CN110129458B - 一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光pcr试剂盒和方法 - Google Patents

一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光pcr试剂盒和方法 Download PDF

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Abstract

本发明属于细菌检测技术领域，具体公开了一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂盒和方法，其既能鉴定艰难梭菌菌属又能检测毒素B基因。本发明的试剂盒主要包括特异性引物组和探针，所述引物组和探针由检测艰难梭菌的引物对和探针、检测毒素B的引物对和探针、内标引物对和探针组成。本发明通过设计特异性引物组和探针，能从成分复杂的样本中检测出艰难梭菌菌属基因及毒素基因，具有操作简单、报告时间短，特异性强、灵敏度高、准确性好的优点，引入内标准品避免PCR假阴性，降低了由于扩增产物污染而导致的假阳性，适用于临床不明原因腹泻病人的病因筛查。

Description

一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂 盒和方法
技术领域
本发明涉及细菌检测技术领域，具体地，涉及一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂盒和方法。
背景技术
艰难梭菌(Clostridium difficile，CD)又称难辨梭状芽孢杆菌，由Hall等于1935年首次从健康新生儿粪便中分离，其营养要求较高，常规厌氧培养法不易生长，分离培养较为困难，故因此得名。CD为健康人体中固有菌群的组成部分，约占3％以下，属于条件致病菌，致病与否主要取决于是否为产毒菌株以及细菌数量和产毒量。正常情况下，人体肠道中微生物之间相互依赖、又彼此制约，维持着一定数量和比例的微生态平衡。肠道正常菌群具有一定的抵御病原体的能力，可拮抗和限制CD在肠道内的定殖，并降解其产生的毒素，使得CD不表现致病性。CD对氨节西林、头孢菌素、林可霉素、克林霉素、红霉素、四环素等抗生素耐药，若长期使用这些抗生素(尤其是克林霉素)或出现机体免疫力降低、菌体移位寄生(如胃肠道外科手术或胃管插入)、反复灌肠、使用抗肿瘤化学制剂等情况时均可影响肠道内微生态平衡，引起菌群失调，肠道内的双歧杆菌、乳杆菌等优势菌群对CD的拮抗作用受到限制，耐药的CD大量繁殖而致病，易引起艰难梭菌感染(Clostridium difficile infection，CDI)，进而引起艰难梭菌相关性腹泻(Clostridium difficile-associated diarrhea，CDAD)和艰难梭菌相关性肠炎(Clostridium difficile-associated colitis，CDAC)，甚至严重者有致死性假膜性肠炎和中毒性巨结肠，临床多以肠道炎性病变和形成伪膜为主要特点。
艰难梭菌分泌的毒素A和B与CDAD发病有关，2个毒素分别由tcdA和tcdB基因编码。此外，负向调节基因tcdC、正向调节基因tcdD以及膜孔蛋白基因tcdE共同构成致病性决定区(Pathogenicity Locus，PaLoc)。毒素A对肠道有较强的毒性，有白细胞(WBC)趋化和一定的细胞毒性作用，通过介导黏膜上皮细胞的cAMP系统使水和盐分泌增加，引发分泌性腹泻，甚至黏膜出血；毒素B主要表现为细胞毒性，可刺激单核细胞释放炎性因子，引起炎性反应而引发渗出性腹泻。临床上已发现毒素A阴性而毒素B阳性的CD菌株感染的病例，表明毒素B可单独直接致病。磷酸丙糖异构酶(tpi)是艰难梭菌分泌的一种代谢酶，tpi基因是艰难梭菌的管家基因，具有菌种特异性，可作为一种替代16S核糖体DNA的基因分型标志。
CDI实验室诊断主要是分析腹泻患者的粪便标本，检测方法种类多。目前CD实验室检查有细胞培养毒素检测法(CTA)、毒素酶联免疫吸附试验(ELISA)、厌氧培养法、乳酸脱氢酶(GDH)检测、分子生物学检测等。但是，“金标准”CTA法操作难、周期长、成本高，尚未广泛应用于临床微生物实验室；ELISA法因操作简便、快速，而成为目前国内外广泛最应用的检测方法之一，但该方法存在敏感性差、容易漏检的问题；厌氧培养法周期长、成本高，且无法直接检测产毒性艰难梭菌，因此应用较少；GDH法则不能鉴别菌株是否产毒。实时荧光PCR技术以其快速、灵敏、高通量和自动化的特点，逐渐成为艰难梭菌检测的主流检测技术，与其他技术方法相比，其具有线性范围广、闭管污染风险小等优点。但是，现有荧光PCR技术仍然存在假阴性或假阳性，准确性、稳定性和灵敏度低等不足，限制了其在临床上的应用。此外，当待检测样本中含有复杂成分(如全血、易蒙停、泻立停、甲硝唑或万古霉素等)时，现有试剂盒对CD检测的准确性和灵敏度往往不甚理想。
发明内容
本发明的目的是为了克服现有技术的上述不足，提供了一组检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR引物组和探针，通过设计特异性引物组和探针，能从成分复杂的样本中检测出艰难梭菌菌属基因及毒素基因，操作简单、报告时间短，特异性强、灵敏度高、准确性好，同时引入内标避免PCR假阴性，降低了由于扩增产物污染而导致的假阳性。
本发明的另一个目的是提供上述多重荧光PCR引物组和探针在制备检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂或试剂盒方面的应用。
本发明的另一个目的是提供一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂盒，采用该试剂盒检测的粪便标本无需纯培养，即可在短时间内同时完成艰难梭菌菌属鉴定及菌株毒素携带情况的检测。
本发明的另一个目的是提供一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR方法。
为了实现上述目的，本发明是通过以下方案予以实现的：
一组检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR引物组和探针，包括tpi扩增引物对tpi-F和tpi-R，tpi荧光探针tpi-P，tcdB扩增引物对tcdB-F和tcdB-R，tcdB荧光探针tcdB-P，内标引物对HP-F和HP-R，内标荧光探针HP-P；核苷酸序列分别依次如SEQ ID NO:1～SEQ ID NO:9所示。
本发明采用多重荧光PCR并结合特异性引物和Taqman探针技术，通过设计tpi和tcdB的特异性引物和探针，实现在一个PCR反应中既能鉴定艰难梭菌菌属又能检测毒素B基因的目的。另外，设置了内标准品(简称内标)，内标可对实验过程中可能存在的扩增反应抑制物、仪器、试剂和操作等所导致的假阴性结果进行质量控制。具体方法是：首先在Genebank数据库中通过序列比对，筛选出与艰难梭菌基因组较特异的其他物种来源的靶片段作为备选内标。接着，逐个将备选内标和试剂盒tpi、tcdB靶标进行PCR检测，最后优选HP作为内标。通过对优选出的内标进行引物、探针和模板浓度优化，做到了既保证内标荧光通道呈明显的阳性曲线，又尽量降低对靶核酸序列检测造成的抑制而导致假阴性。
优选地，所述探针的5’末端结合有荧光物质，3’末端结合有淬灭物质；所述荧光物质为FAM、HEX、TET、JOE、VIC、Cy5中的至少一种；所述淬灭物质为TAMRA、BHQ1、BHQ2、BHQ3中的至少一种。
由于FAM、HEX和Cy5这3种荧光物质的波长距离相对比较大，使它们之间的相互干扰较小，提高了试剂盒的灵敏度。优选地，所述探针的5’末端结合的荧光物质为FAM、HEX、Cy5中的至少一种，3’末端结合的荧光物质为BHQ1。
更优选地，所述探针tpi-P、tcdB-P、HP-P的5’末端结合的荧光物质分别为FAM、HEX和Cy5。
本发明还请求保护上述任一所述多重荧光PCR引物组和探针在制备检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂或试剂盒方面的应用。
本发明还请求保护上述任一所述多重荧光PCR引物组和探针在制备用于检测复杂样本中艰难梭菌菌属基因及毒素基因的试剂或试剂盒方面的应用。所述复杂样本是指待测样品中含有全血、易蒙停、泻立停、甲硝唑或万古霉素中的至少一种杂质。
本发明还请求保护一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂盒，包含上述任一所述多重荧光PCR引物组和探针。
同样地，该试剂盒可用于检测上述复杂样本中的艰难梭菌菌属基因及毒素基因，因此，所述试剂盒为一种检测复杂样本中艰难梭菌菌属基因及毒素基因的试剂盒。
优选地，所述试剂盒的多重荧光PCR反应体系中，tpi-F、tpi-R、tpi-P、tcdB-F、tcdB-R、tcdB-P、HP-F、HP-R、HP-P的终浓度比依次为3：3：2：4：4：2.5：2：2：1.5。
优选地，所述试剂盒的多重荧光PCR反应条件为：37℃5min；95℃5min；95℃15s，60℃38s，45个循环。
优选地，所述试剂盒还包括核酸提取试剂、多重荧光PCR反应所需试剂、内标工作液、阳性对照液和阴性对照液；所述核酸提取试剂包括裂解液、洗涤缓冲液I、洗涤缓冲液II和DNA洗脱液；所述多重荧光PCR反应所需试剂包括MgCl2、10×PCR buffer、dNTP/dUTP混合溶液、UDG酶和Taq DNA聚合酶；所述内标工作液为不含tpi及tcdB基因扩增序列的HP质粒；所述阳性对照液为含有tpi及tcdB基因扩增序列的克隆质粒；所述阴性对照液为灭菌超纯水。
本发明试剂盒增加了内标质控系统，监测待测样本中是否含有PCR抑制物及评价核酸提取的质量，避免PCR假阴性；并采用含有tpi及tcdB基因扩增序列的克隆质粒作为阳性对照液，通过加入UDG酶+dUTP防污染系统将可能的扩增产物污染充分降解，避免假阳性结果。
优选地，所述裂解液包括SDS、二水柠檬酸三钠、DTT和糖原。
本发明还请求保护一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR方法，包括以下步骤：
S1.提取临床样本粪便基因组DNA和阴性对照组DNA，并向裂解液中加入内标工作液；
S2.向待测样本、阴性对照组和阳性对照组中加入PCR反应体系；
S3.采用上述任一所述试剂盒进行多重荧光PCR反应；
S4.收集荧光信号，通过测定DNA的Ct值，进行结果分析。
与现有技术相比，本发明具有以下有益效果：
(1)本发明试剂盒增加了内标质控系统，在同一反应管里可一次性检测tpi基因、tcdB基因和内标三个靶标。通过对tpi基因的检测，可以进行艰难梭菌菌属的鉴定；通过对tcdB基因的检测，可同时判断待检菌株是否携带毒素B的基因，进而有效地应用于判断临床菌株及其毒素分泌情况，提高准确性；同时内标系统可监测待测样本中是否含有PCR抑制物及评价核酸提取的质量，避免PCR假阴性。本发明试剂盒还采用含有tpi及tcdB基因扩增序列的克隆质粒作为阳性对照液，通过加入UDG酶+dUTP防污染系统将可能的扩增产物污染充分降解，避免假阳性结果。
(2)本发明试剂盒使粪便标本无需纯培养即可提取DNA进行检测，具有操作简单、报告时间短，特异性强、灵敏度高、准确性好的优点，有较强的抗干扰能力，能从成分复杂的样本中检测出艰难梭菌菌属基因及毒素基因，适用于临床不明原因腹泻病人的病因筛查。
附图说明
图1为实施例2中粪便样品的基因组DNA相关数据(浓度及OD值)。
图2为实施例2中质量控制艰难梭菌产毒株阳性对照图。
图3为实施例2中质量控制艰难梭菌非产毒株阳性对照图。
图4为实施例2中质量控制艰难梭菌阴性对照图。
图5为实施例3中特异性分析的交叉反应分析图。
图6为实施例3中特异性分析的内源物质干扰性分析图。
图7为实施例3中特异性分析的外源物质干扰性分析图。
图8为实施例3中艰难梭菌浓度为3.0×102个菌/mL的三重荧光PCR扩增曲线图。
图9为对照组试剂盒A检测艰难梭菌的双重荧光扩增曲线。
图10为对照组试剂盒B检测艰难梭菌的双重荧光扩增曲线。
图11为对照组试剂盒C检测艰难梭菌的双重荧光扩增曲线。
图12为实施例1试剂盒检测艰难梭菌的双重荧光扩增曲线。
图13为对照组试剂盒C检测艰难梭菌的三重荧光扩增曲线。
图14为实施例1试剂盒检测艰难梭菌的三重荧光扩增曲线。
具体实施方式
下面结合说明书附图及具体实施例对本发明作出进一步地详细阐述，所述实施例只用于解释本发明，并非用于限定本发明的范围。下述实施例中所使用的试验方法如无特殊说明，均为常规方法；所使用的材料、试剂等，如无特殊说明，为可从商业途径得到的试剂和材料。
实施例1
一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂盒，包括一组检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR引物组和探针，核酸提取试剂，多重荧光PCR反应所需试剂，内标工作液，阳性对照液和阴性对照液。
其中，所述检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR引物组和探针，包括tpi扩增引物对tpi-F和tpi-R，tpi荧光探针tpi-P，tcdB扩增引物对tcdB-F和tcdB-R，tcdB荧光探针tcdB-P，内标引物对HP-F和HP-R，内标荧光探针HP-P；核苷酸序列分别依次如SEQID NO:1～SEQ ID NO:9所示。
所述探针tpi-P、tcdB-P、HP-P的5’末端结合的荧光物质分别为FAM、HEX、Cy5，3’末端结合的荧光物质均为BHQ1。
所述试剂盒的多重荧光PCR反应体系中，tpi-F、tpi-R、tpi-P、tcdB-F、tcdB-R、tcdB-P、HP-F、HP-R、HP-P的终浓度比依次为3：3：2：4：4：2.5：2：2：1.5。
所述试剂盒的多重荧光PCR反应条件为：37℃5min；95℃5min；95℃15s，60℃38s，45个循环。
所述核酸提取试剂包括裂解液、洗涤缓冲液I、洗涤缓冲液II和DNA洗脱液；所述多重荧光PCR反应所需试剂包括MgCl2、10×PCR buffer、dNTP/dUTP混合溶液、UDG酶和TaqDNA聚合酶；所述内标工作液为不含tpi及tcdB基因扩增序列的HP质粒；所述阳性对照液为含有tpi及tcdB基因扩增序列的克隆质粒；所述阴性对照液为灭菌超纯水。所述裂解液包括SDS、二水柠檬酸三钠、DTT和糖原。
所述试剂盒的使用方法包括以下步骤：提取临床样本粪便基因组DNA和阴性对照组DNA，并向裂解液中加入内标工作液；向待测样本、阴性对照组和阳性对照组中加入PCR反应体系；采用该试剂盒进行多重荧光PCR反应；收集荧光信号，通过测定DNA的Ct值，进行结果分析。
所述试剂盒的制备过程如下：
1、引物和探针的设计
通过NCBI数据库和http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi在线比对，找出tpi基因和tcdB基因在不同艰难梭菌菌株间的保守序列。然后，通过oligo7软件，对各个基因序列进行引物探针的设计，并分析引物探针的GC含量、Tm值、发夹结构、引物错配频率等因素，研究不同引物和探针对样品的检测情况，优选出最佳的引物与探针组合。
另外，在Genebank数据库中，选择与艰难梭菌基因组序列没有同源的其它来源物种序列，作为内标。内标可对实验过程中可能存在的扩增反应抑制物、仪器、试剂和操作等所导致的假阴性结果进行质量控制。内标的设计须保证在检测时额外添加的内标荧光通道呈明显的阳性曲线，又要尽量降低其对靶核酸序列检测造成的抑制而导致假阴性。通过对内标序列的筛选及其引物、探针用量的优化，最后优选HP为内标(委托上海捷瑞生物工程有限公司合成HP扩增区域片段，并插入到pGHn质粒载体上)。tpi基因、tcdB基因和内标序列的Genebank序列号如表1所示：
表1 tpi基因、tcdB基因和内标序列的Genebank序列号
名称 登录号 位置
<u>tpi</u> CP011968.1 3540163-3540906
<u>tcdB</u> KC292135.1 3614-3833
HP KT022072.1 2833-3032
以tpi引物和探针设计为例：将引物设计模板CP011968.1全序列在NCBI blast比对，确定了特异性较高的序列，以这部分序列为引物设计模板，设计3对引物组，如表2所示。分析引物探针的GC含量、Tm值、发夹结构、引物错配频率等，筛选出检测效果最佳的tpi引物和探针。
表2 tpi引物和探针的筛选序列信息
Figure BDA0001568024770000071
同理，按照tpi引物和探针设计方法，设计tcdB及HP的引物与探针。优选出的tpi、tcdB、HP的引物和探针信息如表3所示。
表3试剂盒引物和探针序列表
Figure BDA0001568024770000081
2、核酸提取试剂配制
核酸提取试剂用于提取粪便样本基因组DNA，由裂解液、洗涤缓冲液I、洗涤缓冲液II和DNA洗脱液组成。其中，裂解液由SDS、二水柠檬酸三钠、糖原、DTT等配制而成；洗涤缓冲液I包括Tris-HCl缓冲液、EDTA、氯化钠，洗涤缓冲液II包括Tris-HCl缓冲液、氯化钠，DNA洗脱液包括Tris-HCl缓冲液、EDTA。
3、多重荧光PCR反应体系配置
多重荧光PCR反应体系包括表3中的引物组和探针，以及50mM MgCl2、10×PCRbuffer、dNTP/dUTP混合溶液、UDG酶和Taq DNA聚合酶，通过PCR体外扩增法进行病原体检测。其中，引物和探针tpi-F、tpi-R、tpi-P、tcdB-F、tcdB-R、tcdB-P、HP-F、HP-R、HP-P的终浓度比依次为3：3：2：4：4：2.5：2：2：1.5。
阳性对照液由含tpi基因和tcdB基因的质粒制备而成，使用紫外分光光度计对其浓度进行测定，稀释后作为本试剂盒的阳性质控品；阴性对照液为灭菌超纯水。
内标工作液为合成质粒，不含tpi及tcdB基因扩增序列，委托上海捷瑞生物工程有限公司合成内标扩增区域片段(HP)，并插入到pGHn质粒载体上，根据紫外分光光度计测定OD值计算拷贝数，进行梯度稀释后，作为本试剂盒的内标工作液。
实施例2试剂盒对临床样本的检测
使用实施例1试剂盒检测临床样本中的艰难梭菌，具体步骤如下：
1、样本设置
采集人粪便样本，样本中不应混有尿液、便池水、消毒剂，不应接触便池、卫生纸、尿不湿等，以防样本受到污染或破坏。设置10份艰难梭菌阳性临床样本(P1-P10)和10份艰难梭菌阴性临床样本(N1-N10)，其中阳性样本包括艰难梭菌产毒菌株(P1-P5)和不产毒菌株(P6-P10)。所有临床粪便样本均经过广州军区总医院检验科的分离培养、质谱鉴定和毒素Sanger测序的验证。
2、粪便基因组DNA的提取
(1)挑取50～200mg粪便于1.5mL离心管中，加入400μL生理盐水溶解，于3000rpm瞬时离心20s；
(2)吸取200μL的上清液至新的2mL离心管中，加入600μL含有内标(内标2μL/人份)的裂解液，涡旋震荡混匀30s，于95～100℃中热裂解10min；
(3)加入600μL无水乙醇，颠倒混匀，于12000rpm离心30s；
(4)将离心柱置入收集套管中，转移900μL上清液至离心柱上，于12000rpm离心1min，弃去收集管中的废液；
(5)加入500μL洗涤缓冲液I(已加入6mL无水乙醇)，于12000rpm离心1min，弃去收集管中的废液；
(6)加入600μL洗涤缓冲液II(已加入14mL无水乙醇)，于12000rpm离心1min，弃去收集管中的废液；
(7)于12000rpm离心2min；
(8)转移离心柱至新的1.5mL离心管上，在纯化柱正中间加入50μL DNA洗脱液，静置2min；
(9)于12000rpm离心1min洗脱DNA。提取的核酸应立即用于后续检测，不能及时检测的应置于-20℃下保存。
从样本中提取基因组DNA，其中加入内标至临床样本中，以参与并监控核酸提取过程。提取的粪便样品中基因组DNA的相关数据(浓度及OD值)如图1所示。由结果可知，提取的基因组DNA纯度均在理想范围内(OD260/280：1.8～2.0)；因临床样本差异性，DNA浓度在10～350ng/μL范围内不等。
3、阴性对照核酸提取
吸取200μL阴性对照液至新的2mL离心管中，加入600μL含有内标的裂解液，按照粪便基因组DNA的提取的方法进行核酸提取。
4、加样
向待测样本、阴性对照组和阳性对照组中加入PCR反应体系，混匀，经瞬时离心后，按17μL/管分装至PCR反应管中；向分装好的各反应管分别加入处理好的DNA样品3μL、阴性对照液3μL及阳性对照液3μL。短暂离心使所有试剂集中到反应管底部(不能有气泡)，确定盖好管盖后，立即进行PCR扩增反应。
5、PCR扩增
(1)将PCR反应管放入PCR仪的样品槽中，按对应名称设置阳性对照、阴性对照和未知样品，并设置样品名称、检测靶标名称；
(2)荧光检测通道选择：选择FAM通道检测tpi；选择HEX/VIC通道检测tcdB；选择Cy5通道检测内标。淬灭基团都选None。
(3)设置PCR反应条件
表4 PCR反应条件
Figure BDA0001568024770000101
(4)选择反应体系体积为20μL；
(5)设置完毕，保存文件，运行反应程序。
6、结果判断
(1)质量控制
阴性对照：FAM检测通道和HEX检测通道扩增曲线无对数增长期，Cy5检测通道扩增曲线为对数增长期，且Ct值≤36；
阳性对照：FAM检测通道和HEX检测通道扩增曲线有明显对数增长期，且Ct≤24。
以上要求需在同一次试验中同时满足。否则，本次试验无效，需重新进行。
(2)结果判定
表5艰难梭菌检测结果判定
Figure BDA0001568024770000111
(3)临床样本艰难梭菌检测结果如表6所示：
表6临床样本艰难梭菌检测结果
Figure BDA0001568024770000112
注：“-”代表检测结果为阴性，“+”代表检测结果为阳性。
由表6可以看出，实施例1试剂盒对临床样本P1-P10的检测结果，与厌氧培养后质谱鉴定和毒素sanger测序结果相同；而经厌氧培养法鉴定为艰难梭菌阴性的10例样本中，实施例1试剂盒检测出N1-N10为艰难梭菌tpi和tcdB阴性。因此，实施例1试剂盒检测艰难梭菌的结果与预期结果符合，且操作方便快捷，不易受环境影响。
实施例3试剂盒性能分析
1、特异性分析
(1)交叉反应
采用实施例1所述的试剂盒和实施例2所述的检测方法，选择与艰难梭菌种属相近或引起相似症状的微生物，如小肠结肠炎耶尔森菌、肠毒性大肠杆菌和蜡状芽孢杆菌等21种为待检样本，评价实施例1试剂盒对艰难梭菌相近的引起相似症状的其它病原体检测的符合率，以分析本试剂盒的特异性。待检样本的浓度测OD值后估算，高于1×106个菌/mL，结果如表7和图5所示。
实验结果：除了内标有扩增外，tpi和tcdB靶标均没有检测到扩增峰，表示这些样本均没有扩增，与预期结果符合，临床常见的同种属相近的及引起症状相似的其他病原菌不干扰本试剂盒的检测结果，相互之间不存在交叉反应，表明本试剂盒的分析特异性好。
表7交叉反应实验分析
Figure BDA0001568024770000121
注：“-”代表检测结果为阴性。
(2)内源性干扰
采用实施例1所述的试剂盒和实施例2所述的检测方法，取200mg粪便加入200μL艰难梭菌灭活培养物(7.88×104个菌/mL)进行检测，另取等量的艰难梭菌灭活培养物为阳性对照，评价含有内源性物质的样本对本试剂盒灵敏度是否存在影响，以分析这些内源性物质的干扰，结果如表8和图6所示。
实验结果表明，在本试剂盒的实验条件下，艰难梭菌灭活培养物加入粪便后，Ct值的变异系数小于5％，样本中可能存在的内源性物质对试剂盒的检测结果无干扰。
表8内源性物质的干扰试验分析
Figure BDA0001568024770000131
(3)外源性干扰
采用实施例1所述的试剂盒和实施例2所述的检测方法，向浓度为7.88×105个菌/mL(P1)的艰难梭菌灭活培养物样本中加入以下干扰物质，另以等量的艰难梭菌灭活培养物为阳性对照，评价含有外源性物质的样本对本试剂盒灵敏度是否存在影响，以考察这些外源性物质的干扰，结果如表9和图7所示。
实验结果表明，艰难梭菌培养物加入其它治疗药物后，试剂盒的检测Ct值变异系数均小于5％，说明在本试剂盒的实验条件下，样本中可能存在的外源性干扰物质对试剂盒的检测结果无干扰。
表9外源性物质干扰实验分析
Figure BDA0001568024770000132
2、灵敏度分析
(1)最低检测限的估计
使用已定值的艰难梭菌灭活培养物，稀释至接近试剂盒灵敏度浓度，再进行3倍梯度稀释，稀释浓度分别为7.88×102个菌/mL、2.62×102个菌/mL和8.75×101个菌/mL。然后以实施例1所述的试剂盒和实施例2中所述的试剂盒检测方法，对上述艰难梭菌灭活培养物进行检测。每个浓度各做3个重复，以分析各浓度样本的检出率。本次实验结果统计如表10所示。
表10最低检测限的估测
Figure BDA0001568024770000141
从上述的实验结果可以看出，确保100％检出的细菌最低浓度介于2.62×102个菌/mL和7.88×102个菌/mL之间。
(2)最低检测限的确定
以上述估计最低检出限浓度的细菌样本为初始样本，3倍梯度稀释后，使用实施例1所述的试剂盒和实施例2中所述的试剂盒检测方法，对这些样本进行检测。每个浓度每批试剂盒做20个重复，以分析各浓度样本的检出率，95％以上检出的最低浓度就是检测限。实验结果显示，以3.0×102个菌/mL浓度的艰难梭菌阳性检出率为100％，如图8所示。由此表明，本试剂盒的最低检测限为3.0×102个菌/mL。
对比例1
设置对照组试剂盒A、B和C，选择动物病毒序列作为内标，分别为HCS、HJ和HSa，以合成质粒添加到样本中参与核酸提取过程，分别设计引物、探针，除了内标引物对、内标荧光探针不同，其余组分和实施例1试剂盒一致。由于tpi的扩增效率远比tcdB高，因此只选择tcdB与内标进行双重荧光PCR检测，其余部分与实施例2的检测方法一致。使用实施例1试剂盒和对照组试剂盒A、B、C分别检测临床样本，每个试剂盒设置4个模板浓度梯度。
结果如图9～12所示，由图可知，在双重荧光PCR体系中，HP扩增曲线最好，HSa次之，而HCS和HJ体系中的内标或tcdB的荧光增幅严重受影响。
使用双重荧光中扩增曲线较好的对照组试剂盒C和实施例1试剂盒，采用实施例2的检测方法进行三重荧光PCR检测临床样本，设置4个模板浓度梯度。
结果如图13～14所示，由图可知，在三重荧光PCR体系中，实施例1试剂盒各靶标均能保持良好的扩增效率，不同浓度呈现梯度分布，扩增曲线较均衡，而HSa内标体体系里tpi和tcdB的扩增曲线会受到影响。
对比例2
设置对照组试剂盒D，除了无内标引物对HP-F和HP-R、内标荧光探针HP-P，其余组分和实施例1试剂盒一致。采用实施例2的检测方法，使用实施例1试剂盒和对照组试剂盒D分别检测艰难梭梭菌标准菌株ATCC9689(该菌株10倍梯度稀释4次)和特异菌株N1～N10，判断标准菌株ATCC9689和特异菌株的tpi和tcdB靶标Ct值是否发生变化，结果如表11所示。由表可知，使用实施例1试剂盒和未添加内标的对照组试剂盒D，标准菌株ATCC9689的Ct值基本相同，几乎没变化，由此说明，内标并未抑制tpi和tcdB靶标的扩增；此外，特异菌株的tpi和tcdB靶标均未能扩增，说明实施例1试剂盒内标的添加并未造成假阳性的结果。
表11试剂盒内标的添加对靶标扩增的影响分析
Figure BDA0001568024770000151
注：“-”代表检测结果为阴性。
序列表
<110> 广州赛哲生物科技股份有限公司
<120> 一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂盒和方法
<160> 9
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 24
<212> DNA
<213> 艰难梭菌(Clostridium difficile)
<400> 1
taagatataa cgtcattagc atct 24
<210> 2
<211> 21
<212> DNA
<213> 艰难梭菌(Clostridium difficile)
<400> 2
agtagttgtt gcatatgagc c 21
<210> 3
<211> 26
<212> DNA
<213> 艰难梭菌(Clostridium difficile)
<400> 3
ttgcagtttt accagttcca atagcc 26
<210> 4
<211> 24
<212> DNA
<213> 艰难梭菌(Clostridium difficile)
<400> 4
attacctaat gctccaaata gagt 24
<210> 5
<211> 26
<212> DNA
<213> 艰难梭菌(Clostridium difficile)
<400> 5
ccatcatttt ctaagcttct taaacc 26
<210> 6
<211> 25
<212> DNA
<213> 艰难梭菌(Clostridium difficile)
<400> 6
tttgcttggg aaacaggatg gacac 25
<210> 7
<211> 21
<212> DNA
<213> 艰难梭菌(Clostridium difficile)
<400> 7
caccgcgtag aactgtgaca a 21
<210> 8
<211> 21
<212> DNA
<213> 艰难梭菌(Clostridium difficile)
<400> 8
aagcctcata ttccgtctgt g 21
<210> 9
<211> 26
<212> DNA
<213> 艰难梭菌(Clostridium difficile)
<400> 9
acgctgacgc accaggatga gcctct 26

Claims (6)

1.一种检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的多重荧光PCR试剂盒，其特征在于，该试剂盒包含包括tpi扩增引物对tpi-F和tpi-R，tpi荧光探针tpi-P，tcdB扩增引物对tcdB-F和tcdB-R，tcdB荧光探针tcdB-P，内标引物对HP-F和HP-R，内标荧光探针HP-P；核苷酸序列分别依次如SEQ ID NO:1～SEQ ID NO:9所示，其中，tpi-F、tpi-R、tpi-P、tcdB-F、tcdB-R、tcdB-P、HP-F、HP-R、HP-P的终浓度比依次为3：3：2：4：4：2.5：2：2：1.5。
2.根据权利要求1所述的试剂盒，其特征在于，所述探针的5’末端结合有荧光物质，3’末端结合有淬灭物质；所述荧光物质为FAM、HEX、TET、JOE、VIC、Cy5中的至少一种；所述淬灭物质为TAMRA、BHQ1、BHQ2、BHQ3中的至少一种。
3.根据权利要求2所述多重荧光PCR引物组和探针，其特征在于，所述探针的5’末端结合的荧光物质为FAM、HEX、Cy5中的至少一种，3’末端结合的荧光物质为BHQ1。
4.根据权利要求1所述的试剂盒，其特征在于，所述试剂盒的多重荧光PCR反应条件为：37℃5min；95℃5min；95℃15s，60℃38s，45个循环。
5.根据权利要求1～4任一项所述的试剂盒，其特征在于，所述试剂盒还包括核酸提取试剂、多重荧光PCR反应所需试剂、内标工作液、阳性对照液和阴性对照液；所述核酸提取试剂包括裂解液、洗涤缓冲液I、洗涤缓冲液II和DNA洗脱液；所述多重荧光PCR反应所需试剂包括MgCl2、10×PCR buffer、dNTP/dUTP混合溶液、UDG酶和Taq DNA聚合酶；所述内标工作液为不含tpi及tcdB基因扩增序列的HP质粒；所述阳性对照液为含有tpi及tcdB基因扩增序列的克隆质粒；所述阴性对照液为灭菌超纯水。
6.根据权利要求5所述的试剂盒，其特征在于，所述裂解液包括SDS、二水柠檬酸三钠、DTT和糖原。
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Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110628925B (zh) * 2019-11-04 2023-02-24 湖南融健生物科技有限公司 用于检测艰难梭菌的引物、试剂盒和方法
CN111020042B (zh) * 2020-01-02 2023-06-16 圣湘生物科技股份有限公司 检测a族链球菌的组合物及方法
CN111826453A (zh) * 2020-08-06 2020-10-27 上海交通大学 艰难梭菌检测引物或双重检测引物组及其试剂盒和快速检测方法
CN112266915A (zh) * 2020-10-22 2021-01-26 大连理工大学 一种用于检测艰难梭菌的核酸适配体及应用
CN113846174B (zh) * 2021-09-15 2024-06-11 北京源景泰科生物科技有限公司 用于检测艰难梭菌的试剂盒和检测方法
CN114214437A (zh) * 2021-11-24 2022-03-22 西湖大学 一种鉴定产毒型艰难梭菌及其毒素基因分型的方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103215362A (zh) * 2013-04-22 2013-07-24 航天中心医院 TaqMan-MGB探针实时荧光定量PCR技术联合检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的方法学建立
CN103361434A (zh) * 2013-07-24 2013-10-23 浙江省疾病预防控制中心 艰难梭菌毒素基因多重荧光pcr检测试剂盒及检测方法
CN103911430A (zh) * 2014-02-21 2014-07-09 无锡中德美联生物技术有限公司 一种荧光标记多重pcr艰难梭菌检测试剂盒
CN104928376A (zh) * 2015-06-05 2015-09-23 武汉大学 用于检测艰难梭菌高毒力菌株和/或毒素类型的组合物与试剂盒以及方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103215362A (zh) * 2013-04-22 2013-07-24 航天中心医院 TaqMan-MGB探针实时荧光定量PCR技术联合检测艰难梭菌菌属基因及毒素基因的方法学建立
CN103361434A (zh) * 2013-07-24 2013-10-23 浙江省疾病预防控制中心 艰难梭菌毒素基因多重荧光pcr检测试剂盒及检测方法
CN103911430A (zh) * 2014-02-21 2014-07-09 无锡中德美联生物技术有限公司 一种荧光标记多重pcr艰难梭菌检测试剂盒
CN104928376A (zh) * 2015-06-05 2015-09-23 武汉大学 用于检测艰难梭菌高毒力菌株和/或毒素类型的组合物与试剂盒以及方法

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