CN111202003B - 一种连香组培快繁用培养基及方法 - Google Patents
一种连香组培快繁用培养基及方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种连香组培快繁用培养基及方法,该培养基包括诱导培养基、增值培养基、生根培养基,所述诱导培养基、增值培养基、生根培养基均包括添加1.4~1.6mg/LKT+0.3~0.5mg/LNAA+0.01~0.03mg/L6BA的基本培养基。该包括将外植体接种于诱导培养基上进行丛生芽诱导培养;转移至增值培养基中进行芽继代培养至形成更多的丛生芽;转移至生根培养基上进行生根诱导得到带根小苗;将所得带根小苗移栽至栽培基质中培养;本发明的愈伤组织诱导率达到100%,增殖系数最多可达7.1,增殖效果好,连香组培苗生根率高达90%以上,将连香的萌发时间由常规育种的2‑3年缩短为15‑17周。
Description
技术领域
本发明涉及组培技术领域,特别涉及一种连香组培快繁用培养基及方法。
背景技术
连香为我国二级保护树种,具有观赏、药用、材用等价值,但存在自然繁殖系数低的问题,导致分布分布呈现片段化。为了克服远缘杂交不亲和性,获得远缘杂交品种,打破种子休眠,缩短其育种周期,缩短连香的应用年限,节省劳力和财力,组织培养法是快速获得大量繁殖苗的最佳方法。但由于目前组织培养法的组培过程中存在增值系数比较低的缺点,限制了其大规模的推广和繁殖。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术之缺陷,提供了一种连香组培快繁用培养基及方法,愈伤组织诱导率达到100%,增殖系数最多可达7.1,增殖效果好,连香组培苗生根率高达90%以上,将连香的萌发时间由常规育种的2-3年缩短为15-17周。
本发明是这样实现的:
本发明的目的之一在于提供一种连香组培快繁用培养基,该培养基包括诱导培养基、增值培养基、生根培养基,所述诱导培养基、增值培养基、生根培养基均包括添加1.4~1.6mg/LKT+0.3~0.5mg/LNAA+0.01~0.03mg/L6BA的基本培养基。
其中,所述基本培养基为1/2WPM或者1/2MS培养基。
本发明的目的之二在于提供一种连香组培快繁方法,所述方法包括:
步骤1、采集连香枝条,清洗消毒后,截成带芽茎段作为外植体;
步骤2、将所得外植体接种于诱导培养基上进行丛生芽诱导培养;
步骤3、转移至增值培养基中进行芽继代培养至形成更多的丛生芽;
步骤4、转移至生根培养基上进行生根诱导得到带根小苗;
步骤5、将所得带根小苗移栽至栽培基质中培养;
所述诱导培养基、增值培养基、生根培养基采用所述的培养基。
其中,所述步骤1中清洗消毒的具体步骤为:选择连香枝条用洗衣粉清洗10~30min,再用流水冲洗10~30min,转移至超净工作台上用无菌水润洗;用75%酒精浸泡5~20min,再用8%次氯酸钠浸泡15~30min,最后用无菌水冲洗5~6次,待用。
所述步骤1中的带芽茎段的长度为0.5~1.5cm;所述步骤2中诱导培养的时间为25~35天;所述步骤3中继代培养的时间为40~50天;所述步骤4中生根诱导培养的时间为20~30天。
本发明具有以下有益效果:
本发明提供的一种连香组培快繁方法,以连香幼苗茎段为外植体,通过植物生长调节剂对幼苗茎段的增殖培养和对不定根的诱导研究,成功获得无菌苗微繁成苗快繁体系,将连香的萌发时间由常规育种的2-3年缩短为15-17周,且增殖系数最多可达7.1,增殖效果较好。
附图说明
图1为实施例1、对比例1-5的连香茎段诱导培养30天后的图片;
图2为实施例1继代培养45天后的增殖效果图。
具体实施方式
实施例1
本实施例提供的一种连香组培快繁方法,包括:
(1)选择连香枝条用洗衣粉清洗20min,再用流水冲洗10min,去除表面污垢。转移至超净工作台上,用无菌水润洗1次。再用75%酒精浸泡5min,再用8%次氯酸钠浸泡15min,最后用无菌水冲洗5-6次,待用。
(2)将枝条截成1cm左右的带芽茎段,接种于诱导培养基:1.5mg/LKT+0.4mg/LNAA+0.03mg/L6BA+1/2WPM上进行8周的诱导培养;结果如图1表明,缺少生长素2,4-D,在NAA和其他分裂素(6BA和KT)作用下,茎段腋芽发育,切口段有愈伤组织形成。
(3)转移至增值培养基:1.5mg/LKT+0.4mg/LNAA+0.01mg/L6BA+1/2WPM中进行芽继代培养;
(4)在生根培养基:1.5mg/LKT+0.4mg/LNAA+0.01mg/L6BA+1/2WPM上进行8周的再生根的诱导;
(5)移栽至栽培基质中置于温室苗床上喷雾系统下生长。
实施例2
本实施例提供的一种连香组培快繁方法,包括:
(1)选择连香枝条用洗衣粉清洗20min,再用流水冲洗10min,去除表面污垢。转移至超净工作台上,用无菌水润洗1次。再用75%酒精浸泡5min,再用8%次氯酸钠浸泡15min,最后用无菌水冲洗5-6次,待用。
(2)将枝条截成1cm左右的带芽茎段,接种于诱导培养基:1.4mg/LKT+0.3mg/LNAA+0.01mg/L6BA+1/2WPM上进行8周的诱导培养;
(3)转移至增值培养基:1.4mg/LKT+0.3mg/LNAA+0.02mg/L6BA+1/2WPM中进行芽继代培养;
(4)在生根培养基:1.4mg/LKT+0.3mg/LNAA+0.01mg/L6BA+1/2WPM上进行8周的再生根的诱导;
(5)移栽至栽培基质中置于温室苗床上喷雾系统下生长。
实施例3
本实施例提供的一种连香组培快繁方法,包括:
(1)选择连香枝条用洗衣粉清洗20min,再用流水冲洗10min,去除表面污垢。转移至超净工作台上,用无菌水润洗1次。再用75%酒精浸泡5min,再用8%次氯酸钠浸泡15min,最后用无菌水冲洗5-6次,待用。
(2)将枝条截成1cm左右的带芽茎段,接种于诱导培养基:1.6mg/LKT+0.5mg/LNAA+0.02mg/L6BA+1/2WPM+蔗糖10g/L+琼脂8g/L上进行8周的诱导培养;
(3)转移至增值培养基:
1.6mg/LKT+0.5mg/LNAA+0.03mg/L6BA+1/2WPM+蔗糖10g/L+琼脂8g/L中进行芽继代培养;
(4)在生根培养基:1.6mg/LKT+0.5mg/LNAA+0.03mg/L6BA+1/2WPM+蔗糖10g/L+琼脂8g/L上进行8周的再生根的诱导;
(5)移栽至栽培基质中置于温室苗床上喷雾系统下生长。
实施例4
该实施例中将步骤3中的增值培养基替换为1/2WPM+KT(1.5mg/L)+NAA(0.4mg/L)+6BA(0.01mg/L)+蔗糖10g/L+琼脂8g/L;其余步骤均同实施例1。
实施例5
该实施例中将步骤3中的增值培养基替换为1/2WPM+KT(1.5mg/L)+NAA(0.4mg/L)+6BA(0.02mg/L)+蔗糖10g/L+琼脂8g/L;其余步骤均同实施例1。
实施例6
该实施例中将步骤3中的生根培养基替换为1/2WPM+KT(1.5mg/L)+NAA(0.4mg/L)+6BA(0.02mg/L)+蔗糖10g/L+琼脂8g/L;其余步骤均同实施例1。
实施例7
该实施例中将步骤3中的生根培养基替换为1/2WPM+KT(1.5mg/L)+NAA(0.4mg/L)+6BA(0.03mg/L)+蔗糖10g/L+琼脂8g/L;其余步骤均同实施例1。
对比例1
该对比例除步骤2中诱导培养基更改外,其余步骤均同实施例1,该对比例的诱导培养基为:0.5mg/L2,4-D+0.2mg/LNAA+0.15mg/L6BA+1/2WPM+蔗糖10g/L+琼脂8g/L。
对比例2
该对比例除步骤2中诱导培养基更改为如下的培养基外,其余步骤均同实施例1。0.5mg/LKT+1.5mg/L2,4-D+0.5mg/LNAA+0.1mg/L6BA+1/2WPM+蔗糖10g/L+琼脂8g/L。
对比例3
该对比例除步骤2中诱导培养基更改为如下的培养基外,其余步骤均同实施例1。1mg/LKT+2.5mg/L2,4-D+0.1mg/LNAA+0.05mg/L6BA+1/2WPM+蔗糖10g/L+琼脂8g/L。
对比例4
该对比例除步骤2中诱导培养基更改为如下的培养基外,其余步骤均同实施例1。2mg/LKT+1mg/L2,4-D+0.01mg/L6-BA+1/2WPM+蔗糖10g/L+琼脂8g/L。
对比例5
该对比例除步骤2中诱导培养基更改为如下的培养基外,其余步骤均同实施例1。2.5mg/LKT+2mg/L2,4-D+0.3mg/LNAA+1/2WPM+蔗糖10g/L+琼脂8g/L。
对比例6
将步骤3中的增值培养基替换为1/2WPM+KT(1.5mg/L)+NAA(0.4mg/L)+6BA(0.05mg/L)+蔗糖10g/L+琼脂8g/L;其余步骤均同实施例1。
对比例7
该对比例中将步骤3中的生根培养基替换为1/2WPM+KT(1.5mg/L)+NAA(0.4mg/L)+6BA(0.05mg/L)+蔗糖10g/L+琼脂8g/L;其余步骤均同实施例1。
实验例1
统计实施例1-3、以及对比例1-5中步骤2诱导培养30天后统计愈伤组织诱导率,结果如表1所示。
表1
由表1可知,与对比例1-5相比,本发明的实施例1-3的诱导率有了极大的提高。
由图1可知,实施例1的茎段腋芽发育,切口段有愈伤组织形成,诱导效果最好。对比例1的茎段有少部分膨大,愈伤增殖效果介于对比例1和对比例2之间。对比例2形成的愈伤组织较少,上切口端也有愈伤组织形成。对比例3的茎段上下切口端形成愈伤组织的块茎较多。对比例4愈伤组织增殖较缓慢。对比例5愈伤组织诱导效果较好。
实验例2
统计实施例1、实施例4-5、以及对比例1-6中步骤3开始培养的45天后统计增殖效果,结果如表2-3所示。
表2
表3
处理 | 增殖系数 | 长势 | 褐化 |
对比例6 | 1.8 | 弱 | 强 |
实施例4 | 3.5 | 强 | 弱 |
实施例5 | 3.8 | 强 | 弱 |
实施例1 | 7.1 | 强 | 弱 |
由表2-表3可知,与对比例1-6相比,本发明实施例的增值培养基(1.4~1.6mg/LKT+0.3~0.5mg/LNAA+0.01~0.03mg/L6BA)增值效果得到明显的提高,其中实施例1的效果比实施例5(1.5mg/LKT+0.4mg/LNAA+0.01mg/L6BA)比实施例5(1.5mg/LKT+0.4mg/LNAA+0.03mg/L6BA)的效果要好。图2为实施例1。
试验例3
统计实施例1、实施例6-7、以及对比例7中步骤3开始培养的45天后统计生根效果,结果如表4所示。
表4
由表4可知,在实施例1、实施例6-7处理下的生根效果均较好,其中在实施例1处理下的生根效果最佳。
所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包括在本发明的保护范围之内。
Claims (9)
1.一种连香组培快繁用培养基,其特征在于,该培养基包括诱导培养基、增值培养基、生根培养基,所述诱导培养基、增值培养基、生根培养基均包括添加1.4~1.6mg/LKT+0.3~0.5mg/LNAA+0.01~0.03mg/L6BA的基本培养基。
2.如权利要求1所述的培养基,其特征在于,所述诱导培养基为添加1.5mg/LKT+0.4mg/LNAA+0.03mg/L6BA的基本培养基。
3.如权利要求1所述的培养基,其特征在于,所述增值培养基为添加1.5mg/LKT+0.4mg/LNAA+0.01mg/L6BA的基本培养基。
4.如权利要求1所述的培养基,其特征在于,所述生根培养基为添加1.5mg/LKT+0.4mg/LNAA+0.01mg/L6BA的基本培养基。
5.如权利要求1-4所述的培养基,其特征在于,所述基本培养基为1/2WPM或者1/2MS培养基。
6.一种连香组培快繁方法,其特征在于,所述方法包括:
步骤1、采集连香枝条,清洗消毒后,截成带芽茎段作为外植体;
步骤2、将所得外植体接种于诱导培养基上进行丛生芽诱导培养;
步骤3、转移至增值培养基中进行芽继代培养至形成更多的丛生芽;
步骤4、转移至生根培养基上进行生根诱导得到带根小苗;
步骤5、将所得带根小苗移栽至栽培基质中培养;
所述诱导培养基、增值培养基、生根培养基采用权利要求1所述的培养基。
7.如权利要求6所述的连香组培快繁方法,其特征在于,所述步骤1中清洗消毒的具体步骤为:选择连香枝条用洗衣粉清洗10~30min,再用流水冲洗10~30min,转移至超净工作台上用无菌水润洗;用75%酒精浸泡5~20min,再用8%次氯酸钠浸泡15~30min,最后用无菌水冲洗5~6次,待用。
8.如权利要求6所述的连香组培快繁方法,其特征在于,所述步骤1中的带芽茎段的长度为0.5~1.5cm。
9.如权利要求6所述的连香组培快繁方法,其特征在于,所述步骤2中诱导培养的时间为25~35天;所述步骤3中继代培养的时间为40~50天;所述步骤4中生根诱导培养的时间为20~30天。
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