CN111249916A - 一种应用于纯化血红蛋白的滤膜的清洁液 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种应用于纯化血红蛋白的滤膜的清洁液，具体提供了清洁液，其由以下物质组成：0.8～1.0mol/L的氢氧化钠；600～800ppm的次氯酸钠；和水。该清洁液中，通过将氢氧化钠与次氯酸钠在特定浓度组合下联合使用，可有效去除脂类和血红素，较好地恢复滤膜的通量，同时，还可以彻底去除内毒素，既整体提高了滤膜的使用寿命、节约了生产成本，也保证了产品的生产质量。

Description

一种应用于纯化血红蛋白的滤膜的清洁液
技术领域
本发明涉及生物制药领域，具体涉及一种应用于纯化血红蛋白的滤膜的清洁液。
背景技术
超滤和微滤等作为一种压力驱动的膜分离技术，在生物制药方面得到了成功的应用。由于该项技术具有独特的优点，在常温下即能完成浓缩、纯化、澄清、除菌等单元操作，因此，在生物食品工业中的应用越来越广泛，被誉为生物工程的下游技术、生物食品工程的高新技术。滤膜是超滤装置的核心，污染后的滤膜的清洁是该项技术的研究热点，直接影响超滤或微滤技术的进一步推广应用。
在血红蛋白生产过程中，粗洗、粗纯、浓缩、分离等工艺都会用到滤膜，但由于血红蛋白上的血红素在超滤过程中易于脱落，被滤膜吸附，留存在膜的表面和膜孔，形成凝胶层，导致膜通量下降，超滤效果恶化，滤膜寿命缩短，清洁难度大，严重影响了超滤的工作效率和经济效益。
因此，能够有效清洁生产血红蛋白时使用的滤膜的清洁液急需研究开发。
发明内容
目前，为了能够有效清洁生产血红蛋白时使用的滤膜，科研人员尝试了多种酸类、碱类、表面活性剂等常用滤膜清洁试剂，然而，最终效果都不理想，残留的脂类、血红素和内毒素的去除以及通量恢复问题都没有得到有效解决。为此，发明人经过大量的实验研究，在实践中发现，通过将氢氧化钠与次氯酸钠在特定浓度组合下联合使用，可显著增强去除脂类、血红素的能力，较好地恢复滤膜的通量，同时，还彻底地去除了内毒素，既整体提高了滤膜的使用寿命、节约了生产成本，也保证了产品的生产质量。
为此，在本发明的第一方面，本发明提供了一种清洁液，其由以下物质组成：0.8～1.0mol/L的氢氧化钠；600～800ppm的次氯酸钠；和水。发明人发现，一方面，若只用氢氧化钠、只用次氯酸钠或者用其他清洁试剂如硝酸洗涤滤膜时，无法有效去除脂类、血红素和内毒素，同时水通量恢复效果也不理想；另一方面，若氢氧化钠或次氯酸钠的浓度过低或过高，脂类、血红素、内毒素的去除和水通量的恢复效果同样不理想。由此，所述清洁液中，所述氢氧化钠的浓度为0.8～1.0mol/L，且所述次氯酸钠的浓度为600～800ppm时，氢氧化钠与次氯酸钠通过协同作用，可有效去除脂类和血红素，较好地恢复滤膜的通量，同时，还可以彻底去除内毒素。
在一些实施例中，所述氢氧化钠的浓度为0.8mol/L，所述次氯酸钠的浓度为600ppm。
在一些实施例中，所述氢氧化钠的浓度为1.0mol/L，所述次氯酸钠的浓度为800ppm。
在本发明的第二方面，本发明提供了前述的清洁液用于清洁附着在滤膜表面的血红素、脂类和内毒素的用途。需要说明的是，所述滤膜表面指的是滤膜的外表面和滤膜的膜孔表面。
在一些实施例中，所述滤膜为微滤膜或超滤膜。
在本发明的第三方面，本发明提供了一种清洁附着在滤膜表面的血红素、脂类和内毒素的方法，其包括：
利用前述的清洁液清洁待处理滤膜表面。
在一些实施例中，所述清洁是在温度为40～60℃(如50℃)的条件下进行0.5～1.5h(如60min)。
在一些实施例中，所述滤膜为微滤膜或超滤膜。
在一些实施例中，所述方法进一步包括：利用注射用水洗涤所述清洁后的滤膜表面。
在一些实施例中，所述洗涤后滤膜表面残留液的pH为中性。
在本发明的第四方面，本发明提供了前述清洁液用于清洁滤膜的用途，所述滤膜是生产血红蛋白时使用的滤膜。
在一些实施例中，所述滤膜为微滤膜或超滤膜。
在本发明的第五方面，本发明提供了一种清洁滤膜的方法，其包括：
利用前述清洁液清洁待处理滤膜，所述待处理滤膜是生产血红蛋白时使用的滤膜。
在一些实施例中，所述清洁是在温度为40～60℃(如50℃)的条件下进行0.5～1.5h(如60min)。
在一些实施例中，所述滤膜为微滤膜或超滤膜。
在一些实施例中，所述方法进一步包括：利用注射用水洗涤所述清洁后的滤膜。
在一些实施例中，所述洗涤后滤膜表面残留液的pH为中性。
有益效果
1、由于滤膜上的脂类和血红素很难去除，发明人通过多种尝试后，发现氢氧化钠与次氯酸钠联合使用，在特定浓度组合下，可显著增强去除脂类和血红素的能力，较好地恢复滤膜的通量，同时，也彻底地去除了内毒素，既整体提高了滤膜的使用寿命、节约了生产成本，也保证了产品的生产质量。
2、本发明的清洁方法不需要复杂的设备投入和昂贵的试剂采购，方法简单，较易推广应用。
附图说明
图1是本发明实施例的膜包清洁的系统连接示意图；
图2是本发明实施例的膜包清洗的系统连接示意图。
附图标记：
1-30KD滤膜
2-滤出阀
3-回流阀
4-蠕动泵
5-给料端压力表
6-回流端
7-进料端
8-清洁缓冲液
9-滤出液
具体实施方式
下面详细描述本发明的实施例，下面通过参考附图描述的实施例是示例性的，旨在用于解释本发明，而不能理解为对本发明的限制。
需要说明的是，TOC测的是物质的总有机碳含量，脂类、血红素都是含碳化合物，因此可以用TOC值代表脂类和血红素的总含量。
为了解决当前存在的问题，本发明提供了一种用于清洁生产血红蛋白使用滤膜的缓冲液及方法，可快速有效地去除超滤血红蛋白后残留在膜上的污物，有效恢复膜的通量。
为此，本发明提供了一种用于清洁生产血红蛋白使用滤膜的缓冲液及方法，具体为，采用碱液和漂白剂复合缓冲液，按清洁程序(复合缓冲液清洁→注射水清洗→效果检测)除去超滤血红蛋白后残留在膜上的污物，以恢复膜的水通量和“洁净”状态。其中，所述碱液和漂白剂为氢氧化钠和次氯酸钠溶液；所述复合缓冲液为0.8～1.0N NaOH和600～800ppm NaOCl；所述膜的水通量指的是膜通透性恢复的程度指标；所述“洁净”状态指的是较低残留的内毒素以及血红素和脂类；本发明提供的生产血红蛋白使用滤膜的清洁方法，还包括对膜清洁后的清洗方法，其主要步骤为：进料口接入注射水，完全打开滤出阀，逐渐关闭回流阀，至回流速度为给料速度的10％，调整泵速，保持压力为30psi，清洗至滤出端为pH中性。
详细步骤如下：
1、滤膜的清洁：
滤膜的清洁过程为：清洁生产血红蛋白使用后的滤膜→注射水清洗→指标检测；
取血红蛋白生产使用后的面积为0.2m2、孔径为30KD的滤膜，对其处理过程为：
取血红蛋白使用后的滤膜，打开滤出阀、回流阀，适当调整回流阀，保持10psi压力，直至没有气泡出现，关闭滤出阀，提高回流速度为工艺流速的1.5～2倍；运行一分钟，赶走气泡；完全打开滤出阀，逐渐关闭回流阀，至回流速度为给料速度的10％，调整泵速，保持压力为30psi；用NaOH&NaOCl溶液进行滤膜清洁，结束后，进入注射水，进入清洗程序，打开回流阀，关闭滤出阀，调整泵速为工艺流速的1.5～2倍，运行2～3分钟，期间回流端、滤出液均走废液，完全打开滤出阀，逐渐关闭回流阀，至回流速度为给料速度的10％，调整泵速，保持压力为30psi，清洗至滤过端pH值至中性，取滤出液检测TOC值、内毒素和通量。不同的滤膜清洁方法会差异，请参考相关说明进行。
2、内毒素检测方法：
打开Charles River Endosafe nexgen-PTS分析仪后面右侧的蓝色开关按钮，启动分析仪，输入试验人员账号和密码；打开插口盖，从包装袋中小心取出一个检测卡，避免手指或物品触碰样品池，确保样品池面向上插入插孔中；根据提示，输入操作人的ID和检测卡的批号，点击“Next”，核对曲线编号点击“Next”；根据显示提示，填入相应信息，并点击“Next”，直至显示“请加入样品”；用移液器分别向卡片的4个样品槽加入25uL清洗后的滤出液；点击“Done-Start Test”，进行检测，记录结果，完成检测。
3、总有机碳(TOC)检测方法：
打开Sievers M9自动进样器电源开关，打开电脑电源，登录个人账户以完成开机；双击电脑桌面上的DataPro2软件图标，输入账户和密码，登录软件；进入Home-设置Set Up-新建方法New Method，设定参数，在弹出的对话框中输入方法名，即完成新方法的建立；点击任务框，新建一个任务，放入检测清洗后的滤出液，点击运行；打印报告，完成检测。
4、滤膜通量检测方法：
首先对系统循环运行纯化水，排除膜包和系统内气泡；滤出阀完全打开，回流阀完全关闭，调节泵速以达到5psi；测量此时滤出端的流速，标示为LMH(L/m2/hr)；重新调整蠕动泵速度，使TMP值达到10psi，再记录滤出端的流速；绘制流速-TMP的点线图表，获得回归方程。确定10psi下的流速；参考温度校正因子，计算水通量。水通量＝LMH/TMP*TCF20℃；最后确认水通量：调整TMP为10psi，测量LMH，看检测结果是否与计算结果基本相符。不同滤膜的水通量测定方法会有差异，请参考相关说明进行。
下面将结合具体的实施例对本发明进行进一步的解释说明。
实施例1
取血红蛋白生产使用后的面积为0.2m2、孔径为30KD的滤膜1(清洁前，内毒素检测结果为0.11Eu/mL，TOC检测结果为8110ppb，水通量检测结果为520mL/min)，依照附图1，打开滤出阀2、回流阀3，适当调整回流阀3，保持给料端压力表5的压力为10psi，直至没有气泡出现，关闭滤出阀2，提高回流端6的回流速度(CFF)至1500mL/min；运行一分钟，赶走气泡；完全打开滤出阀2，逐渐关闭回流阀3，至回流端6的回流速度为进料端7给料速度的10％，调整蠕动泵4的泵速，保持给料端压力表5的压力为30psi；用清洁缓冲液8(0.8N NaOH&600ppm NaOCl溶液)，在50℃下，清洁60min，结束后，依照附图2，打开回流阀3，关闭滤出阀2，调整蠕动泵4使泵流速至1500mL/min，运行2～3分钟，期间回流端6、滤出液9均走废液，完全打开滤出阀2，逐渐关闭回流阀3，至回流端6回流速度为进料端7给料速度的10％，调整蠕动泵4的泵速，保持给料端压力表5的压力为30psi，清洁缓冲液8更换为注射水清洗至滤出液9pH值至中性，取滤出液9检测TOC值和内毒素值，然后进行通量测试。不同的滤膜清洁方法会有差异，请参考相关说明进行。
用本发明提供的检测方法检测上述清洗完成后滤出液的内毒素为<0.005Eu/mL、总有机碳(TOC)为68ppb，检测的水通量为1540mL/min，说明此清洁方案可有效去除膜上的污染物，性能得到良好的恢复，达到了可再次使用的要求。
实施例2
取血红蛋白生产使用后的面积为0.2m2、孔径为30KD的滤膜1(清洁前，内毒素检测结果为0.11Eu/mL，TOC检测结果为8230ppb，水通量检测结果为530mL/min)，依照附图1，打开滤出阀2、回流阀3，适当调整回流阀3，保持给料端压力表5的压力为10psi，直至没有气泡出现，关闭滤出阀2，提高回流端6的回流速度(CFF)至1500mL/min；运行一分钟，赶走气泡；完全打开滤出阀2，逐渐关闭回流阀3，至回流端6的回流速度为进料端7给料速度的10％，调整蠕动泵4的泵速，保持给料端压力表5的压力为30psi；用清洁缓冲液8(1.0N NaOH&800ppm NaOCl溶液)，在50℃下，清洁60min，结束后，依照附图2，打开回流阀3，关闭滤出阀2，调整蠕动泵4使泵流速至1500mL/min，运行2～3分钟，期间回流端6、滤出液9均走废液，完全打开滤出阀2，逐渐关闭回流阀3，至回流端6的回流速度为进料端7给料速度的10％，调整蠕动泵4的泵速，保持给料端压力表5的压力为30psi，清洁缓冲液8更换为注射水清洗至滤出液9pH值至中性，取滤出液9检测TOC值和内毒素值，然后进行通量测试。不同的滤膜清洁方法会有差异，请参考相关说明进行。
用本发明提供的检测方法检测上述清洗完成后滤出液的内毒素为<0.005Eu/mL、总有机碳(TOC)为72ppb，检测的水通量为1480mL/min，说明此清洁方案可有效去除膜上的污染物，性能得到良好的恢复，达到了可再次使用的要求。
试验例
本试验例选择面积为0.2m2、孔径为30KD的滤膜，在血红蛋白生产使用后，进行清洁液配方和清洁液浓度的筛选，过程如下：
1、清洁液配方的选择
在50℃，60min条件下，对三个生产批次的滤膜(清洁前，内毒素检测结果为0.12Eu/mL，TOC检测结果为8430ppb，水通量检测结果为540mL/min)用下述清洁液进行清洁，然后用注射用水冲洗至滤出液pH中性，取滤出液检测TOC和内毒素值并取平均值，然后进行通量测试并取平均值，具体如下表1所示。
表1：清洁液配方的筛选结果
Figure BDA0002380104470000061
Figure BDA0002380104470000071
由上表1可知，对比试验3，只用次氯酸钠溶液清洁，内毒素去除不彻底，不符合要求，TOC去除量也不理想；对比试验2，只用氢氧化钠清洁，TOC去除不彻底，不符合要求；对比试验4，用硝酸清洁，内毒素、TOC去除量和水通量都不理想；对比实验5，用0.5N氢氧化钠&400ppm次氯酸钠清洁，内毒素去除不彻底，不符合要求，TOC去除量也不理想。而本发明方案的内毒素去除、TOC残留、水通量恢复都显著更优，所以优选本发明方案。
2、清洁液浓度的选择
在50℃，60min条件下，对三个生产批次的滤膜(清洁前，内毒素检测结果为0.13Eu/mL，TOC检测结果为8540ppb，水通量检测结果为540mL/min)用下述清洁液进行清洁，然后用注射用水冲洗至滤出液pH中性，取滤出液检测TOC和内毒素值并取平均值，然后进行通量测试并取平均值，具体如下表2所示。
表2：清洁液浓度的筛选结果
清洁液 浓度1 浓度2 浓度3 浓度4
氢氧化钠浓度 0.6N 0.5N 0.8N 1.0N
次氯酸钠浓度 500ppm 400ppm 600ppm 800ppm
内毒素结果 0.007Eu/mL 0.013Eu/mL <0.005Eu/mL <0.005Eu/mL
TOC结果 152ppb 316ppb 68ppb 72ppb
水通量结果 1370mL/min 1270mL/min 1540mL/min 1480mL/min
由上表2可知，用0.5N氢氧化钠&400ppm次氯酸钠(浓度2)或0.6N氢氧化钠&500ppm次氯酸钠(浓度1)清洁，内毒素去除不彻底，不符合要求，TOC去除量也不理想。由此，通过上述不同浓度的比较，优选浓度3或4，综合效果和成本，更优选浓度3。
以上所述的具体实施例，对本发明的目的、技术方案和有益效果进行了进一步详细说明，所应理解的是，以上所述仅为本发明的具体实施例而已，并不用于限定本发明的保护范围，凡在本发明的精神和原则之内，所做的任何修改、等同替换、改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (10)

1.一种清洁液，其由以下物质组成：
0.8～1.0mol/L的氢氧化钠；
600～800ppm的次氯酸钠；和
水。
2.权利要求1所述的清洁液，其中，所述氢氧化钠的浓度为0.8mol/L，所述次氯酸钠的浓度为600ppm；
或者，所述氢氧化钠的浓度为1.0mol/L，所述次氯酸钠的浓度为800ppm。
3.权利要求1～2任一项所述的清洁液用于清洁附着在滤膜表面的脂类、血红素和内毒素的用途；
优选地，所述滤膜为微滤膜或超滤膜。
4.一种清洁附着在滤膜表面的脂类、血红素和内毒素的方法，其包括：
利用权利要求1～2任一项所述的清洁液清洁待处理滤膜表面。
5.权利要求4所述的方法，其中，所述清洁是在温度为40～60℃的条件下进行0.5～1.5h；
优选地，所述滤膜为微滤膜或超滤膜。
6.权利要求4所述的方法，其进一步包括：利用注射用水洗涤所述清洁后的滤膜表面；
优选地，所述洗涤后滤膜表面残留液的pH为中性。
7.权利要求1～2任一项所述的清洁液用于清洁滤膜的用途，所述滤膜是生产血红蛋白时使用的滤膜；
优选地，所述滤膜为微滤膜或超滤膜。
8.一种清洁滤膜的方法，其包括：
利用权利要求1～2任一项所述的清洁液清洁待处理滤膜，所述待处理滤膜是生产血红蛋白时使用的滤膜。
9.权利要求8所述的方法，其中，所述清洁是在温度为40～60℃的条件下进行0.5～1.5h；
任选地，所述滤膜为微滤膜或超滤膜。
10.权利要求8所述的方法，其进一步包括：利用注射用水洗涤所述清洁后的滤膜；
优选地，所述洗涤后滤膜表面残留液的pH为中性。
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Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104857857A (zh) * 2015-04-23 2015-08-26 北京科兴生物制品有限公司 一种清洗超滤膜包的方法
CN105001299A (zh) * 2015-07-14 2015-10-28 天津瑞普生物技术股份有限公司 一种去除蛋白质中内毒素的方法
CN107398185A (zh) * 2017-07-19 2017-11-28 湖南军信环保股份有限公司 一种超滤膜的化学清洗方法
US20180169585A1 (en) * 2015-05-20 2018-06-21 Kurita Water Industries Ltd. Agent, liquid, and method for cleaning reverse osmosis membrane
CN109589796A (zh) * 2019-02-13 2019-04-09 中国科学院过程工程研究所 一种膜法制糖工艺中膜清洗的方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104857857A (zh) * 2015-04-23 2015-08-26 北京科兴生物制品有限公司 一种清洗超滤膜包的方法
US20180169585A1 (en) * 2015-05-20 2018-06-21 Kurita Water Industries Ltd. Agent, liquid, and method for cleaning reverse osmosis membrane
CN105001299A (zh) * 2015-07-14 2015-10-28 天津瑞普生物技术股份有限公司 一种去除蛋白质中内毒素的方法
CN107398185A (zh) * 2017-07-19 2017-11-28 湖南军信环保股份有限公司 一种超滤膜的化学清洗方法
CN109589796A (zh) * 2019-02-13 2019-04-09 中国科学院过程工程研究所 一种膜法制糖工艺中膜清洗的方法

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Applicant after: REDPHARM (BEIJING) BIOMEDICAL RESEARCH INSTITUTE Co.,Ltd.

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