CN111961706A - 一种核酸提取纯化方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开一种核酸提取纯化方法,包括:在样品中加入PEG8000溶液和磁珠溶液充分混合,使磁珠充分抓取样品中的微生物,再将含有微生物的磁珠转移到含有GT缓冲液的孔中进行孵化裂解微生物外壳,将细胞乃至核酸暴露出来,利用裂解液对微生物细胞进行裂解;在结合液的环境下磁珠与核酸结合;在洗涤液1溶液下进行初洗去除大量杂质;在洗涤液2溶液下进行精洗;最后核酸在洗脱液里与磁珠分离,收集洗脱液,然后进行核酸测量。本发明利用细胞具有亲水的特性,采用同样具有亲水性的纤维素磁珠,在粘稠度大的缓冲液中抓取细胞,富集细胞以达到样品浓缩的效果,本发明无需使用离心机,简化检测操作步骤,节省检测成本,具有较高的经济效益。

Description

一种核酸提取纯化方法
技术领域
本发明涉及生物分析测定领域,尤其涉及一种核酸提取纯化方法。
背景技术
在细菌检测中,细菌在样品中的浓度量级较小,因此在检测细菌浓度前,通常需要对样品中的细菌进行浓缩。现有较常规的细菌浓缩采用离心法。离心法则需要用到离心机,而实验室专业离心机一般体积较大、价格昂贵、操作复杂且占用实验台的操作面积,导致检测步骤繁琐、检测成本高。尤其当需要现场检测的场所,由于离心机不易携带与搬运,导致无法在现场进行检测,只能将样品采样后送抵实验室后再进行处理与检测,如此在转运过程,将极大地增加样品污染的机率,从而影响检测结果的正确性。
发明内容
针对现有技术的不足,本发明的目的是提供一种核酸提取纯化方法,省略离心步骤,增加细菌核酸捕获率。
为了实现上述目的,本发明采用的技术方案为:
一种核酸提取纯化方法,包括以下步骤:
S1:将样品放入均质杯内,均质杯内加入培养基,均质混合,培养12小时;
S2:将裂解液、结合液、磁珠溶液、洗涤液1、洗涤液2、洗脱液、GT缓冲液于试剂条空位中;
S3:将样品液移至样品管中,加入PEG8000溶液;
S4:将试剂条、样品管、吸头放置于核酸提取仪中,吸头吸取磁珠溶液转移至样品管中,将样品溶液、PEG8000溶液与磁珠溶液充分混合,使磁珠充分抓取样品中的微生物;
S5、将含有微生物的磁珠转移到含有GT缓冲液的孔中进行孵化裂解微生物外壳,将细胞乃至核酸暴露出来,加入裂解液,在65℃环境下将裂解液、含微生物磁珠及GT缓冲液利用PST充分混匀,反复吹打;加入结合液及磁珠于裂解好的混合液中,充分混合,让加入的磁珠在结合液环境下特异结合核酸;利用磁铁富集混合液中的磁珠,然后转移至洗涤液1中,反复吹打,除去核酸中的大量杂质;利用磁铁富集的磁珠转移至含有洗涤液2中,反复吹打,用磁铁富集磁珠除去废液;将含有核酸的磁珠自然环境下晾干,除去残留的乙醇;取洗脱液,将磁珠与洗脱液充分混合,吹打,除去磁珠,收集含有核酸的洗脱液,备用;
S6:测量核酸值;
所述磁珠溶液为申请人生产的恺硕CL纤维素磁珠用40%乙醇稀释成1倍质量浓度。
进一步,所述PEG8000溶液由PEG8000置于80℃环境下充分溶解,按体积比加入配制好的2mol/L、pH6.0的Tris-Hcl溶液,当所述样品溶液量少于200 μl时,加入1 ml 20%PEG8000;样品溶液量为200-500 μl时,加入1 ml 30% PEG8000;样品溶液量大于500 μl时,加入等样品溶液体积的40% PEG800。
进一步,所述培养基为LB培养基。
进一步,所述裂解液包括:LSS 4~5.6%(W/V)、曲拉通5.2~10% 、吐温10~15% 、盐酸胍62.5~70% 、尿素10%(W/V)。
进一步,所述结合液包括:异丙醇75~85% 、8 mol/L乙酸铵15~25%。
进一步,所述洗涤液1包括:无水乙醇45~55%、8 mol/L盐酸胍45~55%。
进一步,所述洗涤液2包括:无水乙醇75~85% 、水14.5~24.5% 、Tris溶液0.5%。
进一步,所述洗脱液包括:无水乙醇75~85% 、水14.5~24.5% 、Tris溶液0.5%。
进一步,所述GT缓冲液包括:SDS、2mol/L、pH8.5 Tris-Hcl溶液、0.5mol/LEDTA。
本发明的有益效果:
本发明利用细胞具有亲水的特性,采用同样具有亲水性的纤维素磁珠,在粘稠度大的缓冲液中抓取细胞,富集细胞以达到样品浓缩的效果,从而进行后续的检测提取步骤,因而无需使用离心机,简化检测操作步骤,节省检测成本,具有较高的经济效益。
具体实施方式
为了便于理解,更好地解释本发明,以下结合实验对本发明内容作进一步描述:
实施例:
一、试剂配制:
1、配制2mol/L Tris-Hcl溶液:称取Tris 2倍分子质量重量,加入1L水溶解,用Hcl调节pH=6.0;
2、配制各浓度的PEG8000溶液:取足够量的PEG8000置于80℃环境下充分溶解,按体积比加入配制好的2mol/L、pH6.0的Tris-Hcl溶液,配制成10% PEG8000,20% PEG8000,30%PEG8000,40% PEG8000。
3、配制纤维素磁珠溶液:纤维素磁珠(由恺硕生物科技(厦门)有限公司提供的“恺硕CL磁珠”)用40%乙醇稀释成1倍质量浓度。
4、配制GT缓冲液1L:
SDS:10g
Tris-Hcl溶液(2mol/L、pH8.5):15ml
EDTA(0.5mol/L):20ml
5、裂解液5L:LSS:20~28 g、曲拉通:5.2~10% 、吐温:10~15% 、盐酸胍:62.5~70% 、尿素:500 g
6、结合液5L:异丙醇:4000ml 、乙酸铵:8 mol/L 1000 ml
7、5L洗涤液1:无水乙醇:2500 ml、盐酸胍:8 mol/L 2500 ml
8、5L洗涤液2:无水乙醇:4000 ml、水:950 ml、Tris:25ml
9、5L洗脱液:Tris:20~100ml、水:4900~4980 ml。
二、样品处理:
1、如果样品为冷冻食品,应于2~5 ℃解冻,且不超过18 h。若不能及时检验,应置于-20℃±5℃保存。非冷冻的易腐样品若不能及时检验,应置于4℃冰箱保存,24h 内检验。
2、无菌操作称取25g鸡肉、牛肉或猪肉等样品,用剪刀充分剪碎,放入均质杯内。
3、在均质杯内加入50 mL LB培养基,均质混匀,36℃±1℃培养过夜备用。
三、核酸提取纯化
1、量取500 μL裂解液、1 mL结合液、500 μL磁珠溶液、1 mL洗涤液1、1 mL洗涤液2、1mL洗脱液、500 μLGT缓冲液于试剂条空位中。
2、加入样品溶液至样品管中。
3、当样品溶液量少于200 μl时,加入1 ml 20% PEG8000至含有样品溶液的样品管中;当样品溶液量为200-500 μl时,加入1 ml 30% PEG8000至样品管中;当样品溶液量大于500 μl时,加入等样品溶液体积的40% PEG800至样品管中。对照组中加入等样品溶液体积的2mol/L Tris-Hcl溶液。
4、将试剂条、样品管、吸头放置于核酸提取仪中,吸头吸取磁珠溶液转移至样品管中,将样品溶液、PEG8000与磁珠溶液充分混合,使磁珠充分抓取样品中的微生物,磁过程15-30min。
5、将含有微生物的磁珠转移到含有GT缓冲液的孔中进行孵化裂解微生物外壳,将细胞乃至核酸暴露出来,加入裂解液500ul,在65℃环境下裂解液、含微生物磁珠及GT缓冲液利用PST充分混匀,反复吹打10min;加入1ml结合液及500ul磁珠于裂解好的混合液中,充分混合5min,让加入的磁珠在结合液环境下特异结合核酸;利用磁铁富集混合液中的磁珠,然后转移至含有1ml洗涤液1中,反复吹打5min,除去核酸中的大量杂质;利用磁铁富集的磁珠转移至含有1ml洗涤液2中,反复吹打5min,用磁铁富集磁珠除去废液;将含有核酸的磁珠自然环境下晾干40 s,目的尽量除去残留的乙醇;取200ul洗脱液,将磁珠与洗脱液充分混合,吹打10min,除去磁珠;收集含有核酸的洗脱液测量核酸值。
四、数据对比
本发明对不同容量的样品溶液加入不同浓度的PEG8000进行实验,核酸浓度对比如表一:
 核酸浓度(ng/ml)
0% PEG(对照) 6.234
10% PEG 13.44
20% PEG 18.24
30% PEG 12.42
从表一可知,使用PEG8000可以提升细菌捕获率,核酸浓度达对照组3倍以上。
本发明操作步骤中的常规操作作为本领域的技术人员所熟知,再此不进行赘述。
以上所述的实施例对本发明的技术方案进行了详细说明,应理解的是以上所述仅对本发明的具体实施例,并不用于限制本发明,凡在本发明的原则范围内所做的任何修改、补充或类似方式替代等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (9)

1.一种核酸提取纯化方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1:将样品放入均质杯内,均质杯内加入培养基,均质混合,培养12小时;
S2:将裂解液、结合液、磁珠溶液、洗涤液1、洗涤液2、洗脱液、GT缓冲液于试剂条空位中;
S3:将样品液移至样品管中,加入PEG8000溶液;
S4:将试剂条、样品管、吸头放置于核酸提取仪中,吸头吸取磁珠溶液转移至样品管中,将样品溶液、PEG8000溶液与磁珠溶液充分混合,使磁珠充分抓取样品中的微生物;
S5、将含有微生物的磁珠转移到含有GT缓冲液的孔中进行孵化裂解微生物外壳,将细胞乃至核酸暴露出来;加入裂解液,在65℃环境下将裂解液、含微生物磁珠及GT缓冲液利用PST充分混匀,反复吹打;加入结合液及磁珠于裂解好的混合液中,充分混合,让加入的磁珠在结合液环境下特异结合核酸;利用磁铁富集混合液中的磁珠,然后转移至洗涤液1中,反复吹打,除去核酸中的大量杂质;利用磁铁富集的磁珠转移至含有洗涤液2中,反复吹打,用磁铁富集磁珠除去废液;将含有核酸的磁珠自然环境下晾干,除去残留的乙醇;取洗脱液,将磁珠与洗脱液充分混合,吹打,除去磁珠,收集含有核酸的洗脱液,备用;
S6:测量核酸值;
所述磁珠溶液为申请人生产的恺硕CL纤维素磁珠用40%乙醇稀释成1倍质量浓度。
2.如权利要求1所述的一种核酸提取纯化方法,其特征在于,所述PEG8000溶液由PEG8000置于80℃环境下充分溶解,按体积比加入配制好的2mol/L、pH6.0的Tris-Hcl溶液,当所述样品溶液量少于200 μl时,加入1 ml 20% PEG8000;样品溶液量为200-500 μl时,加入1 ml 30% PEG8000;样品溶液量大于500 μl时,加入等样品溶液体积的40% PEG800。
3.如权利要求1所述的一种核酸提取纯化方法,其特征在于,所述培养基为LB培养基。
4.如权利要求1所述的一种核酸提取纯化方法,其特征在于,所述裂解液包括:LSS 4~5.6%(W/V)、曲拉通5.2~10% 、吐温10~15% 、盐酸胍62.5~70% 、尿素10%(W/V)。
5.如权利要求1所述的一种核酸提取纯化方法,其特征在于,所述结合液包括:异丙醇75~85% 、8 mol/L乙酸铵15~25%。
6.如权利要求1所述的一种核酸提取纯化方法,其特征在于,所述洗涤液1包括:无水乙醇45~55%、8 mol/L盐酸胍45~55%。
7.如权利要求1所述的一种核酸提取纯化方法,其特征在于,所述洗涤液2包括:无水乙醇75~85% 、水14.5~24.5% 、Tris溶液0.5%。
8.如权利要求1所述的一种核酸提取纯化方法,其特征在于,所述洗脱液包括:无水乙醇75~85% 、水14.5~24.5% 、Tris溶液0.5%。
9.如权利要求1所述的一种核酸提取纯化方法,其特征在于,所述GT缓冲液包括:SDS、2mol/L、pH8.5 Tris-Hcl溶液、0.5mol/LEDTA。
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