CN110810032A - 一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，包括以下步骤：S1：外植体取材和消毒处理；S2：启动培养（初代培养）；S3：增殖培养（诱导侧芽萌发伸长），S4：过渡培养；S5：微扦插，涉及红枫微扦插技术领域。该日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，结合组培快繁和传统扦插两种技术的优势，进行互补，采用此技术方法进行大规模苗木生产，其成本较完全采用组培快繁大大降低，较完全采用传统扦插又实现了扩繁周期短、扩繁系数高、生根率高和成苗率高，采用此技术方法进行日本红枫苗木规模化生产，生产成本低。
Description
技术领域
本发明涉及红枫微扦插技术领域，具体为一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法。
背景技术
日本红枫橙之梦，为落叶乔木，枝干常年呈红色，新叶橙黄色，夏季为黄红色，秋季叶片呈现灿烂的金色，春天新叶亮黄色，边缘为橙红。夏季叶片变为浅绿到黄绿。秋季叶片颜色又变为亮黄到橙色。叶片为5裂叶，裂深，边缘有浅齿，喜光、耐高温、耐寒性强、适应性强，尤其耐臭氧和二氧化硫。
现有的传统的日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术往往扩繁周期长、扩繁系数低、生根率低和成苗率低，单株小苗的生产成本较高，不适合较大规模的苗木生产。
发明内容
（一）解决的技术问题
针对现有技术的不足，本发明提供了一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，解决了现有的传统的日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术往往扩繁周期长、扩繁系数低、生根率低和成苗率低，单株小苗的生产成本较高，不适合较大规模的苗木生产的问题。
（二）技术方案
为实现以上目的，本发明通过以下技术方案予以实现：一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，包括以下步骤：
S1：外植体取材和消毒处理：
S11：选取无病虫害、生长旺盛的橙之梦优良单株于3月份开始恢复生长时，将其放到温室内养护，每隔一周叶面喷洒一次0.3%-0.5%的多菌灵溶液，直至4月份左右，待新芽抽出后，剪取其中半木质化的嫩茎作为外植体材料，将叶片沿叶柄基部切去，嫩茎切成小段（每段有一个休眠腋芽），用清水反复冲洗3-4次，最后无菌水冲洗干净，备用；
S12：将以上处理过备用的小段在超净工作台中先用70%-75%的酒精溶液消毒30-45s，倒掉酒精后，再用0.1%的升汞溶液消毒5-10min，倒掉消毒液，最后用无菌水反复冲洗4-5次，无菌水冲洗和消毒处理的过程中，需不间断地摇动，以保证无菌水和消毒液能够完全与外植体接触，提高消毒效率；
S2：启动培养（初代培养）
S21：在超净工作台中，用无菌刀片先把消毒处理过的小段最下端切口褐化的部分切去，迅速将腋芽茎段的芽向上接种到启动培养基上；
S3：增殖培养（诱导侧芽萌发伸长）
S31：启动培养约20d以后，休眠的腋芽萌发，抽出新的枝条，将新萌发的幼嫩枝条沿腋芽基部切下，接种到增殖培养基上；
S4：过渡培养
S41：增殖培养约45-60d以后，侧芽大量萌发、伸长，将伸长的侧芽枝条切下，接种到过渡培养基上；
S5：微扦插
S51：过渡培养15-20d以后，将瓶苗移到扦插温室的苗床上自然光环境下缓苗7d左右,缓苗第3d开始，慢慢打开培养瓶的瓶盖，7d后，将未生根的小苗从培养瓶中取出，轻轻切除基部愈伤块，然后马上速蘸生根剂（500ppmNAA+1000ppmIAA的混合液）5s，轻轻插入生根基质中（珍珠岩：泥炭=1:1，v/v，移栽前1周左右，用0.8%高锰酸钾溶液消毒处理），然后用0.3%多菌灵溶液对移栽的小苗和基质表面进行均匀喷施，以基质完全浸湿为宜，然后用塑料薄膜做成封闭的小拱棚，进行保温保湿40d（温度35-40℃，相对湿度80%）左右，过程中要适时关注拱棚内温度和湿度，并观察小苗的生长状态，根据其状态调整温度和湿度，待小苗长出须状根并恢复健壮生长后，将小拱棚的两端打开，缓慢放风，约1周后，将小拱棚完全打开，使其在自然条件下生长。
优选的，所述S1中冲洗完成的嫩茎需用0.3%的新洁尔灭消毒液消毒0.5-1小时。
优选的，所述S21中启动培养基的培养条件为：温度25±2℃，光照时间为12h/d，光照强度为2000-2500Lx，湿度为60%-65%。
优选的，所述S21中启动培养基为：wpm+0.15-0.2mg/L激动素（KT）+0.01-0.05 mg/L萘乙酸(NAA) +3%蔗糖+0.6%琼脂，pH为5.8-6.0。
优选的，所述S31中增殖培养基的培养条件为：温度25±2℃，光照时间为12h/d，光照强度为2000-2500Lx，湿度为60%-65%。
优选的，所述S31中增殖培养基为：wpm+0.45-0.5mg/L激动素（KT）+0.05-0.1mg/L萘乙酸(NAA) +3%蔗糖+0.6%琼脂，pH为5.8-6.0。
优选的，所述S41中过渡培养基的培养条件为：温度25±2℃，光照时间为12h/d，光照强度为2500-3000Lx，湿度为60%-65%，过渡培养基为：wpm+3%蔗糖+0.6%琼脂，pH为5.8-6.0。
（三）有益效果
本发明具有以下有益效果：该日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，通过结合组培快繁和传统扦插两种技术的优势，进行互补，采用此技术方法进行大规模苗木生产，其成本较完全采用组培快繁大大降低，较完全采用传统扦插又实现了扩繁周期短、扩繁系数高、生根率高和成苗率高，采用此技术方法进行日本红枫苗木规模化生产，从外植体初代培养到小苗炼苗成活（生根）的时间约为4.5个月（一个扩繁周期），扩繁系数约为6.8，微扦插生根率可达到88.2%，成苗率可达到86%，单株小苗的生产成本约为0.35元，完全采用组培快繁进行生产，一个扩繁周期约为6-7个月，单株小苗的生产成本约为0.65元，生产成本[1] 。
当然，实施本发明的任一产品并不一定需要同时达到以上所述的所有优点。
具体实施方式
下面对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
在本发明的描述中，需要理解的是，术语“开孔”、“上”、“下”、“厚度”、“顶”、“中”、“长度”、“内”、“四周”等指示方位或位置关系，仅是为了便于描述本发明和简化描述，而不是指示或暗示所指的组件或元件必须具有特定的方位，以特定的方位构造和操作，因此不能理解为对本发明的限制。
本发明实施例提供一种技术方案：一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，包括以下步骤：
S1：外植体取材和消毒处理：
S11：选取无病虫害、生长旺盛的橙之梦优良单株于3月份开始恢复生长时，将其放到温室内养护，每隔一周叶面喷洒一次0.3%-0.5%的多菌灵溶液，直至4月份左右，待新芽抽出后，剪取其中半木质化的嫩茎作为外植体材料，将叶片沿叶柄基部切去，嫩茎切成小段（每段有一个休眠腋芽），用清水反复冲洗3-4次，最后无菌水冲洗干净，备用；
S12：将以上处理过备用的小段在超净工作台中先用70%-75%的酒精溶液消毒30-45s，倒掉酒精后，再用0.1%的升汞溶液消毒5-10min，倒掉消毒液，最后用无菌水反复冲洗4-5次，无菌水冲洗和消毒处理的过程中，需不间断地摇动，以保证无菌水和消毒液能够完全与外植体接触，提高消毒效率；
S2：启动培养（初代培养）
S21：在超净工作台中，用无菌刀片先把消毒处理过的小段最下端切口褐化的部分切去，迅速将腋芽茎段的芽向上接种到启动培养基上；
S3：增殖培养（诱导侧芽萌发伸长）
S31：启动培养约20d以后，休眠的腋芽萌发，抽出新的枝条，将新萌发的幼嫩枝条沿腋芽基部切下，接种到增殖培养基上；
S4：过渡培养
S41：增殖培养约45-60d以后，侧芽大量萌发、伸长，将伸长的侧芽枝条切下，接种到过渡培养基上；
S5：微扦插
S51：过渡培养15-20d以后，将瓶苗移到扦插温室的苗床上自然光环境下缓苗7d左右,缓苗第3d开始，慢慢打开培养瓶的瓶盖，7d后，将未生根的小苗从培养瓶中取出，轻轻切除基部愈伤块，然后马上速蘸生根剂（500ppmNAA+1000ppmIAA的混合液）5s，轻轻插入生根基质中（珍珠岩：泥炭=1:1，v/v，移栽前1周左右，用0.8%高锰酸钾溶液消毒处理），然后用0.3%多菌灵溶液对移栽的小苗和基质表面进行均匀喷施，以基质完全浸湿为宜，然后用塑料薄膜做成封闭的小拱棚，进行保温保湿40d（温度35-40℃，相对湿度80%）左右，过程中要适时关注拱棚内温度和湿度，并观察小苗的生长状态，根据其状态调整温度和湿度，待小苗长出须状根并恢复健壮生长后，将小拱棚的两端打开，缓慢放风，约1周后，将小拱棚完全打开，使其在自然条件下生长。
所述S1中冲洗完成的嫩茎需用0.3%的新洁尔灭消毒液消毒0.5-1小时。
所述S21中启动培养基的培养条件为：温度25±2℃，光照时间为12h/d，光照强度为2000-2500Lx，湿度为60%-65%。
所述S21中启动培养基为：wpm+0.15-0.2mg/L激动素（KT）+0.01-0.05 mg/L萘乙酸(NAA) +3%蔗糖+0.6%琼脂，pH为5.8-6.0。
所述S31中增殖培养基的培养条件为：温度25±2℃，光照时间为12h/d，光照强度为2000-2500Lx，湿度为60%-65%。
所述S31中增殖培养基为：wpm+0.45-0.5mg/L激动素（KT）+0.05-0.1mg/L萘乙酸(NAA) +3%蔗糖+0.6%琼脂，pH为5.8-6.0。
所述S41中过渡培养基的培养条件为：温度25±2℃，光照时间为12h/d，光照强度为2500-3000Lx，湿度为60%-65%，过渡培养基为：wpm+3%蔗糖+0.6%琼脂，pH为5.8-6.0。
需要说明的是，在本文中，诸如第一和第二等之类的关系术语仅仅用来将一个实体或者操作与另一个实体或操作区分开来，而不一定要求或者暗示这些实体或操作之间存在任何这种实际的关系或者顺序。而且，术语“包括”、“包含”或者其任何其他变体意在涵盖非排他性的包含，从而使得包括一系列要素的过程、方法、物品或者设备不仅包括那些要素，而且还包括没有明确列出的其他要素，或者是还包括为这种过程、方法、物品或者设备所固有的要素。
以上公开的本发明优选实施例只是用于帮助阐述本发明。优选实施例并没有详尽叙述所有的细节，也不限制该发明仅为所述的具体实施方式。显然，根据本说明书的内容，可作很多的修改和变化。本说明书选取并具体描述这些实施例，是为了更好地解释本发明的原理和实际应用，从而使所属技术领域技术人员能很好地理解和利用本发明。本发明仅受权利要求书及其全部范围和等效物的限制。
此处修改为高的话就会导致不是有益效果的内容了，经过培育出来的产品生产成本比原先的高，那就没有有益效果了。
Claims (7)
1.一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，其特征在于：包括以下步骤：
S1：外植体取材和消毒处理：
S11：选取无病虫害、生长旺盛的橙之梦优良单株于3月份开始恢复生长时，将其放到温室内养护，每隔一周叶面喷洒一次0.3%-0.5%的多菌灵溶液，直至4月份左右，待新芽抽出后，剪取其中半木质化的嫩茎作为外植体材料，将叶片沿叶柄基部切去，嫩茎切成小段（每段有一个休眠腋芽），用清水反复冲洗3-4次，最后无菌水冲洗干净，备用；
S12：将以上处理过备用的小段在超净工作台中先用70%-75%的酒精溶液消毒30-45s，倒掉酒精后，再用0.1%的升汞溶液消毒5-10min，倒掉消毒液，最后用无菌水反复冲洗4-5次，无菌水冲洗和消毒处理的过程中，需不间断地摇动，以保证无菌水和消毒液能够完全与外植体接触，提高消毒效率；
S2：启动培养（初代培养）
S21：在超净工作台中，用无菌刀片先把消毒处理过的小段最下端切口褐化的部分切去，迅速将腋芽茎段的芽向上接种到启动培养基上；
S3：增殖培养（诱导侧芽萌发伸长）
S31：启动培养约20d以后，休眠的腋芽萌发，抽出新的枝条，将新萌发的幼嫩枝条沿腋芽基部切下，接种到增殖培养基上；
S4：过渡培养
S41：增殖培养约45-60d以后，侧芽大量萌发、伸长，将伸长的侧芽枝条切下，接种到过渡培养基上；
S5：微扦插
S51：过渡培养15-20d以后，将瓶苗移到扦插温室的苗床上自然光环境下缓苗7d左右,缓苗第3d开始，慢慢打开培养瓶的瓶盖，7d后，将未生根的小苗从培养瓶中取出，轻轻切除基部愈伤块，然后马上速蘸生根剂（500ppmNAA+1000ppmIAA的混合液）5s，轻轻插入生根基质中（珍珠岩：泥炭=1:1，v/v，移栽前1周左右，用0.8%高锰酸钾溶液消毒处理），然后用0.3%多菌灵溶液对移栽的小苗和基质表面进行均匀喷施，以基质完全浸湿为宜，然后用塑料薄膜做成封闭的小拱棚，进行保温保湿40d（温度35-40℃，相对湿度80%）左右，过程中要适时关注拱棚内温度和湿度，并观察小苗的生长状态，根据其状态调整温度和湿度，待小苗长出须状根并恢复健壮生长后，将小拱棚的两端打开，缓慢放风，约1周后，将小拱棚完全打开，使其在自然条件下生长。
2.根据权利要求1所述的一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，其特征在于：所述S1中冲洗完成的嫩茎需用0.3%的新洁尔灭消毒液消毒0.5-1小时。
3.根据权利要求1所述的一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，其特征在于：所述S21中启动培养基的培养条件为：温度25±2℃，光照时间为12h/d，光照强度为2000-2500Lx，湿度为60%-65%。
4.根据权利要求1所述的一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，其特征在于：所述S21中启动培养基为：wpm+0.15-0.2mg/L激动素（KT）+0.01-0.05 mg/L萘乙酸(NAA) +3%蔗糖+0.6%琼脂，pH为5.8-6.0。
5.根据权利要求1所述的一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，其特征在于：所述S31中增殖培养基的培养条件为：温度25±2℃，光照时间为12h/d，光照强度为2000-2500Lx，湿度为60%-65%。
6.根据权利要求1所述的一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，其特征在于：所述S31中增殖培养基为：wpm+0.45-0.5mg/L激动素（KT）+0.05-0.1mg/L萘乙酸(NAA) +3%蔗糖+0.6%琼脂，pH为5.8-6.0。
7.根据权利要求1所述的一种日本红枫变异品种橙之梦微扦插技术方法，其特征在于：所述S41中过渡培养基的培养条件为：温度25±2℃，光照时间为12h/d，光照强度为2500-3000Lx，湿度为60%-65%，过渡培养基为：wpm+3%蔗糖+0.6%琼脂，pH为5.8-6.0。
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Citations (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101849506A (zh) * | 2010-02-26 | 2010-10-06 | 江苏省农业科学院 | 鸡爪槭的组织培养快速繁殖方法 |
| CN102138528A (zh) * | 2011-03-31 | 2011-08-03 | 南京林江园林有限责任公司 | 一种红翅槭腋芽途径组织培养的方法 |
| CN102823497A (zh) * | 2012-09-19 | 2012-12-19 | 广东省林业科学研究院 | 枫香无性系组培繁育方法 |
| CN103477852A (zh) * | 2013-10-08 | 2014-01-01 | 巴中市光雾山植物研究所 | 鸡爪槭橙之梦嫩枝扦插繁殖方法 |
| CN105532459A (zh) * | 2015-12-30 | 2016-05-04 | 四川禾木本业农林科技有限公司 | 一种鸡爪槭橙之梦的组培快繁方法 |
| CN105660397A (zh) * | 2016-01-13 | 2016-06-15 | 杭州市园林绿化股份有限公司 | 一种灯笼树组培苗高频再生快速繁殖方法 |
| CN107278686A (zh) * | 2017-06-06 | 2017-10-24 | 山东大丰园农业有限公司 | 一种美国红枫组培苗瓶外生根剂及育苗方法 |
| CN107455261A (zh) * | 2017-09-15 | 2017-12-12 | 安徽农业大学 | 一种加拿大糖槭组织培养快繁的方法 |
| CN109247148A (zh) * | 2018-11-30 | 2019-01-22 | 四川七彩林业开发有限公司 | 一种五小叶槭扦插繁殖方法 |
-
2019
- 2019-10-24 CN CN201911016643.4A patent/CN110810032A/zh active Pending
Patent Citations (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101849506A (zh) * | 2010-02-26 | 2010-10-06 | 江苏省农业科学院 | 鸡爪槭的组织培养快速繁殖方法 |
| CN102138528A (zh) * | 2011-03-31 | 2011-08-03 | 南京林江园林有限责任公司 | 一种红翅槭腋芽途径组织培养的方法 |
| CN102823497A (zh) * | 2012-09-19 | 2012-12-19 | 广东省林业科学研究院 | 枫香无性系组培繁育方法 |
| CN103477852A (zh) * | 2013-10-08 | 2014-01-01 | 巴中市光雾山植物研究所 | 鸡爪槭橙之梦嫩枝扦插繁殖方法 |
| CN105532459A (zh) * | 2015-12-30 | 2016-05-04 | 四川禾木本业农林科技有限公司 | 一种鸡爪槭橙之梦的组培快繁方法 |
| CN105660397A (zh) * | 2016-01-13 | 2016-06-15 | 杭州市园林绿化股份有限公司 | 一种灯笼树组培苗高频再生快速繁殖方法 |
| CN107278686A (zh) * | 2017-06-06 | 2017-10-24 | 山东大丰园农业有限公司 | 一种美国红枫组培苗瓶外生根剂及育苗方法 |
| CN107455261A (zh) * | 2017-09-15 | 2017-12-12 | 安徽农业大学 | 一种加拿大糖槭组织培养快繁的方法 |
| CN109247148A (zh) * | 2018-11-30 | 2019-01-22 | 四川七彩林业开发有限公司 | 一种五小叶槭扦插繁殖方法 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PB01 | Publication | ||
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| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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| WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20200221 |
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