CN111896669A - 一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用 - Google Patents

一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN111896669A
CN111896669A CN202010660818.1A CN202010660818A CN111896669A CN 111896669 A CN111896669 A CN 111896669A CN 202010660818 A CN202010660818 A CN 202010660818A CN 111896669 A CN111896669 A CN 111896669A
Authority
CN
China
Prior art keywords
amino
metabolite
derivatization
isomers
identification
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202010660818.1A
Other languages
English (en)
Inventor
高祥
刘星星
董继扬
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Xiamen University
Original Assignee
Xiamen University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Xiamen University filed Critical Xiamen University
Priority to CN202010660818.1A priority Critical patent/CN111896669A/zh
Publication of CN111896669A publication Critical patent/CN111896669A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N30/00Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
    • G01N30/02Column chromatography
    • G01N30/62Detectors specially adapted therefor
    • G01N30/72Mass spectrometers

Landscapes

  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)

Abstract

本发明公开了一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法,包含以下步骤:氨基代谢物衍生化反应:将氨基代谢物配制为氨基代谢物标准溶液,然后加入衍生试剂溶液进行衍生化反应制得氨基代谢物衍生化产物;氨基代谢物衍生化产物检测:将制得的氨基代谢物衍生化产物加溶剂制成重悬浮液,然后将所得重悬浮液稀释后即可进行质谱进样检测;质谱分析条件:正离子模式,离子源为ESI;质谱仪操作依据数据模式自动进行MS和MS/MS扫描,通过HCD碎片化分离得到10‑50个丰度最高的前体离子进行分析鉴定。本发明首次将N‑二异丙基磷酸基‑L‑丙氨酸‑N‑羟基琥珀酰亚胺酯应用到同分异构体的鉴定,该方法鉴定氨基代谢物同分异构体具有较高的准确性和广泛的适用性。

Description

一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用
技术领域
本发明属于氨基代谢物同分异构体鉴定领域,具体涉及一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用。
背景技术
含氨基代谢物是指含有氨基的小分子代谢物,包括氨基酸、多肽、神经递质及多胺等,涉及到生命活动中多种代谢途径。在代谢组学的研究中,对复杂生物样品中的含氨基代谢物进行定性定量分析具有重要的意义[1,2]。由于含氨基代谢物包括氨基、甲基、羧基等官能团,这类物质存在同分异构体的现象,增加了在复杂生物样品中检测的难度。
目前,同分异构体的检测方法包括色谱法、光谱法和质谱法[3]。色谱法前处理复杂、操作繁琐,而光谱法难以实现在复杂样品中进行同分异构体的鉴别。常规的单级质谱不能区分异构体,而二级质谱碎片对于结构稳定、碎片离子相同的同分异构体无法鉴定。离子淌度质谱能根据化合物空间结构上的差异,通过独有的离子淌度功能区分同分异构体,但是离子淌度质谱仪器昂贵,目前还没有普及使用[4,5]
物质衍生化后由于衍生化基团的加入能丰富同分异构体二级碎片离子,通过对比离子的特征碎片,为区分同分异构体提供了一种检测鉴定方法[6,7]
参考文献:
1.Johnson,D.W.Free amino acid quantification by LC-MS/MS usingderivatization generated isotope-labelled standards.J Chromatogr B.2011,879,1345–1352.
2.Li,S.W.;Balazs K.;Lieve B.;Filip C.;Frederic L.;Frank.V.Quantitative metabolite profiling of an amino group containingpharmaceutical in human plasma via precolumn derivatization and high-performance liquid chromatography-inductively coupled plasma massspectrometry.Anal.Chem.2017,89(3),1907-1915.
3.Zhang A.H.;Sun H.;Wang P.;Han Y.;Wang X.J.Modern analyticaltechniques in metabolomics analysis.Analyst,2012,137(2),293-300.
4.Dodds J.N;Baker E.S.Ion mobility spectrometry:fundamental concepts,instrumentation,applications,and the road ahead.J.Am.Soc.Mass.Spectr.2019,30(11),2185-2195.
5.Picache J.A.;Rose B.S.;Balinski A.;Leaptrot K.L.;Sherrod S.D.;MayJ.C.;McLean J.A.Collision cross section compendium to annotate and predictmulti-omic compound identities.Chem.Sci.2019,10(4),983-993.
6.Huang T.;Armbruster M.R.;Coulton J.B.;Edwards J.L.Chemical taggingin mass spectrometry for systems biology.Anal.Chem.2019,91(1),109-125.
7.El-Maghrabey M.H.;Kishikawa N.;Kuroda N.Current trends in isotope-coded derivatization liquid chromatographic-mass spectrometric analyses withspecial emphasis on their biomedical application.Biomed.Chromatogr.2020,34(3),e4756.
发明内容
针对上述现有技术存在的不足之处,本发明目的在于提供一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用。为了达成上述目的,本发明的解决方案是:
一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法,其特征在于具体包含以下步骤:
(1)氨基代谢物衍生化反应:将氨基代谢物配制为氨基代谢物标准溶液,然后加入衍生试剂溶液进行衍生化反应,将所得混合物浓缩后往残留液中加酸调节pH值到2~3,除盐处理后即可制得氨基代谢物衍生化产物;所述衍生试剂的表达式为DIPP-R-NHS,其中,DIPP代表N-二异丙基磷酸基,NHS代表N-羟基琥珀酰亚胺酯,R代表为含同位素标记或不含同位素的L-构型或D-构型的氨基酸,所述氨基酸选自丙氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、缬氨酸或苯丙氨酸中的一种;
(2)氨基代谢物衍生化产物检测:将步骤(1)中制得的氨基代谢物衍生化产物加溶剂制成重悬浮液,然后将所得重悬浮液稀释后即可进行质谱进样检测;
质谱分析条件:正离子模式,离子源为ESI;喷雾温度为280-380℃;喷雾电压为2.8-4.5kV;鞘气和辅助气体流量分别为60和10单位;轨道阱入口温度为280-380℃;毛细管温度为280-380℃;S-lens RF为30-50%;样品分析质量扫描范围为m/z 80-1500;质谱仪操作依据数据模式自动进行MS和MS/MS扫描,通过HCD碎片化分离得到10-50个丰度最高的前体离子进行分析鉴定。
优选地,步骤(1)中所述的氨基代谢物选自亮氨酸和异亮氨酸、丙氨酸和β-丙氨酸、天冬氨酸和亚氨基二乙酸组成的含氨基代谢物的同分异构体中的一组;所述的氨基代谢物标准溶液由10-100mM碳酸氢钠溶液(其他碱性缓冲溶液也可,优选50mM碳酸氢钠溶液)制成,溶液pH值为8-10。
优选地,步骤(1)中所述的衍生化反应条件为冰浴反应10min以上,然后常温反应10min以上。
优选地,步骤(1)中所述的调节pH值的酸为甲酸、乙酸或盐酸溶液。
优选地,步骤(2)中所述的重悬浮液为乙腈或甲醇溶液。
所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法在细胞氨基代谢物同分异构体的鉴定中的应用。
所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法在动物组织氨基代谢物同分异构体的鉴定中的应用。
所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法在动物血清氨基代谢物同分异构体的鉴定中的应用。
所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法在植物组织氨基代谢物同分异构体的鉴定中的应用。
本发明的具体原理如下:
本发明所提供的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法是通过衍生化试剂分别与互为同分异构体的氨基代谢物进行衍生化反应,然后通过分析所产生的二级质谱图中特征碎片来区分鉴定同分异构体,选择合适的衍生化试剂可以丰富二级质谱图的碎片峰,同时形成特征碎片峰,具体的例子在实施例部分会再详细说明。
本发明的优点:
(1)本发明所提供的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法是一种识别氨基代谢物同分异构体的全新方法,成功建立起通过衍生试剂DIPP-R-NHS对氨基代谢物同分异构体进行高效标记并通过二级质谱进行鉴定的方法。
(2)本发明所提供的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法具有操作简单、精确度高及重复性好的优点。
(3)本发明所提供的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法可用于细胞、组织、血清及其他动植物体液或组织萃取物中氨基代谢物同分异构体的鉴定,结果表明:本发明所提供的定量方法均具有高灵敏度和高准确性。
附图说明
图1N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-亮氨酸(a)和N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-异亮氨酸(b)二级质谱碎片图;
图2N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-丙氨酸(a)和N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-β-丙氨酸(b)的二级质谱碎片图;
图3N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-天冬氨酸(a)和N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-亚氨基二乙酸(b)的二级质谱碎片图;
图4细胞中含氨基代谢物同分异构体的鉴定(a)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-亮氨酸;(b)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-异亮氨酸;(c)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-丙氨酸;(d)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-β-丙氨酸的二级质谱碎片图;
图5动物组织中含氨基代谢物同分异构体的鉴定(a)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-亮氨酸;(b)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-异亮氨酸;(c)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-丙氨酸;(d)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-β-丙氨酸;(e)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-二甲胺;(f)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-乙胺的二级质谱碎片图;
图6血清中含氨基代谢物同分异构体的鉴定(a)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-亮氨酸;(b)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-异亮氨酸;(c)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-丙氨酸;(d)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-β-丙氨酸;(e)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-天冬氨酸;(f)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-亚氨基二乙酸的二级质谱碎片图;
图7铁观音茶叶中含氨基代谢物同分异构体的鉴定(a)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-亮氨酸;(b)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-异亮氨酸;(c)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-丙氨酸;(d)N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-β-丙氨酸的二级质谱碎片图。
具体实施方式
下面进一步结合实施例以详细说明本发明。同样应理解,以下实施例只用于对本发明进行进一步说明,不能理解为对本发明保护范围的限制,示例中具体的质量、反应时间和温度、工艺参数等也仅是合适范围中的一个示例,本领域的技术人员根据本发明的上述内容做出的一些非本质的改进和调整均属于本发明的保护范围。实施例中未注明具体技术或条件者,均为按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市场购买的常规产品。
本发明所有实施例均是借助ESI离子源和Q-Exactive Orbitrap质谱进行样品的质谱测试和分析。
实施例1
氨基酸同分异构体鉴定的检测方法步骤如下:
(1)衍生化反应:分别配制100μL 10mM亮氨酸、异亮氨酸、丙氨酸、β-丙氨酸、天冬氨酸和亚氨基二乙酸标准品的50mM碳酸氢钠溶液,pH值约为8,在冰浴条件下分别各加入40μL 50mM DIPP-L-Ala-NHS乙腈溶液,每一份溶液涡旋混匀,在冰浴反应10min以上,然后常温反应10min以上;将所得混合物真空离心蒸发浓缩器除去乙腈;往残留液加入10%甲酸溶液调节pH到2~3;然后用反相的
Figure BDA0002578455290000051
Vac C18除盐,收集洗脱液用真空离心蒸发浓缩器除去乙腈后,所得固体冷冻干燥即可制得氨基代谢物衍生化产物,往制得氨基代谢物衍生化产物加入5%乙腈重悬,最终稀释成2μM浓度进行直接质谱检测;
(2)衍生产物直接质谱分析条件:正离子模式,离子源为ESI;喷雾温度为280-380℃;喷雾电压为2.8-4.5kV;鞘气和辅助气体流量分别为60和10单位;轨道阱入口温度为280-380℃;毛细管温度为280-380℃;S-lens RF为30-50%;样品分析质量扫描范围为m/z80-1500。MS/MS谱图在分辨率为17500的Orbitrap质量分析仪上获得。质谱仪操作依据数据模式自动进行MS和MS/MS扫描,通过HCD碎片化分离得到10个最激烈的前体离子。
(3)数据处理:采用Thermo Xcalibur Qual Browser处理raw格式质谱数据,并导出质谱图谱。
(4)亮氨酸和异亮氨酸同分异构体的判断:通过DIPP-L-Ala-NHS衍生化后,得到N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-亮氨酸(DIPP-L-Ala-Leu)和N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-异亮氨酸(DIPP-L-Ala-Ile)的二级质谱碎片图如图1所示:质子化后的母离子[M+H]+分别为m/z367.1992和367.1993,理论质量为367.1992,误差小于1ppm。DIPP-L-Ala-Leu的主要碎片有m/z 279.1469(理论质量为279.1468)、m/z 265.0949(理论质量为265.0948)、m/z237.1000(理论质量为237.0999)、m/z 124.0159(理论质量为124.0158)、m/z 86.0971(理论质量为86.0964)。DIPP-L-Ala-Ile的主要碎片有m/z 279.1469、m/z 265.0948、m/z237.0999、m/z 157.1337(理论质量为157.1335)、m/z 124.0158、m/z 86.0970。这两种氨基酸衍生化产物的二级质谱(MS2)碎片离子相对信号强度见表1,结果发现:亮氨酸衍生物产物也有m/z 157.1336,相对其他碎片离子其信号较弱,是最高碎片m/z 279.1469信号强度的2.12%;而异亮氨酸衍生化后产生的离子碎片m/z 157相对信号强度是亮氨酸衍生化后的11倍,其它碎片离子相对信号强度差异不明显。亮氨酸和异亮氨酸通过DIPP-L-Ala-NHS标记产物的MS2碎片离子都存在m/z 157的碎片离子,这说明亮氨酸和异亮氨酸衍生化产物遵循一个共同的解离途径;但是碎片m/z 157相对信号强度差距明显,这一个区别正是区分氨基酸异构体的关键。因此,碎片m/z 157.1335的是衍生化后异亮氨酸区分亮氨酸的特征碎片离子峰。
丙氨酸和β-丙氨酸同分异构体的判断:通过DIPP-L-Ala-NHS衍生化后,得到DIPP-L-Ala-Ala和DIPP-L-Ala-β-Ala的二级质谱碎片图如图2所示:发现两个二级谱图差异明显,DIPP-L-Ala-Ala的碎片离子m/z 195.0529(理论质量195.0529)信号强度明显高于DIPP-L-Ala-β-Ala中m/z 195.0533,因此,碎片m/z195.0529为区别丙氨酸和β-丙氨酸的特征碎片离子峰。
天冬氨酸和亚氨基二乙酸同分异构体的判断:天冬氨酸和亚氨基二乙酸通过DIPP-L-Ala-NHS衍生化后,得到N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-天冬氨酸(DIPP-L-Ala-Asp)和N-二异丙基磷酸-L-丙氨酸-亚氨基二乙酸(DIPP-L-Ala-IDA)的二级质谱碎片图如图3所示:发现两个二级谱图差异显著:DIPP-L-Ala-Asp的碎片主要离子按照强度由高到低依次为m/z 221.0322(理论质量221.0322)、m/z 239.0427(理论质量221.0322)、m/z 267.0377(理论质量267.0377)、m/z 88.0399(理论质量88.0393)、m/z 285.0483(理论质量285.0482)、m/z 134.0449(理论质量134.0448)。DIPP-L-Ala-IDA的碎片主要离子按照强度由高到低依次为m/z 88.0399、m/z 134.0449、m/z 267.0376、m/z 239.042、m/z 124.0160、m/z 285.0481、m/z 134.0449,其中,离子m/z 221.0322在DIPP-L-Ala-Asp碎片中强度最高,而在DIPP-L-Ala-IDA碎片中没有,因此碎片离子m/z 221.0322是鉴定Asp和IDA衍生化后的特征碎片离子峰。
表1氨基酸衍生化后的同分异构体MS2主要碎片及特征碎片离子信号强度
Figure BDA0002578455290000071
*加粗部分为对比的特征碎片离子峰
实施例2、细胞中含氨基代谢物同分异构体的鉴定步骤如下:
步骤(1)细胞代谢物萃取:将培养好的HepG2细胞从培养箱中拿出后,吸走培养基;用2mL 37℃PBS洗细胞除去残余培养基然后吸走PBS,重复该步2次;然后将细胞刮到15mL离心管中,再用1mL-20℃甲醇清洗培养板,将清洗后的甲醇也放入15mL离心管中;将离心管放入液氮冷冻30s。从液氮中取出离心管,冰上解冻2min,涡旋15s,超声30s,冰上孵育10min;涡旋15s,3000g离心5min,收集上清液。往沉淀中加入500μL甲醇,重复以上萃取步骤,收集上清液;再往沉淀中加入500μL超纯水,按照上述步骤,收集上清液;合并三次所得的上清液,15 000g离心15min,收集上清液,30℃旋转蒸发至100到200μL,冷冻干燥制得细胞代谢物;
步骤(2)细胞代谢物衍生化反应:往步骤(1)制得的细胞代谢物中加入100μL 50mMNaHCO3溶液溶解,充分溶解后,15 000g离心15min,取90μL上清液;加入20μL 50mM DIPP-L-Ala-NHS进行衍生化反应,冰上反应30min,常温反应30min;真空离心蒸发浓缩器除去乙腈;残留液加入适量的10%乙酸溶液调节pH到2~3;用反相的
Figure BDA0002578455290000072
Vac C18除盐,洗脱液用真空离心蒸发浓缩器除去乙腈后,冷冻干燥,加入500μL 5%乙腈重悬,进样6μL进行直接质谱检测。
步骤(3)衍生产物直接质谱分析:正离子模式,离子源为ESI;喷雾温度为300℃;喷雾电压为3.5kV;鞘气和辅助气体流量分别为60和10单位;Orbitrap入口温度为320℃;毛细管温度为360℃;S-lens RF为35%;样品分析质量扫描范围为m/z 80-1500。MS/MS谱图在分辨率为17500的Orbitrap质量分析仪上获得。质谱仪操作依据数据模式自动进行MS和MS/MS扫描,通过HCD碎片化分离得到10个最激烈的前体离子。
步骤(4)数据处理:采用Thermo Xcalibur Qual Browser处理raw格式质谱数据,并导出质谱图谱。
步骤(5)寻找细胞氨基代谢物同分异构体:细胞中氨基代谢物的二级质谱碎片图如图4所示:发现离子m/z 367.1991的二级碎片与实施例1中标准品亮氨酸衍生产物的离子碎片相同,m/z 367.1994的二级碎片与实施例1中标准品异亮氨酸的离子碎片相同,确定细胞中存在亮氨酸和异亮氨酸,特征碎片离子为m/z157.1336;发现离子m/z 325.1525的二级碎片与标准品丙氨酸衍生产物的离子碎片相同,m/z 325.1524的二级碎片与标准品β-丙氨酸衍生产物的离子碎片相同,确定细胞中存在丙氨酸和β-丙氨酸,特征碎片离子为m/z195.0529。
实施例3、动物组织中含氨基代谢物同分异构体的鉴定步骤如下:
步骤(1)组织代谢物萃取:将甲醇/氯仿/水以2:2:3比例配成萃取剂。称取10mg小鼠肝脏组织样品,在4℃下,4mL/g甲醇和2mL/g水的混合溶液中匀浆。匀浆液移入小玻璃瓶中,加入4mL/g氯仿和4mL/g水涡漩60s。在冰上静置15min后,在4℃下以10000rpm离心10min,取上清液移入玻璃瓶中,得到的液体在冷冻干燥除去甲醇和水,得到组织代谢物粉末存于-80度冰箱保存。
步骤(2)组织代谢物衍生化反应:10mg组织提取的代谢物粉末加入100μL 50mMNaHCO3溶液溶解,充分溶解后,15 000g离心15min,取90μL上清液;加入40μL 50mM DIPP-L-Ala-NHS进行衍生化反应,后续反应条件与实施例2中的步骤(2)相同。
步骤(3)衍生产物直接质谱分析:与实施例2中的步骤(3)相同。
步骤(4)数据处理:与实施例2中的步骤(4)相同。
步骤(5)寻找动物组织中氨基代谢物同分异构体:动物组织中氨基代谢物的二级质谱碎片图如图5所示:发现离子m/z 367.1993的二级碎片与标准品亮氨酸衍生产物的离子碎片相同,m/z 367.1990的二级碎片与标准品异亮氨酸的离子碎片相同,确定组织中存在同分异构体亮氨酸和异亮氨酸,特征碎片离子为m/z 157.1338;发现离子m/z 325.1523的二级碎片与标准品丙氨酸衍生产物的离子碎片相同,m/z 325.1524的二级碎片与标准品β-丙氨酸衍生产物的离子碎片相同,确定组织中存在同分异构体丙氨酸和β-丙氨酸,特征碎片离子为m/z 195.0531。
另外,组织中发现m/z 281.1619的二级碎片离子按信号强度从高到低排列依次为m/z 117.1024、m/z 197.0684、m/z 239.1152;m/z 281.1620的二级碎片离子按信号强度从高到低排列依次为m/z 197.0684、m/z 117.1024、m/z 142.0263、m/z 239.1153。推测m/z281.1619和m/z 281.1620可能是二甲胺或者乙胺衍生产物质子化离子(理论质量281.1625),通过标准品验证,二甲胺衍生产物的二级碎片离子与组织中m/z 281.1619二级碎片一致,乙胺衍生产物的二级碎片离子与组织中m/z 281.1620二级碎片一致;乙胺衍生产物碎片中存在m/z 142.0263,而二甲胺衍生产物碎片中不存在,离子m/z 142.0263可以作为衍生化后乙胺区别二甲胺的特征离子碎片,确定组织中存在同分异构体二甲胺和乙胺。
实施例4、动物血清中含氨基代谢物同分异构体的鉴定步骤如下:
步骤(1)血清代谢物提取:小鼠血清采集后在冰上静置30min;800g离心10min,取100μL上清液;加入与400μL甲醇,涡旋,20 000g离心15min,收集上清,将上清液离心干燥。
步骤(2)血清代谢物衍生化反应:100μL血清提取的代谢物粉末加入100μL 50mMNaHCO3溶液溶解,充分溶解后,15 000g离心15min,取90μL上清液;加入40μL 50mM DIPP-L-Ala-NHS进行衍生化反应,后续反应条件与实施例一步骤2相同。
步骤(3)衍生产物直接质谱分析:与实施例2中的步骤(3)相同。
步骤(4)数据处理:与实施例2中的步骤(4)相同。
步骤(5)寻找血清代谢物中氨基代谢物同分异构体:动物血清中含氨基代谢物的二级质谱碎片图如图6所示:发现离子m/z 367.1991的二级碎片与标准品亮氨酸衍生产物的离子碎片相同,m/z 367.1995的二级碎片与标准品异亮氨酸的离子碎片相同,确定血清中存在同分异构体亮氨酸和异亮氨酸,特征碎片离子为m/z 157.1334;发现离子m/z325.1522的二级碎片与标准品丙氨酸衍生产物的离子碎片相同,m/z 325.1525的二级碎片与标准品β-丙氨酸衍生产物的离子碎片相同,确定血清中存在同分异构体丙氨酸和β-丙氨酸,特征碎片离子为m/z 195.0528;离子m/z 369.1420的二级碎片与标准品天冬氨酸衍生产物的离子碎片相同,m/z369.1424的二级碎片与标准品亚氨基二乙酸衍生产物的离子碎片相同,确定血清中存在同分异构体天冬氨酸和亚氨基二乙酸,特征碎片离子为m/z221.0321。
实施例5、植物组织液或组织代谢物中氨基代谢物同分异构体的鉴定步骤如下:
步骤(1)植物组织代谢物提取:铁观音茶叶样品磨成粉末,过150目筛后,称量茶叶粉末20mg,加入500μL超纯水冲泡,并置于80(±2)℃水浴30min;冷却至室温后,加入500μL甲醇,涡旋混匀;15 000g离心15min,取500μL上清液离心干燥制得茶叶粉末提取物;
步骤(2)铁观音茶叶成分衍生化反应:往步骤(1)中制得的茶叶粉末提取物中加入100μL 50mM NaHCO3溶液溶解,充分溶解后,15 000g离心15min,取90μL上清液;加入40μL50mM DIPP-L-Ala-NHS进行衍生化反应,后续反应条件与实施例一步骤(2)相同。
步骤(3)衍生产物直接质谱分析:与实施例2中的步骤(3)相同。
步骤(4)数据处理:与实施例2中的步骤(4)相同。
步骤(5)寻找茶叶中氨基代谢物同分异构体:植物组织中含氨基代谢物的二级质谱碎片图如图7所示:发现离子m/z 367.1993的二级碎片与实施例1中标准品亮氨酸衍生产物的离子碎片相同,m/z 367.1989的二级碎片与实施例1中标准品异亮氨酸的离子碎片相同,确定茶叶中存在亮氨酸和异亮氨酸,特征碎片离子为m/z 157.1335;发现离子m/z325.1521的二级碎片与标准品丙氨酸衍生产物的离子碎片相同,m/z 325.1523的二级碎片与标准品β-丙氨酸衍生产物的离子碎片相同,确定茶叶中存在丙氨酸和β-丙氨酸,特征碎片离子为m/z 195.0528。

Claims (9)

1.一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法,其特征在于具体包含以下步骤:
(1)氨基代谢物衍生化反应:将氨基代谢物配制为氨基代谢物标准溶液,然后加入衍生试剂溶液进行衍生化反应,将所得混合物浓缩后往残留液中加酸调节pH值到2~3,除盐处理后即可制得氨基代谢物衍生化产物;所述衍生试剂的表达式为DIPP-R-NHS,其中,DIPP代表N-二异丙基磷酸基,NHS代表N-羟基琥珀酰亚胺酯,R代表为含同位素标记或不含同位素的L-构型或D-构型的氨基酸,所述氨基酸选自丙氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、缬氨酸或苯丙氨酸中的一种;
(2)氨基代谢物衍生化产物检测:将步骤(1)中制得的氨基代谢物衍生化产物加溶剂制成重悬浮液,然后将所得重悬浮液稀释后即可进行质谱进样检测;
质谱分析条件:正离子模式,离子源为ESI;喷雾温度为280-380℃;喷雾电压为2.8-4.5kV;鞘气和辅助气体流量分别为60和10单位;轨道阱入口温度为280-380℃;毛细管温度为280-380℃;S-lens RF为30-50%;样品分析质量扫描范围为m/z 80-1500;质谱仪操作依据数据模式自动进行MS和MS/MS扫描,通过HCD碎片化分离得到10-50个丰度最高的前体离子进行分析鉴定。
2.根据权利要求1所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法,其特征在于,步骤(1)中所述的氨基代谢物选自亮氨酸和异亮氨酸、丙氨酸和β-丙氨酸、天冬氨酸和亚氨基二乙酸组成的含氨基代谢物的同分异构体中的一组;所述的氨基代谢物标准溶液由10-100mM碳酸氢钠溶液(其他碱性缓冲溶液也可,优选50mM碳酸氢钠溶液)制成,溶液pH值为8-10。
3.根据权利要求1所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法,其特征在于,步骤(1)中所述的衍生化反应条件为冰浴反应10min以上,然后常温反应10min以上。
4.根据权利要求1所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法,其特征在于,步骤(1)中所述的调节pH值的酸为甲酸、乙酸或盐酸溶液。
5.根据权利要求1所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法,其特征在于,步骤(2)中所述的重悬浮液为乙腈或甲醇溶液。
6.如权利要求1所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法在细胞氨基代谢物同分异构体的鉴定中的应用。
7.如权利要求1所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法在动物组织氨基代谢物同分异构体的鉴定中的应用。
8.如权利要求1所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法在动物血清氨基代谢物同分异构体的鉴定中的应用。
9.如权利要求1所述的直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体方法在植物组织氨基代谢物同分异构体的鉴定中的应用。
CN202010660818.1A 2020-07-10 2020-07-10 一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用 Pending CN111896669A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010660818.1A CN111896669A (zh) 2020-07-10 2020-07-10 一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010660818.1A CN111896669A (zh) 2020-07-10 2020-07-10 一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN111896669A true CN111896669A (zh) 2020-11-06

Family

ID=73192504

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010660818.1A Pending CN111896669A (zh) 2020-07-10 2020-07-10 一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN111896669A (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113624862A (zh) * 2021-07-13 2021-11-09 清华大学 一种覆盖多种代谢物的代谢组和代谢流分析方法和试剂盒

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105866300A (zh) * 2016-06-15 2016-08-17 博莱克科技(武汉)有限公司 一种氨基代谢物的测定方法
CN106749402A (zh) * 2016-11-25 2017-05-31 厦门大学 一种稳定同位素标记手性磷试剂及其制备方法与应用
CN108693294A (zh) * 2018-05-22 2018-10-23 复旦大学 基于n-乙基化法的多种氨基代谢物同步定量分析方法
CN108931603A (zh) * 2018-04-23 2018-12-04 国家烟草质量监督检验中心 一种基于稳定同位素标记质谱联用技术检测血浆中羧酸类代谢物的方法
CN109580814A (zh) * 2018-12-06 2019-04-05 复旦大学 基于n-烷基化法的多种氨基代谢物同步定量分析方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105866300A (zh) * 2016-06-15 2016-08-17 博莱克科技(武汉)有限公司 一种氨基代谢物的测定方法
CN106749402A (zh) * 2016-11-25 2017-05-31 厦门大学 一种稳定同位素标记手性磷试剂及其制备方法与应用
CN108931603A (zh) * 2018-04-23 2018-12-04 国家烟草质量监督检验中心 一种基于稳定同位素标记质谱联用技术检测血浆中羧酸类代谢物的方法
CN108693294A (zh) * 2018-05-22 2018-10-23 复旦大学 基于n-乙基化法的多种氨基代谢物同步定量分析方法
CN109580814A (zh) * 2018-12-06 2019-04-05 复旦大学 基于n-烷基化法的多种氨基代谢物同步定量分析方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SHANSHAN ZHANG等: "Stable isotope N-phosphoryl amino acids labeling for quantitative profiling of amine-containing metabolites using liquid chromatography mass spectrometry", 《ANALYTICA CHIMICA ACTA》 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113624862A (zh) * 2021-07-13 2021-11-09 清华大学 一种覆盖多种代谢物的代谢组和代谢流分析方法和试剂盒

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2003218649B2 (en) Mass spectrometry method for analysing mixtures of substances
EP3290925B1 (en) Apparatus and methods for microbiological analysis
CN109633030A (zh) 一种超高效液相色谱-串联四级杆质谱检测动物体液或组织样本中氨基酸的方法
Casas et al. Analytical challenges and solutions for performing metabolomic analysis of root exudates
Parshintsev et al. Methods for characterization of organic compounds in atmospheric aerosol particles
JP2023133382A (ja) 吸着材料を使用して試料から抽出された分析物を分析するためのシステムおよび方法
JP2018535398A (ja) マススペクトロメトリーによるアミロイドベータの検出
US20220221433A1 (en) Mass spectrometry assay methods for detection of metabolites
CN110678756B (zh) 使用质谱法对低丰度多肽进行绝对定量的方法
CN112834631A (zh) 一种单细胞单管样品制备及单细胞蛋白质组学分析方法
Klampfl et al. Recent advances in the use of capillary electrophoresis coupled to high-resolution mass spectrometry for the analysis of small molecules
CN108845063B (zh) 水产添加剂的检测试剂组合及检测方法
Wenner et al. Factors that affect ion trap data-dependent MS/MS in proteomics
CN111896669A (zh) 一种直接质谱鉴定含氨基代谢物同分异构体的方法及其应用
CN114354808A (zh) 一种基于微量样本的高通量识别血液中痕量有机污染物的方法
CN111798937B (zh) 一种枸杞组织的代谢组学数据库建立方法及应用
CN113125606A (zh) 一种同时测定9种n-亚硝胺类化合物含量的方法
CN105092733B (zh) Lc‑ms测试物中不挥发性缓冲盐含量的降低方法和装置
CN108982703B (zh) 一种多酚类物质的液质联用检测方法
CN104991027B (zh) 降低lc‑ms测试物中不挥发性缓冲盐含量的方法
Saini et al. Recent advances in mass spectrometry: an appraisal of fundamentals and applications
CN104991028B (zh) Lc‑ms测试物中不挥发性缓冲盐含量的降低方法
CN111624284B (zh) 一种测定大黄醛中杂质丹蒽醌和大黄素的分析方法
CN111257485B (zh) 一种使用多肽标志物区分西洋参和人参的方法
CN115932087A (zh) 一种全氟和多氟烷基物质异构体非靶向筛查方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination