CN110954518B - 一种哑铃型dna/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法及其在定量检测atp中的应用 - Google Patents

一种哑铃型dna/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法及其在定量检测atp中的应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法及其在定量检测ATP中的应用,将5'端磷酸化的DS DNA在T4 DNA连接酶和ATP的作用下,制备得到哑铃型DNA,进一步在哑铃型DNA的基础上制备结合了铜钠米粒子的哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器,并且随着加入的三磷酸腺苷浓度的增大,哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的荧光强度随之增大,从而构建ATP浓度与荧光强度之间的线性关系,实现了对三磷酸腺苷的高灵敏性、特异性的检测,且具有操作简单,灵敏度高,检测限低的优点。

Description

一种哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法及其 在定量检测ATP中的应用
技术领域
本发明属于荧光传感制备技术领域,具体涉及一种哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法及其在定量检测ATP中的应用。
背景技术
三磷酸腺苷(ATP)是一种多功能的核苷酸,它不仅是一个普遍的能源,而且也是一种细胞外信号传导介质,涉及许多生物过程包括膜离子通道,DNA复制,生物合成,也被用作生物体的细胞活性和细胞损伤指标。因此,在生化研究以及临床诊断方面应用广泛,对于ATP的高灵敏和高选择性的检测是必不可少的。目前已经开发了对于ATP检测的策略,许多基于主-客体,肽,共轭聚合物,DNA/RNA适配体和ATP依赖的连接反应,即使有一些方法表现出非常好的分析性能,他们通常涉及到信号标记,且时间比较长,成本较高。基于此,我们通过实验探究设计并提出了一个最佳发光体哑铃型(DS)的DNA模板结构,用来生长CuNPs,以此作为荧光探针,实验ATP的高灵敏检测。
发明内容
为解决上述技术问题,本发明提供了一种哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法及其在定量检测ATP中的应用,将5'端磷酸化的DS DNA在T4 DNA连接酶和ATP的作用下,制备得到哑铃型DNA,进一步在哑铃型DNA的基础上制备结合了铜钠米粒子的哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器,其可实现对于ATP的高灵敏性检测。
本发明采取的技术方案为:
一种哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法,包括以下步骤:
(1)将5'端磷酸化的DS DNA溶液在缓冲溶液中,然后加入T4 DNA连接酶和ATP,反应50~60min,得到哑铃型DNA溶液;
(2)将步骤(1)得到的哑铃型DNA溶液加入到缓冲溶液中,再加入Cu2+溶液和抗血酸钠溶液,混合均匀并反应至少5min,即可得到哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器。
所述5′端磷酸化的DS DNA的基因序列为:
5’-PO4-ATATATATATATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTATATATATATATATATATATATATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTATATATATATAT-3’。
所述步骤(1)之后还包括:向所述的哑铃型DNA溶液中加入Exo I和Exo III,反应60min,然后于80℃孵育5分钟。通过Exo I和Exo III的加入证明本发明制备的哑铃型DNA不会被Exo I和Exo III破坏。
步骤(1)中,所述5′端磷酸化的DS DNA溶液、缓冲溶液、T4 DNA连接酶、ATP的体积之比为50:144:1:5;所述5′端磷酸化的DS DNA溶液的浓度为1μM;所述T4 DNA连接酶的浓度为350U/μL。
所述缓冲溶液为PH=7.6的10mM MOPS缓冲溶液。
步骤(2)中,所述哑铃型DNA溶液、缓冲溶液、Cu2+溶液、抗血酸钠溶液的体积之比为1:1:1:1;所述哑铃型DNA溶液的浓度为1μM;所述Cu2+溶液的浓度为0.8mM;所述抗坏血酸钠的溶液的浓度为8mM。
进一步地,5′端磷酸化的DS DNA、Exo I、Exo III的体积之比为10:1:1。
本发明还提供了所述的制备方法制备得到的哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器在定量检测ATP中的应用。
所述ATP的定量检测方法包括以下步骤:
(a)分别将5′端磷酸化的DS DNA溶液在缓冲溶液中,然后分别加入T4DNA连接酶和不同浓度的ATP,反应50~60min,得到哑铃型DNA溶液;
(b)分别将步骤(1)得到的哑铃型DNA溶液加入到缓冲溶液中,再加入Cu2+溶液和抗血酸钠溶液,混合均匀并反应至少5min,分别得到铜纳米粒子荧光生物传感器;
(c)分别测试步骤(b)得到的各铜纳米粒子荧光生物传感器的荧光强度,以ATP浓度为横坐标,各铜纳米粒子荧光生物传感器在630nm处的荧光强度值为纵坐标作图,构建标准曲线,得到线性方程;
(d)根据标准曲线或者线性方程,即可根据待测ATP重复步骤(a)和(b)制备的铜纳米粒子荧光生物传感器的荧光强度,计算出待测ATP的浓度。
步骤(c)中,设置荧光分光光度计的激发波长和发射波长分别为340nm、630nm。
本发明提供的哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器,基于T4 DNA连接酶和ATP的连接作用,5′端磷酸化的粘性末端在目标物三磷酸腺苷存在的情况下,5′端能与3′端连接起来形成哑铃型DNA,当外切酶Ⅰ和III同时存在时,此哑铃型DNA模板保持完好,不会被破坏。并且在抗坏血酸钠和铜离子的存在下,可在此哑铃型DNA模板上生成铜纳米粒子,以此构建哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器,并且随着加入的三磷酸腺苷浓度的增大,哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的荧光强度随之增大,从而构建ATP浓度与荧光强度之间的线性关系,实现了对三磷酸腺苷的高灵敏性、特异性的检测,且具有操作简单,灵敏度高,检测限低。
与现有技术相比,本发明提供的哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光传感器的制备方法,使用的5'端磷酸化的DS DNA在DNA连接酶和ATP作用下形成哑铃型DNA,操作简单,成本很低,避免任何化学标记和修饰且背景信号低。
附图说明
图1为哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的原理图;
图2为不同ATP浓度下构建的哑铃型DNA/铜纳米粒子的荧光光谱图,a-k所对应的ATP终浓度分别为0.1、1、10、20、50、100、200、500、1000、5000、10000nM;
图3为ATP浓度与哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光强度的线性关系;
图4为哑铃型DNA/铜纳米粒子对于ATP检测的可行性图,a表示DS DNA+100nM ATP+T4 ligase+Exo I+Exo III;b表示DS DNA+Exo I+Exo III;c表示DS DNA+T4 ligase+Exo I+Exo III;
图5为编号为1~4的发夹DNA制备的荧光CuNPs荧光光谱图;
图6为编号为5~8的发夹DNA制备的荧光CuNPs荧光光谱图;
图7为编号为1~4的发夹DNA制备的荧光CuNPs模板结构示意图;
图8为编号为5~8的发夹DNA制备的荧光CuNPs模板结构示意图;
图9为哑铃型DNA/铜纳米粒子的形成时间荧光光谱图;
图10为抗坏血酸钠浓度对哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光影响的荧光光谱图;
图11为铜离子浓度对哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光影响的荧光光谱图;
图12为不同pH值对哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光影响的荧光光谱图;
图13为不同分析物对哑铃型DNA/铜纳米粒子的荧光光谱:空白,GTP,CTP,UTP,ATP及其混合物;
图14为T4 DNA连接酶浓度对哑铃型DNA/铜纳米粒子影响的荧光光谱图;
图15为T4 DNA连接酶的连接时间对哑铃型DNA/铜纳米粒子影响的荧光光谱图。
具体实施方式
下面结合实施例和说明书附图对本发明进行详细说明。
实施例1
一种哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法,包括以下步骤:
(1)将50μL 1μM的5'端磷酸化的DS DNA溶液溶解在34μL PH=7.6的10mM MOPS缓冲溶液中,然后加入1μL 350U/μL T4 DNA连接酶和5μL ATP,并补加PH=7.6的10mM MOPS缓冲溶液至反应体系的体积为200μL,在室温下,50分钟即可发生ATP引发的连接反应,得到哑铃型DNA溶液;
所述5'端磷酸化的DS DNA的基因序列为:
5’-PO4-ATATATATATATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTATATATATATATATATATATATATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTATATATATATAT-3’;
(2)将步骤(1)得到的50μL哑铃型DNA溶液加入到50μL PH=7.6的10mM MOPS缓冲溶液中,再加入50μL 0.8mM CuSO4溶液和50μL 8mM抗血酸钠溶液,混合均匀并反应6min,即可得到哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器,且随步骤(1)中ATP浓度的增大,其荧光强度依次增大,结果如图2所示,进而可以实现对于ATP的定量检测。
实施例2
一种ATP的定量检测方法,其他同实施例1,只是步骤(1)中分别加入不同浓度的ATP,使ATP在反应体系中的终浓度分别为0.1、1、10、20、50、100、200、500、1000、5000、10000nM;
然后分别测试步骤(2)得到的各哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的荧光强度,荧光分光光度计的激发波长和发射波长分别为340nm、630nm。如图2所示,以0~20nM范围内的ATP浓度为横坐标,各哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器在630nm处的荧光强度值为纵坐标作图,构建标准曲线,如图3所示,得到线性方程F=27.06CATP+874.09,其相关系数为R2=0.992;
根据标准曲线或者线性方程,即可根据待测ATP重复步骤(1)和(2)制备的哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的荧光强度,计算出待测ATP的浓度。
实施例3
为了验证哑铃型DNA溶液的稳定性,其他同实施例1,只是固定步骤(1)中的ATP终浓度为100nM,向实施例1的步骤(1)得到的哑铃型DNA溶液中,加入5μL 5U/μL Exo I和5μL200U/μL Exo III,室温下剪切60分钟,60分钟后于80℃孵育5分钟,用于终止降解反应。然后将50μL 8mM抗坏血酸钠加入上述混合液中,充分混合,再将50μL 0.8mM CuSO4加入上述溶液充分混合,于室温下6分钟,检测反应体系的荧光强度,发现所得产物即制备得到的生物传感器依然具有较强的荧光,说明哑铃型DNA结构不会被外切酶剪切,当铜离子与抗坏血酸存在时,依然能够形成荧光铜纳米粒子,其具有较强的荧光强度,如图4中曲线a所示。
并在同样的条件下,分别将50μL 1μM的5'端磷酸化的DS DNA溶液溶解在150μL PH=7.6的10mM MOPS缓冲溶液中,然后加入5μL 5U/μL Exo I和5μL 200U/μL Exo III,室温下剪切60分钟,60分钟后于80℃孵育5分钟,然后将50μL 8mM抗坏血酸钠加入上述混合液中,充分混合,再将50μL 0.8mM CuSO4加入上述溶液充分混合,于室温下6分钟,测试体系的荧光强度,结果如图4中曲线b所示;
并在同样的条件下,分别将50μL 1μM的5'端磷酸化的DS DNA溶液溶解在149μL PH=7.6的10mM MOPS缓冲溶液中,然后加入1μL 350U/μL T4DNA连接酶,反应50分钟,再加入5μL 5U/μL Exo I和5μL 200U/μL Exo III,室温下剪切60分钟,60分钟后于80℃孵育5分钟,然后将50μL 8mM抗坏血酸钠加入上述混合液中,充分混合,再将50μL 0.8mM CuSO4加入上述溶液充分混合,于室温下6分钟,测试体系的荧光强度,结果如图4中曲线c所示;
从图4中曲线b、c可以看出,当没有添加ATP时,5'端磷酸化的DS DNA的5'端与3'端不会连接起来,在外切酶的作用下,会将DS DNA模板剪切,此时没有模板用于生长铜纳米粒子,就不会形成荧光铜纳米粒子,说明只有在ATP的存在下,5'端磷酸化的DS DNA的5'端与3'端才会连接起来,使DS DNA的模板不会被外切酶破坏,提供铜纳米粒子的模板。
实施例4
各反应条件的筛选
4.1DNA模板优化
(1)分别将2μL八个1μM发夹DNA(编号1、2、3、4、5、6、7、8)溶液加入98μL的PH=7.610mM MOPS缓冲溶液中,95℃孵育5分钟,使发夹DNA解螺旋,培养,得到混合溶液;所述发夹DNA溶液制备方法为:将发夹序列溶解在10mM MOPS PH=7.6的缓冲溶液中,使发夹DNA序列的浓度为1μM;
(2)分别在步骤(1)制备的八个发夹DNA溶液中,加入50μL 0.8mM CuSO4溶液和50μL 8mM抗坏血酸钠溶液,培养10分钟,分别测试各反应体系的荧光强度,结果如图5、6所示,从图中可以看出编号5的发夹DNA的荧光强度最大,从而获得最佳发光体,因此选用5'端磷酸化的DS DNA的基因序列为:
5’-PO4-ATATATATATATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTATATATATATATATATATATATATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTATATATATATAT-3’,以通过T4 DNA连接酶和ATP的连接构建哑铃型DNA。
各反应体系所形成的荧光通纳米粒子模板结构示意图如图7、8所示。各发夹DNA的基因序列如下所示:
DNA1,编号1:
3’-GCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGC-5’;
DNA2,编号2:
3’-GCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCTTTTTTTTTTTTTTTCCCCCTTTTTTTTTTTTTTTGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGC-5’;
DNA3,编号3:
3’-GCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCTTTTTTTTTTTTTTTCCCCCCCCCCCCCCCTTTTTTTTTTTTTTTGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGC-5’;
DNA4,编号4:
3’-GCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGC-5’;
DNA5,编号5:
3’-ATATATATATATATATATATATATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTATATATATATATATATATATATAT-5’;
DNA6,编号6:
3’-ATATATATATATATATATATATATGCGCGCGCGCTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTGCGCGCGCGCATATATATATATATATATATATAT-5’;
DNA7,编号7:
3’-ATATATATATATATATATATATATGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCATATATATATATATATATATATAT-5’;
DNA8,编号8:
3’-ATATATATATATATATATATATATGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCGCATATATATATATATATATATATAT-5’。
4.2各反应条件优化
哑铃型DNA/铜纳米粒子的形成时间荧光光谱图如图9所示,从图中可以看出在反应至6min时反应体系的荧光强度已趋于稳定,说明此时已形成稳定的荧光传感器。
抗坏血酸钠终浓度对哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光影响的荧光光谱图如图10所示,从图中可以看出反应体系中抗坏血酸钠终浓度在2mM时反应体系的荧光强度最大,因此反应时抗坏血酸钠终浓度为2mM。
铜离子终浓度对哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光影响的荧光光谱图如图11所示,从图中可以看出反应体系中铜离子终浓度在100mM时反应体系的荧光强度最大,因此反应时铜离子终浓度为100mM。
不同pH值对哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光影响的荧光光谱图,如图12所示,从图中可以看出反应体系pH为7.6时反应体系的荧光强度最大,因此反应时反应所使用的MOPS缓冲溶液的pH为7.6。
不同分析物对哑铃型DNA/铜纳米粒子的荧光光谱,如图13所示,从图中可以看出该反应体系可排除其他物质的干扰。
T4 DNA连接酶终浓度对哑铃型DNA/铜纳米粒子影响的荧光光谱图,如图14所示,从图中可以看出T4 DNA连接酶的终浓度在1.75U/uL时,反应体系的荧光强度趋于稳定,因此反应时加入的T4 DNA连接酶在反应体系中的终浓度为1.75U/uL
T4 DNA连接酶的连接时间对哑铃型DNA/铜纳米粒子影响的荧光光谱图,如图15所示,从图中可以看出加入T4 DNA连接酶后反应50min时,反应体系的荧光强度趋于稳定,因此T4 DNA连接酶和ATP加入后反应50min即可得到稳定的哑铃型DNA。
上述各反应条件,均是在实施例1或3的条件下,固定ATP的浓度为100nM,对单一条件变化后进行的实验。
上述参照实施例对一种哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法及其在定量检测ATP中的应用进行的详细描述,是说明性的而不是限定性的,可按照所限定范围列举出若干个实施例,因此在不脱离本发明总体构思下的变化和修改,应属本发明的保护范围之内。
SEQUENCE LISTING
<110> 安徽师范大学
<120> 一种哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法及其在定量检测ATP
中的应用
<130> 1
<160> 9
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 108
<212> DNA
<213> DS DNA
<400> 1
5'-PO4-atatatatat attttttttt tttttttttt tttttttttt ttatatatat atatatatat 60
atatattttt tttttttttt tttttttttt ttttttatat atatatat-3' 108
<210> 2
<211> 78
<212> DNA
<213> DNA1
<400> 2
5'-gcgcgcgcgc gcgcgcgcgc gcgctttttt tttttttttt tttttttttt ttttgcgcgc 60
gcgcgcgcgc gcgcgcgc-3' 78
<210> 3
<211> 83
<212> DNA
<213> DNA2
<400> 3
5'-gcgcgcgcgc gcgcgcgcgc gcgctttttt tttttttttc cccctttttt tttttttttg 60
cgcgcgcgcg cgcgcgcgcg cgc-3' 83
<210> 4
<211> 93
<212> DNA
<213> DNA3
<400> 4
5'-gcgcgcgcgc gcgcgcgcgc gcgctttttt tttttttttc cccccccccc cccctttttt 60
tttttttttg cgcgcgcgcg cgcgcgcgcg cgc-3' 93
<210> 5
<211> 108
<212> DNA
<213> DNA4
<400> 5
5'-gcgcgcgcgc gcgcgcgcgc gcgctttttt tttttttttt tttttttttt ttttcccccc 60
cccccccccc cccccccccc ccccgcgcgc gcgcgcgcgc gcgcgcgc-3' 108
<210> 6
<211> 78
<212> DNA
<213> DNA5
<400> 6
5'-atatatatat atatatatat atattttttt tttttttttt tttttttttt ttttatatat 60
atatatatat atatatat-3' 78
<210> 7
<211> 98
<212> DNA
<213> DNA6
<400> 7
5'-atatatatat atatatatat atatgcgcgc gcgctttttt tttttttttt tttttttttt 60
ttttgcgcgc gcgcatatat atatatatat atatatat-3' 98
<210> 8
<211> 118
<212> DNA
<213> DNA7
<400> 8
5'-atatatatat atatatatat atatgcgcgc gcgcgcgcgc gcgctttttt tttttttttt 60
tttttttttt ttttgcgcgc gcgcgcgcgc gcgcatatat atatatatat atatatat-3' 118
<210> 9
<211> 138
<212> DNA
<213> DNA8
<400> 9
5'-atatatatat atatatatat atatgcgcgc gcgcgcgcgc gcgcgcgcgc gcgctttttt 60
tttttttttt tttttttttt ttttgcgcgc gcgcgcgcgc gcgcgcgcgc gcgcatatat 120
atatatatat atatatat-3' 138

Claims (8)

1.一种哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将5'端磷酸化的DSDNA溶液在缓冲溶液中,然后加入T4 DNA连接酶和ATP,反应50~60min,得到哑铃型DNA溶液;
(2)将步骤(1)得到的哑铃型DNA溶液加入到缓冲溶液中,再加入Cu2+溶液和抗血酸钠溶液,混合均匀并反应至少5min,即可得到哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器;
所述5′端磷酸化的DSDNA的基因序列为:
5’-PO4-ATATATATATATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTATATATATATATATATATATATATTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTATATATATATAT-3’;
步骤(2)中,所述哑铃型DNA溶液、缓冲溶液、Cu2+溶液、抗血酸钠溶液的体积之比为1:1:1:1。
2.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述步骤(1)之后还包括:向所述的哑铃型DNA溶液中加入Exo I和Exo III,反应60min,然后于80℃孵育5分钟。
3.根据权利要求1或2所述的制备方法,其特征在于,步骤(1)中,所述5′端磷酸化的DSDNA溶液、缓冲溶液、T4 DNA连接酶、ATP的体积之比为50:144:1:5;所述5′端磷酸化的DSDNA溶液的浓度为1μM;所述T4 DNA连接酶的浓度为350U/μL。
4.根据权利要求1或2所述的制备方法,其特征在于,所述缓冲溶液为PH=7.6的10mMMOPS缓冲溶液。
5.根据权利要求2所述的制备方法,其特征在于,5′端磷酸化的DS DNA、Exo I、Exo III的体积之比为10:1:1。
6.如权利要求1-5任意一项所述的制备方法制备得到的哑铃型DNA/铜纳米粒子荧光生物传感器在定量检测ATP中的应用。
7.根据权利要求6所述的应用,其特征在于,ATP的定量检测方法包括以下步骤:
(a)分别将5′端磷酸化的DSDNA溶液在缓冲溶液中,然后分别加入T4 DNA连接酶和不同浓度的ATP,反应50~60min,得到哑铃型DNA溶液;
(b)分别将步骤(1)得到的哑铃型DNA溶液加入到缓冲溶液中,再加入Cu2+溶液和抗血酸钠溶液,混合均匀并反应至少5min,分别得到铜纳米粒子荧光生物传感器;
(c)分别测试步骤(b)得到的各铜纳米粒子荧光生物传感器的荧光强度,以ATP浓度为横坐标,各铜纳米粒子荧光生物传感器在630nm处的荧光强度值为纵坐标作图,构建标准曲线,得到线性方程;
(d)根据标准曲线或者线性方程,即可根据待测ATP重复步骤(a)和(b)制备的铜纳米粒子荧光生物传感器的荧光强度,计算出待测ATP的浓度。
8.根据权利要求7所述的应用,其特征在于,步骤(c)中,设置荧光分光光度计的激发波长和发射波长分别为340nm、630nm。
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