CN110432225A - 血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型的构建方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型的构建方法,属于动物模型构建技术领域,其包括以下步骤:动物检疫合格后,采用高脂饲料喂养、冰水游泳和盐酸肾上腺素皮下注射相结合的方式构建血瘀痰凝证动物;向血瘀痰凝证动物的腋下皮肤下注射喉癌细胞,采用的动物是Balb/c裸小鼠。本发明构建方法采用多因素将血瘀痰凝证和喉癌进行结合,构建成功的验证指标有血脂功能和凝血时间,动物模型的可信度较高、重复性好。

Description

血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型的构建方法
技术领域
本发明属于动物模型构建技术领域,尤其涉及结合有血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型的构建方法。
背景技术
喉癌目前治疗仍然棘手,中医药防治喉癌具有明显的优势,然而其具体的作用机制还阐述不清。根据中医辨证论治和四诊合参,血瘀痰凝证是喉癌形成最基本的证型。因此,为了“探讨中医药抗肿瘤机制,实现中医药现代化”,构建血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型迫在眉睫。
血瘀痰凝证是临床上常见的中医证候之一,近年来国内许多学者采用不同途径和思路构建了一些证候相关动物模型,其包括血瘀证、寒凝血瘀证等动物模型。该类模型的构建方法大致有全身冷冻法、局部冻伤法、冰水浸泡法、风寒环境法、冰水浸泡加药物法、冷刺激法、寒凉中药法等,然而其存在许多不足:1)造模过程中存在许多随意性,2)造模因素单一或局限,3)评价方法局限在症状体征观察,以及血流测定等,缺乏客观的实验室指标,4)由于Balb/c裸小鼠本身具有免疫缺陷,难以耐受多因素干预,造成造模期间动物死亡率高,难以大批量操作,然而肿瘤疾病研究大多是采用该类种属动物。
发明内容
本发明目的在于克服现有技术存在的不足,而提供结血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型的构建方法,该构建方法采用多因素将血瘀痰凝证和喉癌进行病证结合,构建成功的验证指标有血脂功能和凝血时间,动物模型的可信度较高、重复性好。
为实现上述目的,本发明采取的技术方案为:血瘀痰凝证动物模型的构建方法,其包括以下步骤:动物检疫合格后,采用高脂饲料喂养、冰水游泳和盐酸肾上腺素皮下注射相结合的方式进行构建;与空白组动物相比,血瘀痰凝证动物的总胆固醇、非高密度脂蛋白胆固醇、低密度脂蛋白胆固醇含量高于空白组动物,血瘀痰凝证动物的活化部分凝血酶原时间短于空白组动物,血瘀痰凝证动物的全身皮肤呈紫暗色、大便黏腻不成形、舌质呈暗黑色,血瘀痰凝证动物的皮肤温度低于空白组动物,血瘀痰凝证动物的舌质干于空白组动物;所述空白组动物是指不用高脂饲料喂养、不冰水游泳以及不注射盐酸肾上腺素。
作为上述技术方案的改进,所述动物为Balb/c裸小鼠,所述高脂饲料包含以下质量百分含量的组分:蔗糖20%、猪油15%、胆固醇1.2%、胆酸钠0.2%、酪蛋白10%、磷酸氢钙0.6%、石粉0.4%、预混料0.4%和基础饲料52.2%。
作为上述技术方案的改进,动物游泳时冰水的温度为0~4℃,动物冰水游泳直至无力抬头;每日1次腹部皮下注射盐酸肾上腺素,每次的注射量为0.2mg/20g(盐酸肾上腺素与动物的重量比)。
作为上述技术方案的改进,动物检疫合格后,转移至SPF级环境进行模型的构建;期间,盐酸肾上腺素注射30min后,冰水游泳,模型的构建时间为2周。
血瘀痰凝证动物模型的构建方法,优选为:动物检疫3天后,转移至SPF级环境进行造模;高脂饲料自由喂养,自由饮水,盐酸肾上腺素0.2mg/20g(0.9%生理盐水稀释)每日1次腹部皮下注射,旋转出针,棉球轻轻按压,防止漏液;盐酸肾上腺素注射30min后,冰水游泳,温度控制在0~4℃,游泳时间根据动物个体差异,当无力抬头,沉入水中时立即将动物提起,干毛巾擦拭动物身上冰水;造模2周后,摘取动物眼球取血,一部分全血装入普通采血管,另一部全血装入柠檬酸钠采血管,采用生化分析仪检测血脂功能以及雷杜全自动凝血分析仪检测凝血时间。
另外,本发明还提供血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型的构建方法,其包括以下步骤:
S1)采用所述的构建方法构建出血瘀痰凝证动物;
S2)向所述血瘀痰凝证动物的腋下皮肤下注射喉癌细胞。
作为上述技术方案的改进,所述喉癌细胞为稳定表达荧光素酶的Hep2喉癌细胞,血瘀痰凝证动物的腹腔注射荧光素酶底物,对瘤体进行荧光拍照;所述荧光素酶底物的注射量为150mg/kg。
作为上述技术方案的改进,所述喉癌细胞的浓度为1×107/ml,喉癌细胞的注射量为0.2ml。
喉癌细胞的移植方法,优选为:培养细胞,并传代到一定数量的细胞,胰酶消化,无酚红RPMI培养基重悬细胞,Corning Star细胞计数仪计数,配成细胞数为1×107/ml,每只裸鼠右侧腋下皮肤下注射0.2ml,旋转出针,棉球按压注射点预防漏液;气体麻药麻醉动物情况下,每只小鼠腹腔注射荧光素酶底物(150mg/kg,生理盐水稀释,0.2μM的滤头过滤除菌),10~15min内小动物活体成像仪拍摄。
本发明的有益效果在于:本发明提供结血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型的构建方法,本发明首先构建血瘀痰凝证动物,在此基础上再构建血瘀痰凝证和喉癌病证结合的动物,相对于现有技术具有以下优点:
1)基于内外因同时致病的中医理论,多因素联合,物理和化学因素相结合塑造证候模型(即血瘀痰凝证),在成功的证候模型基础上建立疾病模型(喉癌),构建喉癌病证结合动物模型;
2)通过反复实验评估,将各类造模因素程度量化,构建方法具有标准化、重复性强等优点;
3)采用客观的实验室指标衡量造模后动物血脂和凝血功能变化,保证了动物模型的可信度,能较好的复制临床血瘀痰凝证的症状特点;
4)严格按照操作流程,动物模型造模未出现死亡,可大批量操作。
附图说明
图1显示血瘀痰凝证小鼠造模期间,饮食、饮水和体重的变化情况;从左至右,依次显示:空白组和模型组的饮食变化,空白组和模型组的饮水变化,空白组和模型组的体重变化;其中,con表示空白组,mo表示模型组,**表示P<0.01;
图2显示血瘀痰凝证小鼠造模期间,血浆中TC、nonHDL-C、LDL-C、APTT的变化情况;“TC”指总胆固醇,“nonHDL-C”指非高密度脂蛋白胆固醇,“LDL-C”指低密度脂蛋白胆固醇,“APTT”指活化部分凝血酶原时间;*表示P<0.05,**表示P<0.01;
图3显示血瘀痰凝证小鼠的舌像情况;
图4显示血瘀痰凝证小鼠的皮肤颜色;
图5显示血瘀痰凝证小鼠种植的肿瘤体积增长情况;
图6显示小鼠生物发光情况以及瘤体展示。
具体实施方式
为更好地说明本发明的目的、技术方案和优点,下面将结合具体实施例和附图对本发明作进一步说明。
实施例1
本实施例提供血瘀痰凝证动物模型的构建方法,其包括以下步骤:动物检疫合格后3天,采用高脂饲料喂养、冰水游泳和盐酸肾上腺素皮下注射相结合的方式进行构建;
优选地,动物为Balb/c裸小鼠,高脂饲料包含以下质量百分含量的组分:蔗糖20%、猪油15%、胆固醇1.2%、胆酸钠0.2%、酪蛋白10%、磷酸氢钙0.6%、石粉0.4%、预混料0.4%和基础饲料52.2%;
优选地,动物游泳时冰水的温度为0~4℃,动物冰水游泳直至无力抬头;每日1次腹部皮下注射盐酸肾上腺素,每次的注射量为0.2mg/20g(盐酸肾上腺素与动物的重量比);
优选地,转移至SPF级环境进行模型的构建;期间,盐酸肾上腺素注射30min后,冰水游泳,模型的构建时间为2周。
以实施例1构建的血瘀痰凝证小鼠和空白组小鼠为研究对象,进行相关数据测定:
1)动物证候造模期间体重,饮水饮食情况
如图1所示,动物证候造模期间,空白组与模型组一般情况比较,空白组相比模型组的饮食和饮水量整体上多,但两组比较差异无统计学意义;而体重变化上,在造模满一周后,相比模型组,空白组小鼠体重增长速度更快,两组比较差异有统计学意义。
2)血脂和凝血功能的检测
血瘀痰凝证裸小鼠证候造模后,动物全血上清血脂和凝血功能检测结果如图2和表1所示,模型组总胆固醇(TC)、非高密度脂蛋白胆固醇(nonHDL-C)、低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)均比空白组高,两组比较差异具有统计学意义;模型组的活化部分凝血酶原时间缩短,与空白组比较差异具有统计学意义;其中,与正常组比较,*表示P<0.05,**表示P<0.01。
表1血浆中TC、nonHDL-C、LDL-C、APTT指标对比
3)血瘀痰凝证动小鼠舌像以及特殊情况表现
如图3和图4所示,空白组小鼠全身皮肤颜色淡红,接触皮肤温暖,大便正常,舌质红润,少量瘀斑;模型小鼠全身皮肤紫暗,接触皮肤温度低,大便黏腻,不成形,舌质暗黑且偏干。
实施例2
本实施例提供血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型的构建方法,其包括以下步骤:向血瘀痰凝证小鼠的腋下皮肤下注射喉癌细胞;
优选地,喉癌细胞为稳定表达荧光素酶的Hep2喉癌细胞,血瘀痰凝证小鼠的腹腔注射荧光素酶底物,对瘤体进行荧光拍照;荧光素酶底物的注射量为150mg/kg;喉癌细胞的浓度为1×107/ml,喉癌细胞的注射量为0.2ml。
成功在“血瘀痰凝证”裸小鼠上构建移植瘤。
如表2、图5和图6所示,与空白组比较,血瘀痰凝证模型组的瘤体生长速度快,从种瘤第9天开始,模型组的瘤体体积增长速度明显加快,与空白组相比,差异具有统计学意义。
表2小鼠证候造模期间两组的肿瘤体积对比(m3)(x±s)
基于成功的证候模型基础上,将luciferase标记喉癌细胞Hep2移植到动物腋下皮肤,构建血瘀痰凝证喉癌病证结合的动物模型。反复实验,观察动物对造模手段耐受性,严格按照操作流程和程度,能保证动物无死亡。该病证结合动物模型能大批量操作,具有标准化、可复制性等优点。
最后所应当说明的是,以上实施例用以说明本发明的技术方案而非对本发明保护范围的限制,尽管参照较佳实施例对本发明作了详细说明,本领域的普通技术人员应当理解,可以对本发明的技术方案进行修改或者同等替换,而不脱离本发明技术方案的实质和范围。

Claims (7)

1.血瘀痰凝证动物模型的构建方法,其特征在于,包括以下步骤:动物检疫合格后,采用高脂饲料喂养、冰水游泳和盐酸肾上腺素皮下注射相结合的方式进行构建;与空白组动物相比,血瘀痰凝证动物的总胆固醇、非高密度脂蛋白胆固醇、低密度脂蛋白胆固醇含量高于空白组动物,血瘀痰凝证动物的活化部分凝血酶原时间短于空白组动物,血瘀痰凝证动物的全身皮肤呈紫暗色、大便黏腻不成形、舌质呈暗黑色,血瘀痰凝证动物的皮肤温度低于空白组动物,血瘀痰凝证动物的舌质干于空白组动物;所述空白组动物是指不用高脂饲料喂养、不冰水游泳以及不注射盐酸肾上腺素。
2.如权利要求1所述的血瘀痰凝证动物模型的构建方法,其特征在于,所述动物为Balb/c裸小鼠,所述高脂饲料包含以下质量百分含量的组分:蔗糖20%、猪油15%、胆固醇1.2%、胆酸钠0.2%、酪蛋白10%、磷酸氢钙0.6%、石粉0.4%、预混料0.4%和基础饲料52.2%。
3.如权利要求1所述的血瘀痰凝证动物模型的构建方法,其特征在于,动物游泳时冰水的温度为0~4℃,动物冰水游泳直至无力抬头;每日1次腹部皮下注射盐酸肾上腺素,每次的注射量为0.2mg/20g(盐酸肾上腺素与动物的重量比)。
4.如权要求1所述的血瘀痰凝证动物模型的构建方法,其特征在于,动物检疫合格后,转移至SPF级环境进行模型的构建;期间,盐酸肾上腺素注射30min后,冰水游泳,模型的构建时间为2周。
5.血瘀痰凝证和喉癌病证结合动物模型的构建方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1)采用如权利要求1~4任一项所述的构建方法构建出血瘀痰凝证动物;
S2)向所述血瘀痰凝证动物的腋下皮肤下注射喉癌细胞。
6.如权利要求5所述的构建方法,其特征在于,所述喉癌细胞为稳定表达荧光素酶的Hep2喉癌细胞,血瘀痰凝证动物的腹腔注射荧光素酶底物,对瘤体进行荧光拍照;所述荧光素酶底物的注射量为150mg/kg。
7.如权利要求5所述的构建方法,其特征在于,所述喉癌细胞的浓度为1×107/ml,喉癌细胞的注射量为0.2ml。
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