CN111175518A - 一种用于ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒及其制备方法,试剂盒,包括:融合蛋白‑抗原‑抗体复合物,缓冲液,荧光素酶底物,标准品;抗体包括:GAD65抗体,IA‑2a抗体,IA‑2b抗体,IAA抗体,GADA抗体和ICA‑512抗体;制备方法通过将荧光素酶基因与抗原基因融合成融合载体,再利用细胞转化得到荧光素酶—抗原融合蛋白;再通过裂解基因重组细胞,纯化,捕捉获得融合蛋白‑抗原‑抗体复合物;再加入荧光素酶底物,检测荧光强度;本发明通过联合检测提高Ⅰ型糖尿病的检测的特异性和灵敏度,减少了检查次数,减少了漏判率。
Description
技术领域
本发明涉及自身免疫检测领域,特别是一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒及其制备方法。
背景技术
I型糖尿病(IDDM)是一种自体免疫疾病,机体受到感染(尤其是病毒感染)、毒物等因素诱发而产生异常自身体液和细胞免疫应答,导致胰岛β细胞损伤,胰岛素分泌减少,一旦发病需要依赖外源性胰岛素补充以维持生命,所以I型糖尿病又称胰岛素依赖性糖尿病。对I型糖尿病的诊断主要通过检测其自身免疫性抗体,抗体主要包括以下几种:谷氨酸脱羧酶抗体(GADA)、胰岛细胞抗体(ICA)、酪氨酸磷酸酶抗体(IA-2a、IA-2b)及胰岛素自身免疫性抗体(IAA)。
现有的Ⅰ型糖尿病自身免疫检测方法如下所述:
ICA(抗胰岛细胞抗体):①间接免疫荧光法;②组织化学染色法;③免疫沉淀化学法;④ELISA法。
GAD(谷氨酸脱羧酶抗体):①免疫沉淀酶活性法;②放射免疫法;③ELISA法;④间接免疫荧光法;⑤化学发光法。
ICA 512/IA2ab(抗酪氨酸磷酸酶抗体):①ELISA法;②放射配体分析法(RLA);③35S标记的放射免疫沉淀法。
IAA(抗胰岛素自身抗体):①放免法;②ELISA法。
但是现有的检测方法具有如下问题:ELISA法:对于酶的活性和灵敏度要求很高,其特异性取决于抗原制备的优劣;且其结合物制备尚未标准化,这使得实验结果的可重复性不高,需要进行多次检测。另外,若抗原及酶结合物浓度低,最后吸光度值太小,易出现假阴性。多数国家的临床检测已放弃ELISA法,使用放射免疫法(RIA法)。放射免疫法:具有许多其它分析方法无可比拟的优点。它既具有免疫反应的高特异性,又具有放射性测量的高灵敏度,并且样品用量少,常可测至皮摩尔量。但本方法有时会出现交叉反应、假阳性反应、组织样品处理不够迅速,不能灭活降解酶和盐,有时会影响结果等。
市场需要一种对Ⅰ型糖尿病的诊断有高特异性和高敏感性的检测试剂盒,本发明解决这样的问题。
发明内容
为解决现有技术的不足,本发明的目的在于提供一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒及其制备方法,通过联合检测提高Ⅰ型糖尿病的检测的特异性和灵敏度,减少了检查次数,减少了漏判率。
为了实现上述目标,本发明采用如下的技术方案:
一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒,包括:融合蛋白-抗原-抗体复合物,缓冲液,荧光素酶底物,标准品;抗体包括:GAD65抗体,IA-2a抗体,IA-2b抗体,IAA抗体,GADA抗体和ICA-512抗体。
前述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒,融合蛋白-抗原-抗体复合物通过将荧光素酶基因与抗原基因融合成融合载体,然后利用细胞转化技术,将融合载体导入哺乳细胞系统中,进行荧光素酶—抗原融合蛋白的表达;裂解基因重组细胞,获得荧光素酶-抗原融合蛋白;然后利用免疫沉淀反应,将荧光素酶-抗原融合蛋白稀释液与样本血清混合进行特异性结合,获得融合蛋白-抗原-抗体复合物;多抗原基因的目的序列包括:GAD-65抗原基因序列,IA-2a抗原基因序列,IA-2b抗原基因序列,IAA抗原基因序列,GADA抗原基因序列,ICA-512抗原基因序列。
前述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒,缓冲液包括:磷酸盐吐温缓冲液,磷酸盐缓冲液,荧光素酶底物检测缓冲液。
一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,包括如下步骤:
步骤一,构建荧光素酶基因与抗原基因的融合载体,
选取荧光素酶基因和多抗原基因的目的序列,进行PCR扩增,在kpnl位点-GGTACC引入限制性内切酶,获得目的片段,做凝胶电泳进行鉴定;所述多抗原基因的目的序列包括:GAD-65抗原基因序列,IA-2a抗原基因序列,IA-2b抗原基因序列,IAA抗原基因序列,GADA抗原基因序列,ICA-512抗原基因序列;
将获得的目的片段与载体质粒分别进行kpnl和xbal双酶切,并使用T4连接酶将目的基因与载体基因连接得到重组质粒;
步骤二,质粒转化与扩繁提取,
将重组质粒转化到感受态大肠杆菌中,进行大肠杆菌菌种扩繁,再使用质粒大提试剂盒提取重组质粒;
步骤三,获取融合蛋白,
通过细胞转化将融合载体导入哺乳细胞系统中,进行荧光素酶—抗原融合蛋白的表达,裂解基因重组细胞,收集细胞,获得荧光素酶-抗原融合蛋白;
步骤四,纯化重组融合蛋白,
利用免疫沉淀反应,将荧光素酶-抗原融合蛋白稀释液与样本血清混合进行特异性结合,获得融合蛋白-抗原-抗体复合物;
步骤五,使用蛋白A/G琼脂糖酶标板捕捉融合蛋白-抗原-抗体复合物,
步骤六,抗原抗体免疫反应,
反应体系包括:融合蛋白-抗原-抗体复合物,PBS缓冲液,PBST缓冲液,荧光素酶底物,标准品,检测样品血清。
前述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,载体质粒为PA0815载体质粒。
前述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,荧光素酶基因为Ranilla荧光素酶基因。
前述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,感受态大肠杆菌的菌种为基因工程转化的含GAD65的重组大肠杆菌。
前述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,通过细胞转化将融合载体导入哺乳细胞系统中的步骤包括:
1)将T293细胞经过扩增培养40-60h,和细胞传代培养40-60h;
2)使用重组质粒进行磷酸钙转染,继续培养约48h后,使用PBS缓冲液收集细胞。
本发明的有益之处在于:
GAD65抗体、IA-2a抗体、IA-2b抗体、IAA、GADA抗体和ICA-512抗体这六种抗体的联合检测能够提高Ⅰ型糖尿病的检测的特异性(可达99.6%)和敏感性(可达98%),对极早预报Ⅰ型糖尿病具有重要的意义;
本发明采用基因重组荧光素酶—多抗原融合蛋白抗体检测技术,减少了检查次数,提高了灵敏度,大大减少了漏判率。
具体实施方式
以下结合具体实施例对本发明作具体的介绍。
一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒,包括:融合蛋白-抗原-抗体复合物,缓冲液,荧光素酶底物,标准品;抗体包括:GAD65抗体,IA-2a抗体,IA-2b抗体,IAA抗体,GADA抗体和ICA-512抗体。
融合蛋白-抗原-抗体复合物通过将荧光素酶基因与抗原基因融合成融合载体,然后利用细胞转化技术,将融合载体导入哺乳细胞系统中,进行荧光素酶—抗原融合蛋白的表达;裂解基因重组细胞,获得荧光素酶-抗原融合蛋白;然后利用免疫沉淀反应,将荧光素酶-抗原融合蛋白稀释液与样本血清混合进行特异性结合,获得融合蛋白-抗原-抗体复合物;多抗原基因的目的序列包括:GAD-65抗原基因序列,IA-2a抗原基因序列,IA-2b抗原基因序列,IAA抗原基因序列,GADA抗原基因序列,ICA-512抗原基因序列。
GAD-65抗原基因序列是:
GCCAAACAGAAAGGGTTTGTTCCTTTCCTCGTGAGTGCCACAGCTGGAACCACCGTGTACGGAGCATTTGACCCCCTCT;
IA-2a抗原基因序列:
CCGAGAAGGATATGAGATGGTGTTTGATGGGAAGCCTCAG;
IA-2b抗原基因序列:
TATTTTGTAACATATAGATTTTTATTTTATATAGGTT;
IAA抗原基因序列:
ATGCTAGTTCTTGAGGCATCTTCCAAATAGTATTCTTTTATTAGGTCATTTGAATTAATTAGAGAAAGTAAAAATAAAACCTTATCAGCCTGA;
GADA抗原基因序列:
GAGAAGGCCCTGCCCTTCAACGGGTAGAAATGCCCTACAATATAACATAGAGAAATGCCCTATAATATAACCACAGGATC;
ICA-512抗原基因序列:
GATATGAACATGGCTTTGGGCCCTTTCTGTCTAGAAAAACAAATGGGTTCACTATGA;
(一)试剂盒规格
(二)试剂盒使用方法
1.试剂配制
1.1取融合蛋白冻干粉,加入1.5mL无菌水,将冻干瓶内的蛋白充分溶解。
1.2荧光素酶底物工作液:按照实验所需试剂的量,将海肾荧光素酶底物(100×)和海肾荧光素酶底物缓冲液以1:100的比例稀释,配制成海肾荧光素酶检测工作液。
2.操作步骤
2.1融合蛋白准备:用2ml ddH2O复溶融合蛋白冻干粉,吸打混匀并转移至2mlEP管中,12000rpm离心1min,转移上清至另一新的离心管中,4℃保存备用。
2.2试剂用量及孵育:在酶标板中,分别加入检测样品与阴阳性对照品,加入孵育缓冲液(缓冲液1),采用一步法进行孵育。
2.3孵育:在微孔中加入10ul样品,20ul融合蛋白,70ul孵育缓冲液的混合液100ul/孔,置全自动荧光测定仪中30℃,300rpm振荡孵育60min。
2.4洗涤:孵育结束后弃上清,每孔加入200ul PBS,弃上清,扣干,再重复四次,共五次。
2.5检测:加入70ulPBS,再加入现配的30ul 1×底物,立即检测。
二、生产制备试剂盒;
包括如下步骤:
步骤一,构建荧光素酶基因与抗原基因的融合载体,
选取荧光素酶基因和多抗原基因的目的序列,进行PCR扩增,在kpnl位点-GGTACC引入限制性内切酶,获得目的片段,做凝胶电泳进行鉴定;多抗原基因的目的序列包括:GAD-65抗原基因序列,IA-2a抗原基因序列,IA-2b抗原基因序列,IAA抗原基因序列,GADA抗原基因序列,ICA-512抗原基因序列;作为一种优选,荧光素酶基因为Ranilla荧光素酶基因;
将获得的目的片段与载体质粒分别进行kpnl和xbal双酶切,并使用T4连接酶将目的基因与载体基因连接得到重组质粒;作为一种优选,载体质粒为PA0815载体质粒。
步骤二,质粒转化与扩繁提取,
将重组质粒转化到感受态大肠杆菌中,进行大肠杆菌菌种扩繁,再使用质粒大提试剂盒提取重组质粒;作为一种优选,感受态大肠杆菌的菌种为基因工程转化的含GAD65的重组大肠杆菌。
质粒提取实验:
使用质粒大提试剂盒(天根DP116)提取质粒的操作。
(一)试剂盒储存条件
1.试剂盒应置于室温(15-25℃)干燥条件保存。
2.第一次使用前将RNase A加入溶液P1中,混匀后置于4℃冰箱保存。
(二)推荐菌液使用量
1.高拷贝质粒推荐使用量为100ml,得率一般在500-1500μg左右。
2.低拷贝质粒推荐使用量为200ml,得率一般在200-400μg左右。
(三)操作步骤
1.取200mlLB液体培养基中加入200ul卡那霉素,摇匀后加入20ul基因工程转化的含GAD65的重组大肠杆菌,摇床中200rpm,37℃过夜培养。
2.取100ml(低拷贝推荐用200ml)过夜培养的菌液,室温10000rpm(约11500×g)离心3min收集细菌。菌液较多时,可多次离心并将菌体沉淀收集到一个离心管中。
3.用移液枪尽量吸除上清,为确保上清液全部吸取,倒置在干净的吸水纸上。
4.向菌体沉淀的离心管中加入10ml溶液P1(确认已加入RNase A),用移液枪反复吹打彻底悬浮细菌细胞沉淀。
5.向离心管中加入10ml溶液P2,立即温和地上下翻转6-8次,使菌体充分裂解,室温放置5min。此时菌液应变得清亮粘稠,如果未变得清亮,可能由于菌体过多,裂解不彻底,应减少菌体量。
6.向离心管中加入10ml溶液P4,立即温和地上下翻转6-8次(应立即混匀,避免产生局部沉淀),充分混匀,至溶液出现白色分散絮状沉淀。然后室温放置10min左右后,10000rpm离心10min,使白色沉淀离至管底(可适当增加离心时间),将全部溶液小心倒入过滤器CS1中(避免倒入大量沉淀),慢慢推动推柄过滤,滤液收集在干净的50ml管中。
7.向滤液中加入0.35倍滤液体积的异丙醇和1/2倍异丙醇体积的5M NaCl,上下颠倒充分混匀。(此处无沉淀为正常现象)
8.然后4℃10000rpm离心30min,轻轻倒掉上清液,将其倒置在吸水纸上。
9.向管中加入6ml 70%乙醇充分漂洗沉淀,4℃10000rpm离心10min,轻轻倒掉上清液,将其倒置在吸水纸上。再重复一遍此操作。
10.将离心管敞口室温放置10-20min(也可放入超净工作台用中风吹),使乙醇充分挥发后加入1-1.5ml洗脱液TB,充分溶解沉淀,得到质粒。
11.提取得到的质粒,可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度和纯度。高纯度的质粒OD260/OD280通常在1.8-2.0之间。
(四)注意事项
1.溶液P1在使用给钱先加入RNase A,混匀,置于2-8℃保存。
2.使用前先检查溶液P2和P4是否出现结晶或沉淀,如有结晶或沉淀现象,可在37℃水浴加热几分钟,即可恢复澄清。
3.自备约60ml的5M NaCl溶液。
4.注意不要直接接触溶液P2和P4,使用后应立即盖紧盖子。
5.使用过滤器时请将推柄小心缓慢地从过滤器中抽出,避免滤膜因压力而松动。
6.提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提取质粒为低拷贝质粒或大于10kb的大质粒,应加大菌体使用量,同时按比例增加P1、P2、P4的用量;洗脱缓冲液推荐在65-70℃水浴中预热。
步骤三,获取融合蛋白,
通过细胞转化将融合载体导入哺乳细胞系统中,进行荧光素酶—抗原融合蛋白的表达,裂解基因重组细胞,收集细胞,获得荧光素酶-抗原融合蛋白;
将T293细胞复苏后,在37℃,5%二氧化碳培养箱,使用DMEM培养基培养40-60h,再进行细胞传代继续培养40-60h后,使用重组质粒进行细胞转染实验(磷酸钙转染方法),继续在相同条件下培养约48h后,使用0.01~0.02mol/L,pH7.0~8.0PBS缓冲液收集细胞。
一,细胞培养实验:
(一)实验室前准备,
1.实验仪器设备、耗材准备,
准备所需实验仪器:1mL移液枪、电动移液枪(检查是否有电)、水浴锅、4℃冰箱、-20℃冰箱、-80℃冰箱、生物安全柜、CO2培养箱、倒置显微镜、涡旋仪、可移动紫外灯。
准备实验所需的耗材:5mL血清移液管、10mL血清移液管、1mL移液枪头、50mL离心管、15mL离心管、75cm2细胞培养瓶、10cm直径细胞培养皿、离心管架、记号笔。
实验辅助耗材:冻存盒、泡沫漂浮架、75%酒精棉球、纱布、剪刀、镊子、持物钳、酒精喷壶、废液缸、手套、帽子、口罩、拖鞋(或鞋套)、隔离衣。
2.实验场地准备
将移液枪和实验所需耗材及废液缸放入生物安全柜内,用酒精棉擦拭生物安全柜内桌面和周壁。合上生物安全柜玻璃挡板,开启生物安全柜、细胞培养间、缓冲间紫外灯,照射30min。
3.实验试剂准备
检查实验所需的细胞培养基、DMEM培养基、胎牛血清(FBS)、青莲双抗是否足量,将试剂放入37℃水浴中预热15min。
(二)实验操作
在缓冲间更换拖鞋(或鞋套)、戴帽子、戴口罩、穿隔离衣。实验准备工作在缓冲间完成,进入细胞培养见要再次更换拖鞋(或鞋套)。用75%的酒精对手表面进行消毒,由助手协助带好手套、传递实验试剂。
关闭紫外灯,向上推开生物安全柜玻璃挡板15cm,打开生物安全柜风机,通风15min,开始实验。
1.细胞培养基的配制
(1)将37℃预热过的DMEM培养基、胎牛血清(FBS)、100×双抗青链霉素用酒精棉擦拭瓶身和瓶口,放入生物安全柜;
(2)将500mL胎牛血清平均分配至10个50mL离心管中,每管50mL;将100mL100×青链双抗平均分配至20个15mL离心管中,每管5mL;
(3)取一份50mL胎牛血清和5mL100×青链双抗加至500mL DMEM培养中,混合均匀配成完全培养基,在瓶身上标注配制日期、试剂成分、配置人。
2.细胞复苏
(1)准备37℃水浴和预热到37℃的完全细胞培养基,准备好一个75cm2细胞培养瓶,同时加入10ml的完全培养液;
(2)将细胞从-80℃冰箱中取出,放入到水浴锅中,同时轻轻摇动,保证细胞能够在3min内完全溶解,同时应该注意不要把冻存管的管口没入水浴中(可能由水引起污染)。注意要点:溶解的时间过长会影响细胞的活力,导致死细胞多,细胞状态差。
(3)溶解完全的细胞用75%酒精棉球擦冻存管外表面,要快速转移到无菌超净台中。用移液枪将冻存管中细胞悬浮液转移至75cm2含完全培养基的细胞培养瓶中,轻轻吹打混匀,盖紧盖子。再把细胞摇晃均匀,在培养瓶上面标注细胞接种日期。
3.细胞培养
(1)将培养瓶水平放入37℃、5%CO2培养箱中培养。
(2)第二天进行换液,保证去除死细胞。正常培养过程是2-3天进行一次换液,如果细胞长到90%以上进行传代。
二,细胞转染实验(磷酸钙转染方法):
(一)实验室前准备
1.实验仪器设备、耗材准备
准备所需实验仪器:1mL移液枪、电动移液枪(检查是否有电)、水浴锅、4℃冰箱、-20℃冰箱、-80℃冰箱、生物安全柜、CO2培养箱、倒置显微镜、涡旋仪、可移动紫外灯。
准备实验所需的耗材:5mL血清移液管、10mL血清移液管、1mL移液枪头、50mL离心管、15mL离心管、75cm2细胞培养瓶、10cm直径细胞培养皿、离心管架、记号笔。
实验辅助耗材:冻存盒、泡沫漂浮架、75%酒精棉球、纱布、剪刀、镊子、持物钳、酒精喷壶、废液缸、手套、帽子、口罩、拖鞋(或鞋套)、隔离衣。
2.实验场地准备
将移液枪和实验所需耗材及废液缸放入生物安全柜内,用酒精棉擦拭生物安全柜内桌面和周壁。合上生物安全柜玻璃挡板,开启生物安全柜、细胞培养间、缓冲间紫外灯,照射30min。
3.实验试剂配制
(1)4M NaCl:称取11.688g NaCl加水定容至50mL,0.22um滤膜抽滤。
(2)1M KCl:称取0.7455g KCl加水定容至10mL,0.22um滤膜抽滤。
(3)1M Na2HPO4:称取3.5814g Na2HPO4·12H2O加水定容至10mL,0.22um滤膜抽滤。
(4)1M HEPES:称取11.915g HEPES加水定容至50mL,0.22um滤膜抽滤。
(5)25mM氯喹:称取0.128965g氯喹加ddH2O定容至10mL,0.22um滤膜抽滤。
(6)2.5M CaCl2:称取2.7745g CaCl2加ddH2O定容至10mL,0.22um滤膜抽滤。
(7)2×HeBS(pH7.05):250mM NaCl,10mM KCl,1.5mM Na2HPO4,12mM dextrose,50mM Hepes
(3.125mL of 4M NaCl,0.5mL of 1M KCl,Na2HPO4 75uL of 1M,0.108gDextrose,Hepes 2.5mL of 1M;加水定容至50ml,调pH7.05,0.22uM滤膜抽滤,-20℃保存备用)。
(8)Mix 1:450ul待转染质粒(ddH2O稀释15ug质粒至450ul)+50ul 2.5M CaCl2
(9)Mix 2:500ul 2×HeBS
(二)实验操作;
在缓冲间更换拖鞋(或鞋套)、戴帽子、戴口罩、穿隔离衣。实验准备工作在缓冲间完成,进入细胞培养见要再次更换拖鞋(或鞋套)。用75%的酒精对手表面进行消毒,由助手协助带好手套、传递实验试剂。
关闭紫外灯,向上推开生物安全柜玻璃挡板15cm,打开生物安全柜风机,通风15min,开始实验。
1.细胞培养基的配制
(1)将37℃预热过的DMEM培养基、胎牛血清(FBS)、100×双抗青链霉素用酒精棉擦拭瓶身和瓶口,放入生物安全柜;
(2)将500mL胎牛血清平均分配至10个50mL离心管中,每管50mL;将100mL100×青链双抗平均分配至20个15mL离心管中,每管5mL;
(3)取一份50mL胎牛血清和5mL100×青链双抗加至500mL DMEM培养中,混合均匀配成完全培养基,在瓶身上标注配制日期、试剂成分、配置人。
(4)取9mL完全培养基至10mL离心管,加入9ul 25mM氯喹,混匀,待使用(每个培养皿的使用量)。
2.将细胞培养皿取出至倒置显微镜下观察细胞生长状态及铺板率。
3.将细胞培养皿转移至生物安全柜,吸去废液,Mix1漩涡混匀,逐滴加入Mix2,制成Mix液,室温静置5分钟。
4.取1mLMix液逐滴加入细胞培养皿中,再加入9mL(含25uM氯喹)完全培养基,轻晃混匀。(注意:加入Mix液后尽快加入完全培养基,以避免贴壁细胞悬浮)
5.将细胞培养皿放置于37℃5%CO2培养箱继续培养48h。
6.将细胞培养皿从培养箱中取出,转移至生物安全柜内,吸去废液,各加1mL PBS洗去完全培养基,再洗去PBS废液。
7.各加入2mL PBS,用细胞刮刀将细胞轻轻刮下,用移液枪反复吸打至细胞悬浊液混合均匀,转移至离心管,-20℃保存。
步骤四,纯化重组融合蛋白,
利用免疫沉淀反应,将荧光素酶-抗原融合蛋白稀释液与样本血清混合进行特异性结合,获得融合蛋白-抗原-抗体复合物;
将收集的细胞用硫酸铵沉淀法进行分级沉淀,沉淀物经0.05~0.08mol/L Tris-Hcl缓冲液冲洗2~3次,后冻干备用;
所得融合蛋白用0.01~0.02mol/L,pH7.0~8.0PBS磷酸盐缓冲液进行一定倍数的梯度稀释得融合蛋白稀释液,要求融合蛋白稀释液每10微升中有107个荧光单位。
步骤五,使用蛋白A/G琼脂糖酶标板捕捉融合蛋白-抗原-抗体复合物,
使用1ug/ml的蛋白A/G包被液,100ul/孔,4℃冰箱过夜包被后,使用0.05%PBST溶液清洗3次后,加入300ul/孔,5%BSA封闭液室温,100rpm,封闭2h后,在室温晾干15min后置于4℃冰箱备用。
步骤六,抗原抗体免疫反应,
反应体系包括:融合蛋白-抗原-抗体复合物,PBS缓冲液,PBST缓冲液,荧光素酶底物,标准品,检测样品血清。
1融合蛋白准备:用2ml ddH2O复溶融合蛋白冻干粉,吸打混匀并转移至2mlEP管中,12000rpm离心1min,转移上清至另一新的离心管中,4℃保存备用。
2试剂用量及孵育:在酶标板中,分别加入检测样品与阴阳性对照品,加入孵育缓冲液(缓冲液1),采用一步法进行孵育。
3孵育:在微孔中加入10ul样品,20ul融合蛋白,70ul孵育缓冲液的混合液100ul/孔,置全自动荧光测定仪中30℃,300rpm振荡孵育60min。
4洗涤:孵育结束后弃上清,每孔加入200ul PBS,弃上清,扣干,再重复四次,共五次。
5检测:加入70ulPBS,再加入现配的30ul 1×底物,立即检测。
实验目的:进行联合检测试剂盒最低检出限及灵敏度性能分析。
实验使用仪器:全自动化学发光测定仪(重庆科斯迈,SMART300)
移液枪(Thermo,F3系列)
迷你瞬时离心机(美国Andybio,m-micro)
实验使用耗材:移液枪头、离心管(国产)
ProteinA/G包被板(NUNC,1ug/ml杭州纽龙ProteinA/G包被,BSA封闭)
实验试剂及药品:融合蛋白(2017.12.28复溶)
PBS pH7.40(2017.07.06配制,室温保存备用)
0.05%PBST(2017.07.06配制,室温保存备用)
海肾荧光素酶底物(碧云天,RG017,1×)
胎牛血清
实验操作:A样本准备:将1000ng/ml的抗体样本按梯度浓度稀释(牛-)成200,175,150,125,100,75,50,25ng/ml.
B融合蛋白准备:用1.5mlddH2O复溶融合蛋白冻干粉,吸打混匀并转移至2mlEP管中,12000rpm离心1分钟,转移上清至另一新的离心管中,4℃保存备用。
C加样顺序及用量:样本10ul,融合蛋白10ul,PBST80ul,共100ul体系。每种浓度各4孔。
D.LIPS实验:1.加样:在微孔中加入100ul体系的试剂。
2.孵育:在微孔中加入10ul样品,20ul融合蛋白,70ul孵育缓冲液的混合液100ul/孔,置全自动荧光测定仪中30℃,300rpm振荡孵育60min。
3.洗涤:孵育结束后弃上清,每孔加入200ul PBS,弃上清,扣干,再重复四次,共五次。
4.检测:加入70ulPBS,再加入现配的30ul 1×底物,立即检测荧光强度。
实验结果:
结果分析:
上述浓度为0时为阴性样本,其余皆为阳性样本。各阳性样本发光强度均为阴性的2倍以上,说明该实验灵敏度为100%。
根据上述数据做线性方程,得出最低检出限在15~20ng/ml该区间内比值为2。
由此可知:GAD65抗体、IA-2a抗体、IA-2b抗体、IAA、GADA抗体和ICA-512抗体这六种抗体的联合检测能够提高Ⅰ型糖尿病的检测的特异性和敏感性。
以上显示和描述了本发明的基本原理、主要特征和优点。本行业的技术人员应该了解,上述实施例不以任何形式限制本发明,凡采用等同替换或等效变换的方式所获得的技术方案,均落在本发明的保护范围内。
序列表
<110> 杭州北角医学检验所有限公司
<120> 一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒及其制备方法
<141> 2020-01-08
<160> 6
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 79
<212> DNA
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Claims (8)
1.一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒,其特征在于,包括:融合蛋白-抗原-抗体复合物,缓冲液,荧光素酶底物,标准品;所述抗体包括:GAD65抗体,IA-2a抗体,IA-2b抗体,IAA抗体,GADA抗体和ICA-512抗体。
2.根据权利要求1所述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒,其特征在于,所述融合蛋白-抗原-抗体复合物通过将荧光素酶基因与抗原基因融合成融合载体,然后利用细胞转化技术,将融合载体导入哺乳细胞系统中,进行荧光素酶—抗原融合蛋白的表达;裂解基因重组细胞,获得荧光素酶-抗原融合蛋白;然后利用免疫沉淀反应,将荧光素酶-抗原融合蛋白稀释液与样本血清混合进行特异性结合,获得融合蛋白-抗原-抗体复合物;多抗原基因的目的序列包括:GAD-65抗原基因序列,IA-2a抗原基因序列,IA-2b抗原基因序列,IAA抗原基因序列,GADA抗原基因序列,ICA-512抗原基因序列。
3.根据权利要求1所述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒,其特征在于,所述缓冲液包括:磷酸盐吐温缓冲液,磷酸盐缓冲液,荧光素酶底物检测缓冲液。
4.一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
步骤一,构建荧光素酶基因与抗原基因的融合载体,
选取荧光素酶基因和多抗原基因的目的序列,进行PCR扩增,在kpnl位点-GGTACC引入限制性内切酶,获得目的片段,做凝胶电泳进行鉴定;所述多抗原基因的目的序列包括:GAD-65抗原基因序列,IA-2a抗原基因序列,IA-2b抗原基因序列,IAA抗原基因序列,GADA抗原基因序列,ICA-512抗原基因序列;
将获得的目的片段与载体质粒分别进行kpnl和xbal双酶切,并使用T4连接酶将目的基因与载体基因连接得到重组质粒;
步骤二,质粒转化与扩繁提取,
将重组质粒转化到感受态大肠杆菌中,进行大肠杆菌菌种扩繁,再使用质粒大提试剂盒提取重组质粒;
步骤三,获取融合蛋白,
通过细胞转化将融合载体导入哺乳细胞系统中,进行荧光素酶—抗原融合蛋白的表达,裂解基因重组细胞,收集细胞,获得荧光素酶-抗原融合蛋白;
步骤四,纯化重组融合蛋白,
利用免疫沉淀反应,将荧光素酶-抗原融合蛋白稀释液与样本血清混合进行特异性结合,获得融合蛋白-抗原-抗体复合物;
步骤五,使用蛋白A/G琼脂糖酶标板捕捉融合蛋白-抗原-抗体复合物,
步骤六,抗原抗体免疫反应,
反应体系包括:融合蛋白-抗原-抗体复合物,PBS缓冲液,PBST缓冲液,荧光素酶底物,标准品,检测样品血清。
5.根据权利要求4所述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,其特征在于,所述载体质粒为PA0815载体质粒。
6.根据权利要求4所述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,其特征在于,所述荧光素酶基因为Ranilla荧光素酶基因。
7.根据权利要求4所述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,其特征在于,所述感受态大肠杆菌的菌种为基因工程转化的含GAD65的重组大肠杆菌。
8.根据权利要求4所述的一种用于Ⅰ型糖尿病联合抗体检测试剂盒的制备方法,其特征在于,通过细胞转化将融合载体导入哺乳细胞系统中的步骤包括:
1)将T293细胞经过扩增培养40-60h,和细胞传代培养40-60h;
2)使用重组质粒进行磷酸钙转染,继续培养约48h后,使用PBS缓冲液收集细胞。
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