CN111665307A - 一种检测血清中多粘菌素b1和多粘菌素b2浓度的试剂盒 - Google Patents
一种检测血清中多粘菌素b1和多粘菌素b2浓度的试剂盒 Download PDFInfo
- Publication number
- CN111665307A CN111665307A CN202010674463.1A CN202010674463A CN111665307A CN 111665307 A CN111665307 A CN 111665307A CN 202010674463 A CN202010674463 A CN 202010674463A CN 111665307 A CN111665307 A CN 111665307A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- polymyxin
- b1and
- concentrations
- kit
- serum
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/04—Preparation or injection of sample to be analysed
- G01N30/06—Preparation
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/50—Conditioning of the sorbent material or stationary liquid
- G01N30/52—Physical parameters
- G01N30/54—Temperature
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/62—Detectors specially adapted therefor
- G01N30/72—Mass spectrometers
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N2030/022—Column chromatography characterised by the kind of separation mechanism
- G01N2030/027—Liquid chromatography
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/04—Preparation or injection of sample to be analysed
- G01N30/06—Preparation
- G01N2030/062—Preparation extracting sample from raw material
Landscapes
- Physics & Mathematics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
Abstract
本发明公开了一种检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度的试剂盒,属于药物检测技术领域。所述试剂盒包括:洗脱液、校准品溶液、内标溶液、蛋白质沉淀剂和质控品。采用本发明的试剂盒检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度,灵敏度高、特异性强、准确且前处理过程简单,5.0分钟之内完成血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2的分离和检测,准确度与精密度基本满足要求,可用于临床上血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2的定量分析,为临床上多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度监测提供简单快速的检测方法。
Description
技术领域
本发明属于药物检测技术领域,具体涉及一种检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的试剂盒。
背景技术
多粘菌素B(polymyxin B)是一种脂肽类抗生素,其中多粘菌素B1(polymyxin B1,PMB1)和多粘菌素B2(polymyxin B2,PMB2)是其两个主要成分,对绿脓杆菌、大肠杆菌、克雷伯氏杆菌及嗜血杆菌等多种阴性菌有抑制作用。对其他抗生素耐药的菌株,该品也敏感。但由于其严重的肾毒性及神经阻滞作用,仅用于烧伤合并败血症时短期抢救用,或供局部喷雾冲洗外用。然而,目前的给药方案大多是经验性的,缺乏快速准确的方法来测定人体体液中的多粘菌素B,阻碍了药物的临床药理特性。所以,需要对病人的需要浓度进行监测,从而保证疗效、降低毒副作用、实现个性化给药和治疗。
目前也有针对多粘菌素B1和B2定量检测的方法报道,比如文章“HighPerformance Liquid Chromatography–Mass Spectrometry Assay for Polymyxin B1and B2 in Human Plasma”报道了一种基于液相色谱质谱联用法测定多粘菌素B1和B2的含量,但该方法也有一定的缺陷,比如该方法前处理使用固相萃取法,样本用量大、前处理较复杂且成本高;同时,文章中提到的液相方法梯度达12分钟,检测时间过长,效率低;再者,该方法检测的线性范围为100-2500ng/mL,线性范围窄,不适用于临床分析。再比如,文章“Simultaneous quantitation of polymyxin B1,polymyxin B2 andpolymyxin B1-1 inhuman plasma and treated human urine usingsolid phase extraction and liquidchromatography–tandem massspectrometry”报道了一种基于液质谱联用测定多粘菌素B1和B2的含量,不过也有一定的缺陷,比如该方法前处理繁琐,需要涡旋超声沉淀蛋白,需要离心浓缩后检测,一针样本检测时间长达20分钟,不适用于临床大量样本的检测。
发明内容
本发明的目的是提供一种检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的试剂盒。
本发明的另一个目的是提供上述试剂盒在利用超高效液相色谱串联质谱技术检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的应用。
为了实现上述发明目的,本发明采用以下技术方案:
一种检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的试剂盒,包括:洗脱液、校准品溶液、内标溶液、蛋白质沉淀剂和质控品;
所述洗脱液由洗脱液A和洗脱液B组成,洗脱液A为0.01%~0.2%甲酸水溶液,洗脱液B为乙腈;
所述校准品溶液包括系列浓度已知的由空白血清基质配制的多粘菌素B1和多粘菌素B2的混合溶液;
所述内标溶液为多粘菌素E 40000ng/mL的甲醇水溶液;
所述蛋白质沉淀剂为含甲酸或乙酸的甲醇与乙腈的混合溶液;
所述质控品包括浓度已知的由空白血清基质配制的多粘菌素B1和多粘菌素B2的混合溶液。
进一步地,所述洗脱液A为0.1%甲酸水溶液。
进一步地,所述标准品包括7中系列浓度的多粘菌素B1和多粘菌素B2的混合溶液。
进一步地,所述内标溶液采用50%甲醇水溶液配制。
进一步地,所述蛋白质沉淀剂中含甲酸或乙酸的甲醇与乙腈的体积比为1~3:1~4,含甲酸或乙酸的甲醇中甲酸的含量为0.01%~0.5%。
进一步地,所述蛋白质沉淀剂中含甲酸或乙酸的甲醇与乙腈的体积比为2:1,含甲酸或乙酸的甲醇中甲酸的含量为0.1%。
进一步地,所述质控品包括高、中、低三种浓度的混合溶液。
上述试剂盒在利用超高效液相色谱串联质谱技术检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的应用。
进一步地,所述内标溶液与蛋白沉淀剂先混合制成含内标的蛋白沉淀剂后在用于检测,内标溶液与蛋白沉淀剂的体积比为0.1~0.3:19.9~19.7。
在一种更优选方案中,内标溶液与蛋白沉淀剂的体积比为0.2:19.8(1:99)。
本发明提供的试剂盒检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度时,灵敏度高、特异性强、准确且前处理过程简单,5.0分钟之内完成血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2的分离和检测,准确度与精密度基本满足要求,可用于临床上血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2的定量分析,为临床上多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度监测提供简单快速的检测方法。
附图说明
图1为多粘菌素B1和多粘菌素B2标准品的提取离子流谱图。
图2为血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2的提取离子流谱图。
具体实施方式
本发明提供了一种检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的试剂盒。通过超高效液相色谱串联质谱技术,先利用超高效液相色谱将待测物与血清基质分离,再经质谱分析得到待测物与其对应同位素内标物的质荷比,利用同位素内标定量法,根据已经建立的校准曲线,即可计算出多粘菌素B1和多粘菌素B2的含量。
所述多粘菌素B1和多粘菌素B2对应的内标物为多粘菌素E。
所述的试剂盒包含如下试剂:
(1)洗脱液:
洗脱液A:0.01%~0.2%甲酸水溶液;洗脱液B:乙腈;
(2)校准品溶液:
将包含有多粘菌素B1(PMB1)400μg/mL、多粘菌素B2(PMB2)400μg/mL的标准储备溶液以空白血清基质配制成七个不同浓度点的校准品溶液,所述校准品溶液的七个浓度点为:
多粘菌素B1的七个浓度点为依次为:40ng/mL、100ng/mL、200ng/mL、1000ng/mL、2000ng/mL、10000ng/mL、20000ng/mL;
多粘菌素B2的七个浓度点为依次为:40ng/mL、100ng/mL、200ng/mL、1000ng/mL、2000ng/mL、10000ng/mL、20000ng/mL;
由于无法获取商品化的多粘菌素B2纯标样,本发明中多粘菌素B1和多粘菌素B2来自混合物多粘菌素B(多粘菌素B1的占比为71.1%,多粘菌素B2的占比为28.9%),将多粘菌素B1和多粘菌素B2均看成纯标样,在计算血样中多粘菌素B1和多粘菌素B2的浓度时,样品检测浓度除以各自的占比即为实际浓度;
(3)内标溶液:
包含有多粘菌素E(PME)40000ng/mL的甲醇水溶液;
(4)蛋白沉淀剂:
含有甲酸或乙酸的甲醇与乙腈混合溶液;
(5)质控品:
含有多粘菌素B1和多粘菌素B2的空白血清基质,分为低、中、高三个浓度,分别为QC(L)、QC(M)、QC(H),其中,
QC(L)为上述标准储备溶液以空白血清基质稀释至5000倍,
QC(M)为上述标准储备溶液以空白血清基质稀释至500倍,
QC(H)为上述标准储备溶液以空白血清基质稀释至50倍。
在一种优选方案中,上述洗脱液A优选为0.1%甲酸水溶液。
在一种方案中,所述蛋白沉淀剂为含甲酸或乙酸的甲醇与乙腈的混合溶液;优选地,蛋白沉淀剂中甲醇与乙腈体积比为1~3:1~4,甲酸或乙酸的含量为0.01%~0.5%;更优选地,蛋白沉淀剂中甲醇与乙腈的体积比为2:1,甲酸或乙酸的含量为0.1%。
在一种方案中,空白血清基质为不含目标药物的空白血清。
本发明提及的标准储备溶液按照如下方法制备:
将上述标准品配制成如下浓度:多粘菌素B 50mg/mL;
移取标准品母液:多粘菌素B 8μL;再加入至992μL 50%甲醇水中得到1mL混合标准储备溶液。
本发明提及的内标溶液按照如下方法制备:
以50%甲醇水配制如下内标母液:多粘菌素E 20mg/mL;
移取内标母液:多粘菌素E 2μL;再加入至998μL 50%甲醇水中得到1mL内标溶液;其中,多粘菌素E 40000ng/mL;
本发明提及的血清为人或动物的血清。
在一种优选方案中,一种检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2的试剂盒包含如下试剂:
(1)洗脱液:
洗脱液A:0.1%甲酸水溶液;洗脱液B:乙腈;
(2)校准品溶液:
将上述多粘菌素B配制成如下浓度的标准品母液:多粘菌素B 50mg/mL;
移取标准品母液:多粘菌素B 8μL;再加入至992μL 50%甲醇水中得到1mL标准储备溶液;浓度参下表1。
表1标准品储备溶液
本发明将混合标准品储备液以空白血清基质(不含目标药物的空白血清)配制成七个不同浓度点的校准品溶液,配制过程如下:
取10μL标准储备液加入至190μL空白血清基质中作为第一个高值浓度点;取50μL第一高值浓度点用50μL空白血清基质稀释得第二高值浓度点;取第一高值浓度点用9倍体积空白血清基质稀释得第三高值浓度点;取第二高值浓度点用9倍体积空白血清基质稀释得第四高值浓度点;取第三高值浓度点用9倍体积空白血清基质稀释得第五高值浓度点;取第四高值浓度点用9倍体积空白血清基质稀释得第六高值浓度点;取第五高值浓度点用5倍体积空白血清基质稀释得第七高值浓度点。
本发明采用梯度稀释法进行标曲配制,从-20℃冰箱取出标准溶液后,涡旋10s,2min内使用标准溶液配制标曲最高浓度点,配制好后-80℃保存,具体过程如下表2(单位:ng/mL)。
表2标曲配制
(3)内标溶液:
以50%甲醇水配制如下内标母液:多粘菌素E 20mg/mL;
移取内标母液:多粘菌素E 2μL;再加入至998μL 50%甲醇水中得到1mL内标溶液;浓度参考下表3。
表3内标溶液配制
(4)蛋白沉淀剂:
含甲酸的甲醇与乙腈混合溶液,其中甲醇与乙腈的体积比为2:1,甲酸的含量为0.1%。
(5)质控品:
取上述混合标准储备溶液以不含目标药物的空白血清配制成三个不同浓度QC(L)、QC(M)、QC(H),其中,具体如表4所示。
表4质控品对应浓度(单位ng/mL)
QC(L)中包含:多粘菌素B1(PMB1)80ng/mL和多粘菌素B2(PMB2)80ng/mL;
QC(M)中包含:多粘菌素B1(PMB1)800ng/mL和多粘菌素B2(PMB2)800ng/mL;
QC(H)中包含:多粘菌素B1(PMB1)8000ng/mL和多粘菌素B2(PMB2)8000ng/mL。
采用本发明的试剂盒,检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2时,将内标溶液与蛋白质沉淀剂进行混合制备含内标的蛋白沉淀剂。在一种优选方案中,内标溶液与蛋白沉淀剂的体积比为0.1~0.3:19.9~19.7。在一种更优选方案中,内标溶液与蛋白沉淀剂的体积比为0.2:19.8(1:99)。例如,含内标的蛋白沉淀剂是由内标溶液与蛋白沉淀剂(甲醇与乙腈的体积比为1:1,含0.1%甲酸)以体积比为1:99混合配制而成。
上述试剂盒在利用超高效液相色谱串联质谱技术检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2的应用也在本发明的保护范围之内。
具体检测方法如下:
一种检测检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的方法,血清样本通过预处理后,振荡、离心后取上清进样,采用超高效液相色谱串联质谱技术检测经过预处理的血清中的多粘菌素B1和多粘菌素B2,先利用超高效液相色谱将待测物与血清基质分离,再利用质谱内标定量法,以标准品与内标物的浓度比为X轴,标准品与内标物的峰面积比为Y轴,建立校准曲线,计算多粘菌素B1和多粘菌素B2药物的含量。
所述药物对应的内标物为:多粘菌素E。
具体色谱条件为:
(1)超高效液相色谱条件:
流动相A:0.01%~0.2%甲酸水溶液;流动相B:乙腈;
色谱柱型号:Phenomenex Kinetex XB-C18;
采用流动相A和流动相B为混合流动相进行梯度洗脱的方式,所述流动相A和流动相B的初始比例为85~100:25~0;所述梯度洗脱过程如下:在0-1.0分钟内,流动相A和流动相B的体积比由85~100:25~0匀速渐变至70:30;在1.0-2.5分钟内,流动相A和流动相B的体积比由70:30匀速渐变至2:98;在2.5-3.0分钟内,流动相A和流动相B的体积比保持为2:98,在3.0-5.0分钟内,流动相A和流动相B的体积比由2:98变至初始比例,每个样品采集时间为5.0分钟。
(2)质谱条件:
在电喷雾电离正离子检测模式下,采用多反应监测的质谱扫描模式,毛细管电压为3.0kV(ESI+);干燥气温度为250℃;雾化气压力为45psi,鞘气温度325℃,鞘气流速11L/min;同时监测了各目标物及其对应内标。
为了改善色谱分离选择性,可以考虑调节流动相的极性。本发明在流动相A中添加了甲酸,可有效提高目标化合物的离子化效率,在其他条件的配合下,较现有技术中采用LC-MS/MS方法检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2的灵敏度更高,前处理过程简单,成本低,且灵敏度高、特异性强,5.0分钟之内完成多粘菌素B1和多粘菌素B2的分离和检测。在一种优选方案中,流动相A为0.05%~0.2%甲酸水溶液,在不影响本发明效果的情况下,优选地,流动相A为0.1%甲酸水溶液。
在色谱法中,色谱柱的选择十分重要,对色谱柱的要求:柱效高、选择性好,分析速度快等。本发明采用乙腈和0.01%~0.2%甲酸水溶液作为流动相,色谱柱型号为Phenomenex Kinetex XB-C18(3.0×50mm,2.6μm),在其他条件的配合下,内源性物质不干扰样品的测定,灵敏度高、特异性强,准确度和精密度基本满足要求。
在采用内标法时,内标物的选择是一项十分重要的工作。理想的内标物应当能以准确、已知的量加到样品中去,和被分析的样品有基本相同或尽可能一致的物理化学性质、色谱行为和响应特征;在色谱分析条件下,内标物必须能与样品中各组分充分分离。本发明采用多粘菌素E作为内标,内标和待测物具有相似结构和相同化学性质,测定血清中的多粘菌素B1和多粘菌素B2时的重现性、准确度均较好。
在一种优选方案中,流动相A和流动相B的初始比例为85~100:25~0。进一步优选地,流动相A和流动相B的初始比例为99:1。
在一种优选方案中,流速为0.2~0.5mL/min,优选为0.3mL/min。
进一步地,柱温为40~60℃,优选为50℃。
在一种方案中,进样体积为0.2~10μL,优选为1μL。
在一种优选方案中,采用超高效液相色谱串联质谱技术检测经过预处理的血清中的多粘菌素B1和多粘菌素B2时,具体色谱条件为:
(1)超高效液相色谱条件:
流动相A:0.1%甲酸水溶液;流动相B:乙腈;
色谱柱型号:Phenomenex Kinetex XB-C18(3.0×50mm,2.6μm);
采用流动相A和流动相B为混合流动相进行梯度洗脱的方式,所述流动相A和流动相B的初始比例为99:1;所述梯度洗脱过程如下:在0-1.0分钟内,流动相A和流动相B的体积比由85~100:25~0匀速渐变至70:30;在1.0-2.5分钟内,流动相A和流动相B的体积比由70:30匀速渐变至2:98;在2.5-3.0分钟内,流动相A和流动相B的体积比保持为2:98,在3.0-5.0分钟内,流动相A和流动相B的体积比由2:98变至初始比例,每个样品采集时间为5.0分钟;梯度洗脱方式具体见表1;流速为0.3mL/min,柱温为50℃,进样体积为1μL。
表5流动相梯度洗脱参数
(2)质谱条件:
在电喷雾电离正离子检测模式下,采用多反应监测的质谱扫描模式,毛细管电压为3.0kV(ESI+);干燥气温度为250℃;雾化气压力为45psi,鞘气温度325℃,鞘气流速11L/min;质谱源参数如表6所示,同时监测了各目标物及其对应同位素内标,各个目标物的质谱参数见表7。
表6质谱源参数
表7多粘菌素B1和多粘菌素B2检测质谱参数
本发明提及的血清为人或动物的血清。
在一种优选方案中,本发明提及的经过预处理的血清按照如下方法制备:取50μL血清于1.5mL离心管中,向其中加入200μL含内标工作的蛋白沉淀剂,振荡3~10min,在12000~15000r/min,4~20℃离心4~10min后,取上清到进样瓶中,待进样;其中含内标的蛋白沉淀剂是由内标溶液与蛋白沉淀剂混合配制而成,蛋白沉淀剂中甲醇与乙腈的体积比为2:1,甲酸的含量为0.1%。
在一种优选方案中,本发明提及的经过预处理的血清按照如下方法制备:取50μL血清于1.5mL离心管中,向其中加入200μL含内标工作的蛋白沉淀剂,振荡3~10min,在12000~15000r/min,4~20℃离心4~10min后,取上清到进样瓶中,待进样;其中含内标的蛋白沉淀剂是由内标溶液与蛋白沉淀剂混合配制而成,内标溶液与蛋白沉淀剂的体积比为0.1~0.3:19.9~19.7。
在一种更优选方案中,本发明提及的经过预处理的血清按照如下方法制备:取50μL血清于1.5mL离心管中,向其中加入200μL含内标的蛋白沉淀剂(甲醇与乙腈的体积比为2:1,含0.1%甲酸),振荡5min,在14000r/min,15℃离心5min后,取上清60μL到进样瓶中,进样1μL,其中含内标的蛋白沉淀剂是由内标溶液与蛋白沉淀剂混合配制而成,内标溶液与蛋白沉淀剂的体积比为0.2:19.8(即1:99)。
在一种方案中,本发明提及的含内标的蛋白沉淀剂按照如下方法制备:
以50%甲醇水配制如下内标母液:多粘菌素E 20mg/mL;
移取内标母液:多粘菌素E 2μL;再加入至998μL甲醇水中得到1mL内标溶液;
取100μL上述内标溶液加入至19.8mL蛋白沉淀剂中,即得含内标的蛋白沉淀剂。
在一种方案中,上述蛋白沉淀剂为含甲酸的甲醇与乙腈混合溶液;优选地,蛋白沉淀剂中甲醇与乙腈的体积比为1~3:1,含0.01%~0.2%甲酸。更优选地,蛋白沉淀剂中甲醇与乙腈的体积比为2:1,含0.1%甲酸。
在一种方案中,标准品溶液按照如下方法制备:
配制如下浓度的标准品母液:多粘菌素B 50mg/mL;
多粘菌素B 8μL;再加入至992μL 50%甲醇水中得到1mL标准储备溶液。在标准品储备液中包含:多粘菌素B1(PMB1)400μg/mL、多粘菌素B2(PMB2)400μg/mL。
将上述标准储备溶液以空白血清基质配制成七个不同浓度点的校准品溶液,所述校准品溶液的七个浓度点为:
多粘菌素B1的七个浓度点为依次为:40ng/mL、100ng/mL、200ng/mL、1000ng/mL、2000ng/mL、10000ng/mL、20000ng/mL;
多粘菌素B2的七个浓度点为依次为:40ng/mL、100ng/mL、200ng/mL、1000ng/mL、2000ng/mL、10000ng/mL、20000ng/mL。
每个浓度点样品取50μL于1.5mL离心管中,向其中加入200μL含内标的蛋白沉淀剂(甲醇与乙腈的体积比为2:1,含0.1%甲酸),振荡5min,在14000r/min,15℃离心5min后,取上清60μL到进样瓶中,进样1uL。
本发明还包括制备质控品,质控品按照如下方法制备:取上述混合标准储备溶液以不含目标药物的空白血清配制成三个不同浓度QC(L)、QC(M)、QC(H),其中,
QC(L)为上述标准储备溶液以空白血清基质稀释至5000倍。
QC(M)为上述标准储备溶液以空白血清基质稀释至500倍。
QC(H)为上述标准储备溶液以空白血清基质稀释至50倍。
QC(L)中包含:多粘菌素B1(PMB1)80ng/mL和多粘菌素B2(PMB2)80ng/mL。
QC(M)中包含:多粘菌素B1(PMB1)800ng/mL和多粘菌素B2(PMB2)800ng/mL。
QC(H)中包含:多粘菌素B1(PMB1)8000ng/mL和多粘菌素B2(PMB2)8000ng/mL。
根据下述实施例,可以更好地理解本发明。然而,本领域的技术人员容易理解,实施例所描述的内容仅用于说明本发明,而不应当也不会限制权利要求书中所详细描述的本发明。
实施例1
一、实验材料与仪器
1.材料
样本来自于南京鼓楼医院2019年10月份门诊收集的血清样本。
(1)仪器:Qlife Lab 9000plus三重四级杆质谱仪(品生医学);Qlife Lab 9000超高效液相色谱系统(配G7167A自动进样器,品生医学);SCILOGEX D2012高速台式离心机(美国);超纯水仪(ELGA LabWater,英国);多管涡旋混合仪(Vortex genie2,美国);可调移液器(Eppendorf 0.5~10μL,10~100μL,100~1000μL);玻璃仪器、量筒等。
(2)试剂耗材:MS级甲醇(Fisher,美国);HPLC级甲醇(Honeywell,美国);MS级乙腈(Fisher,美国);HPLC级乙腈(Honeywell,美国);MS级甲酸(Fisher,美国);色谱柱型号:Phenomenex Kinetex XB-C18(3.0×50mm,2.6μm)。
(3)标准品:标准品及其对应的内标物,见下表8。
表8标准品和内标
(4)质控品:含有多粘菌素B1和多粘菌素B2的空白血清,分为低、中、高三个浓度,分别为QC(L)、QC(M)、QC(H),如表4所示。
试剂盒上下四周加膜,防震保温,左上方放置流动相A和B,左下方分别放置11个安瓿瓶,分别为标准品、质控品和内标溶液;右边放置25mL蛋白沉淀剂
二、液质条件
1.色谱条件:色谱条件:流动相A:0.1%甲酸水溶液;流动相B:乙腈。色谱柱型号:Phenomenex Kinetex XB-C18(3.0×50mm,2.6μm),采用梯度洗脱的方式,详见表5。流速为0.3mL/min,柱温为50℃,进样体积为1μL。
2.在电喷雾电离正离子检测模式下,采用多反应监测的质谱扫描模式,毛细管电压为3.0kV(ESI+);干燥气温度为250℃;雾化气压力为45psi,鞘气温度325℃,鞘气流速11L/min;质谱源参数如表6所示,同时监测了各目标物及其对应内标,各个目标物的质谱参数见表7。
三、实验过程
1.标准品配制:
将将多粘菌素B配制成如下浓度的标准品母液:多粘菌素B 50mg/mL;
移取标准品母液:多粘菌素B 8μL;再加入至992μL甲醇水中得到1mL标准储备溶液。详见表1。
将上述标准储备溶液以空白血清基质(不含目标药物的空白血清)配制成七个不同浓度点的校准品溶液,详见表2,所述校准品溶液的七个浓度点为:
多粘菌素B1的七个浓度点为依次为:40ng/mL、100ng/mL、200ng/mL、1000ng/mL、2000ng/mL、10000ng/mL、20000ng/mL;
多粘菌素B2的七个浓度点为依次为:40ng/mL、100ng/mL、200ng/mL、1000ng/mL、2000ng/mL、10000ng/mL、20000ng/mL。
2.内标溶液配制
以50%甲醇水配制如下内标母液:多粘菌素E 20mg/mL。
移取内标母液:多粘菌素E 2μL;再加入至998μL甲醇水中得到1mL内标溶液。其中:多粘菌素E(PME)40000ng/mL。详见表3。
3.质控品配制:
取上述标准储备溶液以不含目标药物的空白血清配制成三个不同浓度QC(L)、QC(M)、QC(H),具体如表4所示。
QC(L)中包含:多粘菌素B1(PMB1)80ng/mL和多粘菌素B2(PMB2)80ng/mL。
QC(M)中包含:多粘菌素B1(PMB1)800ng/mL和多粘菌素B2(PMB2)800ng/mL。
QC(H)中包含:多粘菌素B1(PMB1)8000ng/mL和多粘菌素B2(PMB2)8000ng/mL。
4.样品处理
(1)标准品处理:七个不同校准品样本每个浓度点取50μL于1.5mL离心管中,向其中加入200μL含内标的蛋白沉淀剂(甲醇与乙腈的体积比为2:1,含0.1%甲酸),振荡5min,在14000r/min,15℃离心5min后,取上清60μL到进样瓶中,进样1μL。
(2)血清样品前处理:取50μL于1.5mL离心管中,向其中加入200μL含内标的蛋白沉淀剂(甲醇与乙腈的体积比为2:1,含0.1%甲酸),振荡5min,在14000r/min,15℃离心5min后,取上清60μL到进样瓶中,进样1μL。
(3)质控品前处理:分别取质控品溶液QC(L)、QC(M)、QC(H)各50μL于1.5mL离心管中,然后与血清样品前处理一致,此处不再赘述。
分析试剂盒中各组分见表9。
表9多粘菌素B药物浓度分析试剂盒组分的制备
备注:所述含内标的蛋白沉淀剂按照如下方法制备,取200μL上述内标溶液加入至19.8mL蛋白沉淀剂中,即得含内标的蛋白沉淀剂。
四、方法验证
1.提取离子流色谱图:多粘菌素B1和多粘菌素B2的标准品和血清样品的峰形比较对称,且没有杂峰干扰,说明在此条件下能够得到良好的检测,图1为多粘菌素B1和多粘菌素B2标准品的提取离子流谱图;图2为血清样本中多粘菌素B1和多粘菌素B2的提取离子流谱图。
2.校准曲线:采用内标定量法,利用MS quantitative analysis软件以标准物与内标物的浓度比为X轴,标准物与内标物峰面积比为Y轴,建立校准曲线,并计算出血清中待测物的浓度。多粘菌素B1和多粘菌素B2在各自浓度范围内的线性拟合方程,线性良好,相关系数在0.99以上,满足定量要求,见表10。
表10多粘菌素B1和多粘菌素B2线性回归方程及线性相关系数
序号 | 化合物 | 保留时间(min) | 线性范围(ng/mL) | 线性方程 | 相关系数(r) |
1 | PMB1 | 2.79 | 40-20000 | Y=0.0002770094X+0.008257 | 0.998 |
2 | PMB2 | 2.74 | 40-20000 | Y=0.0002310224X+0.012492 | 0.999 |
3.准确度考察:采用加标回收率试验评估方法的准确性。准备一混合空白血清样品,分别加入低、中、高3个浓度的混合标准品,以相同步骤重复处理测定5次,结果显示,多粘菌素B1和多粘菌素B2的加标回收率在92.85%-102.79%之间,5次重复试验的RSD在1.30%-6.02%范围,统计结果见表11。
表11多粘菌素B1和多粘菌素B2添加回收率结果
4.精密度试验:取无干扰空白血清样本,加入不同浓度多粘菌素B1和多粘菌素B2标准品,得到低、中、高三个浓度血清样本,一天内重复处理6批,连续处理三天,以内标法定量测定多粘菌素B1和多粘菌素B2的浓度,批内精密度为2.11%~8.95%,三日内分3批处理,计算批间精密度为2.25%~10.40%,结果见表12。
表12批内及批间精密度测试结果
由上述结果可知,本发明设计了了ID-HPLC-MS/MS一同测定人体血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2的试剂盒。血清用量少(仅需50μL)且前处理简单,且一针分析多种物质只需5.0分钟,简单快速。
采用内标法定量不仅可以极大消除基质干扰,而且结果不受前处理过程、仪器响应波动等条件的影响,能够达到准确定量。以加标回收率试验评估方法的准确性,结果显示,多粘菌素B1和多粘菌素B2的加标回收率在92.85%-102.79%之间,5次重复试验的RSD在1.30%-6.02%范围,准确度良好。
方法的重现性结果表明,多粘菌素B1和多粘菌素B2的批内精密度为2.11%~8.95%,批间精密度为2.25%~10.40%,方法的重现性良好。且建立的血清样品前处理过程非常简单,血清用量仅50μL。
总之,采用本发明的试剂盒进行检测,灵敏度高、特异性强、准确且前处理过程简单,5.0分钟之内完成化合物的分离和检测,准确度及精密度满足要求,可用于临床上血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的定量分析,为相关的药物浓度监测提供一种可靠的检测方法。
以上实施例仅用以说明本发明的技术方案,而非对其限制;尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明,本领域的普通技术人员应当理解:其依然可能对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分技术特征进行等同替换;而这些修改或者替换,并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的范围。
Claims (10)
1.一种检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的试剂盒,其特征在于:所述试剂盒包括:洗脱液、校准品溶液、内标溶液、蛋白质沉淀剂和质控品;
所述洗脱液由洗脱液A和洗脱液B组成,洗脱液A为0.01%~0.2%甲酸水溶液,洗脱液B为乙腈;
所述校准品溶液包括系列浓度已知的由空白血清基质配制的多粘菌素B1和多粘菌素B2的混合溶液;
所述内标溶液为多粘菌素E 40000 ng/mL的甲醇水溶液;
所述蛋白质沉淀剂为含甲酸或乙酸的甲醇与乙腈的混合溶液;
所述质控品包括浓度已知的由空白血清基质配制的多粘菌素B1和多粘菌素B2的混合溶液。
2.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述洗脱液A为0.1%甲酸水溶液。
3.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述标准品包括以下7种浓度的多粘菌素B1和多粘菌素B2的混合溶液:
混合液一:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为40ng/mL;
混合液二:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为100 ng/mL;
混合液三:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为200 ng/mL;
混合液四:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为1000 ng/mL;
混合液五:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为2000 ng/mL;
混合液六:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为10000 ng/mL;
混合液七:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为20000 ng/mL。
4.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述内标溶液采用50%甲醇水溶液配制。
5.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述蛋白质沉淀剂中含甲酸或乙酸的甲醇与乙腈的体积比为1~3:1~4,含甲酸或乙酸的甲醇中甲酸或乙酸的含量为0.01%~0.5%。
6.根据权利要求5所述的试剂盒,其特征在于:所述蛋白质沉淀剂中含甲酸或乙酸的甲醇与乙腈的体积比为2:1,含甲酸或乙酸的甲醇中甲酸或乙酸的含量为0.1%。
7.根据权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述质控品包括高、中、低三种浓度的混合溶液:
低浓度质控品:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为80 ng/mL;
中浓度质控品:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为800 ng/mL;
高浓度质控品:多粘菌素B1和多粘菌素B2浓度均为8000 ng/mL。
8.权利要求1所述试剂盒在利用超高效液相色谱串联质谱技术检测血清中多粘菌素B1和多粘菌素B2药物浓度的应用。
9.根据权利要求8所述的应用,其特征在于:试剂盒中的内标溶液与蛋白沉淀剂先混合制成含内标的蛋白沉淀剂后在用于检测,内标溶液与蛋白沉淀剂的体积比为 0.1~0.3:19.9~19.7。
10.根据权利要求9所述的应用,其特征在于:内标溶液与蛋白沉淀剂的体积比为 0.2:19.8。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010674463.1A CN111665307A (zh) | 2020-07-14 | 2020-07-14 | 一种检测血清中多粘菌素b1和多粘菌素b2浓度的试剂盒 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010674463.1A CN111665307A (zh) | 2020-07-14 | 2020-07-14 | 一种检测血清中多粘菌素b1和多粘菌素b2浓度的试剂盒 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN111665307A true CN111665307A (zh) | 2020-09-15 |
Family
ID=72391927
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202010674463.1A Pending CN111665307A (zh) | 2020-07-14 | 2020-07-14 | 一种检测血清中多粘菌素b1和多粘菌素b2浓度的试剂盒 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN111665307A (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114814033A (zh) * | 2022-04-29 | 2022-07-29 | 杭州度安医学检验实验室有限公司 | 一种基于lc-ms的多黏菌素b1、b2的检测方法及试剂盒 |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2260040C2 (ru) * | 2002-02-11 | 2005-09-10 | Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" | Способ получения инозина и инозин 5'-монофосфата, штамм бактерии, принадлежащей к роду bacillus - продуцент инозина (варианты) |
CN101358966A (zh) * | 2008-08-22 | 2009-02-04 | 北京望尔康泰生物技术有限公司 | 一种检测粘杆菌素的方法及其专用酶联免疫试剂盒 |
GB201417384D0 (en) * | 2014-10-01 | 2014-11-12 | Randox Lab Ltd | Detection of polymyxins |
CN107367562A (zh) * | 2017-08-03 | 2017-11-21 | 上海上药第生化药业有限公司 | 硫酸多黏菌素b的分析检测方法及应用 |
CN108203723A (zh) * | 2018-02-01 | 2018-06-26 | 浙江海正药业股份有限公司 | 一种发酵生产高含量多黏菌素b1的方法 |
CN109142760A (zh) * | 2018-07-04 | 2019-01-04 | 中国农业大学 | 一种快速准确检测饲料中粘杆菌素的试剂盒 |
-
2020
- 2020-07-14 CN CN202010674463.1A patent/CN111665307A/zh active Pending
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2260040C2 (ru) * | 2002-02-11 | 2005-09-10 | Закрытое акционерное общество "Научно-исследовательский институт Аджиномото-Генетика" | Способ получения инозина и инозин 5'-монофосфата, штамм бактерии, принадлежащей к роду bacillus - продуцент инозина (варианты) |
CN101358966A (zh) * | 2008-08-22 | 2009-02-04 | 北京望尔康泰生物技术有限公司 | 一种检测粘杆菌素的方法及其专用酶联免疫试剂盒 |
GB201417384D0 (en) * | 2014-10-01 | 2014-11-12 | Randox Lab Ltd | Detection of polymyxins |
CN107367562A (zh) * | 2017-08-03 | 2017-11-21 | 上海上药第生化药业有限公司 | 硫酸多黏菌素b的分析检测方法及应用 |
CN108203723A (zh) * | 2018-02-01 | 2018-06-26 | 浙江海正药业股份有限公司 | 一种发酵生产高含量多黏菌素b1的方法 |
CN109142760A (zh) * | 2018-07-04 | 2019-01-04 | 中国农业大学 | 一种快速准确检测饲料中粘杆菌素的试剂盒 |
Non-Patent Citations (5)
Title |
---|
JENNA COVELLI ET AL.: "The development and validation of a simple liquid chromatography–tandem mass spectrometry method for polymyxin B1 and B2 quantification in different matrices", 《JOURNAL OF CHROMATOGRAPHY B》 * |
JIE HE ET AL.: "A validated ultra-performance liquid chromatography–tandem mass spectrometry method for the quantification of polymyxin B in mouse serum and epithelial lining fluid: application to pharmacokinetic studies", 《JOURNAL OF ANTIMICROBIAL CHEMOTHERAPY》 * |
KIM H. HEE ET AL.: "Development and validation of liquid chromatography tandem mass spectrometry method quantitative determination of polymyxin B1, polymyxin B2, polymyxin B3 and isoleucine-polymyxin B1 in human plasma and its application in clinical studies", 《JOURNAL OF PHARMACEUTICAL AND BIOMEDICAL ANALYSIS》 * |
刘孟娟 等: "液质联用技术检测硫酸多黏菌素B中各组分", 《中国药业》 * |
陈文倩 等: "基于治疗药物监测的多粘菌素B用药方案优化", 《中国新药杂志》 * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114814033A (zh) * | 2022-04-29 | 2022-07-29 | 杭州度安医学检验实验室有限公司 | 一种基于lc-ms的多黏菌素b1、b2的检测方法及试剂盒 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN111537648A (zh) | 一种超高效液相色谱串联质谱技术检测血清中抗结核病药物的试剂盒 | |
CN111812218B (zh) | 一种同时检测血清中多种抗精神病药物浓度的方法 | |
CN111579680A (zh) | 一种血清中抗癫痫药物的检测试剂盒及其应用 | |
CN111830153A (zh) | 一种检测血清中多粘菌素b1和多粘菌素b2浓度的方法 | |
CN111766311A (zh) | 一种超高效液相色谱串联质谱技术检测血清中抗结核病药物的方法 | |
CN111812223B (zh) | 超高效液相色谱串联质谱技术检测血浆中抗血小板药物的方法 | |
CN112326824A (zh) | 一种同时测定血浆中6种一线抗结核药物及抗真菌药物伏立康唑血药浓度的方法 | |
CN111665303B (zh) | 超高效液相色谱串联质谱技术检测血浆中抗血小板药物的试剂盒 | |
CN111579681A (zh) | 一种同时检测血清中多种抗精神病药物的试剂盒 | |
CN111579679A (zh) | 一种抗肿瘤药物检测试剂盒及其应用 | |
CN111579685A (zh) | 一种检测血浆中抗凝血药物的试剂盒及其应用 | |
CN111812225B (zh) | 超高效液相色谱串联质谱技术检测血清中抗焦虑和催眠药物浓度的方法 | |
CN113588804A (zh) | 一种检测血清中5-羟色胺和褪黑素浓度的试剂盒 | |
CN111665301A (zh) | 超高效液相色谱串联质谱技术检测血清中抗真菌药物的试剂盒 | |
CN109900841B (zh) | 一种同时测定血浆中氨基糖苷类抗生素药物浓度的hplc-ms/ms方法 | |
CN111812220A (zh) | 一种检测血浆中抗肿瘤药物浓度的方法 | |
CN113607854A (zh) | 同时检测多种维生素的方法和检测试剂盒 | |
CN111665307A (zh) | 一种检测血清中多粘菌素b1和多粘菌素b2浓度的试剂盒 | |
CN111912920A (zh) | 一种超高效液相色谱串联质谱技术检测血浆中霉酚酸及其代谢物的方法 | |
CN111812219A (zh) | 一种检测血浆中抗凝血药物浓度的方法 | |
CN111812222A (zh) | 超高效液相色谱串联质谱技术检测血清中抗抑郁药物浓度的方法 | |
CN111812217A (zh) | 一种检测血浆中抗动脉粥样硬化药物浓度的方法 | |
CN111579683A (zh) | 超高效液相色谱串联质谱检测血浆中抗动脉粥样硬化药物的试剂盒 | |
CN114609265B (zh) | 一种液相色谱串联质谱技术检测血清中八种甲状腺激素类标志物的方法 | |
CN111830162A (zh) | 一种检测血清中核苷类抗病毒药物浓度的方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20200915 |