderia phymatum，例如来自Paraburkholderia phymatum的ATA-0611(EN3)。在一些实施方式中，所述(S)-转氨酶的氨基酸序列与SEQ ID No.7所示的氨基酸序列具有至少70％、80％、90％、91％、91％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％或100％的同一性。在一些实施方式中，所述(S)-转氨酶的核苷酸序列与SEQ ID No.8所示的核苷酸序列具有至少60％、70％、80％、90％、91％、91％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％或100％的同一性。在一些实施方式中，所述(S)-转氨酶的氨基酸序列为SEQ ID No.7。在一些实施方式中，所述(S)-转氨酶的核苷酸序列为SEQ ID No.8。

在一些实施方式中，步骤b)中的所述氨基供体为L-丙氨酸或异丙胺。在一些优选的实施方式中，所述氨基供体为L-丙氨酸。

在一些实施方式中，步骤b)中的所述氨基供体的脱氨基产物为丙酮酸。

在一些实施方式中，步骤b)中另外存在能够除去所述氨基供体的脱氨基产物的催化酶，在该催化酶的存在下，所述反应副产物(氨基供体的脱氨基产物，例如丙酮酸)通过所述催化酶被除去以利于完全转化。

在一些实施方式中，步骤b)中能够除去所述氨基供体的脱氨基产物的所述催化酶为丙酮酸脱羧酶。

本申请所述的丙酮酸脱羧酶(EC 4.1.1.1)可以为本领域已知的任何具有丙酮酸脱羧酶活性的酶。在一些实施方式中，所述丙酮酸脱羧酶是Zymobacter palmae。在一些实施方式中，所述丙酮酸脱羧酶的氨基酸序列与SEQ ID No.5所示的氨基酸序列具有至少70％、80％、90％、91％、91％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％或100％的同一性。在一些实施方式中，所述丙酮酸脱羧酶的核苷酸序列与SEQ ID No.6所示的核苷酸序列具有至少60％、70％、80％、90％、91％、91％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或99％或100％的同一性。在一些实施方式中，所述丙酮酸脱羧酶的氨基酸序列为SEQ ID No.5。在一些实施方式中，所述丙酮酸脱羧酶的核苷酸序列为SEQ ID No.6。

本申请所述的酶，例如(R)-转氨酶、(S)-转氨酶、能够使所述氨基受体的加氨基产物转化为所述氨基受体的催化酶、能够除去所述氨基供体的脱氨基产物的催化酶和所述过氧化氢酶的形式可以为纯化的酶；部分纯化的酶；无细胞提取物或粗细胞提取物；液体、粉末或固定形式；含有酶的可透化处理的细胞、完整细胞或完整发酵液或其他任何合适形式。因此，在一些实施方式中，所述(R)-转氨酶、(S)-转氨酶、能够使所述氨基受体的加氨基产物转化为所述氨基受体的催化酶、能够除去所述氨基供体的脱氨基产物的催化酶和所述过氧化氢酶的形式各自独立地选自：部分纯化的酶；无细胞提取物或粗细胞提取物；液体、粉末或固定形式；含有酶的可透化处理的细胞、完整细胞或完整发酵液、冻干细胞或其任何组合。

在一些实施方式中，步骤b)的转氨反应的温度为25-45℃，例如30-45℃，35-45℃等；时间为10-48小时，例如14-48小时，24-48小时，例如15小时、30小时等。

在一些实施方式中，在步骤b)中，反应开始时氨基供体与底物的摩尔比为1:2～5:1，例如1:1、1.5:1、2:1、3:1或4:1。

在一些实施方式中，步骤b)的转氨反应的pH值为6-9，例如7-9或8-9。

在一些实施方式中，步骤b)的反应在反应缓冲液中进行。优选地，所述反应缓冲液是pH为8-9的磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液。在pH为8-9的磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液中进行反应时可以获得更优的反应效率。

在一些实施方式中，步骤b)的反应体系中还包括辅酶磷酸吡哆醛。在一些实施方式中，磷酸吡哆醛与底物的摩尔比为1:10-1:200。在一些实施方式中，以摩尔浓度计，磷酸吡哆醛的添加量为0.1-2mM；更优选为1mM。

在一些优选的实施方式中，本申请提供了一种生产L-草铵膦的方法，其以D,L-草铵膦为原料，经多酶催化体系获得L-草铵膦，所述多酶催化体系包括：(R)-转氨酶、D-氨基酸氧化酶、(S)-转氨酶和丙酮酸脱羧酶，以及任选地过氧化氢酶。所述方法包括：

a)在(R)-转氨酶、D-氨基酸氧化酶和丙酮酸的存在下，使D,L-草铵膦发生转氨反应得到2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸并使得到的D-丙氨酸转化为丙酮酸；

b)在(S)-转氨酶、丙酮酸脱羧酶和L-丙氨酸的存在下，使步骤a)中获得的2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸发生转氨反应得到L-草铵膦并除去得到的丙酮酸。

在一些实施方式中，步骤a)的反应完成后和进行步骤b)之前，可以对步骤a)得到的反应混合物进行热处理，从而灭活催化剂，即步骤a)中所用的酶。加热温度和时间为使反应混合物中的酶失活的任何合适温度和时间。在一些实施方式中，加热的温度为65℃以上，例如75℃以上。在一些实施方式中，加热的时间为15分钟以上，例如15分钟至1小时，例如20、30、40、50分钟。

本申请所述的方法可以在一个或更多个反应容器中进行。优选地，本申请所述的方法在一个反应容器中进行(即“一锅两步法”)。

在一些优选的实施方式中，步骤a)中使用的(R)-转氨酶和能够使所述氨基受体的加氨基产物转化为所述氨基受体的催化酶(例如D-氨基酸氧化酶)由第一重组微生物共表达。因此，步骤a)可以包括：在共表达(R)-转氨酶和能够使氨基受体的加氨基产物转化为所述氨基受体的催化酶的第一重组微生物和所述氨基受体的存在下，使D,L-草铵膦发生转氨反应得到2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸并使得到的所述加氨基产物转化为所述氨基受体。利用所述第一重组微生物能够赋予本申请方法更高的催化效率。可以利用本领域已知的任何方法构建所述第一重组微生物。例如，所述第一重组微生物可以如下构建：构建含所述(R)-转氨酶基因和所述催化酶基因的重组载体，将所述重组载体转化至微生物，对获得的重组微生物进行诱导培养，分离培养液得到含有(R)-转氨酶基因和所述催化酶基因的第一重组微生物。优选地，按照10000rpm离心10min后的菌体湿重计，所述第一重组微生物的添加量为5-200g湿菌体/L反应液，或者，以干菌体重量计，所述第一重组微生物的添加量为1-50g干菌体/L反应液。

在一些优选的实施方式中，步骤b)中使用的(S)-转氨酶和所述能够除去所述氨基供体的脱氨基产物的催化酶由第二重组微生物共表达。因此，步骤b)可以包括：在共表达(S)-转氨酶和所述能够除去所述氨基供体的脱氨基产物的催化酶的第二重组微生物和氨基供体的存在下，使步骤a)获得的2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸发生转氨反应得到L-草铵膦并除去得到的反应副产物，即所述氨基供体的脱氨基产物。利用所述第二重组微生物能够赋予本申请方法更高的催化效率。可以利用本领域已知的任何方法构建所述第二重组微生物。例如，所述第二重组微生物可以如下构建：构建含所述(S)-转氨酶和所述催化酶基因的重组载体，将所述重组载体转化至微生物，对获得的重组微生物进行诱导培养，分离培养液得到含有(S)-转氨酶和所述催化酶基因的第二重组微生物。优选地，按照10000rpm离心10min后的菌体湿重计，所述第二重组微生物的添加量为5-200g湿菌体/L反应液，或者，以干菌体重量计，所述第二重组微生物的添加量为1-50g干菌体/L反应液。

所述第一和第二重组微生物可以是任何适用于酶表达的工程菌。在一些实施方式中，所述第一和第二重组微生物各自独立地属于以下属中的一种：酵母属(Saccharomyces)、曲霉属(Aspergillus)、毕赤酵母属(Pichia)、克鲁维酵母属(Kluyveromyces)、假丝酵母属(Candida)、汉逊酵母属(Hansenula)、腐质霉属(Humicola)、伊萨酵母属(Issatchenkia)、毛孢子菌属(Trichosporon)、酒香酵母属(Brettanomyces)、管囊酵母属(Pachysolen)、耶氏酵母属(Yarrowia)或埃希氏杆菌属(Escherichia)。在一些优选的实施方式中，所述第一和第二重组微生物各自独立地选自酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)、解脂耶氏酵母(Yarrowia lipolitica)、克鲁斯假丝酵母(Candida krusei)、东方伊萨酵母(Issatchenkia orientalis)或大肠杆菌(Escherichia coli)。在一些更优选的实施方式中，所述第一和第二重组微生物均是大肠杆菌。

本申请方法的产率可以通过本领域已知的任何方法测量。例如，可以通过手性HPLC来测量所获得的草铵膦产物中两个构型含量。在一些实施方式中，获得的草铵膦产物的对映体过量(e.e.)至少为80％、85％、90％、95％、96％、97％、98％、99％或99.9％。

本申请方法具有以下有益效果：

(1)D-氨基酸氧化酶的引入使反应体系具有更好的催化效率，以外消旋D,L-草铵膦为底物进行催化反应时，转化率远高于单酶催化，PPO产率也大幅提升。

(2)D-草铵膦被氧化为2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸，L-草铵膦因不参与反应而被完全保留；产物2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸又可以被转氨酶继续催化还原为L-草铵膦，进而实现D,L-草铵膦的原位去消旋化。而传统的氧化方法则需要将D-草铵膦和L-草铵膦都转化为2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸，造成了原料的浪费。

(3)能够直接以D,L-草铵膦为底物进行拆分，无需昂贵的拆分试剂，也无需合成草铵膦衍生物，更无需对D-草铵膦进行分离、再消旋、再拆分等步骤。

(4)克服了化学法合成L-草铵膦前体2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸的缺陷，是一种绿色，环保，低碳的工艺路线，适合大规模工业化生产应用。

对序列表的描述

SEQ ID NO:1是来源于Pseudarthrobacter chlorophenolicus的注释为(R)-转氨酶(APH1)的氨基酸序列。

SEQ ID NO:2是来源于Pseudarthrobacter chlorophenolicus的注释为(R)-转氨酶(APH1)的核苷酸序列。

SEQ ID NO:3是来源于Rhodotorula sp.CCFEE 5036的注释为D-氨基酸氧化酶(DAAO)的氨基酸序列。

SEQ ID NO:4是来源于Rhodotorula sp.CCFEE 5036的注释为D-氨基酸氧化酶(DAAO)的核苷酸序列。

SEQ ID NO:5是来源于Zymobacter palmae注释为丙酮酸脱羧酶(PDC)的氨基酸序列。

SEQ ID NO:6是来源于Zymobacter palmae注释为丙酮酸脱羧酶(PDC)的核苷酸序列。

SEQ ID NO:7是来源于Paraburkholderia phymatum STM815注释为(S)-转氨酶(EN3)的氨基酸序列。

SEQ ID NO:8是来源于Paraburkholderia phymatum STM815注释为(S)-转氨酶(EN3)的核苷酸序列。

附图说明

图1为本申请的一些实施例采用的多酶体系拆分法生产L-草铵膦的反应式。

图2-1示例性显示了用重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1单酶以及E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1&E.coli BL21(DE3)/pET-28a-DAAO催化效率对比柱状图，图2-2示例性显示了E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1和E.coli BL21(DE3)/pET-28a-DAAO拆分消旋PPT的反应进程曲线。

图3示例性显示了用重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-EN3和E.coliBL21(DE3)/pET-28a-PDC还原胺化PPO合成L-PPT的反应进程曲线。

图4示例性显示了APH1-DAAO构建体。

图5示例性显示了EN3-PDC构建体。

图6示例性显示了用重组大肠杆菌共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-APH1-DAAO拆分消旋PPT的反应进程曲线。

图7示例性显示了用重组大肠杆菌共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-EN3-PDC还原胺化PPO合成L-PPT的反应进程曲线。

图8示例性显示了双菌多酶一锅两步法去消旋化制备L-草铵膦的反应进程曲线。

具体实施方式

实施例

材料和方法

基因工程所用材料和试剂：基因组提取试剂盒、质粒提取试剂盒、DNA纯化回收试剂盒购自康宁生命科学(吴江)有限公司；一步克隆试剂盒是诺唯赞有限公司(Vazyme)的

MultiS One Step Cloning Kit；E.coli DH5α、E.coli BL21(DE3)、质粒pET-28a(+)、pCDFduet-1载体等购自上海旭冠生物科技发展有限公司；DNA marker、低分子量标准蛋白、蛋白胶等购自北京GenStar有限公司；过氧化氢酶购自宁夏夏盛实业集团有限公司，商品编号为CAT-400。以上试剂使用方法参考商品说明书。

序列合成，序列测序工作由杭州擎科梓熙生物技术有限公司完成。

催化工艺所用试剂2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸(简称PPO)，D,L-草铵膦购自永农生物科学有限公司；其他常用试剂购自国药集团化学试剂有限公司。

通过高效液相色谱(HPLC)检测反应的进行，并对PPO进行分析。HPLC分析方法为：色谱柱/PBr；柱温/30℃；流速/0.8mL/min；检测波长/210nm；流动相：50mM(NH4)2HPO4，加入12％的乙腈。

通过手性HPLC分析方法检查草铵膦的两个构型含量，手性HPLC分析方法为：色谱柱/OA-5000L；流动相/0.5％五水硫酸铜；检测波长/254nm；流速/0.7mL/min；柱温/35℃。

实施例1：工程菌菌体的培养

将工程菌重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1、E.coli BL21(DE3)/pET-28a-DAAO、E.coli BL21(DE3)/pET-28a-EN3、E.coli BL21(DE3)/pET-28a-PDC经平皿划线活化后，挑单菌落接种至含有50μg/mL卡那霉素的10mL LB液体培养基中，37℃震荡培养10h。按2％的接种量转接至50mL同样含有50μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，37℃震荡培养至OD600达到0.8左右时，加入终浓度为0.5mM的IPTG，28℃下震荡培养12h。培养结束后，将培养液8000rpm离心10min，弃上清，收集菌体，放到-80℃超低温冰箱中保存，待用。

实施例2：酶序列合成和菌株构建

将来源于Pseudarthrobacter chlorophenolicus的注释为(R)-转氨酶(APH1)的序列(氨基酸序列为SEQ ID NO.1所示，核苷酸序列为SEQ ID NO.2所示)进行全基因合成后，插入表达质粒pET-28a(+)得到pET28a-APH1。测序验证无误后将pET28a-APH1转入表达宿主大肠杆菌E.coli BL21(DE3)中用于后续重组酶的表达。

将来源于Rhodotorula sp.CCFEE 5036的注释为D-氨基酸氧化酶(DAAO)的序列(氨基酸序列为SEQ ID NO.3所示，核苷酸序列为SEQ ID NO.4所示)进行全基因合成后，插入表达质粒pET-28a(+)得到pET28a-DAAO。测序验证无误后将pET28a-DAAO转入表达宿主大肠杆菌E.coli BL21(DE3)中用于后续重组酶的表达。

将来源于Paraburkholderia phymatum STM815注释为(S)-转氨酶(EN3)的序列(氨基酸序列为SEQ ID NO.7所示，核苷酸序列为SEQ ID NO.8所示)进行全基因合成后，插入表达质粒pET-28a(+)得到pET28a-EN3。测序验证无误后将pET28a-EN3转入表达宿主大肠杆菌E.coli BL21(DE3)中用于后续重组酶的表达。

将来源于Zymobacter palmae注释为丙酮酸脱羧酶(PDC)的序列(氨基酸序列为SEQ ID NO.5所示，核苷酸序列为SEQ ID NO.6所示)进行全基因合成后，插入表达质粒pET-28a(+)得到pET28a-PDC。测序验证无误后将pET28a-PDC转入表达宿主大肠杆菌E.coliBL21(DE3)中用于后续重组酶的表达。

实施例3：用重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1和E.coli BL21(DE3)/pET-28a-DAAO拆分消旋PPT

(i)重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1单酶催化体系实验：30ml的反应体系中含有500mM D,L-PPT，250mM丙酮酸，和100mM磷酸盐缓冲液，用氨水将反应体系的pH调节至8.0，加入重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1 30g/L干细胞。反应条件为：温度30℃，转速250rpm。反应10h取样(100μl)，加入900μl去离子水，加热终止反应。通过HPLC检测D-PPT的转化情况，反应结果如图2-1所示。

(ii)重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1和E.coli BL21(DE3)/pET-28a-DAAO双酶催化体系实验：30ml的反应体系中含有500mM D,L-PPT，250mM丙酮酸，和100mM磷酸盐缓冲液，用氨水将反应体系的pH调节至8.0，加入重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1和E.coli BL21(DE3)/pET-28a-DAAO各30g/L干细胞。反应条件为：温度30℃，转速250rpm。反应10h取样(100μl)，加入900μl去离子水，加热终止反应。通过HPLC检测D-PPT的转化情况，反应结果如图2-1所示。

结果显示，在反应体系中添加DAAO能够明显提高APH1转化D-PPT的效率。

(iii)D-PPT拆分进程曲线实验：30ml的反应体系中含有500mM D,L-PPT，10mM丙酮酸，4000U/mL过氧化氢酶和100mM磷酸盐缓冲液，用氨水将反应体系的pH调节至8.0，加入重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-APH1和E.coli BL21(DE3)/pET-28a-DAAO各30g/L干细胞。反应条件为：温度30℃，转速250rpm。每隔一段时间取样(100μl)，加入900μl去离子水，加热终止反应。通过HPLC检测D-PPT的转化情况，反应进程曲线如图2-2所示。

结果显示，随着时间的推移，D-PPT转化率逐渐升高，60h内反应完成，底物转化率大于99.9％。

实施例4：用重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-EN3和E.coli BL21(DE3)/pET-28a-PDC还原胺化PPO合成L-PPT

30ml的反应体系中含有500mM PPO，1.2M L-丙氨酸，100mM磷酸盐缓冲液，用氨水将反应体系的pH调节至8.0，加入重组大肠杆菌E.coli BL21(DE3)/pET-28a-EN3和pET-28a-PDC各30g/L干细胞。反应条件为：温度30℃，转速250rpm。每隔一段时间取样(100μl)，加入900μl去离子水，加热终止反应。通过HPLC检测PPO的转化情况，反应进程曲线如图3所示。

结果显示，随着时间的推移，PPO转化率逐渐升高，44h内反应完成，底物转化率大于85％。

实施例5：共表达菌株的构建

一、含(R)-转氨酶和D-氨基酸氧化酶的共表达菌株的构建

将实施例2中使用的APH1基因序列通过一步克隆试剂盒连接到多克隆位点载体pCDFduet-1上，酶切位点为HindIII和XhoI，一步克隆引物为C1-F和C1-R(表1)，构建得到质粒pCDFduet-1-APH1。再在pCDFduet-1-APH1质粒的基础上，通过所述一步克隆试剂盒将实施例2中使用的DAAO片段连接到多克隆位点载体pCDFduet-1第二个克隆位点上，酶切位点为NdeI和XhoI，一步克隆引物为C2-F和C2-R(表1)，构建得到质粒pCDFduet-1-APH1-DAAO，将质粒转化入菌株E.coli BL21(DE3)得到共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-APH1-DAAO。图4显示了APH1-DAAO构建体。

二、含(S)-转氨酶和丙酮酸脱羧酶的共表达菌株构建

将实施例2中使用的EN3基因通过一步克隆试剂盒连接到多克隆位点载体pCDFduet-1上，酶切位点为NcoI和HindⅢ，一步克隆引物为C3-F和C3-R(表1)，构建得到质粒pCDFduet-1-EN3。再在pCDFduet-1-EN3质粒的基础上，通过所述一步克隆试剂盒将PDC连接到多克隆位点载体pCDFduet-1第二个克隆位点上，酶切位点为NdeI和EcoRI，一步克隆引物为C4-F和C4-R(表1)，构建得到质粒pCDFduet-1-EN3-PDC，将质粒转入菌株E.coli BL21(DE3)得到共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-EN3-PDC。图5显示了EN3-PDC构建体。

表1：克隆引物序列

引物	序列
		C1-F	CCCAAGCTTAAGGAGATATACATATGACCTCTCCCGCTTCCGT
C1-R	CCGCTCGAGCTATTGGATTCCGGCGTAAAGC
		C2-F	CCCAAGCTT5ATGCACAGCCAGAAACGCGTAGTTGTTCTGGGTAG
C2-R	CCGCTCGAG TTACAGTTTGCTTTCGCGTGCTGCGCCATGATAAC
		C3-F	CCGGAATTCAAGGAGATATACATATGAAGAATGCTGAACTGAAGAGCC
C3-R	ATAAGAATGCGGCCGCTCAGGCCGCTACGCCAAC
		C4-F	CCGGAATTCATGTATACCGTTGGTATGTACTTGGCAGAACGCCT
C4-R	ATAAGAATGCGGCCGCTTACGCTTGTGGTTTGCGAGAGTTGGTAGCTGCTA

实施例6：用重组大肠杆菌共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-APH1-DAAO拆分消旋PPT

按照实施例5(一)的方法构建并培养能够表达(R)-转氨酶和D-氨基酸氧化酶的共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-APH1-DAAO。

30ml的反应体系含有500mM D,L-PPT，10mM丙酮酸，4000U/mL过氧化氢酶，100mM磷酸盐缓冲液，用氨水调节将反应体系的pH调节至8.0，加入共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-APH1-DAAO 30g/L干细胞。反应条件为：温度30℃，转速250rpm。每隔一段时间取样(100μl)，加入900μl去离子水，加热终止反应。通过HPLC检测D-PPT的转化情况，反应进程曲线如图6所示。

结果显示，随着时间的推移，D-PPT转化率逐渐升高，16h内反应完成，底物转化率大于99.9％。

实施例7：用共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-EN3-PDC还原胺化PPO合成L-PPT

按照实施例5(二)的方法构建和培养能够表达(S)-转氨酶和丙酮酸脱羧酶的共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pETduet-1-EN3-PDC，离心收集菌体细胞。

30ml反应体系中含有500mM PPO，1.2M L-丙氨酸，100mM磷酸盐缓冲液，用氨水将反应体系的pH调节至8.0，加入共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-EN3-PDC 30g/L干细胞。反应条件为：温度30℃，转速250rpm。每隔一段时间取样(100μl)，加入900μl去离子水，加热终止反应。通过HPLC检测PPO的转化情况，反应进程曲线如图7所示。

结果显示，随着时间的推移，PPO转化率逐渐升高，EN3-PDC在30h内完成反应，底物转化率大于99.9％。

实施例8：双菌多酶一锅两步法去消旋化制备L-草铵膦

按照实施例5(一)的方法构建和培养能够表达(R)-转氨酶和D-氨基酸氧化酶的共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-APH1-DAAO。按照实施例5(二)的方法构建和培养能够表达(S)-转氨酶和丙酮酸脱羧酶的共表达菌株E.coli BL21(DE3)/pETduet-1-EN3-PDC，离心收集菌体细胞。

在1L反应器中，加入600mL pH＝8的磷酸盐缓冲液，温度设定为30℃，加入500mMD,L-PPT、消泡剂泡敌、10mM丙酮酸，过氧化氢酶1％v/v(4000U/ml)，30g/L E.coli BL21(DE3)/pCDFduet-1-APH1-DAAO菌体，通入空气，通气量为2L/min，反应14小时；75℃加热30min，再加入30g/L E.coli BL21(DE3)/pETduet-1-EN3-PDC菌体和300mM L-丙氨酸，用氨水控制pH为8，反应15小时。液相检测D-PPT为0mM，D-PPT转化率为99.9％，PPO为2mM，L-PPT为398mM，产品草铵膦的e.e.值为99.9％。反应进程曲线如图8所示。

序列表

<110>永农生物科学有限公司

华东理工大学

宁夏永农生物科学有限公司

<120> 利用生物多酶偶联法制备L-草铵膦的方法

<130> PD200279N

<160> 8

<170> PatentIn版本3.5

<210> 1

<211> 309

<212> PRT

<213> Pseudarthrobacter chlorophenolicus

<400> 1

Met Thr Ser Pro Ala Ser Val Val Leu Val Phe Leu Asp Pro Ala Phe

1 5 10 15

Pro Asp Gly Arg Leu Ala Asp Ala Ala Gln Pro Gln Leu Met Val Thr

20 25 30

Asp Gln Gly Ala Thr Arg Gly Asp Gly Ile Phe Glu Thr Met Leu Ala

35 40 45

Val Arg Gly Ser Val Arg Lys Ile Gln Ala His Leu Asp Arg Leu Asp

50 55 60

Gly Ser Ala Ala Ala Leu Asp Leu Ser Ile Pro Gly Gln Asp Asp Trp

65 70 75 80

Arg Arg Ala Ile Ala Thr Ala Ile Ala Glu His Gln Ala Gln Tyr Pro

85 90 95

Ala Pro Asp Ala Gly Asp Asp Glu Leu Val Val Lys Leu Val Val Thr

100 105 110

Arg Gly Val Glu Gly Ala Gly Ser Pro Thr Ala Trp Val Gln Val Ser

115 120 125

Pro Ala Pro Ala Ala Gly Arg Arg Gln Arg Glu Thr Gly Ile Asp Val

130 135 140

Ile Leu Leu Asp Arg Gly Tyr Asp Ser Asp Val Ala Glu Arg Ala Pro

145 150 155 160

Trp Leu Leu Met Gly Ala Lys Thr Leu Ser Tyr Ala Val Asn Met Ala

165 170 175

Ala Leu Arg His Ala Arg Arg Gln Gly Ala Asp Asp Val Ile Phe Leu

180 185 190

Ser Ser Asp Gly Arg Val Leu Glu Gly Pro Thr Ser Thr Val Leu Leu

195 200 205

Ala His Val Glu Glu Ser Ala Asp Gly Thr Ala Ile Lys Arg Leu Ile

210 215 220

Thr Pro Gln Leu Asp Ser Gly Ile Leu Pro Gly Thr Ser Gln Gly Ala

225 230 235 240

Leu Phe Thr Ala Ala Lys Ala Ala Gly Trp Glu Leu Gly Tyr Gly Pro

245 250 255

Leu Glu Pro Gln Asp Leu Leu Asp Ala Asp Ala Val Trp Leu Ile Ser

260 265 270

Ser Val Arg Leu Leu Ala Pro Val Asn Thr Ile Asp Gly Lys Gln Ile

275 280 285

Gly Thr Pro Ala Leu Gln Lys Glu Leu Thr Ala Glu Leu Thr Gly Leu

290 295 300

Tyr Ala Gly Ile Gln

305

<210> 2

<211> 930

<212> DNA

<213> Pseudarthrobacter chlorophenolicus

<400> 2

atgacctctc ccgcttccgt ggtactcgtt ttccttgatc ccgccttccc cgacggccgg 60

ctggccgacg ccgcccagcc gcagctgatg gtcacggacc agggcgccac caggggcgat 120

ggcatcttcg aaacgatgct cgccgtgcgc gggtcagtcc gaaaaatcca ggcccacctg 180

gaccgcctgg acggctccgc ggcggcgctg gacctcagca tcccgggcca ggatgactgg 240

cggcgggcca ttgccactgc cattgccgaa caccaggcgc agtacccggc ccccgatgcg 300

ggcgacgatg aactggtggt caagctggtg gtcacccgcg gcgttgaagg tgcgggctcc 360

cccaccgcct gggtgcaggt ctcccctgct ccggccgccg gccgccgcca acgggaaaca 420

ggcatcgacg tcatcctcct tgaccgcggg tacgacagtg acgttgccga gcgtgcgccg 480

tggctgctca tgggcgccaa gacgctctcc tacgccgtca acatggccgc cctgcgccat 540

gcccgcaggc agggcgcaga cgacgtcatc ttcctgtcct cggatggccg cgtgcttgag 600

ggccccacgt ccacggtgct gctggcgcac gtggaggagt ccgctgacgg gacggccatc 660

aagcgcctca tcacgccgca gctggacagc ggcatcctgc ccggaacatc gcagggggcc 720

ctcttcaccg cggcaaaggc ggcgggctgg gaactgggct acggacccct ggaaccgcag 780

gacctgctgg atgccgacgc ggtctggctg atctccagtg tccgcctcct cgccccggtc 840

aacacgatcg acggcaagca gatcggtacc ccggcgctgc agaaggagct gacggctgag 900

ctcacggggc tttacgccgg aatccaatag 930

<210> 3

<211> 372

<212> PRT

<213> Rhodotorula sp. CCFEE 5036

<400> 3

Met Thr Gln Asp Lys Arg Val Val Val Leu Gly Ser Gly Val Ile Gly

1 5 10 15

Leu Ser Cys Ala Leu Ala Leu Ala Gln Lys Gly Tyr Lys Val His Val

20 25 30

Val Ala Arg Asp Leu Pro Glu Asp Thr Val Ala Gln Thr Phe Ala Ser

35 40 45

Pro Trp Ala Gly Ala Asn Trp Thr Pro Phe Met Ser Lys Glu Ala Gly

50 55 60

Pro Arg Gln Ala Lys Trp Glu Glu Ala Thr Phe Lys Gln Trp Val Asp

65 70 75 80

Leu Val Pro Gln Gly Leu Ala Met Trp Leu Lys Gly Thr Arg Arg Phe

85 90 95

Ala Glu Asn Glu Ala Asp Leu Leu Gly His Trp Tyr Lys Asp Ile Val

100 105 110

Pro Asn Tyr Arg His Leu Asn Pro Ser Asp Cys Pro Pro Gly Ala Ile

115 120 125

Gly Val Thr Tyr Asp Thr Leu Ser Val Asn Ala Pro Lys Phe Cys Gln

130 135 140

Tyr Leu Gln Arg Glu Gly Gln Lys Leu Gly Val Thr Phe Glu Arg Arg

145 150 155 160

Leu Val Thr Ser Leu Glu Gln Ile Ala Asp Gly Ala Asp Leu Ile Val

165 170 175

Asn Ala Thr Gly Leu Gly Ala Lys Ser Ile Ala Gly Val Glu Asp Gln

180 185 190

Glu Val Glu Pro Ile Arg Gly Gln Thr Val Leu Val Lys Ser Asn Cys

195 200 205

Lys Arg Cys Thr Met Asp Ser Ser Asp Pro Lys Ser Pro Ala Tyr Ile

210 215 220

Ile Pro Arg Pro Gly Gly Glu Val Ile Cys Gly Gly Thr Tyr Leu Val

225 230 235 240

Gly Asn Tyr Asp Leu Ser Val Asp Pro Ala Thr Ile Pro Arg Ile Leu

245 250 255

Lys His Cys Leu Arg Leu Asp Pro Ser Ile Ser Thr Asp Gly Thr Leu

260 265 270

Glu Gly Ile Glu Ile Leu Arg His Asn Val Gly Leu Arg Pro Ala Arg

275 280 285

Arg Gly Gly Pro Arg Val Glu Leu Glu Arg Val Ser Leu Pro Leu Lys

290 295 300

Arg Gly Gln Ser Leu Leu Ala Leu Gly Thr Ala Lys Ala Ala Glu Gly

305 310 315 320

Lys Ala Pro Arg Thr Val Pro Val Val His Ala Tyr Gly Phe Ser Ser

325 330 335

Ala Gly Tyr Gln Gln Gly Trp Gly Ala Ala Leu Glu Val Arg Asp Leu

340 345 350

Val Asp Gln Ala Ile Gly Ser Ser Ser Ser Ser Ser Ser Gly Arg His

355 360 365

Leu Ala Lys Leu

370

<210> 4

<211> 1119

<212> DNA

<213> Rhodotorula sp. CCFEE 5036

<400> 4

atgactcagg acaagcgcgt cgttgtactc ggctcgggag ttatcgggtt gtcttgcgcc 60

ctggcactcg cgcagaaggg ctacaaggtg catgtcgttg cccgcgattt gccagaagac 120

accgtcgcgc agacgtttgc gagcccgtgg gcgggtgcta attggacacc gttcatgtcg 180

aaagaagccg gtccgaggca agcaaagtgg gaggaagcga cgttcaagca atgggtcgac 240

cttgtcccgc aaggtctcgc aatgtggctc aaggggaccc ggcggttcgc agagaacgag 300

gccgatctgc tcggccactg gtacaaagat atcgttccga actaccgaca cttgaacccg 360

tccgactgcc ctcccggcgc gatcggcgtc acgtacgaca ccctctcggt caatgctcca 420

aagttctgtc aatacctcca acgcgaggga cagaagctcg gcgtcacgtt cgagcgaagg 480

ctcgtcactt cgctcgagca gattgcagac ggtgccgatc tcatcgtcaa cgcgaccggg 540

ctcggtgcca agtctatcgc cggcgtggaa gaccaagagg ttgaaccgat ccgaggccag 600

actgttctcg tcaaatccaa ctgcaagcgc tgcacgatgg attcttcgga cccgaaaagc 660

ccggcttaca tcattcctcg gcctggtggc gaagtcatct gcggcggtac ctatctcgtt 720

ggcaactatg acctttctgt cgacccggcg accatccccc ggatcctcaa acactgcctc 780

cgcctcgacc cctccatctc gaccgacggg acgctcgaag ggatcgaaat cctccgccac 840

aatgtcggac tccgccccgc ccgccgcggc ggtccccgcg tcgaactcga acgcgtctcg 900

ctcccgctca agcggggtca gtcgctcctc gcgctcggga cggcaaaggc tgccgagggc 960

aaagcgccac ggacggtgcc cgtcgtgcac gcttacgggt tctccagcgc gggttaccag 1020

cagggctggg gcgccgcgct cgaggtgcga gacttggtcg atcaggcgat cgggtcttcc 1080

tcctcttcct cgagtgggcg gcacctcgcc aagctctag 1119

<210> 5

<211> 556

<212> PRT

<213> Zymobacter palmae

<400> 5

Met Tyr Thr Val Gly Met Tyr Leu Ala Glu Arg Leu Ala Gln Ile Gly

1 5 10 15

Leu Lys His His Phe Ala Val Ala Gly Asp Tyr Asn Leu Val Leu Leu

20 25 30

Asp Gln Leu Leu Leu Asn Lys Asp Met Glu Gln Val Tyr Cys Cys Asn

35 40 45

Glu Leu Asn Cys Gly Phe Ser Ala Glu Gly Tyr Ala Arg Ala Arg Gly

50 55 60

Ala Ala Ala Ala Ile Val Thr Phe Ser Val Gly Ala Ile Ser Ala Met

65 70 75 80

Asn Ala Ile Gly Gly Ala Tyr Ala Glu Asn Leu Pro Val Ile Leu Ile

85 90 95

Ser Gly Ser Pro Asn Thr Asn Asp Tyr Gly Thr Gly His Ile Leu His

100 105 110

His Thr Ile Gly Thr Thr Asp Tyr Asn Tyr Gln Leu Glu Met Val Lys

115 120 125

His Val Thr Cys Ala Arg Glu Ser Ile Val Ser Ala Glu Glu Ala Pro

130 135 140

Ala Lys Ile Asp His Val Ile Arg Thr Ala Leu Arg Glu Arg Lys Pro

145 150 155 160

Ala Tyr Leu Glu Ile Ala Cys Asn Val Ala Gly Ala Glu Cys Val Arg

165 170 175

Pro Gly Pro Ile Asn Ser Leu Leu Arg Glu Leu Glu Val Asp Gln Thr

180 185 190

Ser Val Thr Ala Ala Val Asp Ala Ala Val Glu Trp Leu Gln Asp Arg

195 200 205

Gln Asn Val Val Met Leu Val Gly Ser Lys Leu Arg Ala Ala Ala Ala

210 215 220

Glu Lys Gln Ala Val Ala Leu Ala Asp Arg Leu Gly Cys Ala Val Thr

225 230 235 240

Ile Met Ala Ala Glu Lys Gly Phe Phe Pro Glu Asp His Pro Asn Phe

245 250 255

Arg Gly Leu Tyr Trp Gly Glu Val Ser Ser Glu Gly Ala Gln Glu Leu

260 265 270

Val Glu Asn Ala Asp Ala Ile Leu Cys Leu Ala Pro Val Phe Asn Asp

275 280 285

Tyr Ala Thr Val Gly Trp Asn Ser Trp Pro Lys Gly Asp Asn Val Met

290 295 300

Val Met Asp Thr Asp Arg Val Thr Phe Ala Gly Gln Ser Phe Glu Gly

305 310 315 320

Leu Ser Leu Ser Thr Phe Ala Ala Ala Leu Ala Glu Lys Ala Pro Ser

325 330 335

Arg Pro Ala Thr Thr Gln Gly Thr Gln Ala Pro Val Leu Gly Ile Glu

340 345 350

Ala Ala Glu Pro Asn Ala Pro Leu Thr Asn Asp Glu Met Thr Arg Gln

355 360 365

Ile Gln Ser Leu Ile Thr Ser Asp Thr Thr Leu Thr Ala Glu Thr Gly

370 375 380

Asp Ser Trp Phe Asn Ala Ser Arg Met Pro Ile Pro Gly Gly Ala Arg

385 390 395 400

Val Glu Leu Glu Met Gln Trp Gly His Ile Gly Trp Ser Val Pro Ser

405 410 415

Ala Phe Gly Asn Ala Val Gly Ser Pro Glu Arg Arg His Ile Met Met

420 425 430

Val Gly Asp Gly Ser Phe Gln Leu Thr Ala Gln Glu Val Ala Gln Met

435 440 445

Ile Arg Tyr Glu Ile Pro Val Ile Ile Phe Leu Ile Asn Asn Arg Gly

450 455 460

Tyr Val Ile Glu Ile Ala Ile His Asp Gly Pro Tyr Asn Tyr Ile Lys

465 470 475 480

Asn Trp Asn Tyr Ala Gly Leu Ile Asp Val Phe Asn Asp Glu Asp Gly

485 490 495

His Gly Leu Gly Leu Lys Ala Ser Thr Gly Ala Glu Leu Glu Gly Ala

500 505 510

Ile Lys Lys Ala Leu Asp Asn Arg Arg Gly Pro Thr Leu Ile Glu Cys

515 520 525

Asn Ile Ala Gln Asp Asp Cys Thr Glu Thr Leu Ile Ala Trp Gly Lys

530 535 540

Arg Val Ala Ala Thr Asn Ser Arg Lys Pro Gln Ala

545 550 555

<210> 6

<211> 1671

<212> DNA

<213> Zymobacter palmae

<400> 6

atgtataccg ttggtatgta cttggcagaa cgcctagccc agatcggcct gaaacaccac 60

tttgccgtgg ccggtgacta caacctggtg ttgcttgatc agctcctgct gaacaaagac 120

atggagcagg tctactgctg taacgaactt aactgcggct ttagcgccga aggttacgct 180

cgtgcacgtg gtgccgccgc tgccatcgtc acgttcagcg taggtgctat ctctgcaatg 240

aacgccatcg gtggcgccta tgcagaaaac ctgccggtca tcctgatctc tggctcaccg 300

aacaccaatg actacggcac aggccacatc ctgcaccaca ccattggtac tactgactat 360

aactatcagc tggaaatggt aaaacacgtt acctgcgcac gtgaaagcat cgtttctgcc 420

gaagaagcac cggcaaaaat cgaccacgtc atccgtacgg ctctacgtga acgcaaaccg 480

gcttatctgg aaatcgcatg caacgtcgct ggcgctgaat gtgttcgtcc gggcccgatc 540

aatagcctgc tgcgtgaact cgaagttgac cagaccagtg tcactgccgc tgtagatgcc 600

gccgtagaat ggctgcagga ccgccagaac gtcgtcatgc tggtcggtag caaactgcgt 660

gccgctgccg ctgaaaaaca ggctgttgcc ctagcggacc gcctgggctg cgctgtcacg 720

atcatggctg ccgaaaaagg cttcttcccg gaagatcatc cgaacttccg cggcctgtac 780

tggggtgaag tcagctccga aggtgcacag gaactggttg aaaacgccga tgccatcctg 840

tgtctggcac cggtattcaa cgactatgct accgttggct ggaactcctg gccgaaaggc 900

gacaatgtca tggtcatgga caccgaccgc gtcactttcg caggacagtc cttcgaaggt 960

ctgtcattga gcaccttcgc cgcagcactg gctgagaaag caccttctcg cccggcaacg 1020

actcaaggca ctcaagcacc ggtactgggt attgaggccg cagagcccaa tgcaccgctg 1080

accaatgacg aaatgacgcg tcagatccag tcgctgatca cttccgacac tactctgaca 1140

gcagaaacag gtgactcttg gttcaacgct tctcgcatgc cgattcctgg cggtgctcgt 1200

gtcgaactgg aaatgcaatg gggtcatatc ggttggtccg taccttctgc attcggtaac 1260

gccgttggtt ctccggagcg tcgccacatc atgatggtcg gtgatggctc tttccagctg 1320

actgctcaag aagttgctca gatgatccgc tatgaaatcc cggtcatcat cttcctgatc 1380

aacaaccgcg gttacgtcat cgaaatcgct atccatgacg gcccttacaa ctacatcaaa 1440

aactggaact acgctggcct gatcgacgtc ttcaatgacg aagatggtca tggcctgggt 1500

ctgaaagctt ctactggtgc agaactagaa ggcgctatca agaaagcact cgacaatcgt 1560

cgcggtccga cgctgatcga atgtaacatc gctcaggacg actgcactga aaccctgatt 1620

gcttggggta aacgtgtagc agctaccaac tctcgcaaac cacaagcgta a 1671

<210> 7

<211> 427

<212> PRT

<213> Paraburkholderia phymatum STM815

<400> 7

Met Lys Asn Ala Glu Leu Lys Ser Arg Lys Asp Ala Ala Thr Pro Arg

1 5 10 15

Gly Val Gly Val Met Cys Asp Phe Tyr Ala Ala Arg Ala Glu Asn Ala

20 25 30

Glu Leu Trp Asp Val Glu Gly Arg Arg Phe Ile Asp Phe Ala Ala Gly

35 40 45

Ile Ala Val Cys Asn Thr Gly His Arg His Pro Lys Ile Val Glu Ala

50 55 60

Val Arg Ala Gln Leu Asp His Phe Thr His Thr Ala Tyr Gln Ile Val

65 70 75 80

Pro Tyr Ala Ser Tyr Val Glu Leu Ala Glu Lys Ile Asn Glu Arg Ala

85 90 95

Pro Gly Asp Tyr Pro Lys Lys Thr Ala Phe Phe Thr Thr Gly Ala Glu

100 105 110

Ala Val Glu Asn Ala Ile Lys Ile Ala Arg Ala Phe Thr Gly Arg Pro

115 120 125

Gly Val Ile Ala Phe Thr Gly Gly Phe His Gly Arg Thr Met Met Gly

130 135 140

Met Ala Leu Thr Gly Lys Val Ala Pro Tyr Lys Leu Asn Phe Gly Pro

145 150 155 160

Phe Pro Ala Asp Val Phe His Ala Pro Phe Pro Asn Pro Leu His Gly

165 170 175

Val Thr Thr Ala Asp Ser Leu Lys Ala Ile Glu Phe Leu Phe Lys Ala

180 185 190

Asp Ile Asp Pro Lys Arg Val Ala Ala Ile Ile Phe Glu Pro Val Gln

195 200 205

Gly Glu Gly Gly Phe Tyr Pro Ala Pro Ala Glu Phe Val Arg Ala Leu

210 215 220

Arg Lys Leu Cys Asn Glu His Gly Ile Leu Leu Ile Ala Asp Glu Val

225 230 235 240

Gln Thr Gly Phe Ala Arg Thr Gly Lys Leu Phe Ala Met Asn His Tyr

245 250 255

Asp Val Val Pro Asp Leu Met Thr Met Ala Lys Ser Leu Ala Gly Gly

260 265 270

Met Pro Leu Ser Gly Val Val Gly Arg Ala Asp Val Met Asp Ala Ala

275 280 285

Ala Pro Gly Gly Leu Gly Gly Thr Tyr Ala Gly Asn Pro Leu Ala Val

290 295 300

Ala Ser Ala His Ala Val Leu Asp Ile Ile Asp Glu Glu Arg Leu Cys

305 310 315 320

Glu Arg Ala Val Val Leu Gly Asp Arg Leu Lys Ala Lys Leu Thr Ala

325 330 335

Leu Gln Ser Glu Val Pro Leu Ile Ala Asp Val Arg Gly Pro Gly Gly

340 345 350

Met Val Ala Val Glu Phe Cys Lys Pro Gly Thr Ser Glu Ala Asp Ala

355 360 365

Asp Phe Thr Lys Arg Val Gln Thr Arg Ala Leu Glu Arg Gly Leu Leu

370 375 380

Leu Leu Val Cys Gly Val Tyr Ser Asn Val Val Arg Phe Leu Phe Pro

385 390 395 400

Leu Thr Ile Gln Asp Ser Val Phe Asp Glu Ala Val Ser Ile Leu Glu

405 410 415

Glu Val Leu Lys Glu Thr Val Gly Val Ala Ala

420 425

<210> 8

<211> 1284

<212> DNA

<213> Paraburkholderia phymatum STM815

<400> 8

atgaagaatg ctgaactgaa gagccgcaag gacgccgcca cgccgcgcgg cgtaggcgtg 60

atgtgcgatt tctacgctgc gcgtgcggag aatgcggagc tgtgggacgt cgagggccgc 120

cgcttcatcg atttcgcggc cggcattgcc gtttgcaaca cggggcatcg tcatccgaag 180

atcgtcgagg ccgtgcgcgc ccaactcgac cacttcacgc acaccgctta tcagatcgtg 240

ccgtatgcgt cgtatgtcga gctggcggaa aagatcaacg agcgcgcgcc gggcgactat 300

ccgaagaaga ctgcattctt tacgacgggc gccgaagccg tcgaaaacgc gatcaagatc 360

gcacgcgcct tcacgggccg tccgggcgtg atcgcgttca cgggcggctt tcacggccgc 420

acgatgatgg gcatggcgct gacgggcaag gtcgcgccgt acaagctgaa cttcggcccg 480

ttcccggccg atgtattcca cgcaccgttc ccgaatccgc tgcatggcgt gacgacggcg 540

gactcgttga aggcgatcga atttctgttc aaggcggaca tcgatccgaa gcgcgtcgcg 600

gcgatcattt tcgagccggt gcaaggcgaa ggcggtttct atccggcgcc tgccgagttc 660

gtgcgggcgc tgcgcaagct gtgcaacgag cacggcattc tgctgatcgc ggacgaagtg 720

cagacgggtt ttgcacgcac gggcaagctg ttcgcgatga atcactatga cgtggttccc 780

gacctgatga cgatggcgaa gagcctcgcg ggcggcatgc cgctgtcggg tgtggtcggg 840

cgtgcggatg tgatggatgc ggctgcgccg ggcggactgg gcggcacgta cgcgggcaat 900

ccgctcgcgg ttgcttcggc gcatgcggtg ctcgacatca tcgacgaaga gcggctctgc 960

gagcgggctg tggtgttggg ggatcgcctg aaggcgaagt tgacggcgct tcagtcggaa 1020

gtgccgctga tcgccgatgt gcgcgggccg ggcggcatgg tggccgtcga gttctgcaag 1080

ccgggtacgt cggaggcgga tgccgatttc acgaagcgcg tgcagactcg cgcgctcgag 1140

cgcgggttgc tgttgctggt gtgtggtgtt tattcgaacg ttgttcggtt tttgttcccg 1200

ttgactattc aggattcggt cttcgatgaa gctgtttcca ttctcgaaga ggtgctgaaa 1260

gagactgttg gcgtagcggc ctga 1284

Claims (16)

1.一种制备L-草铵膦的方法，其包括：

a)在(R)-转氨酶和氨基受体的存在下，使D,L-草铵膦发生转氨反应得到2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸和氨基受体的加氨基产物；

b)在(S)-转氨酶和氨基供体的存在下，使步骤a)中得到的2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸发生转氨反应得到L-草铵膦和氨基供体的脱氨基产物，

其中所述方法在同一反应器中进行，

其中步骤a)中另外存在能够使所述氨基受体的加氨基产物转化为所述氨基受体的催化酶，并且所述催化酶为D-氨基酸氧化酶，

其中步骤b)中另外存在能够除去所述氨基供体的脱氨基产物的催化酶，并且所述催化酶为丙酮酸脱酸酶，

其中步骤a)中的所述氨基受体为丙酮酸，所述氨基受体的加氨基产物为D-丙氨酸，

其中步骤b)中的所述氨基供体为L-丙氨酸，所述氨基供体的脱氨基产物为丙酮酸，

其中在步骤a)中，反应开始时氨基受体与D,L-草铵膦的摩尔比为1:500-1:5，

其中所述(R)-转氨酶的氨基酸序列为SEQ ID No.1，并且

其中所述(S)-转氨酶的氨基酸序列为SEQ ID No.7。

2.根据权利要求1所述的方法，其中所述D-氨基酸氧化酶的氨基酸序列为SEQ IDNo.3。

3.根据权利要求1所述的方法，其中所述步骤a)之后和步骤b)之前还包括加热步骤，所述加热步骤使步骤a)的反应混合物中的酶灭活。

4.根据权利要求1所述的方法，其中步骤a)的反应中另外存在过氧化氢酶。

5.根据权利要求1-4中任一项所述的方法，其中所述(R)-转氨酶、(S)-转氨酶、能够使所述氨基受体的加氨基产物转化为所述氨基受体的催化酶、能够除去所述氨基供体的脱氨基产物的催化酶和所述过氧化氢酶的形式各自独立地选自：部分纯化的酶；无细胞提取物或粗细胞提取物；液体、粉末或固定形式；含有酶的可透化处理的细胞、完整细胞或完整发酵液、冻干细胞或其任何组合。

6.根据权利要求1-4中任一项所述的方法，其中所述方法的步骤a)包括：

a)在共表达(R)-转氨酶和能够使所述氨基受体的加氨基产物转化为所述氨基受体的所述催化酶的第一重组微生物和氨基受体的存在下，使D,L-草铵膦发生转氨反应得到2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸并使得到的所述加氨基产物转化为所述氨基受体。

7.根据权利要求1-4中任一项所述的方法，其中所述方法的步骤b)包括：

b)在共表达(S)-转氨酶和能够除去所述氨基供体的脱氨基产物的催化酶的第二重组微生物和氨基供体的存在下，使2-羰基-4-[羟基(甲基)膦酰基]丁酸发生转氨反应得到L-草铵膦并除去得到的所述脱氨基产物。

8.根据权利要求1-4中任一项所述的方法，其中所述第一重组微生物和第二重组微生物各自独立地选自：酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)、解脂耶氏酵母(Yarrowialipolitica)、克鲁斯假丝酵母(Candida krusei)、东方伊萨酵母(Issatchenkiaorientalis)或大肠杆菌(Escherichia coli)。

9.根据权利要求6所述的方法，其中，以湿菌体重量计，所述第一重组微生物的添加量为5-200g湿菌体/L反应液，或者，以干菌体重量计，所述第一重组微生物的添加量为1-50g干菌体/L反应液。

10.根据权利要求7所述的方法，其中，以湿菌体重量计，所述第二重组微生物的添加量为5-200g湿菌体/L反应液，或者，以干菌体重量计，所述第二重组微生物的添加量为1-50g干菌体/L反应液。

11.根据权利要求1-4中任一项所述的方法，其中步骤a)和b)的反应在反应缓冲液中进行。

12.根据权利要求11所述的方法，其中所述反应缓冲液是pH为8-9的磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液。

13.根据权利要求1-4中任一项所述的方法，其中在步骤b)中，反应开始时氨基供体与底物的摩尔比为1:2-5:1。

14.根据权利要求1-4中任一项所述的方法，所述步骤a)和步骤b)的转氨反应的温度为30-45℃，时间各为14-48h。

15.根据权利要求1-4中任一项所述的方法，其中步骤a)和步骤b)的反应在辅酶磷酸吡哆醛的存在下进行。

16.根据权利要求15所述的方法，其中磷酸吡哆醛与底物的摩尔比为1:10-1:200。

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