CN112505017B - 一种基于sers技术检测血液中il-6的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明开发了一种基于SERS技术检测血液中白介素‑6(IL‑6)的方法。其技术方案包括:1)制备带普鲁士蓝内标的Au@Au NPs溶液活化后修饰上用于识别IL‑6的IL‑6抗体,得到Au@Au球形拉曼探针粒子。2)用改性玻璃片制备二维银片基底,修饰上4‑MPBA用于吸附IL‑6。3)二维银片基底捕获IL‑6,Au@Au球形拉曼探针粒子由于特异性识别IL‑6吸附在银基底上,利用激光拉曼光谱仪采集数据图谱,实现对血液中IL‑6的超灵敏检测,检测范围为:0.5‑50000pg/mL。
Description
技术领域
本发明属于检测的技术领域,具体涉及一种基于Au@Au球形核壳纳米粒子的SERS技术检测血液中IL-6的方法。
背景技术
白介素(IL-6)是一种人体细胞产生的糖蛋白,分子量为21kD,在生物体中起到促进T细胞增殖、促使B细胞的分化等重要的作用。人体中糖蛋白的表达往往与人体内产生的疾病相关,而IL-6也不例外。人血清中IL-6的正常生理浓度相对较低,在疾病环境中会迅速升高。临床研究已经表明,IL-6在感染、自身免疫或者癌症的情况下会被大量表达,其在机体内含量的升高可以预示机体正在发生的病症,是大多数炎症反应和部分疾病的重要标志物。因此,研发出一种可靠、灵敏的检测IL-6的方法至关重要。
传统的IL-6检测方法有:生物测定、荧光法、电化学法等,其中,常用的是酶联免疫吸附实验(ELISA)。这些方法中,不乏有灵敏度高的方法,但因其预处理繁琐、设备昂贵不易得、对样品有损害且检测环境要求高,使这些方法的应用受到限制。表面增强拉曼光谱技术(SERS)是在拉曼光谱的基础上,通过将被测物附着在金、银等粗糙金属表面,达到拉曼增强的效果,通常能实现6-14个数量级的增强效果。SERS因灵敏度高、对样品无损、痕量检测等优点,现被广泛应用于食品、生物、医学等行业检测。
专利一种直接检测IL-6的电化学免疫传感器及应用(CN 102706939),公布了一种直接检测IL-6的电化学免疫传感器及应用,以单壁碳纳米管为基底,将金纳米粒子沉积于单壁碳纳米管上构成单壁碳纳米管/金纳米粒子杂化电极,杂化电极用巯基乙酸修饰,再在巯基乙酸上组装IL-6捕获抗体,再用质量浓度1-5%牛血清蛋白的PBS缓冲液封闭,获得所述电化学免疫传感器。上述方法虽然能达
足够低的检测限值,但是电化学设备要求比较高,成本高,检测过程和仪器设备不够简便;没有标记或者夹心处理,检测结果也容易受到环境和其他杂质的影响,稳定性不佳,不适合IL-6检测项目的基层推广。
发明内容
为了解决上述问题,本发明的目的是提供一种基于可捕获IL-6的二维拉曼特异性基底与修饰IL-6抗体的Au@Au核壳纳米粒子的SERS技术检测IL-6。本方法依赖于二维银基底的银纳米粒子和Au@Au核壳纳米粒子来实现等离子体共振,形成拉曼增强热点,修饰有4-MPBA的银片玻璃基底用于捕获IL-6以及对IL-6检测光谱进行校准,排除环境等因素对检测光谱的干扰;同时将修饰上IL-6抗体的Au@Au核壳纳米粒子作为IL-6检测探针粒子。本发明具有灵敏性高、特异性强、不受环境因素影响、价格低的优点。该发明涉及到的Au NPs直径20-30nm,Au NPs修饰上PB和金壳后Au@Au NPs直径为30-40nm;二维银基底中4-MPBA的修饰时间24h为最佳。适用的IL-6检测范围为0.5-50000pg/mL,在血清样品中还能检测到5pg/mL的IL-6。
本发明的目的是通过以下技术方案实现的:
1、Au@Au球形核壳结构纳米粒子的制备
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
2、IL-6检测探针Au@Au粒子的制备
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入等体积不同浓度(10-5、10-6、10-7、10-8、10-9M)的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOHNPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au@COOH NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
3、SERS二维银基底的制备
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中(1、3、8、12、24、48h),利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底。
4、工作曲线
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子IL-6的SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,得到对应浓度的拉曼图谱。以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,即随着IL-6浓度的增大,二维基底吸附下来的IL-6检测探针粒子就更多,2172cm-1处的拉曼信号峰就越强。此外,对应的谱图还需以二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准,排除环境和其他杂质的干扰。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。说明本方法具有灵敏性好、特异性强、不受环境干扰等特点,IL-6的检测范围为0.5-50000pg/mL,在血液样品中最低检测限能达到5pg/mL。
本发明的有益效果:
1、本发明利用二维银基底的银纳米粒子和Au@Au核壳纳米粒子来实现等离子体共振,核壳之间的间隙形成拉曼增强热点,对内标信号起到增强作用,内标分子在壳层的包裹下不会被环境所影响。并且加上二维玻璃基底4-MPBA信号峰的校准,使检测结果更加准确稳定。
2、本发明特异性强,Au@Au探针粒子修饰上IL-6抗体能对二维玻璃基底上吸附的IL-6特异性识别,能排除其他与IL-6结构相似物质的干扰。
3、本发明利用IL-6检测探针Au@Au粒子中内标分子PB的拉曼信号峰间接对IL-6进行检测,即随着IL-6浓度的升高,吸附在二维基底的IL-6就越多,Au@Au探针粒子通过表面的IL-6抗体对IL-6进行特异性吸附,使得探针粒子的内标物质拉曼信号就越强,选取特征峰2172cm-1处的峰强度与IL-6浓度的对数作工作曲线,可以获得良好的线性。
附图说明
图1为基于可捕获IL-6的二维拉曼特异性基底与修饰IL-6抗体的Au@Au核壳纳米粒子的IL-6SERS检测基底的制备过程。
图2为实例2中Au NPs、Au@PB NPs和Au@Au NPs的透射电镜图。
图3为实例2中玻璃基底上修饰Ag NPs、银膜上接载上4-MPBA、存在目标分子IL-6后加入对应Au@Au探针的扫描电镜图。
图4为实例2中PB和Au@Au NPs紫外表征图。
图5为实例2中Au NPs、Au@PB NPs、Au@PB@Au NPs的拉曼表征图。
图6为实例1-5中Au@Au NPs修饰上不同浓度SH-PEG-COOH的紫外吸收光谱图。
图7为实例1-5中Au@Au NPs修饰上不同浓度SH-PEG-COOH的拉曼光谱图和Zeta电位。
图8为实例2、实例6-10中银片上修饰4-MPBA的分布情况随修饰时间变化的SERS成像图。
图9为实例2、实例6-10中银片上修饰4-MPBA的1070cm-1特征峰强度随时间变化图。
图10为实例2中基底检测不同浓度IL-6标准溶液的拉曼光谱图。
图11为实例2中利用图10拉曼光谱图所做出的2172cm-1处的信号峰强度对应IL-6浓度对数的工作曲线。
图12为实例2中基底检测不同浓度IL-6标准溶液校准后的拉曼光谱图
图13为实例2中利用图12拉曼光谱图所做出的2172cm-1处的信号峰强度对应IL-6浓度对数的工作曲线。
图14为实例2中基底检测血清中不同浓度IL-6标准溶液的拉曼光谱图。
具体实施方式
为了更好地理解本发明,下面通过实施例对本发明进一步说明,实施例只用于解释本发明,并不会对本发明构成任何限定。
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。若未特别指明,实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段,所用原料均为市售商品。
实施例1(参见图1)
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-5M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为24h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实施例2
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-6M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为24h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6抗体的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实施例3
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-7M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为24h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实施例4
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-8M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为24h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6抗体的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实施例5
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-9M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为24h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6抗体的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实施例6
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-6M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为1h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6抗体的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实施例7
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-6M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为3h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6抗体的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实施例8
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-6M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为8h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6抗体的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实施例9
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-6M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为12h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6抗体的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实施例10
1)Au NPs胶体的制备:99mL水中加入1mL 1%的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
2)Au@PB纳米颗粒的制备:Au NPs胶体溶液中加入K3[Fe(CN)6]的水溶液(0.5mmol/L),使CN-在Au NPs纳米颗粒表面形成刻蚀。使用步进电机将适宜体积的K4[Fe(CN)6](0.1mmol/L)和FeCl3·6H2O(0.1mmol/L)以相同的速度(0.1mL/min)同时滴入刻蚀好的AuNPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝(PB)。Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中备用。
3)Au@Au纳米粒子的制备:将上述制备好的Au@PB胶体溶液浓缩10倍后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,再按10:1的比例加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@PB@Au NPs(简称Au@Au NPs)纳米胶体,离心洗涤备用。
4)Au@Au表面修饰-COOH:将2mL Au@Au NPs加入10-6M的SH-PEG-COOH,在核壳结构表面修饰上-COOH。离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs。
5)活化-COOH:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6)修饰IL-6抗体:活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到IL-6检测探针粒子溶液。
7)改性玻璃片的制备:将玻璃片(5mm×5mm×1mm)浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物。再将玻璃片与“食人鱼”溶液(V(H2SO4):V(H2O2)=7:3)进行反应(95℃,40min),反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片。再将玻璃片浸没于10%APTES的醇水(10%水)溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
8)Ag NPs胶体的制备:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL 1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后定容至原体积备用。
9)二维银基底的制备:将步骤7)制备出来的改性玻璃片浸泡在步骤8)的Ag NPs胶体溶液(500μL)24h,取出后冲洗去没有修饰上的Ag NPs胶体。
10)特异性吸附IL-6二维银基底的制备:在银基底修饰上可以吸附糖蛋白的4-MPBA,将二维银片玻璃基底浸泡在4-MPBA中,浸泡时间为48h,利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底。
11)IL-6样品的检测:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6抗体的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,以IL-6检测探针粒子中PB特征峰2172cm-1作为IL-6检测拉曼信号峰,得到对应浓度的拉曼图谱。再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
12)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质。加入不同浓度IL-6(5,15,25μg/mL)旋转30min达到完全混合,得到不同浓度IL-6血液样品溶液。之后的血液样品检测过程与IL-6标准溶液相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱。
13)工作曲线:校准后的拉曼谱图选取2172cm-1峰值,做其随浓度对数变化的工作曲线,工作曲线为:y=296.81x+3872.74,R2=0.9928,表现出很好的线性。
实验数据:
1、图2测试步骤:各取20μL实施例2制备的Au NPs、Au@PB NPs和Au@Au NPs滴在碳涂层铜网格上,室温下干燥,用透射电子显微镜对Au NPs、Au@PB NPs和Au@Au NPs进行形貌表征。
由图2我们可知根据实验配方制备出来的AuNPs纳米胶体大小20-30nm,纳米粒子大小分布均匀,胶体溶液均一稳定,溶液呈酒红色。修饰上PB分子后,可以观察到Au粒子上成功修饰上了PB分子,Au@PB纳米粒子呈现大小均匀的状态。再经过金壳的包裹后,合成了大小约30-40nm的Au@Au NPs。壳层厚度均匀。
2、图3测试步骤:各取20μL实施例2制备的玻璃基底上修饰Ag NPs、银膜上接载上4-MPBA、存在目标分子IL-6后加入对应Au@Au探针滴在专用铝板上,在样品表面镀上一层金膜,用扫描电子显微镜进行扫描。
由图3我们可以知道本方案合成的SERS基底分布均匀,银纳米粒子基本呈单分子层分布。由于4-MPBA是小分子物质,在扫面电镜下观察不到明显现象,因此修饰上4-MPBA后,银膜在电镜图里基本没有很大差别。随后加入IL-6抗原,识别上对应的Au@Au探针后,冲洗多余的探针,发现有IL-6存在的情况下,探针被吸附在二维基底上,实现特异性检测IL-6的目的,证明该方案有效。
3、图4测试步骤:各移取实施例2中制备的Au NPs、Au@PB NPs、PB和Au@Au NPs 500μL滴入石英皿中,在室温下用紫外分光光度计记录紫外-可见吸收光谱,扫描范围350-800nm。
由图4可知修饰上PB分子后,Au纳米粒子的等离子共振峰从529nm蓝移至523nm,同时在701nm处出现了新的共振峰,而这处峰属于PB分子的吸收峰,这就意味着,PB分子成功刻蚀在Au纳米粒子上。而随着金壳的形成,Au@PB@Au NPs的共振吸收峰红移至554nm,胶体也从酒红色变成蓝紫色,这表明纳米粒子的粒径变大,侧面证明成功包裹上金壳。由图中的插图也能看出胶体溶液颜色的变化。
4、图5测试步骤:取实施例2中制备的Au NPs、Au@PB NPs、Au@PB@Au NPs离心后滴在铝片上,用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,得到对应SERS光谱。
由图5可知,PB分子信号峰比较清晰,没有其他拉曼峰存在干扰,并且在包裹上金壳后,Au@PB@Au NPs SERS信号比起单纯的Au@PB NPs增强4倍左右。此外,金壳除了能达到良好的增强效果之外,还能保护PB分子,排除其他环境因素的干扰。选用此核壳纳米粒子作为探针可以很好地进行定量检测。
5、图6测试步骤:各移取500μL实施例1-5中制备的Au@Au NPs和没有修饰SH-PEG-COOH的Au@Au NPs滴入石英皿中,在室温下用紫外分光光度计记录紫外-可见吸收光谱,扫描范围400-800nm。
6、图7测试步骤:取实施例1-5中制备的Au@Au NPs和没有修饰SH-PEG-COOH的Au@Au NPs离心后滴在铝片上,用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,选取2172cm-1处的特征峰做对应浓度的变化图。再用Malvern-Zetasizer纳米仪器测定三种粒子的zeta电位,做对应浓度的变化图。
由图6可得,在核壳纳米粒子上修饰不同浓度的SH-PEG-COOH溶液,(a-e分别代表10-5、10-6、10-7、10-8、10-9M)的SH-PEG-COOH修饰的核壳结构纳米粒子的紫外共振峰,发现紫外峰几乎没有发生变化,只有当浓度为10-6M时,在676nm处出现了新的振动峰,同时,观察它们对应的zeta电位和拉曼信号强度(图7)也可以看出,修饰上SH-PEG-COOH后,Au@Au NPs的电位从-33.4±3.2mv下降到-41.1mv±2.1mv,而拉曼信号也有所减弱,这可能是因为SH-PEG-COOH在纳米粒子表面形成分子层,造成不同程度的粒子排斥,从而使信号有所减弱,这些结果表明它们成功地附着在Au@Au NPs的表面。但可以看出,当修饰浓度为10-6M时,SERS的增强信号最好,这是由于该浓度下,SH-PEG-COOH分子正好形成饱和状态,控制粒子与粒子间的间隙,形成共振增强。因此,选用该浓度修饰的Au@Au@COOH NPs做接下来的探针合成。
7、图8测试步骤:取实例2、实例6-10制备的修饰有4-MPBA的银片基底,选用4-MPBA的拉曼特征峰1070cm-1处的峰强作为成像条件,扫描30μm×30μm区域不同银片上的1070cm-1处的峰强分布情况。
由图8可知,银片基底随着4-MPBA修饰时间的增长,4-MPBA在银膜上的吸附量逐渐增多,当修饰时间达到24h时,达到分布均匀的效果,当时间再提高到48小时,强度基本没有变化。说明24h可以让4-MPBA的修饰达到饱和。
8、图9测试步骤:取实例2、实例6-10制备的修饰有4-MPBA的银片基底离心后滴在铝片上,用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,选取1070cm-1处的特征峰做对应浸泡时间的变化图。
由图9得出的结论与图8相符,当修饰时间达到12h时,标准偏差为2.8%,强度变化逐渐变小。但是这时候分布还不够均匀,当修饰时间达到24h时,分布均匀,而且RSD只有5.8%。而后,随着修饰时间的增加,强度基本没有变化,说明24h时,4-MPBA的修饰已经达到饱和状态。
9、图10-11测试步骤:将不同浓度IL-6标准溶液(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min,减少其他非特异性抗体的吸附。而后加入修饰有IL-6抗体的Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子IL-6的SERS探针,自然干燥后使用雷尼绍拉曼光谱仪进行拉曼信号检测,得到对应浓度的拉曼图谱。以特征峰2172cm-1强度做对应浓度对数的曲线。图中i-vi分别对应的是实施例2中不同浓度(0.5、5、50、500、5000、50000pg/mL)的IL6的拉曼光谱图。
10、图12-13测试步骤:与上述相同,再用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1作为标准峰进行校准。
由图10-13可以得出,随着IL-6浓度的增加,2172cm-1处的SERS信号就越强,这表明IL-6加入的越多,二维基板上吸附下来的IL-6检测探针粒子就越多。为了防止后续实际样品检测过程中,其他杂质的干扰,利用二维基底上4-MPBA的特征拉曼峰1070cm-1处作为标准峰,对图10光谱进行校准,得到图12的光谱图。校准后的谱图在2172cm-1处的峰值随浓度变化情况更加有规律。将图10与12中2172cm-1处的峰值选出,分别做起随浓度对数变化的工作曲线(图11和13)。其中经过1070cm-1归一化后的工作曲线(图13)线性(R2=0.9928)明显比未校准的工作曲线线性(R2=0.9163)要好。所以,选用归一化后的工作曲线作为后续真实样品中IL-6的检测模型。
图14测试步骤:将处理好的IL-6血液样品(5,15,25μg/mL)如上述IL-6标准溶液测试方式进行检测,得到血液中不同IL-6含量的拉曼光谱图。
如图14可得,随着IL-6添加量的增多,2172cm-1处的强度也同时增强。证明该方案具有实际应用的特点。
以上所述仅为本发明的实施例,并非因此限制本发明的专利范围,凡是利用本发明说明书内容所作的等效结构或等效流程变换,或直接或间接运用在其他相关的技术领域,均同理包括在本发明的专利保护范围内。
Claims (10)
1.一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)改性Au@Au球形核壳结构的制备:带普鲁士蓝内标的Au@Au NPs溶液活化后修饰上用于识别IL-6的IL-6抗体,得到改性Au@Au球形纳米粒子;
2)捕获IL-6的SERS二维基底的制备:将修饰有氨基的玻璃片没入Ag NPs胶体中,浸泡24h后取出,用超纯水冲去多余Ag NPs胶体,得到二维银片基底;利用Ag-S键的连接将4-MPBA固载在银膜上,再用乙醇冲去未修饰的4-MPBA,最后再用PBS冲洗,得到捕获IL-6的SERS二维基底;
3)IL-6标准样品的检测:将不同浓度的IL-6标准溶液与二维SERS基底充分接触1h,PBS溶液冲洗后,加入100μL 0.2%BSA溶液反应20min;而后加入修饰有IL-6抗体的改性Au@Au球形核壳结构共孵育1h后,用PBS溶液洗去未结合上目标分子IL-6的SERS探针,自然干燥后进行SERS检测,建立工作曲线和进行成像检测;
4)血液样品中IL-6的检测:选用白血病患者的血液,离心除去大分子物质;加入浓度为5-25μg/mL的IL-6旋转30min达到完全混合,得到IL-6血液样品溶液;检测过程与步骤(3)中IL-6标准溶液检测步骤相同,测得血液样品中IL-6拉曼光谱,带入步骤(3)获得的标准曲线进行计算,求出血液样品中IL-6浓度。
2.根据权利要求1所述的一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于,步骤1)具体步骤如下:将2mL的Au@Au NPs胶体加入等体积浓度分别为10-5、10-6、10-7、10-8、10-9M的SH-PEG-COOH溶液中,在核壳结构表面修饰上-COOH;离心洗涤后得到Au@Au@COOH NPs,活化-COOH以便于修饰抗体;活化好的Au@Au NPs加入5ng/mL的IL-6抗体,反应1h,4℃下孵育24h,离心洗涤后重分散在PBS溶液中,得到改性的Au@Au球形纳米粒子。
3.根据权利要求2所述的一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于,Au@Au NPs核壳胶体溶液制备方法如下:将2mL的Au NPs胶体中加入浓度为0.5mmol/L的K3[Fe(CN)6]的水溶液,用于刻蚀Au NPs纳米颗粒表面;均速将浓度均为0.1mmol/L的0.2-2mL的K4[Fe(CN)6]和等量的FeCl3·6H2O同时滴入刻蚀好的Au NPs胶体溶液中,生成普鲁士蓝;Au@PB纳米粒子溶液离心洗涤后重新分散到超纯水中,浓缩10倍体积后加入1%柠檬酸三钠溶液反应30min,加热至沸,按10:1的体积比加入对应量的1mmol/L HAuCl4溶液反应1h,得到蓝紫色Au@Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
4.根据权利要求3所述的一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于,AuNPs胶体溶液制备方法如下:99mL水中加入1mL 1%质量百分比的HAuCl4溶液,加热至沸后加入1mL 1%柠檬酸三钠溶液,剧烈搅拌下继续沸腾15min直至还原反应完全,得到酒红色Au NPs纳米胶体,离心洗涤备用。
5.根据权利要求2所述的一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于,活化-COOH的方法如下:在Au@Au@COOH NPs中加入20μL,34mmol/L的EDC和17mmol/L的NHS溶液,反应30min,离心后备用。
6.根据权利要求1所述的一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于,步骤2)中修饰有氨基的玻璃片制备方法如下:将玻璃片浸泡于无水乙醇超声后干燥处理,除去玻璃片表面残留的油渍和有机物;再将玻璃片与“食人鱼”溶液进行反应,反应后用乙醇和水冲洗后得到修饰大量-OH基团的玻璃片;再将玻璃片浸没于体积百分比10%3-氨丙基三乙氧基硅烷的醇水溶液中,反应24h后,用水和乙醇反复冲洗,在110℃下进行30min的缩合反应,玻璃片浸泡在超纯水中备用。
7.根据权利要求1所述的一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于,步骤2)中Ag NPs胶体制备方法如下:100mL水中加入18mg AgNO3,加热至沸,立即加入10mL1%柠檬酸三钠,继续反应1h得到灰绿色Ag NPs纳米胶体,离心洗涤后备用。
8.根据权利要求6所述的一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于:食人鱼为体积比为3:7的过氧化氢与浓硫酸。
9.根据权利要求1所述的一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于:步骤3)的工作曲线为y=296.81x+3872.74。
10.根据权利要求1所述的一种基于SERS技术检测血液中IL-6的方法,其特征在于:IL-6的检测范围为0.5-50000pg/mL。
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Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113092441A (zh) * | 2021-04-08 | 2021-07-09 | 吉林大学 | 一种基于表面增强拉曼散射的超灵敏生物芯片及其制备方法 |
CN114621999B (zh) * | 2022-03-25 | 2024-05-24 | 陕西科技大学 | 一种用于检测羊乳掺假的CRISPR/Cas12a介导的拉曼传感器及其检测羊乳掺假的方法和应用 |
CN115029417B (zh) * | 2022-04-26 | 2024-09-24 | 首都医科大学 | 缝隙型拉曼增强纳米标签、雌二醇检测体系、试剂盒及应用 |
CN115420727A (zh) * | 2022-08-18 | 2022-12-02 | 福州汉佰康生物科技有限公司 | 一种利用表面增强拉曼光谱对结肠癌生物标志物进行检测的方法 |
Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1619310A (zh) * | 2004-11-03 | 2005-05-25 | 东南大学 | 肿瘤免疫细胞检测芯片的制备和检测方法 |
CN104697977A (zh) * | 2015-03-23 | 2015-06-10 | 苏州大学 | 一种硅基sers多功能芯片及其制备方法 |
CN107782711A (zh) * | 2017-09-18 | 2018-03-09 | 南京医科大学 | 用于检测糖蛋白的基于分子印记聚合物的表面增强拉曼光谱传感器及其制备方法和应用 |
CN109001176A (zh) * | 2018-06-14 | 2018-12-14 | 福建师范大学 | 一种Au@Ag纳米粒子的SERS基底的制备方法及利用该基底检测葡萄糖的方法 |
CN109991207A (zh) * | 2019-04-25 | 2019-07-09 | 福建师范大学 | 一种用于检测酪氨酸酶的三明治结构的sers传感器及其制备和检测方法 |
CN110376379A (zh) * | 2019-08-19 | 2019-10-25 | 福建师范大学 | 一种分子印迹结合静默区内标sers技术高精度检测cea的方法 |
CN110412291A (zh) * | 2019-07-30 | 2019-11-05 | 福建师范大学 | 一种构建sers光谱探针检测乳腺癌标志物egfr磷酸化酪氨酸的方法 |
CN110736731A (zh) * | 2019-10-31 | 2020-01-31 | 福建师范大学 | 一种基于sers光谱技术的白血病融合基因检测方法 |
CN111208130A (zh) * | 2020-03-17 | 2020-05-29 | 福建师范大学 | 一种快速检测血清中酪氨酸酶的试纸条及其制备方法与应用 |
-
2020
- 2020-11-19 CN CN202011301211.0A patent/CN112505017B/zh active Active
Patent Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1619310A (zh) * | 2004-11-03 | 2005-05-25 | 东南大学 | 肿瘤免疫细胞检测芯片的制备和检测方法 |
CN104697977A (zh) * | 2015-03-23 | 2015-06-10 | 苏州大学 | 一种硅基sers多功能芯片及其制备方法 |
CN107782711A (zh) * | 2017-09-18 | 2018-03-09 | 南京医科大学 | 用于检测糖蛋白的基于分子印记聚合物的表面增强拉曼光谱传感器及其制备方法和应用 |
CN109001176A (zh) * | 2018-06-14 | 2018-12-14 | 福建师范大学 | 一种Au@Ag纳米粒子的SERS基底的制备方法及利用该基底检测葡萄糖的方法 |
CN109991207A (zh) * | 2019-04-25 | 2019-07-09 | 福建师范大学 | 一种用于检测酪氨酸酶的三明治结构的sers传感器及其制备和检测方法 |
CN110412291A (zh) * | 2019-07-30 | 2019-11-05 | 福建师范大学 | 一种构建sers光谱探针检测乳腺癌标志物egfr磷酸化酪氨酸的方法 |
CN110376379A (zh) * | 2019-08-19 | 2019-10-25 | 福建师范大学 | 一种分子印迹结合静默区内标sers技术高精度检测cea的方法 |
CN110736731A (zh) * | 2019-10-31 | 2020-01-31 | 福建师范大学 | 一种基于sers光谱技术的白血病融合基因检测方法 |
CN111208130A (zh) * | 2020-03-17 | 2020-05-29 | 福建师范大学 | 一种快速检测血清中酪氨酸酶的试纸条及其制备方法与应用 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
Xuan-Hung Pham.Glucose Detection Using 4-mercaptophenyl Boronic Acid-incorporated Silver Nanoparticles-embedded Silica-coated Graphene Oxide as a SERS Substrate.BioChip Journal.2016,第11卷(第1期),第46-56页. * |
Yuling Wang等.Femtogram detection of cytokines in a direct dot-blot assay using SERS microspectroscopy and hydrophilically stabilized Au–Ag nanoshells.Chemical Communications.2014,第50卷第2685–2806页. * |
刘向源.基于微流控芯片的层流技术和SERS方法定量葡萄糖.光谱学与光谱分析.2016,第36卷(第10期),第305-306页. * |
谢丹.拉曼频移检测技术用于糖蛋白传感及纳米药物与蛋白酶相互作用的研究.医药卫生科技.2019,全文. * |
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