CN110498841B - 一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法 - Google Patents

一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法 Download PDF

Info

Publication number
CN110498841B
CN110498841B CN201810465866.8A CN201810465866A CN110498841B CN 110498841 B CN110498841 B CN 110498841B CN 201810465866 A CN201810465866 A CN 201810465866A CN 110498841 B CN110498841 B CN 110498841B
Authority
CN
China
Prior art keywords
solid
fmoc
phase
synthetic resin
asp
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201810465866.8A
Other languages
English (en)
Other versions
CN110498841A (zh
Inventor
陈学明
曾驰
宓鹏程
陶安进
袁建成
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hybio Pharmaceutical Co Ltd
Original Assignee
Hybio Pharmaceutical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hybio Pharmaceutical Co Ltd filed Critical Hybio Pharmaceutical Co Ltd
Priority to CN201810465866.8A priority Critical patent/CN110498841B/zh
Priority to PCT/CN2018/087826 priority patent/WO2019218382A1/zh
Publication of CN110498841A publication Critical patent/CN110498841A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN110498841B publication Critical patent/CN110498841B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/04—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length on carriers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/06—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length using protecting groups or activating agents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/10—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length using coupling agents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14—Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/16—Extraction; Separation; Purification by chromatography
    • C07K1/20—Partition-, reverse-phase or hydrophobic interaction chromatography
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K7/00—Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/64—Cyclic peptides containing only normal peptide links
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55—Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

本发明涉及包含丙氨酸的首尾环肽合成方法，其包括以下步骤：1)选择固相合成树脂；2)首先将Fmoc‑Asp(OH)‑OAll与固相合成树脂偶联，然后按照Fmoc/tBu固相合成策略，得到NH2‑Asp‑(固相合成树脂)‑OAll，并依次偶联肽序中的氨基酸残基得到NH2‑AAn‑Asp‑(固相合成树脂)‑OAll；3)固相脱除保护基All，得到NH2‑AAn‑Asp‑(固相合成树脂)‑OH；4)固相条件下，步骤3)得到的多肽长链的首尾氨基酸进行首尾缩合环化；5)将步骤4)得到的产物裂解固相合成树脂，制备中间体环肽粗肽；6)将中间体环肽粗肽在脱羧酶的作用下脱除末端天冬氨酸的侧链羧基，得到成品。

Description

一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法
技术领域
本发明属于药物合成领域，具体涉及一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法。
背景技术
对于首尾酰胺键成环的肽，目前在自然界已经有很多发现。首尾环肽药物的研究也得到了非常快速的发展。随着研究的深入，环肽的合成已经引起了越来越多的关注，并且已经在许多研究中取得了一定的成果。
首尾环肽的化学合成大体可分为液相法与固相法。
液相法为先固相制备全保护肽，然后液相成环，最后再脱除保护基。采用液相方法合成首尾成环的肽，反应需要在高度稀释的溶液中(10-3～10-4M)进行，反应比较缓慢，活化的羧基可以避免因为单分子或溶剂诱导效应发生分解反应。但是，它的成功合成需要依赖于正交保护的线性前体，需要很繁杂的步骤，这样无疑影响了肽的产率，同时对偶联试剂的要求也非常高。
固相法为在固相载体上直接成环。对于肽序中含有Asp\Glu或者Asn\Gln 残基的肽序，一般采用把Asp\Glu主链采用All保护，侧链羧基连接在固相载体上的方法，偶联完成后脱除All保护基团，在固相上完成酰胺键成环的方法完成粗肽合成。
固相合成要比液相合成简单得多，但目前报道的方法中，只有肽序中含有侧链基团的氨基酸残基才能用此方法，而如果肽序中没有带侧链的氨基酸残基，就很难用固相方法。
发明内容
对于肽序中不含带侧链氨基酸、而有Ala的首尾环肽，本发明提供了一种全新的、高效的合成方法：首先在树脂上连接Fmoc-Asp-OAll；然后按肽序偶联剩余氨基酸残基；偶联完毕后，固相脱除All，紧接着固相成环；最后环肽粗肽使用L-天冬氨酸-β脱羧酶催化脱羧得到含丙氨酸的首尾环肽。该方法新颖、合成条件温和、工艺简单且工艺稳定。
合成路线如下：
Figure BDA0001662063950000021
一种包含丙氨酸的首尾环肽合成方法，其包括以下步骤：
1)选择固相合成树脂；
2)首先偶联Fmoc-Asp(OH)-OAll，然后按照Fmoc/tBu固相合成策略，得到NH2-Asp-(固相合成树脂)-OAll然后依次偶联肽序中的氨基酸残基得到 NH2-AAn-Asp-(固相合成树脂)-OAll；
3)固相脱除保护基All，得到NH2-AAn-Asp-(固相合成树脂)-OH；
4)固相首尾环化；
5)裂解固相合成树脂，制备中间体环肽粗肽；
6)将中间体环肽粗肽在脱羧酶的作用下脱除末端天冬氨酸的侧链羧基，制备含丙氨酸的环肽。
步骤1)中所述固相合成树脂为wang树脂或2-氯树脂，树脂替代度为 0.1-3.0mmol/g，优选0.5-2.5mmol/g，更优选1.0-1.5mmol/g。
步骤2)对于氨基酸的Fmoc-AA-OH形式没有特别限定，可以依照本领域的常规知识使用或者不使用保护基团，可使用的保护基团例如，Trt、Boc、和tBu 等。
步骤2)中Fmoc/tBu固相合成策略偶联氨基酸包括以下步骤：
2.1)脱除Fmoc，接着用溶剂洗涤树脂，直至用检测方法检测到完全脱除 Fmoc为止；
2.2)将合适量的待偶联氨基酸和偶联剂在溶剂中溶解并活化后，一起加入到固相反应柱中，直至用检测方法检测到反应终止为止；
2.3)重复1)和2)；其中脱除Fmoc的试剂为20％的哌啶/DMF溶液(DBLK)，即哌啶：DMF(体积比)为1:4的混合溶液。
本发明所述步骤2)中的成酰胺键偶联剂为DIC和化合物A的组合物或DIA 和化合物A和化合物B的组合物，其中化合物A为HOBt或HOAt，化合物B 为PyBOP、PyAOP、HATU、HBTU或TBTU，优选为DIC和化合物A的组合物。进一步地，偶联剂中各成分的比例以摩尔比计为DIC:A＝1.2:1.1，DIA:A:B＝2.0:1.1:1.0。
在本发明步骤2)中偶联Fmoc-Asp(OH)-OAll的方法为以成酯键偶联剂将 Fmoc-Asp(OH)-OAll的侧链羧基与固相合成树脂缩合偶联，其中所述的成酯键偶联剂选自HOBt、DMAP一种或多种的组合物。
步骤2)的反应在固相反应柱中进行。对固相反应柱无特别限制，可为可实现此目的的任意固相反应柱。此外，每种氨基酸进行偶联反应的时间通常为1.5-4 小时，优选2-3小时；压力优选为常压，也可在适当提高或降低的压力下进行；温度优选为室温(即20±5℃)，也可在适当提高或降低的温度下进行。
步骤2)的反应优选将树脂在偶联之前进行溶胀，所述洗涤和溶胀的步骤本领域可采用实现该目的的任何试剂进行，包括DMF、NMP、二氯甲烷等，优选DMF。
所述反应中应用的检测方法是本领域已知的可实现此目的的任意方法，例如色谱法或化学标定法，优选使用可判定反应终点的试剂，优选茚三酮，当使用茚三酮时，若树脂显色则说明多肽中有游离的胺，即胺上无保护基。
步骤2)中Fmoc-AA-OH为天然氨基酸或非天然氨基酸，所述AAn为由n 个氨基酸组成的肽链，其中n≥1，且n为整数。
步骤3)固相脱除保护基All所用催化剂为四三苯基膦钯，捕获剂为苯硅烷，所用溶剂为DCM。
步骤4)固相环化所用试剂为DIC+A或者DIA+A+B，其中A为HOBt或 HOAt，B为PyBOP、PyAOP、HATU、HBTU、TBTU其中一种或几种的组合。
步骤5)所述的裂解液为TFA、H2O、PhOMe、苯甲硫醚的不同比例混合物。优选为TFA:H2O:PhOMe:苯甲硫醚＝90:5:4:1(V:V)。
步骤6)所述脱羧酶为L-天冬氨酸-β脱羧酶；所用溶剂为磷酸钠的缓冲液 (pH＝2-9)，pH优选5-7；反应温度为0-100℃，优选20-40℃；中间体环肽粗肽与脱羧酶的质量比为1000-50：1，优选100：1；
本发明还包括可选地步骤7)纯化步骤。步骤7)所述纯化步骤采用反相高压液相色谱法。进一步地，所述反相高压液相色谱法包括：以反相十八烷基硅烷为固定相，以体积比0.1％醋酸水溶液/乙腈为流动相，流动相体积比0.1％醋酸水溶液/乙腈的比例优选为98:2至50:50，更优选80:20至60:40，最优选70:30。收集目的峰馏分，浓缩冻干。
Figure BDA0001662063950000041
Figure BDA0001662063950000051
有益效果
本发明提供了一种制备含丙氨酸的首尾环肽全新的方法。本方法具有操作简单、工艺简化、环境友好、经济效益高、可规模化生产等优点。
具体实施方式
环肽[Pro-Tyr-Ala-Phe-leu-Ile-Val-Ala]环八肽的合成
实施例1Fmoc-β-Asp-(Wang树脂)-OAll的制备
称取替代度为1.5mmol/g的Wang树脂100g于固相反应柱中，加入 500mLDMF，氮气鼓泡溶胀60分钟；称取Fmoc-Asp-OAll 39.5克(100mmol)、 HOBt16.2克(120mmol)、DMAP1.2克(10mmol)，用DMF溶解，0℃下加入20.3mLDIC，活化5分钟，加入反应柱。反应两小时后，抽掉溶液，用DMF 洗涤六次、DCM洗涤三次，甲醇收缩后，抽干树脂，得到Fmoc-β-Asp-(Wang树脂)-OAll树脂130克，检测替代度为1.0mmol/g。
实施例2肽树脂的制备
称取实施例1制备的替代度为1.0mmol/g的Fmoc-β-Asp-(Wang树脂)-OAll 树脂100克于固相反应柱中，加入500mLDMF，氮气鼓泡溶胀60分钟；然后用100mL DBLK脱保护6min+8min，100mLDMF洗涤6次。称取 169.7g(500mmol)Fmoc-Val-OH和78.1g(500mmol)HOBT用150mL DMF溶解，冰水浴下加入86.7mL(500mmol)DIC活化3min后，将混合液加入到反应柱中，室温反应2小时，以茚三酮检测反应终点(如树脂无色透明则终止反应；如树脂显色则延长反应1小时)。反应结束，用150mLDMF洗涤树脂3次，加入150mLDBLK脱保护6min+8min，150mLDMF洗涤树脂6次，茚三酮检测树脂有颜色。重复上述偶联操作，按照肽序继续依次偶联Fmoc-Ile-OH、 Fmoc-Leu-OH、Fmoc-Phe-OH、Fmoc-Ala-OH、Fmoc-Tyr(OtBu)-OH、 Fmoc-Pro-OH。每种氨基酸、HOBT及DIC每次分别投料500mmol。偶联结束，用200mL甲醇收缩树脂，抽干，得到肽树脂190.2克。
实施例3固相脱除All
将实施例2得到的树脂190.2g中，加入300mLDMF溶胀2小时，抽掉溶剂，加入DCM300mL，再依次加入四三苯基膦钯50mmol、苯硅烷2000mmol, 室温反应1小时，反应结束后，抽掉溶液，用DCM洗三次(300mL×3)、DMF 洗三次(300mL×3)，得中间体肽树脂。
实施例4固相环化
在实施例3得到的中间体肽树脂中依次加入DMF300ml、 78.1g(500mmol)HOBT和86.7mL(210mmol)DIC，室温反应4小时。反应结束后，抽掉溶液，DMF洗涤六次(300mL×6)，二氯甲烷洗涤六次(300mL×6)，甲醇收缩2次(150mL×2)，真空干燥，得中间体环肽树脂285.0g。
实施例5中间体环肽制备
将实施例4得到的中间体环肽树脂285.2g加入到5l三口瓶中，加入预先配置好的TFA:H2O:PhOMe:苯甲硫醚＝90:5:4:1(V:V)3L，室温反应2小时，减压过滤树脂，收集滤液。用少量TFA洗涤树脂，合并滤液。将滤液缓慢加入 30L冰乙醚中沉淀，离心，冰乙醚5L洗涤5次，减压干燥得到中间体环粗肽80.1 克。
实施例6含丙氨酸环肽的制备
将实施例5得到的中间体环粗肽80.1克加入到1000ml反应瓶中，加入磷酸钠的缓冲液(pH＝6.0)800ml溶解，然后加入L-天冬氨酸-β脱羧酶0.8g，37℃反应。反应结束后，直接上样10cm×25cm制备柱高效液相纯化制备。以反相十八烷基硅烷为固定相，以体积比0.1％醋酸水溶液/乙腈为流动相，比例为70:30；等梯度洗脱制备；流速：70-80ml/min；检测波长：280nm；收集目的峰馏分，浓缩冻干，得纯品50.2g，纯度为99.5％，收率54.6％。MS[M+H]+理论值876.1，实验值876.1。
环肽[D-Pro-Tyr-Ala-Phe-leu-Ile-Val-Ala]环八肽的合成
实施例7：肽树脂的制备
称取实施例1制备的替代度为1.0mmol/g的Fmoc-β-Asp-(Wang树脂)-OAll 100克于固相反应柱中，加入500mLDMF，氮气鼓泡溶胀60分钟；然后用100mL DBLK脱保护6min+8min，100mLDMF洗涤6次。称取169.7g(500mmol) Fmoc-Val-OH和78.1g(500mmol)HOBT用150mL DMF溶解，冰水浴下加入 86.7mL(500mmol)DIC活化3min后，将混合液加入到反应柱中，室温反应2 小时，以茚三酮检测反应终点(如树脂无色透明则终止反应；如树脂显色则延长反应1小时)。反应结束，用150mLDMF洗涤树脂3次，加入150mLDBLK脱保护6min+8min，150mLDMF洗涤树脂6次，茚三酮检测树脂有颜色。重复上述偶联操作，按照肽序继续依次偶联Fmoc-Ile-OH、Fmoc-Leu-OH、 Fmoc-Phe-OH、Fmoc-Ala-OH、Fmoc-Tyr(OtBu)-OH、Fmoc-D-Pro-OH。每种氨基酸、HOBT及DIC每次分别投料500mmol。偶联结束，用200mL甲醇收缩树脂，抽干，得到肽树脂189.1克。
实施例8：固相脱除All
将实施例2得到的树脂189.1g中，加入300mLDMF溶胀2小时，抽掉溶剂，加入DCM300mL,再依次加入四三苯基膦钯50mmol、苯硅烷2000mmol，室温反应1小时，反应结束后，抽掉溶液，用DCM洗三次(300mL×3)、DMF 洗三次(300mL×3)，得中间体肽树脂。
实施例9固相环化
在实施例8得到的中间体肽树脂中依次加入DMF300ml、 78.1g(500mmol)HOBT和86.7mL(210mmol)DIC，室温反应4小时。反应结束后，抽掉溶液，DMF洗涤六次(300mL×6)，二氯甲烷洗涤六次(300mL×6)，甲醇收缩2次(150mL×2)，真空干燥，得中间体环肽树脂284.0g。
实施例10中间体环肽制备
将实施例9得到的中间体环肽树脂284.0g加入到5l三口瓶中，加入预先配置好的TFA:H2O:PhOMe:苯甲硫醚＝90:5:4:1(V:V)3L，室温反应2小时，减压过滤树脂，收集滤液。用少量TFA洗涤树脂，合并滤液。将滤液缓慢加入 30L冰乙醚中沉淀，离心，冰乙醚5L洗涤5次，减压干燥得到中间体环粗肽78.2 克。
实施例11：含丙氨酸环肽的制备
将实施例10得到的中间体环粗肽78.2克加入到1000ml反应瓶中，加入磷酸钠的缓冲液(pH＝6.0)800ml溶解，然后加入L-天冬氨酸-β脱羧酶0.8g，37℃反应。反应结束后，直接上样10cm×25cm制备柱高效液相纯化制备。以反相十八烷基硅烷为固定相，以体积比0.1％醋酸水溶液/乙腈为流动相，比例为70:30；等梯度洗脱制备；流速：70-80ml/min；检测波长：280nm；收集目的峰馏分，浓缩冻干，得纯品48.1g，纯度为99.5％，收率57％。MS[M+H]+理论值876.1，实验值876.1。
环肽[Met-Pro-Tyr-Ala-Phe-leu-Ile-Val-Ala]环九肽的合成
实施例12肽树脂的制备
称取实施例1制备的替代度为1.0mmol/g的Fmoc-β-Asp-(Wang树脂)-OAll 100克于固相反应柱中，加入500mLDMF，氮气鼓泡溶胀60分钟；然后用100mL DBLK脱保护6min+8min，100mLDMF洗涤6次。称取169.7g(500mmol) Fmoc-Val-OH和78.1g(500mmol)HOBT用150mL DMF溶解，冰水浴下加入86.7mL(500mmol)DIC活化3min后，将混合液加入到反应柱中，室温反应2 小时，以茚三酮检测反应终点(如树脂无色透明则终止反应；如树脂显色则延长反应1小时)。反应结束，用150mLDMF洗涤树脂3次，加入150mLDBLK脱保护6min+8min，150mLDMF洗涤树脂6次，茚三酮检测树脂有颜色。重复上述偶联操作，按照肽序继续依次偶联Fmoc-Ile-OH、Fmoc-Leu-OH、 Fmoc-Phe-OH、Fmoc-Ala-OH、Fmoc-Tyr(OtBu)-OH、Fmoc-Pro-OH、 Fmoc-Met-OH。每种氨基酸、HOBT及DIC每次分别投料500mmol。偶联结束，用200mL甲醇收缩树脂，抽干，得到肽树脂240.2克。
实施例13固相脱除All
将实施例2得到的树脂240.2g中，加入400mLDMF溶胀2小时，抽掉溶剂，加入DCM300mL，再依次加入四三苯基膦钯50mmol、苯硅烷2000mmol, 室温反应1小时，反应结束后，抽掉溶液，用DCM洗三次(300mL×3)、DMF 洗三次(300mL×3)，得中间体肽树脂。
实施例14固相环化
在实施例3得到的中间体肽树脂中依次加入DMF300ml、 78.1g(500mmol)HOBT和86.7mL(210mmol)DIC，室温反应4小时。反应结束后，抽掉溶液，DMF洗涤六次(300mL×6),二氯甲烷洗涤六次(300mL×6)，甲醇收缩2次(150mL×2)，真空干燥，得中间体环肽树脂315.0g。
实施例15中间体环肽制备
将实施例14得到的中间体环肽树脂315.0g加入到5l三口瓶中，加入预先配置好的TFA:H2O:PhOMe:苯甲硫醚＝90:5:4:1(V:V)3.5L，室温反应2 小时，减压过滤树脂，收集滤液。用少量TFA洗涤树脂，合并滤液。将滤液缓慢加入35L冰乙醚中沉淀，离心，冰乙醚5L洗涤5次，减压干燥得到中间体环粗肽85.1克。
实施例16含丙氨酸环肽的制备
将实施例15得到的中间体环粗肽85.1克加入到1000ml反应瓶中，加入磷酸钠的缓冲液(pH＝6.0)850ml溶解，然后加入L-天冬氨酸-β脱羧酶0.85g，37℃反应。反应结束后，直接上样10cm×25cm制备柱高效液相纯化制备。以反相十八烷基硅烷为固定相，以体积比0.1％醋酸水溶液/乙腈为流动相，比例为70:30；等梯度洗脱制备；流速：70-80ml/min；检测波长：280nm；收集目的峰馏分，浓缩冻干，得纯品55.2g，纯度为99.6％，收率50.6％。MS[M+H]+理论值1007.3，实验值1007.3。
环肽[Met-Pro-Tyr-Ala-D-Phe-leu-Ile-Val-Ala]环九肽的合成
实施例17肽树脂的制备
称取实施例1制备的替代度为1.0mmol/g的Fmoc-β-Asp-(Wang树脂)-OAll 100克于固相反应柱中，加入500mLDMF，氮气鼓泡溶胀60分钟；然后用100mL DBLK脱保护6min+8min，100mLDMF洗涤6次。称取169.7g(500mmol) Fmoc-Val-OH和78.1g(500mmol)HOBT用150mL DMF溶解，冰水浴下加入 86.7mL(500mmol)DIC活化3min后，将混合液加入到反应柱中，室温反应2 小时，以茚三酮检测反应终点(如树脂无色透明则终止反应；如树脂显色则延长反应1小时)。反应结束，用150mLDMF洗涤树脂3次，加入150mLDBLK脱保护6min+8min，150mLDMF洗涤树脂6次，茚三酮检测树脂有颜色。重复上述偶联操作，按照肽序继续依次偶联Fmoc-Ile-OH、Fmoc-Leu-OH、 Fmoc-D-Phe-OH、Fmoc-Ala-OH、Fmoc-Tyr(OtBu)-OH、Fmoc-Pro-OH、 Fmoc-Met-OH。每种氨基酸、HOBT及DIC每次分别投料500mmol。偶联结束，用200mL甲醇收缩树脂，抽干，得到肽树脂242.2克。
实施例18固相脱除All
将实施例2得到的树脂242.2g中，加入400mLDMF溶胀2小时，抽掉溶剂，加入DCM300mL,再依次加入四三苯基膦钯50mmol、苯硅烷2000mmol, 室温反应1小时，反应结束后，抽掉溶液，用DCM洗三次(300mL×3)、DMF 洗三次(300mL×3)，得中间体肽树脂。
实施例19固相环化
在实施例18得到的中间体肽树脂中依次加入DMF300ml、 78.1g(500mmol)HOBT和86.7mL(210mmol)DIC，室温反应4小时。反应结束后，抽掉溶液，DMF洗涤六次(300mL×6),二氯甲烷洗涤六次(300mL×6)，甲醇收缩2次(150mL×2)，真空干燥，得中间体环肽树脂318.0g。
实施例20中间体环肽制备
将实施例19得到的中间体环肽树脂315.0g加入到5l三口瓶中，加入预先配置好的TFA:H2O:PhOMe:苯甲硫醚＝90:5:4:1(V:V)3.5L，室温反应2 小时，减压过滤树脂，收集滤液。用少量TFA洗涤树脂，合并滤液。将滤液缓慢加入35L冰乙醚中沉淀，离心，冰乙醚5L洗涤5次，减压干燥得到中间体环粗肽86.1克。
实施例21含丙氨酸环肽的制备
将实施例20得到的中间体环粗肽86.1克加入到1000ml反应瓶中，加入磷酸钠的缓冲液(pH＝6.0)850ml溶解，然后加入L-天冬氨酸-β脱羧酶0.86g，37℃反应。反应结束后，直接上样10cm×25cm制备柱高效液相纯化制备。以反相十八烷基硅烷为固定相，以体积比0.1％醋酸水溶液/乙腈为流动相，比例为70:30；等梯度洗脱制备；流速：70-80ml/min；检测波长：280nm；收集目的峰馏分，浓缩冻干，得纯品50.2g，纯度为99.6％，收率46.0％。MS[M+H]+理论值1007.3，实验值1007.3。

Claims (15)

1.一种包含丙氨酸的首尾环肽合成方法，其包括以下步骤：
1)选择固相合成树脂；
2)首先将Fmoc-Asp(OH)-OAll与固相合成树脂偶联，然后按照Fmoc/tBu固相合成策略，得到NH2-Asp-(固相合成树脂)-OAll，并依次偶联肽序中的氨基酸残基得到NH2-AAn-Asp-(固相合成树脂)-OAll；
3)固相脱除保护基All，得到NH2-AAn-Asp-(固相合成树脂)-OH；
4)固相条件下，步骤3)得到的多肽长链的首尾氨基酸进行首尾缩合环化；
5)将步骤4)得到的产物裂解固相合成树脂，制备中间体环肽粗肽；
6)将中间体环肽粗肽在脱羧酶的作用下脱除末端天冬氨酸的侧链羧基，制备包含丙氨酸的首尾环肽；
其中，步骤6)中所述脱羧酶为L-天冬氨酸-β脱羧酶。
2.根据权利要求1所述的合成方法，步骤6)中中间体环肽粗肽与脱羧酶的质量比为1000-50：1。
3.根据权利要求1所述的合成方法，步骤6)中中间体环肽粗肽与脱羧酶的质量比为80-150：1。
4.根据权利要求1所述的合成方法，步骤2)中偶联Fmoc-Asp(OH)-OAll的方法为以成酯键偶联剂将Fmoc-Asp(OH)-OAll的侧链羧基与固相合成树脂缩合偶联，其中所述的成酯键偶联剂选自HOBt、DMAP一种或多种的组合物。
5.根据权利要求1所述的合成方法，步骤2)中Fmoc/tBu固相合成策略偶联氨基酸包括以下步骤：
2.1)脱除Fmoc，接着用溶剂洗涤树脂，直至用检测方法检测到完全脱除Fmoc为止；
2.2)将待偶联氨基酸Fmoc-AA-OH和偶联剂在溶剂中溶解并活化后，加入到固相反应柱中，直至用检测方法检测到反应终止为止；
2.3)重复2.1)和2.2)；其中脱除Fmoc的试剂为20％的哌啶/DMF溶液。
6.根据权利要求5所述的合成方法，成酰胺键偶联剂为DIC和化合物A的组合物或DIA和化合物A和化合物B的组合物，其中化合物A为HOBt或HOAt，化合物B为PyBOP、PyAOP、HATU、HBTU或TBTU。
7.根据权利要求6所述的合成方法，成酰胺键偶联剂为DIC和化合物A的组合物。
8.根据权利要求1所述的合成方法，步骤3)中固相脱除保护基All所用催化剂为四三苯基膦钯，捕获剂为苯硅烷。
9.根据权利要求1所述的合成方法，步骤5)中固相环化所用试剂为DIC+A或者DIA+A+B，其中A为HOBt或HOAt，B为PyBOP、PyAOP、HATU、HBTU、TBTU其中一种或几种的组合。
10.根据权利要求1所述的合成方法，步骤5)裂解所用的裂解液为TFA、H2O、PhOMe、苯甲硫醚的混合物。
11.根据权利要求1所述的合成方法，还包括可选地步骤7)纯化步骤，步骤7)所述纯化步骤采用反相高压液相色谱法。
12.根据权利要求11所述的合成方法，所述反相高压液相色谱法包括：以反相十八烷基硅烷为固定相，流动相为0.1％醋酸水溶液和乙腈。
13.据权利要求12所述的合成方法，流动相中0.1％醋酸水溶液和乙腈的体积比为98:2至50:50。
14.据权利要求12所述的合成方法，流动相中0.1％醋酸水溶液和乙腈的体积比为80:20至60:40。
15.据权利要求12所述的合成方法，流动相中0.1％醋酸水溶液和乙腈的体积比为70:30。
CN201810465866.8A 2018-05-16 2018-05-16 一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法 Active CN110498841B (zh)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810465866.8A CN110498841B (zh) 2018-05-16 2018-05-16 一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法
PCT/CN2018/087826 WO2019218382A1 (zh) 2018-05-16 2018-05-22 一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810465866.8A CN110498841B (zh) 2018-05-16 2018-05-16 一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN110498841A CN110498841A (zh) 2019-11-26
CN110498841B true CN110498841B (zh) 2021-07-06

Family

ID=68539309

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201810465866.8A Active CN110498841B (zh) 2018-05-16 2018-05-16 一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法

Country Status (2)

Country Link
CN (1) CN110498841B (zh)
WO (1) WO2019218382A1 (zh)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106892968A (zh) * 2015-12-18 2017-06-27 深圳翰宇药业股份有限公司 一种利那洛肽的合成方法
EP3000821B1 (en) * 2014-09-25 2019-03-13 Uniwersytet Wroclawski Pseudofactin derivatives, a method of synthesizing pseudofactin derivatives and their use

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3000821B1 (en) * 2014-09-25 2019-03-13 Uniwersytet Wroclawski Pseudofactin derivatives, a method of synthesizing pseudofactin derivatives and their use
CN106892968A (zh) * 2015-12-18 2017-06-27 深圳翰宇药业股份有限公司 一种利那洛肽的合成方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
A comparative study of cyclization strategies applied to the synthesis of head-to-tail cyclic analogs of a viral epitope;M -L Valero等;《J. Peptide Res.》;19990131;第53卷(第1期);第56-67页 *
A novel strategy for the solid-phase synthesis of cyclic lipodepsipeptides;Maciej Stawikowski等;《Tetrahedron Letters》;20061127;第47卷(第48期);第8587-8590页 *
L-天冬氨酸脱羧酶研究进展;高丽娟等;《工业微生物》;20071015;第37卷(第5期);第54-59页 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN110498841A (zh) 2019-11-26
WO2019218382A1 (zh) 2019-11-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN106892968B (zh) 一种利那洛肽的合成方法
CN106928313B (zh) 一种c-端修饰肽的合成方法
AU723268B2 (en) Improved solid-phase peptide synthesis and agent for use in such synthesis
CN102875655B (zh) 一种合成利那洛肽的方法
ES2352204T3 (es) Método de síntesis peptídica en fase sólida.
DK2421887T3 (en) A process for the preparation of degarelix
US20080287650A1 (en) High purity peptides
CN107573408B (zh) 一种高纯度亮丙瑞林的合成方法
CN106167514A (zh) 一种利那洛肽的合成和纯化方法
CN105408344B (zh) 肽-树脂结合物及其用途
CN104844693B (zh) 一种合成利那洛肽的方法
CN104788546A (zh) 一种含有24个氨基酸残基的线性直链肽的制备方法
CN106554391B (zh) 一种海洋生物肽Xen2174的合成方法
CN104177491B (zh) 一种替莫瑞林的制备方法
CN113754753B (zh) 一种索玛鲁肽的合成方法
CN109306366B (zh) 一种合成pt141的方法
CN105037496B (zh) 一种依替巴肽的制备方法
CN1552728B (zh) 一种生长抑素的合成方法
KR20210102362A (ko) 플레카나타이드의 개선된 제조 방법
CN107778351B (zh) 一种全固相合成奥曲肽的方法
CN109180803A (zh) 生长抑素及其制备方法和药物组合物
CN110498841B (zh) 一种含丙氨酸的首尾环肽合成方法
CN110551178B (zh) 一种含脯氨酸的首尾环肽合成方法
CN111057129A (zh) 一种用于合成含有两对二硫键的多肽的制备方法及其试剂盒，以及普利卡那肽的制备方法
CN100357313C (zh) 非靶位点胺基被保护的肽,其制备方法以及使用该肽制备特异性地结合的peg肽的方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant