CN110845595A - 一种固相合成5-tmara标记的铁调素-25的方法 - Google Patents
一种固相合成5-tmara标记的铁调素-25的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN110845595A CN110845595A CN201911115611.XA CN201911115611A CN110845595A CN 110845595 A CN110845595 A CN 110845595A CN 201911115611 A CN201911115611 A CN 201911115611A CN 110845595 A CN110845595 A CN 110845595A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- solution
- tmara
- polypeptide
- hepcidin
- amino acid
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/46—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
- C07K14/47—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
- C07K14/4701—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals not used
- C07K14/4702—Regulators; Modulating activity
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
- Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
- Y02P20/55—Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups
Abstract
本发明是一种固相合成5‑TMARA标记的铁调素‑25的方法,属多肽合成技术领域。其步骤如下:合成铁调素‑25多肽链;5‑TMARA标记多肽;使用含有2%水合肼的DMF溶液去除21号赖氨酸残基上的Dde侧链保护基团,将5‑TMARA荧光标记物连接到21号赖氨酸残基上;除去侧链保护基和从树脂上移除多肽;还原剂的制备和多肽的还原;纯化和折叠粗多肽溶液;纯化得到多肽5‑TMARA标记的铁调素‑25。本发明方法采用固相合成,操作简单,可在实验室大量制备铁调素‑25,所制得的铁调素‑25纯度高,方法合成周期短,5‑TMARA标记的铁调素可用于后期生物体内的跟踪实验。
Description
技术领域
本发明涉及多肽的合成方法,特别是一种固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,属于多肽制备技术领域。
背景技术
铁调素是人体内的一种铁平衡调节多肽。活性多肽铁调素-25主要是在肝脏中产生,通过蛋白质溶解切割前铁调素的C-端的25个氨基酸所产生的。随后,N-端的铁调素-25转化为更小的多肽(大约20~24个氨基酸),这些多肽活性更低并且在尿液中累积。目前有多项研究已把铁调素作为炎症性贫血的潜在生物标记物,使其在恶性贫血检测方面具有重要意义。现有技术中多是采用基因工程制备多肽,其缺陷主要体现在:
1.成本高且时间周期长,不适实验室制备;
2.技术不成熟,失败率高;
3.分子量小的多肽纯化困难,酶切后多肽难回收;
4.质量控制难度较大。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是针对现有技术的不足,提供一种高收率、低成本、反应条件温和、可在实验室大量制备,有利于进行生物体内跟踪实验的荧光标记的铁调素的合成方法。
本发明所要解决的技术问题是通过以下的技术方案来实现的。本发明是一种固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特点是,其步骤如下:
(1)合成铁调素-25多肽链:使用含有20%哌啶的DMF溶液去除氨基酸的保护基团使其暴露氨基;将被保护的氨基酸活化后加入使其与上一个氨基酸的游离氨基连接;重复此步骤25次得到含有25个氨基酸残基的肽链;使用含有20%哌啶的DMF溶液去除最后一个氨基酸的保护基团使其暴露末端氨基,使用BOC保护基团保护末端游离的氨基;
(2)5-TMARA标记多肽;使用含有2%水合肼的DMF溶液去除21号赖氨酸残基上的Dde侧链保护基团,将5-TMARA荧光标记物连接到21号赖氨酸残基上;
(3)除去侧链保护基和从树脂上移除多肽:去除所有的侧链保护基团并将多肽链从树脂上切除;
(4)还原剂的制备和多肽的还原:还原多肽链避免暴露在空气中形成二硫键;
(5)纯化和折叠粗多肽溶液;将肽链加入配好的反应液中使其折叠并形成链内二硫键;纯化得到多肽5-TMARA标记的铁调素-25。
本发明所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其进一步优选的技术方案是,步骤(1)合成铁调素-25多肽链的具体步骤如下:
1)取干燥的Fmoc-Thr(tBu)-Wang树脂装柱;向柱中加入DMF并在旋转仪上转动,待树脂溶胀后,通过真空抽滤除去溶液并使用DMF再次洗涤树脂;随后加入含有20%哌啶的DMF溶液并将柱子旋转除去Fmoc基团;氨基酸脱保护后使用DMF洗涤若干次以确保树脂中没有残留的哌啶;
2)将适量的氨基酸和HBTU溶解在无水DMF中,然后加入适量的TMR,搅拌使其充分活化;将反应溶液加入到准备好的树脂中,并将柱子放在旋转仪上旋转反应;使用DIC和Oxyma进行活化步骤,链接完一个氨基酸残基后,通过TNBS试验测试树脂,以确保所有上一个氨基酸游离的N-末端氨基与下一个氨基酸的羧基连接;
3)根据铁调素-25的序列,对每个随后的氨基酸重复上述循环;完成肽链的合成后,加入含有20%哌啶的DMF溶液以除去肽链末端Fmoc-基团,并通过使用DIPCDI和Oxyma将Boc-基团与末端氨基酸连接。
本发明所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其进一步优选的技术方案是,通过TNBS试验即一滴Picrylsulfonic acid和一滴N,N'-二异丙基乙胺测试树脂以确保所有Fmoc基团都被去除。
本发明所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其进一步优选的技术方案是,活化时,氨基酸、HBTU、无水DMF和TMR的用量比为:1.2mmol:1.2mmol:2.6ml:2.4mol。
本发明所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其进一步优选的技术方案是,步骤(2)5-TMARA标记多肽的具体步骤如下:
用含有2%水合肼的DMF溶液除去第21个氨基酸Fmoc-Lys(Dde)-OH的Dde侧链保护基;使用DMF洗涤4次以确保树脂没有残留的水合肼,再使用纯DMF洗涤树脂以确保柱中没有残留的水;最后向柱中加入过量的5-TMARA,适量的氧化胺、DIC和DMF溶液,将柱轻轻旋转24小时。
本发明所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其进一步优选的技术方案是,步骤(3)除去侧链保护基和从树脂上移除多肽具体步骤如下:
用DMF洗去残留的5-TMARA,Oxyma和DIPCDI后,用甲醇和乙醚洗涤树脂以收缩树脂,再将柱子真空干燥;按水/苯酚/DODT/TFA/茴香硫醚/三乙基硅烷:500μl/50mg/500μl/250μl/8.25ml/100μl组成的裂解溶液并加入到干燥的树脂中,混合,静置;反应结束后,将裂解混合物过滤到离心管中,并将乙醚加入离心管中进行离心提取肽链,并使用乙醚离心洗涤肽链3次,每次5分钟,3500rpm;最后将提取的肽链溶解于0.1%TFA/水中并冷冻干燥。
本发明所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其进一步优选的技术方案是,步骤(4)还原剂的制备和多肽的还原的具体步骤如下:
将6M盐酸胍,10mM EDTA和0.5M Tris溶解于500ml的水中,搅拌溶液直至溶液温度达到室温;然后通过pH/离子计测量溶液pH,并通过滴加6M HCL溶液将其调节至8.0;将500ml还原缓冲液移入1L容量瓶中,加入水,得到1L还原缓冲液;将粗肽和还原缓冲液放入锥形烧瓶中,并将氮气通入溶液中;搅拌溶液并将DTT加入溶液中;通过使用pH测试条测量溶液的pH,并通过滴加6M HCL溶液将溶液pH调节至2-3;还原反应时间持续24小时。
本发明所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其进一步优选的技术方案是,步骤(5)纯化和折叠粗多肽溶液的具体步骤如下:
使用C18反相柱纯化肽,并使用泵控制流速使其保持在20ml/min;用甲醇和0.1%TFA/水洗涤柱以排出气泡;然后加入肽溶液并使用0.1%TFA/水洗掉所有的盐类;使用15%乙腈和85%TFA/水溶液洗去残留的出肽链以外化合物;用60%乙腈和40%TFA/水溶液提取肽;将肽链收集到圆底烧瓶中,并将烧瓶在40℃下旋转蒸发以排除所有乙腈;将适量的盐酸胍,Tris和EDTA加入装有水的玻璃广口瓶中,放置溶液直至溶液温度达到室温;通过pH/离子计测量溶液pH,并滴加6M HCL溶液将其pH调节至7.4;然后将适量的氧化型谷胱甘肽/还原型谷胱甘肽加入缓冲液中;最后,将肽链加入折叠缓冲液中,并将溶液在室温下放置3天。
本发明所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其进一步优选的技术方案是,用以下方法进行高效液相色谱纯化多肽和质谱表征:
折叠后,使用相同的C18反相柱和洗脱液除去离子和氧化剂;将肽溶液收集到圆底烧瓶中,旋转蒸发烧瓶以排除所有乙腈;然后将肽溶液冷冻干燥冷冻储存;将少量的折叠后多肽链使用HPLC纯化,并选择最纯的样品的进行质谱分析;洗脱液的梯度模式为:0到1分钟,0%B缓冲液;1到3分钟,B缓冲液从0增加到20%;3到5分钟,B缓冲液保持20%;5到25分钟,B缓冲液从20%增加到60%;25到27分钟,B缓冲液从60%增加到90%;27到28分钟,B缓冲液保持90%;28到29分钟,B缓冲液减少90%至0%;29至30分钟,B缓冲液保持0%。A缓冲液:90%水和10%甲醇;B缓冲液:90%甲醇和10%水。
与现有技术相比,本发明具有以下有益效果:
本发明方法采用固相合成,操作简单,可在实验室大量制备铁调素-25,所制得的铁调素-25纯度高,方法合成周期短,5-TMARA标记的铁调素可用于后期生物体内的跟踪实验。
附图说明
图1为本发明合成方法的合成总路线图;
图2为纯化后的TMARA标记的铁调素-25的HPLC图;保留时间为14.3min,紫外波长为220nm。反相高效液相色谱条件:Poroshell 120C18 column(2.1×50nm,2.7mcm)。
具体实施方式
以下进一步描述本发明的具体技术方案,以便于本领域的技术人员进一步地理解本发明,而不构成对其权利的限制。
实施例1,固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法:
合成路线图参照图1,其步骤如下:
1)合成铁调素-25多肽链
称取1.0g干燥的Fmoc-Thr(tBu)-Wang树脂(0.30mmol/g)装柱。然后,向柱中加入DMF并在旋转仪上转动15min,待树脂溶胀后,通过真空抽滤除去溶液并使用DMF再次洗涤树脂。随后加入含有20%哌啶的DMF溶液并将柱子轻轻旋转10分钟除去Fmoc基团。氨基酸脱保护后使用DMF洗涤四次以确保树脂中没有残留的哌啶,然后通过TNBS试验(一滴Picrylsulfonic acid和一滴N,N'-二异丙基乙胺)测试树脂以确保所有Fmoc基团都被去除。最后,使用纯DMF进行洗涤以确保柱中没有残留的水。
将1.2mmol氨基酸和1.2mmol HBTU溶解在2.6ml无水DMF中,然后加入2.4mol TMR。搅拌反应溶液90s使其充分活化。最后,将反应溶液加入到准备好的的树脂中,并将柱子放在旋转仪上旋转反应1小时。
Fmoc-Cys-OH和Fmoc-His(Trt)-OH不能在碱性环境中活化,因此使用DIC和Oxyma进行活化步骤。链接完一个氨基酸残基后,通过TNBS试验测试树脂,以确保所有上一个氨基酸游离的N-末端氨基与下一个氨基酸的羧基连接。根据铁调素的序列,对每个随后的氨基酸重复该循环。完成肽链的合成后,加入含有20%哌啶的DMF溶液以除去肽链末端Fmoc-基团,并通过使用DIPCDI和Oxyma将Boc-基团与末端氨基酸连接。
去除Fmoc保护基团的机理路线如下路线1:
使用TMP和HCTU活化氨基酸的机理路线如下路线2:
路线2中,R1为任意氨基酸的侧链,如:丝氨酸,赖氨酸,脯氨酸,天冬氨酸等人体中的20种氨基酸。
使用DIC和Oxyma活化氨基酸的机理路线如下路线3:
路线3中,R1、R2为任意氨基酸的侧链,如:丝氨酸,赖氨酸,脯氨酸,天冬氨酸等人体中20氨基酸,R1、R2可以为一种氨基酸侧链。
肽键形成的机理路线如下路线4:
路线4中,R1、R2为任意氨基酸的侧链,如:丝氨酸,赖氨酸,脯氨酸,天冬氨酸等人体中20氨基酸,R1、R2可以为一种氨基酸侧链。
2)5-羧四甲基罗丹明(5-TMARA)标记多肽
合成步骤结束后,用含有2%水合肼的DMF溶液除去第21个氨基酸(Fmoc-Lys(Dde)-OH)的Dde侧链保护基。随后,使用DMF洗涤四次以确保树脂没有残留的水合肼,再使用纯DMF洗涤树脂以确保柱中没有残留的水。最后向柱中加入0.6mmol 5-羧四甲基罗丹明(2过量),0.6mmol氧化胺,0.6mmol DIC和合适的适量的DMF溶液(确保树脂可以流动)并将柱轻轻旋转24小时。5-羧四甲基罗丹明(5-TMARA,CAS号:91809-66-4)的结构式如下:
5-TMARA是5(6)-TMARA纯化后的产物,由于5-TMARA和6-TMARA的共轭略有不同所以生物特性亦不同,相比于5(6)-TMARA,5-TMARA的实验可重复性更强。
去除Lys21的Dde保护基团的机理路线如下路线5:
路线5中:R1为21号赖氨酸残基左侧的肽链,R2为21号赖氨酸残基右侧的肽链。
3)除去侧链保护基和从树脂上移除多肽
用DMF洗去残留的5-TMARA,Oxyma和DIPCDI后,用甲醇和乙醚洗涤树脂以收缩树脂。之后,将柱子放入真空中3小时进行干燥。裂解溶液按括号中的顺序制备完成后(水/苯酚/DODT/TFA/茴香硫醚/三乙基硅烷:500μl/50mg/500μl/250μl/8.25ml/100μl)立即加入到干燥的树脂中,轻轻混合30秒并静置3小时。反应结束后,将裂解混合物过滤到离心管中,并将乙醚加入离心管中进行离心提取肽链,并使用乙醚离心洗涤肽链三次(3500r,5分钟)。最后将提取的肽链溶解于0.1%TFA/水中并冷冻干燥。
裂解溶液去除所用侧链保护基团的机理路线如下路线6:
路线6中:R1为丝氨酸残基左侧的肽链,R2为丝氨酸残基右侧的肽链,S1为侧链保护基团,如叔丁氧基羰基保护基,苄氧羰基保护基,叔丁基保护基等侧链保护基团。
将6M盐酸胍,10mM EDTA和0.5M Tris溶解于500ml的水中,搅拌溶液直至溶液温度达到室温。然后通过PH/离子计测量溶液PH,并通过滴加6M HCL溶液将其调节至8.0。将500ml还原缓冲液移入1L容量瓶中,加入水,得到1L还原缓冲液。将粗肽和还原缓冲液放入锥形烧瓶中,并将氮气通入溶液中。搅拌溶液并将DTT(约50mg)加入溶液中。通过使用pH测试条测量溶液的PH,并通过滴加6M HCL溶液将溶液pH调节至约2-3。该还原反应需要持续24小时。
5)纯化和折叠粗多肽溶液
使用C18反相柱纯化肽,并使用泵控制流速使其保持在20ml/min。先使用200μl甲醇和200ml 0.1%TFA/水洗涤柱以排出气泡。然后加入肽溶液并使用500ml 0.1%TFA/水洗掉所有的盐类。再使用200ml 15%乙腈和85%TFA/水溶液(0.1%vol/vol)洗去残留的出肽链以外化合物。最后,使用200ml 60%乙腈和40%TFA/水溶液(0.1%vol/vol)提取肽。将肽链收集到200ml圆底烧瓶中,并将烧瓶在40℃下旋转蒸发以排除所有乙腈。将20mol盐酸胍,1molTris和0.1molEDTA加入装有10L水的玻璃广口瓶中,放置溶液直至溶液温度达到室温。通过pH/离子计测量溶液PH,并滴加6M HCL溶液将其pH调节至7.4。然后将适量的氧化型谷胱甘肽/还原型谷胱甘肽加入缓冲液中。最后,将肽链加入折叠缓冲液中,并将溶液在室温下放置3天。
使用GSSG/GSH折叠肽链的机理路线如下路线7:
路线7中:R1,R2,R3为合成的铁调素肽链中的不同片段,R1和R2片段间有一个半胱氨酸残基,R1和R3片段间有一个半胱氨酸残基。
6)用高效液相色谱纯化多肽和质谱表征
折叠后,使用相同的C18反相柱和洗脱液除去离子和氧化剂。将肽溶液收集到圆底烧瓶中,旋转蒸发烧瓶以排除所有乙腈。然后,将肽溶液冷冻干燥并放入冷冻储存。先将少量的折叠后多肽链使用HPLC纯化,并选择最纯的样品的进行质谱分析。得到的HPLC洗脱梯度将用于后续的大规模纯化(使用大型的C18硅胶柱并用三相泵进行控制)。洗脱液的梯度模式为:0到1分钟,0%B缓冲液;1到3分钟,B缓冲液从0增加到20%;3到5分钟,B缓冲液保持20%;5到25分钟,B缓冲液从20%增加到60%;25到27分钟,B缓冲液从60%增加到90%;27到28分钟,B缓冲液保持90%;28到29分钟,B缓冲液减少90%至0%;29至30分钟,B缓冲液保持0%。A缓冲液:90%水和10%甲醇;B缓冲液:90%甲醇和10%水。纯化后的TMARA标记的铁调素-25的HPLC图参照图2。
Claims (9)
1.一种固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特征在于,其步骤如下:
(1)合成铁调素-25多肽链:使用含有20%哌啶的DMF溶液去除氨基酸的保护基团使其暴露氨基;将被保护的氨基酸活化后加入使其与上一个氨基酸的游离氨基连接;重复此步骤25次得到含有25个氨基酸残基的肽链;使用含有20%哌啶的DMF溶液去除最后一个氨基酸的保护基团使其暴露末端氨基,使用BOC保护基团保护末端游离的氨基;
(2)5-TMARA标记多肽;使用含有2%水合肼的DMF溶液去除21号赖氨酸残基上的Dde侧链保护基团,将5-TMARA荧光标记物连接到21号赖氨酸残基上;
(3)除去侧链保护基和从树脂上移除多肽:去除所有的侧链保护基团并将多肽链从树脂上切除;
(4)还原剂的制备和多肽的还原:还原多肽链避免暴露在空气中形成二硫键;
(5)纯化和折叠粗多肽溶液;将肽链加入配好的反应液中使其折叠并形成链内二硫键;纯化得到多肽5-TMARA标记的铁调素-25。
2.根据权利要求1所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特征在于,步骤(1)合成铁调素-25多肽链的具体步骤如下:
1)取干燥的Fmoc-Thr(tBu)-Wang树脂装柱;向柱中加入DMF并在旋转仪上转动,待树脂溶胀后,通过真空抽滤除去溶液并使用DMF再次洗涤树脂;随后加入含有20%哌啶的DMF溶液并将柱子旋转除去Fmoc基团;氨基酸脱保护后使用DMF洗涤若干次以确保树脂中没有残留的哌啶;
2)将适量的氨基酸和HBTU溶解在无水DMF中,然后加入适量的TMR,搅拌使其充分活化;将反应溶液加入到准备好的树脂中,并将柱子放在旋转仪上旋转反应;使用DIC和Oxyma进行活化步骤,链接完一个氨基酸残基后,通过TNBS试验测试树脂,以确保所有上一个氨基酸游离的N-末端氨基与下一个氨基酸的羧基连接;
3)根据铁调素-25的序列,对每个随后的氨基酸重复上述循环;完成肽链的合成后,加入含有20%哌啶的DMF溶液以除去肽链末端Fmoc-基团,并通过使用DIPCDI和Oxyma将Boc-基团与末端氨基酸连接。
3.根据权利要求2所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特征在于,通过TNBS试验即一滴Picrylsulfonic acid和一滴N,N'-二异丙基乙胺测试树脂以确保所有Fmoc基团都被去除。
4.根据权利要求2所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特征在于,活化时,氨基酸、HBTU、无水DMF和TMR的用量比为:1.2mmol:1.2mmol:2.6ml:2.4mol。
5.根据权利要求1所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特征在于,步骤(2)5-TMARA标记多肽的具体步骤如下:
用含有2%水合肼的DMF溶液除去第21个氨基酸Fmoc-Lys(Dde)-OH的Dde侧链保护基;使用DMF洗涤4次以确保树脂没有残留的水合肼,再使用纯DMF洗涤树脂以确保柱中没有残留的水;最后向柱中加入过量的5-TMARA,适量的氧化胺、DIC和DMF溶液,将柱轻轻旋转24小时。
6.根据权利要求1所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特征在于,步骤(3)除去侧链保护基和从树脂上移除多肽具体步骤如下:
用DMF洗去残留的5-TMARA,Oxyma和DIPCDI后,用甲醇和乙醚洗涤树脂以收缩树脂,再将柱子真空干燥;按水/苯酚/DODT/TFA/茴香硫醚/三乙基硅烷:500μl/50mg/500μl/250μl/8.25ml/100μl组成的裂解溶液并加入到干燥的树脂中,混合,静置;反应结束后,将裂解混合物过滤到离心管中,并将乙醚加入离心管中进行离心提取肽链,并使用乙醚离心洗涤肽链3次,每次5分钟,3500rpm;最后将提取的肽链溶解于0.1%TFA/水中并冷冻干燥。
7.根据权利要求1所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特征在于,步骤(4)还原剂的制备和多肽的还原的具体步骤如下:
将6M盐酸胍,10mM EDTA和0.5M Tris溶解于500ml的水中,搅拌溶液直至溶液温度达到室温;然后通过pH/离子计测量溶液pH,并通过滴加6M HCL溶液将其调节至8.0;将500ml还原缓冲液移入1L容量瓶中,加入水,得到1L还原缓冲液;将粗肽和还原缓冲液放入锥形烧瓶中,并将氮气通入溶液中;搅拌溶液并将DTT加入溶液中;通过使用pH测试条测量溶液的pH,并通过滴加6M HCL溶液将溶液pH调节至2-3;还原反应时间持续24小时。
8.根据权利要求1所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特征在于,步骤(5)纯化和折叠粗多肽溶液的具体步骤如下:
使用C18反相柱纯化肽,并使用泵控制流速使其保持在20ml/min;用甲醇和0.1%TFA/水洗涤柱以排出气泡;然后加入肽溶液并使用0.1%TFA/水洗掉所有的盐类;使用15%乙腈和85%TFA/水溶液洗去残留的出肽链以外化合物;用60%乙腈和40%TFA/水溶液提取肽;将肽链收集到圆底烧瓶中,并将烧瓶在40℃下旋转蒸发以排除所有乙腈;将适量的盐酸胍,Tris和EDTA加入装有水的玻璃广口瓶中,放置溶液直至溶液温度达到室温;通过pH/离子计测量溶液pH,并滴加6M HCL溶液将其pH调节至7.4;然后将适量的氧化型谷胱甘肽/还原型谷胱甘肽加入缓冲液中;最后,将肽链加入折叠缓冲液中,并将溶液在室温下放置3天。
9.根据权利要求1所述的固相合成5-TMARA标记的铁调素-25的方法,其特征在于,用以下方法进行高效液相色谱纯化多肽和质谱表征:
折叠后,使用相同的C18反相柱和洗脱液除去离子和氧化剂;将肽溶液收集到圆底烧瓶中,旋转蒸发烧瓶以排除所有乙腈;然后将肽溶液冷冻干燥冷冻储存;将少量的折叠后多肽链使用HPLC纯化,并选择最纯的样品的进行质谱分析;洗脱液的梯度模式为:0到1分钟,0%B缓冲液;1到3分钟,B缓冲液从0增加到20%;3到5分钟,B缓冲液保持20%;5到25分钟,B缓冲液从20%增加到60%;25到27分钟,B缓冲液从60%增加到90%;27到28分钟,B缓冲液保持90%;28到29分钟,B缓冲液减少90%至0%;29至30分钟,B缓冲液保持0%。A缓冲液:90%水和10%甲醇;B缓冲液:90%甲醇和10%水。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201911115611.XA CN110845595A (zh) | 2019-11-14 | 2019-11-14 | 一种固相合成5-tmara标记的铁调素-25的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201911115611.XA CN110845595A (zh) | 2019-11-14 | 2019-11-14 | 一种固相合成5-tmara标记的铁调素-25的方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN110845595A true CN110845595A (zh) | 2020-02-28 |
Family
ID=69600993
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201911115611.XA Pending CN110845595A (zh) | 2019-11-14 | 2019-11-14 | 一种固相合成5-tmara标记的铁调素-25的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN110845595A (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113817043A (zh) * | 2021-09-22 | 2021-12-21 | 清华大学 | 制备活性铁调节激素的方法 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1449406A (zh) * | 2000-11-27 | 2003-10-15 | Rmf迪克塔吉恩有限公司 | 对化学合成多肽进行折叠的方法 |
US20040018579A1 (en) * | 2000-10-04 | 2004-01-29 | Neil Cook | Dye-labelled peptide and method |
US20060134691A1 (en) * | 2002-12-05 | 2006-06-22 | Manfred Auer | Labeling methodology comprising oligopeptides |
-
2019
- 2019-11-14 CN CN201911115611.XA patent/CN110845595A/zh active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20040018579A1 (en) * | 2000-10-04 | 2004-01-29 | Neil Cook | Dye-labelled peptide and method |
CN1449406A (zh) * | 2000-11-27 | 2003-10-15 | Rmf迪克塔吉恩有限公司 | 对化学合成多肽进行折叠的方法 |
US20060134691A1 (en) * | 2002-12-05 | 2006-06-22 | Manfred Auer | Labeling methodology comprising oligopeptides |
Non-Patent Citations (8)
Title |
---|
ANDREI LOAS等: "Solid-phase synthesis provides a modular, lysinebased platform for fluorescent discrimination of nitroxyl and biological thiols", 《CHEM. SCI.》 * |
JINGWEN ZHANG等: "Oxidative folding of hepcidin at acidic pH", 《BIOPOLYMERS (PEPT. SCI.)》 * |
RAMON SUBIRÓS-FUNOSAS等: "Oxyma: An Efficient Additive for Peptide Synthesis to Replace the Benzotriazole-Based HOBt and HOAt with a Lower Risk of Explosion", 《CHEM. EUR. J.》 * |
T2024 TNBS TEST KIT: "T2024 TNBS Test Kit", 《T2024 TNBS TEST KIT》 * |
XIAO LUO等: "Efficient oxidative folding and site-specific labeling of human hepcidin to study its interaction with receptor ferroportin", 《FEBS JOURNAL》 * |
徐凤彩主编: "《酶工程》", 30 June 2001 * |
格林等著,华东理工大学有机化学教研组译: "《有机合成中的保护基》", 31 October 2004, 华东理工大学出版社 * |
黄长干 等: "《有机合成化学》", 31 August 2017, 合肥工业大学出版社 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113817043A (zh) * | 2021-09-22 | 2021-12-21 | 清华大学 | 制备活性铁调节激素的方法 |
CN113817043B (zh) * | 2021-09-22 | 2023-07-25 | 清华大学 | 制备活性铁调节激素的方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP4405594B2 (ja) | 改良型固相ペプチド合成及びかかる合成において利用するための試薬 | |
EP3266792B1 (en) | Peptide synthesis method | |
JP6991196B2 (ja) | グルカゴン様ペプチドを製造するための方法 | |
CN110294800B (zh) | 一种索玛鲁肽的制备方法 | |
WO2019120639A1 (en) | Solid phase synthesis of acylated peptides | |
JP2022517834A (ja) | Gip/glp1デュアルアゴニストを調製するためのプロセス | |
ES2426125T3 (es) | Nuevos compuestos octapeptídicos derivados de la somatostatina y su uso terapéutico | |
CN111670194B (zh) | 制备胰高血糖素肽 | |
CN113801197B (zh) | 一种普卡那肽的制备方法 | |
US8377891B2 (en) | Process for synthesis of cyclic octapeptide | |
CN105001298B (zh) | 一种难溶多肽的合成‑分离纯化方法 | |
CN104861045A (zh) | 环肽化合物gg6f及其制备方法 | |
Nilsson et al. | Synthesis and purification of amyloidogenic peptides | |
CN109180803B (zh) | 生长抑素及其制备方法和药物组合物 | |
CN110845595A (zh) | 一种固相合成5-tmara标记的铁调素-25的方法 | |
CN112585153B (zh) | 一种化合物或其盐及其制备方法与应用 | |
CN104356221B (zh) | 一种制备培西加南的方法 | |
Bark et al. | Fluorescent indicators of peptide cleavage in the trafficking compartments of living cells: Peptides site-specifically labeled with two dyes | |
Drijfhout et al. | Solid-phase synthesis and applications of N-(S-acetylmercaptoacetyl) peptides | |
Schneider et al. | Antigen Synthesis: The Preparation of Selected Dodecapeptide Carriers with Systematically Altered Structures by a Two‐Phase Method | |
WO2013046233A2 (en) | Process for the preparation of octreotide acetate | |
Sabatier | Chemical synthesis and characterization of small proteins: example of scorpion toxins | |
CN114324669B (zh) | 一种鲑鱼促性腺激素释放激素类似物中l-精氨酸残留量的柱前手性衍生测定方法 | |
CA2534143A1 (en) | Method of peptide synthesis | |
CN115873073A (zh) | 一种普卡那肽的制备方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination |