CN110964726A - 一种重组siMACF1及其生产方法和应用 - Google Patents

一种重组siMACF1及其生产方法和应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种重组siMACF1,所述重组siMACF1的序列如SEQ ID NO:1所示,或者为与SEQ ID NO:1所示序列相似度达90%以上的序列。另外,本发明还公开了该重组siMACF1的生产方法及应用。本发明通过检测骨肉瘤患者肿瘤组织及正常骨组织样本,发现MACF1在骨肉瘤组织中高表达,且MACF1表达水平与肿瘤细胞迁移及侵袭能力密切相关,提示MACF1可作为骨肉瘤治疗靶点;设计MACF1的siRNA后,以tRNA为支架,嵌合siMACF1序列,在大肠杆菌中表达重组siMACF1。本发明制备的重组siMACF1为通过生物工程技术获得,具有设备简便、产量高、成本低、功能性好等优势。

Description

一种重组siMACF1及其生产方法和应用
技术领域
本发明属于分子生物学及医学技术领域,具体涉及一种重组siMACF1及其生产方法和应用。
背景技术
骨肉瘤是最恶性的骨肿瘤之一,特别是发病人群主要集中于少年和青年阶段,约占整个年龄段的75%左右。骨肉瘤的转移性强,80%的患者都有侵袭周围组织的症状,会特异性的发生肺转移。目前,非转移性骨肉瘤患者的5年生存率已到70%,而发生肺转移的骨肉瘤患者的5年生存率只有20-30%,并成为骨肉瘤治疗的主要挑战。
MACF1是细胞骨架交联蛋白,在不同细胞中广泛表达,参与了细胞定位运动,细胞极化,迁移,细胞信号转导和紧密连接等细胞生理功能,在胚胎发育、组织特异性功能以及人类的疾病中发挥着众多的功能。特别是最近几年,MACF1在肿瘤的发生和发展以及转移过程中的作用受到越来越多的关注,如神经胶质母细胞瘤、结肠癌,肺癌和乳腺癌。特别是Duhamel,S.,et al.研究表明MACF1通过参与乳腺癌细胞上皮型到间充质型的转换,促进癌细胞的转移。而对于MACF1在骨肉瘤的发生发展和转移过程中的功能,以及其在骨肉瘤治疗中的作用尚未见研究和报道。
本发明利用免疫组织化学实验发现MACF1在人骨肉瘤组织中高表达的,并通过实时定量荧光PCR等实验验证了MACF1在骨肉瘤细胞的表达量与肿瘤细胞的迁移及侵袭能力相关。因此,MACF1可能成为骨肉瘤治疗的潜在靶点。
随着对非编码RNA的深入研究,催生了基于RNAi技术开发小RNA分子药物用于疾病治疗的方法,在临床制药应用领域前景广阔。siRNA导入细胞可以干扰肿瘤相关基因表达,从而达到控制肿瘤的目的。siRNA因可调控基因表达而被作为肿瘤基因治疗的有效武器,即RNA疗法。但是小RNA分子的研究依然面临着困境,最突出的就是RNA原料的获取。利用活细胞生物合成的ncRNAs可能更好地应用于生物、医学研究以及小核酸药物开发中,以避免严重的免疫反应。而内源性的tRNA作为支架用于生产小分子RNA已经取得较好的发展
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于针对上述现有技术的不足,提供一种重组siMACF1及其生产方法和应用。本发明利用免疫组织化学技术检测组织芯片,测定了MACF1在人骨肉瘤组织及正常骨组织的表达情况,证明了其在骨肉瘤组织中高表达。再通过实时定量荧光PCR检测了正常细胞系hMSC及不同骨肉瘤细胞系MG63,U2OS,143B中MACF1的表达水平;划痕实验和transwell chamber实验检测了四种细胞系的迁移和侵袭能力证明了骨肉瘤的转移与MACF1的表达具有相关性。最后设计并生产了一种靶向MACF1的重组siMACF1,证明了其可以通过抑制MACF1进而抑制骨肉瘤细胞的迁移。
为解决上述技术问题,本发明采用的技术方案是:一种重组siMACF1,其特征在于,所述重组siMACF1的序列如SEQ ID NO:1所示,或者为与SEQ ID NO:1所示序列相似度达90%以上的序列。
另外,本发明还提供了一种上述重组siMACF1的生产方法,其特征在于,包括:以MACF1为靶基因,设计其小干扰RNA siMACF1,将设计的小干扰RNA siMACF1嵌合于tRNA支架,在大肠杆菌中重组表达;所述小干扰RNA siMACF1的序列如SEQ ID NO:2所示。
上述的生产方法,其特征在于,所述tRNA支架的序列为与人丝氨酸tRNA序列相似度达90%以上的序列,所述人丝氨酸tRNA序列如SEQ ID NO:3所示。
上述的生产方法,其特征在于,小干扰RNA siMACF1的前体序列为成熟序列部分被siMACF1序列取代的hsa-miR-34a前体序列,所述小干扰RNA siMACF1的前体序列如SEQ IDNO:4所示。
上述的生产方法,其特征在于,所述生产方法的具体步骤包括:
步骤一、设计合成嵌合siMACF1序列的hsa-miR-34a前体引物;
步骤二、利用pBSMrnaSeph质粒在tRNA反密码子环处具有的酶切位点,将小干扰RNA siMACF1的前体序列插入pBSMrnaSeph质粒中,构建表达载体;
步骤三、将嵌合目标序列的表达载体转化感受态大肠杆菌;
步骤四、大肠杆菌培养扩增后,提取菌内总RNA,以FPLC分离纯化目标重组siMACF1。
本发明提供了一种上述重组siMACF1在制备抑制骨肉瘤细胞中MACF1mRNA水平及蛋白水平表达的前药、药物、原料药或药物组合物中的应用。
本发明提供了一种上述重组siMACF1在制备抑制癌症细胞中MACF1 mRNA水平及蛋白水平表达的前药、药物、原料药或药物组合物中的应用。
本发明提供了一种上述重组siMACF1在制备抑制骨肉瘤细胞迁移的前药、药物、原料药或药物组合物中的应用。
本发明提供了一种上述重组siMACF1在制备治疗MACF1高表达癌症的前药、药物、原料药或药物组合物中的应用。
本发明与现有技术相比具有以下优点:
1、本发明通过研究发现,MACF1与骨肉瘤的迁移及侵袭能力相关,是潜在的治疗靶点;通过以MACF1为治疗靶点,以人丝氨酸tRNA嵌合含siMACF1的has-mir-34a前体,生产重组siMACF1,人丝氨酸tRNA为人源tRNA,其毒性及免疫原性均更低。
2、本发明设计制备的重组siMACF1为通过生物工程技术获得,具有设备简便、生产快速、产量高、成本低、功能性好等优势。
3、本发明通过免疫组织化学芯片,检测了MACF1在人骨肉瘤组织及正常骨组织的表达情况,证明了其在骨肉瘤组织中高表达。再通过实时定量荧光PCR检测了正常细胞系hMSC及不同骨肉瘤细胞系MG63,U2OS,143B中MACF1的表达水平,划痕实验和transwellchamber实验检测了四种细胞系的迁移和侵袭能力证明了骨肉瘤的转移与MACF1的表达具有相关性。最后设计并生产了一种靶向MACF1的重组siMACF1小RNA,证明了其可以通过抑制MACF1进而抑制骨肉瘤细胞的迁移。
4、本发明生产的重组siMACF1可以有效干扰骨肉瘤细胞中MACF1基因的表达,同时抑制骨肉瘤细胞的迁移、侵袭能力。
下面结合附图和实施例,对本发明的技术方案做进一步的详细描述。
附图说明
图1是本发明实施例1利用免疫组化检测MACF1在人骨肉瘤组织和人正常骨组织中表达的结果图。
图2是本发明实施例2利用qPCR技术检测MACF1在hMSC、MG63、U2OS、143B四种细胞系中的表达结果图。
图3是本发明实施例3利用划痕实验检测了hMSC、MG63、U2OS、143B四种细胞系的迁移能力结果图。
图4是本发明实施例3利用transwell chamber小室检测了MG63、U2OS、143B三种细胞的侵袭能力结果图。
图5是本发明实施例4利用引物PCR对含有siMACF1序列的插入片段扩增的凝胶电泳图。
图6是本发明实施例4对pBSKrnaSeph/has-mir-34a表达载体进行双酶切鉴定的结果图。
图7是本发明实施例4利用菌液PCR鉴定重组siMACF1表达质粒的凝胶电泳图。
图8是本发明实施例5利用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测大肠杆菌中重组siMACF1的表达。
图9是本发明实施例6利用Bio-Rad NGCTMChromatography System纯化重组siMACF1,以变性聚丙烯酰胺凝胶电泳鉴定所收集组分的纯度。
图10是本发明实施例7利用qPCR技术鉴定转染重组siMACF1小RNA后,其在143B细胞中的加工和成熟(数值以“均值±标准差”表示,两组间的显著性采用students't检验,*P<0.05,***P<0.001)。
图11是本发明实施例8利用qPCR技术检测转染重组siMACF1小RNA后,有效干扰靶基因MACF1的表达结果图(数值以“均值±标准差”表示,两组间的显著性采用students't检验,*P<0.05,***P<0.001)。
图12是本发明实施例8利用Western blot技术检测转染重组siMACF1小RNA后,有效下调靶蛋白MACF1的表达结果图(数值以“均值±标准差”表示,两组间的显著性采用students't检验,*P<0.05,***P<0.001)。
图13是本发明实施例8利用划痕实验检测转染重组siMACF1小RNA后,有效抑制143B细胞迁移能力的结果图(数值以“均值±标准差”表示,两组间的显著性采用students't检验,*P<0.05,***P<0.001)。
具体实施方式
以下通过具体实施例来说明本发明的实施方式,除非另外说明,本发明中所公开的实验方法均采用本技术领域常规技术。
实施例1:利用免疫组化芯片检测人骨肉瘤组织中MACF1的表达。
近期研究表明,MACF1与多种癌症的发生发展相关而关于MACF1在骨肉瘤中的研究尚未见报道。直接检测人骨肉瘤组织中的表达,可提示我们MACF1是否在骨肉瘤的发生发展进程中发挥作用。
收集人骨肉瘤组织样品及正常骨组织样品,对样品进行石蜡包埋,切片,脱蜡,利用Tris-EDTA微波修复抗原;用3%H2O2-甲醇粉笔内源性过氧化物酶,接着进行一抗(anti-MACF1)孵育,4度过夜;再利用生物素标记的二抗IgG以及链霉菌抗生物素蛋白-过氧化酶分别进行孵育,最后进行封片保存。
图1是本实施例利用免疫组化芯片检测人骨肉瘤组织中MACF1表达的结果图。其中上图为骨肉瘤组织,下图为正常骨组织,结果表明MACF1在骨肉瘤组织中高表达。
实施例2:MACF1在正常细胞hMSC以及骨肉瘤细胞143B,MG63,U2OS中的表达差异。
(1)将四种细胞接种至12孔板中,每个细胞复3孔,过夜。RNA的提取(E.Z.N.Atotal RNA Kit I,E.Z.N.A total RNA Kit II),按照试剂盒说明书进行操作。所得mRNA测定浓度后,于-80℃冰箱保存备用。
(2)qPCR检测MACF1在细胞内的表达:
使用TAKARA逆转录试剂盒,将所提mRNA反转录为cDNA。反转录条件为:37℃15min;80℃ 15s。取各组的cDNA为模板,以18s为内参,采用qPCR检测MACF1在细胞中的表达量。qPCR反应条件为:95℃ 30s,变性;95℃ 10s,60℃ 30s,72℃ 10s,40个循环。所用引物序列如表1(SEQ ID NO.5、SEQ ID NO.6、SEQ ID NO.7、SEQ ID NO.8)。
表1 qPCR检测hMSC,143B,MG63,U2OS四种细胞中MACF1表达量所用引物序列
Figure BDA0002348904970000061
图2是本实施例对hMSC,143B,MG63,U2OS四种细胞中MACF1表达量检测结果图。从图中可以看出,与正常细胞hMSC相比,骨肉瘤细胞中的MACF1表达量明显较高(数值以“均值±标准差”表示,两组间的显著性采用students't检验,*P<0.05,***P<0.001)。证明了MACF1在骨肉瘤细胞系也是高表达的。
实施例3:划痕实验、侵袭实验检测hMSC,143B,MG63,U2OS四种细胞迁移和侵袭能力的差异。
(1)划痕实验:
记号笔提前在孔板背面画好直线,然后将细胞以4×105个/孔接种于12孔板。18小时后,用枪头比着直尺垂直于孔板背面的横线在孔中划痕。用PBS洗涤2次,去除划掉的细胞,加入完全培养基,放入37℃,5%CO2培养箱,培养。分别在第0和12小时拍照,利用imageJ计算划痕的宽度。
(2)侵袭实验:取143B,MG63,U2OS三种细胞,用PBS小心地冲洗细胞以彻底去除血清,将培养基更换为无血清培养基,进行细胞饥饿3小时。将饥饿后的细胞进行消化,加入无血清培养基,吹打混匀,离心800rpm,5min;弃上清,离心管中加入无血清培养基,将细胞吹打混匀,并进行计数。饥饿细胞的同时,取出Transwell chamber放入24孔板中,将稀释好的matrigel铺在chamber内,37℃,5%CO2培养箱放置3小时。3小时后,在孔板中加培养基(DMEM含10%FBS)700μL,将chamber中的液体弃去,加入200μL细胞悬液(0.6×105)放入对应的孔中。37℃,5%CO2孵育12小时后,分别取出进行后续0.1%结晶紫染色观察。
图3是本实施例对hMSC,143B,MG63,U2OS四种细胞迁移能力的检测结果图。从图中可以看出,骨肉瘤细胞的迁移能力明显高于正常细胞hMSC,证明了在骨肉瘤中,MACF1与肿瘤细胞迁移的相关性(数值以“均值±标准差”表示,两组间的显著性采用students't检验,*P<0.05,***P<0.001)。图4是本实施例对143B,MG63,U2OS三种细胞侵袭能力的检测结果图。从图中可以看出,MACF1表达量较高的143B细胞的侵袭能力也较强。证明了骨肉瘤细胞中,MACF1与肿瘤细胞侵袭的相关性(数值以“均值±标准差”表示,两组间的显著性采用students't检验,*P<0.05,***P<0.001),图3,图4的结果提示了MACF1与细胞迁移和侵袭能力的相关性。
实施例4:以pBSKrnaSeph/has-mir-34a表达载体构建重组siMACF1质粒,表达重组siMACF1。
(1)根据siMACF1的有效siRNA序列(SEQ ID NO:2),以及pBSKrnaSeph/has-mir-34a表达载体上的序列设计引物,命名为mir-34a/siMACF1,同时在引物的两端加上1-15nt载体插入位点两侧的同源序列,序列见表2(SEQ ID NO.9和SEQ ID NO.10)。同源序列的加入可采用网站http://bioinfo.clontech.com/infusion/convertPcrPrimersInit.do辅助设计;
表2插入片段含siMACF1序列的引物序列
Figure BDA0002348904970000081
(2)插入片段的合成
以表2中的两条引物互为模板,利用pBSMrnaSeph质粒在tRNA(SEQ ID NO:3)反密码子环处具有的酶切位点,将小干扰RNA siMACF1的前体序列插入pBSMrnaSeph质粒中,构建表达载体;反应体系如表3所示,反应过程如表4所示:
表3聚合酶体外扩增链反应体系(50μL)
Figure BDA0002348904970000082
Figure BDA0002348904970000091
表4聚合酶体外扩增链反应过程
Figure BDA0002348904970000092
图5是本实施例对小干扰RNA siMACF1的前体序列(SEQ ID NO:4)插入片段的引物PCR凝胶电泳图。图总M代表DL2000DNA marker;1代表引物PCR后合成的插入片段。
(3)pBSKrnaSeph/has-mir-34a载体的双酶切
用Eag I-HFTM,Sac II限制性内切酶对载体进行37℃酶切,反应体系如表5所示。
表5 50μL双酶切体系
Figure BDA0002348904970000093
图6是本实施例对pBSKrnaSeph/hsa-mir-34a表达载体进行双酶切鉴定的结果图。图中M代表DL2000 DNA marker;1代表双酶切后的pBSKrnaSeph/hsa-mir-34a质粒;2代表pBSKrnaSeph/hsa-mir-34a质粒。结果表明,pBSKrnaSeph/hsa-mir-34a表达载体酶切成功。
(4)酶切质粒以及PCR片段的回收及纯化
将PCR产物和酶切后的质粒进行琼脂糖凝胶电泳鉴定后,使用OMEGA公司的胶回收试剂盒(OMEGA Gel Extraction Kit)进行回收纯化。在凝胶成像系统中用365nm的紫外光观察琼脂糖凝胶电泳后的DNA分离结果,用刀片小心切下带有目的DNA区带的凝胶,尽可能切下更少的胶,放入1.5mL的EP离心管中;称取凝胶的质量;按照1:1的体积比向装有琼脂糖凝胶的离心管中加入Binding Buffer结合缓冲液,并将混合物放于60℃-65℃水浴中7min,期间每隔两到三分钟振荡混合一次,直至凝胶完全融化;将融化后得到的溶液转移到DNAMini Column离心柱中,并将离心柱放入2ml的Collection Tube收集管中;10000rpm离心1min。每次离心的溶液体积最多为700μL,可将溶液分多次离心,直至全部离心完,并弃去收集管中的滤液,重复利用收集管;在离心柱中加入700μL的添加过无水乙醇的SPW WashBuffer。放于离心机中10000rpm,室温离心1min,重复此步骤一次;弃去滤液,将离心柱以13000rpm的转速室温下离心2min,以彻底除去纯化柱中的乙醇;将离心柱置于全新干净的离心管中。向离心柱中央悬空滴加30~100μL的Elution Buffer洗脱液,静置2min使DNA完全溶解在洗脱液中。放于离心机中以13000rpm的转速室温离心1min,回收管底的洗脱液。取少量洗脱液进行DNA凝胶电泳测定是否为目的产物,贮存于-20℃。
(5)插入片段与载体的连接
胶回收片段用
Figure BDA0002348904970000101
Ligation-Free Cloning System进行连接,反应体系如表6所示。
表6无缝连接反应体系(20μL)
Figure BDA0002348904970000102
Figure BDA0002348904970000111
混匀后,置于37℃孵育30分钟;转化大肠杆菌HST08感受态细菌;对克隆菌落进行氨苄青霉素抗性筛选。
(6)菌液PCR与DNA测序鉴定重组siMACF1(SEQ ID NO:1)表达载体
挑取单克隆菌落,于含有氨苄的LB培养基中培养约3h。取20μL菌液,加入180μL水,95℃放置10min,作为模板。用测序引物M13 Fow-GTAAAACGACGGCCAGT,Rev-CAGGAAACAGCTATGAC进行菌液PCR鉴定。反应体系和反应条件如表3和表4。另取100uL菌液,送擎科生物科技有限公司,用相同的引物进行DNA测序鉴定。
图7是本实施例利用琼脂糖凝胶电泳对菌液PCR的产物进行鉴定的结果图。图中M代表DL2000 DNA marker;1,2,3,4分别代表标记的单克隆;结果表明1,2,3为含有目的条带的单克隆。
实施例5:重组siMACF1的表达
(1)200ng重组siMACF1表达质粒转化HST08感受态细菌后,加入5mL LB培养基在37℃,200rpm震荡培养过夜。菌液经10000g离心2min后,收集沉淀。于沉淀中加入180uL 10mM醋酸镁-Tris·HCl溶液重悬,再加入200uL的饱和苯酚,室温振摇20-60min。10000g离心10min后收集水相,加入0.1倍水相体积的5M NaCl沉淀大分子杂质。上清液再加入2倍体积无水乙醇,10000g离心10min后,弃掉上清。吸水纸吸干残留乙醇,待RNA干燥后加入DEPC水溶解RNA,测定浓度,-80℃冰箱保存。
(2)变性聚丙烯酰胺凝胶电泳鉴定
将2μg RNA样品与2xRNA上样缓冲液混合,加入变性胶样品孔内。120~150V电泳40~60min后,放入含0.5μg/mL溴化乙锭的溶液中轻摇20~30min,于凝胶成像系统下观测,拍照保存。
图8是本实施例利用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测大肠杆菌中重组siMACF1(SEQID NO:1)的表达。图中M表示RNA marker;1表示重组siMACF1表达质粒转化的HST08E.coli后的总RNA;2表示野生型HST08E.coli总RNA。与未转化重组siMACF1表达质粒的细菌总RNA相比,转化后的细菌总RNA在150-300nt之间多了一条条带。结果表明,重组siMACF1表达质粒在大肠杆菌中可以高表达重组siMACF1。
实施例6:FPLC纯化重组siMACF1(SEQ ID NO:1)
(1)采用Bio-Rad NGCTM Chromatography System,以离子交换柱(ENrichTMQ10×100Column)纯化重组siMACF1(SEQ ID NO:1)。
流动相A:10mM NaH2PO4溶液,pH7.0。流动相B:10mM NaH2PO4溶液,1M NaCl溶液,pH7.0。
流速为2.0mL/min。以DEPC水,流动相A,流动相B分别交替冲洗色谱柱约1h。每次冲洗5柱体积。
运行以下程序对总RNA进行分离:0~8.9min(0%B),8.9~13.7min(55%B),13.7~53.7min(55~75%B),53.7~73.7min(75~85%B),73.7~83.7min(100%B),83.7~93.7min(0%B)。以260nm的吸光度检测RNA,并收集重组RNA所对应的峰。用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳鉴定纯度。
(2)RNA样品处理方法
总RNA提取步骤同上。所提取的总RNA于4℃ 13000rpm离心10min后,上清液经0.22μm微孔滤膜过滤后,每次进样5-10mg。
(3)FPLC组分收集及浓缩去盐
以变性聚丙烯酰胺凝胶电泳鉴定所收集组分的纯度。混合后的各组分用2倍体积无水乙醇沉淀RNA,-80℃冰箱放置约1h。以10000g转速于4℃离心10min收集RNA。将所得RNA沉淀用DEPC水溶解,用Ultra-2mL Centrifugal Filters 4℃ 7500g离心10min,去滤液,重复此步骤直至所有溶液离心完,再将Filters倒置,2000g离心2min,收集所得溶液,测定浓度后于-80℃保存。
图9是本实施例利用Bio-Rad NGCTM Chromatography System纯化重组siMACF1(SEQ ID NO:1),以变性聚丙烯酰胺凝胶电泳鉴定所收集组分的纯度。结果表明,经FPLC纯化后,可得到高纯的重组siMACF1(SEQ ID NO:1)。
实施例7:重组siMACF1(SEQ ID NO:1)在细胞内的加工成熟
(1)重组siMACF1(SEQ ID NO:1)在143B细胞中的转染
将细胞以4x105个/孔接种于24孔板。按照lipofectamine 2000操作说明书进行细胞转染。重组siMACF1(SEQ ID NO:1)的转染浓度为40nM。
(2)RNA的提取(E.Z.N.A miRNA Kit)
按照试剂盒说明书进行操作。所得miRNA测定浓度后,于-80℃冰箱保存备用。
(3)qPCR检测重组siMACF1在细胞内的加工成熟
使用TAKARA逆转录试剂盒,采用茎环法将所提miRNA反转录为cDNA。反转录条件为:37℃ 15min;80℃ 15s。取各组的cDNA为模板,以U6为内参,采用qPCR检测siMACF1(SEQID NO:2)在细胞中的表达量。qPCR反应条件为:95℃ 30s,变性;95℃ 10s;60℃ 30s,72℃10s40个循环。所用引物序列如表7(SEQ ID NO.11,SEQ ID NO.12,SEQ ID NO.13,SEQ IDNO.14和SEQ ID NO.15)。
表7重组siMACF1逆转录及Q-PCR检测中所用引物序列
Figure BDA0002348904970000131
图10是本实施例利用qPCR技术检测重组siMACF1在143B细胞中的加工和成熟(数值以“均值±标准差”表示,两组间的显著性采用students't检验,*P<0.05,***P<0.001)。与阴性对照(NC相比),成熟siMACF1表达水平显著升高。说明重组siMACF1(SEQ ID NO:1)在细胞内可被正确加工为成熟siMACF1(SEQ ID NO:2)。
实施例8:重组siMACF1对靶分子MACF1的调控活性
MACF1是siMACF1的直接靶分子,且MACF1参与了细胞运动,抑制MACF1可以有效抑制细胞的迁移能力。因此检测MACF1的表达以及细胞的迁移能力的变化,可反映重组siMACF1对靶分子MACF1的调控活性。
(1)qPCR检测重组siMACF1(SEQ ID NO:1)对靶分子MACF1的调控
143B细胞转染、RNA提取、逆转录及qPCR过程同上。qPCR中使用的引物序列如表1。
(2)Western blot检测重组siMACF1对靶分子蛋白表达的调控
用40nM重组siMACF1/阴性对照(NC)转染143B,细胞转染方法同上。48小时后,使用含有蛋白酶抑制剂混合物的RIPA裂解液制备裂解细胞用于Western blot分析。通过BCA蛋白质测定试剂盒测定蛋白质浓度。在10%SDS-PAGE上分离30μg/泳道细胞总蛋白并转移到PVDF上。将膜在5%脱脂牛奶中在TBST缓冲液中封闭2小时。在4℃下将膜与相应的一抗(anti-MACF1,anti-GAPDH)孵育过夜。PVDF膜用TBST洗涤五次后,与辣根过氧化物酶缀合的第二抗体在室温下孵育2小时。通过增强化学发光检测系统(Bio-Rad)检测蛋白质条带,并通过ChemiDoc MP成像系统(Bio-Rad)分析结果。
(3)划痕实验检测重组siMACF1对细胞迁移能力的抑制
记号笔提前在孔板背面画好直线,然后将细胞以4×105个/孔接种于12孔板。按照lipofectamine 2000操作说明书进行细胞转染。重组siMACF1的转染浓度为40nM。转染24小时后,用枪头比着直尺垂直于孔板背面的横线在孔中划痕。用PBS洗涤2次,去除划掉的细胞,加入无血清培养基,放入37℃ 5%CO2培养箱,培养。在第0和12小时拍照,计算划痕的宽度。
图11至图13,结果表明,重组siMACF1可有效下调靶分子的表达,抑制了细胞的迁移。
本发明通过检测骨肉瘤患者肿瘤组织及正常骨组织样本,发现MACF1在骨肉瘤组织中高表达,且MACF1表达水平与肿瘤细胞迁移及侵袭能力密切相关,提示MACF1可作为骨肉瘤治疗靶点;设计MACF1的siRNA后,以tRNA为支架,嵌合siMACF1序列,在大肠杆菌中表达重组siMACF1。生产的重组siMACF1可以有效干扰骨肉瘤细胞中MACF1基因的表达,同时抑制骨肉瘤细胞的迁移、侵袭能力。
以上所述,仅是本发明的较佳实施例,并非对本发明做任何限制,凡是根据发明技术实质对以上实施例所作的任何简单修改、变更以及等效结构变化,均仍属于本发明技术方案的保护范围内。
序列表
<110> 西北工业大学
西安荣清畅生物科技有限公司
<120> 一种重组siMACF1及其生产方法和应用
<160> 15
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 197
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
nnngcagcga uggccgagug guuaaggcgu uggacuggcc agcugugagu guuucuuaau 60
uuccauuaug ucacgagcuu gugagcaaua guaaggaagg cucgugacau aauggaaauu 120
uagaagugcu gcacguuguu ggcccaaucc aauggggucu ccccgcgcag guucgaaccc 180
ugcucgcugc gccannn 197
<210> 2
<211> 21
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
aauuuccauu augucacgag c 21
<210> 3
<211> 104
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
nnngcagcga uggccgagug guuaaggcgu uggacunnnn nnnnnnnnnn nnaauccaau 60
ggggucuccc cgcgcagguu cgaacccugc ucgcugcgcc annn 104
<210> 4
<211> 109
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
ggccagcugu gaguguuucu uaauuuccau uaugucacga gcuugugagc aauaguaagg 60
aaggcucgug aauauaugga aaucuagaag ugcugcacgu uguuggccc 109
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
gtaacccgtt gaaccccatt 20
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
ccatccaatc ggtagtagcg 20
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
aaccaaggca acccattctt 20
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
actctgctcg ctccagtttc 20
<210> 9
<211> 76
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
gagcagcggc cgggccagct gtgagtgttt cttaatttcc attatgtcac gagcttgtga 60
gcaatagtaa ggaagg 76
<210> 10
<211> 68
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
tgtgacccgc gggggccaac aacgtgcagc acttctaaat ttccattatg tcacgagcct 60
tccttact 68
<210> 11
<211> 17
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
ctcgcttcgg cagcaca 17
<210> 12
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
aacgcttcac gaatttgcgt 20
<210> 13
<211> 50
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
gtcgtatcca gtgcagggtc cgaggtattc gcactggata cgacgctcgt 50
<210> 14
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 14
catgcaaatt tccattatgt cacg 24
<210> 15
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 15
ccagtgcagg gtccgaggta 20

Claims (9)

1.一种重组siMACF1,其特征在于,所述重组siMACF1的序列如SEQ ID NO:1所示,或者为与SEQ ID NO:1所示序列相似度达90%以上的序列。
2.一种如权利要求1所述重组siMACF1的生产方法,其特征在于,包括:以MACF1为靶基因,设计其小干扰RNA siMACF1,将设计的小干扰RNA siMACF1嵌合于tRNA支架,在大肠杆菌中重组表达;所述小干扰RNA siMACF1的序列如SEQ ID NO:2所示。
3.根据权利要求2所述的生产方法,其特征在于,所述tRNA支架的序列为与人丝氨酸tRNA序列相似度达90%以上的序列,所述人丝氨酸tRNA序列如SEQ ID NO:3所示。
4.根据权利要求2所述的生产方法,其特征在于,小干扰RNA siMACF1的前体序列为成熟序列部分被siMACF1序列取代的hsa-miR-34a前体序列,所述小干扰RNA siMACF1的前体序列如SEQ ID NO:4所示。
5.根据权利要求2至4中任一权利要求所述的生产方法,其特征在于,所述生产方法的具体步骤包括:
步骤一、设计合成嵌合siMACF1序列的hsa-miR-34a前体引物;
步骤二、利用pBSMrnaSeph质粒在tRNA反密码子环处具有的酶切位点,将小干扰RNAsiMACF1的前体序列插入pBSMrnaSeph质粒中,构建表达载体;
步骤三、将嵌合目标序列的表达载体转化感受态大肠杆菌;
步骤四、大肠杆菌培养扩增后,提取菌内总RNA,以FPLC分离纯化目标重组siMACF1。
6.一种如权利要求1所述重组siMACF1在制备抑制骨肉瘤细胞中MACF1 mRNA水平及蛋白水平表达的前药、药物、原料药或药物组合物中的应用。
7.一种如权利要求1所述重组siMACF1在制备抑制癌症细胞中MACF1mRNA水平及蛋白水平表达的前药、药物、原料药或药物组合物中的应用。
8.一种如权利要求1所述重组siMACF1在制备抑制骨肉瘤细胞迁移的前药、药物、原料药或药物组合物中的应用。
9.一种如权利要求1所述重组siMACF1在制备治疗MACF1高表达癌症的前药、药物、原料药或药物组合物中的应用。
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