CN109964814B - 一种暖木条荚蒾的离体快繁方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于植物组织培养领域,提供了一种暖木条荚蒾的离体快繁方法。本发明以暖木条荚蒾的幼嫩茎段为外植体,以MS为基本培养基,添加植物生长调节物质6‑BA、IBA诱导腋芽萌发生长,在继代增殖过程中添加GA3促进形成丛生芽,再经生根诱导及炼苗移栽,可在短时间内获得大量遗传性一致的再生植株。为其良种快速繁育提供技术支撑,为加速暖木条荚蒾的综合开发利用具有重要的现实意义。
Description
技术领域
本发明属于植物组织培养领域,具体涉及一种暖木条荚蒾的离体快繁方法。
背景技术
暖木条荚蒾Viburnum burejaeticum Regel et Herder又名暖木条子、修枝荚蒾,忍冬科(Caprifoliaceae)荚蒾属落叶灌木。生长于针、阔叶混交林中,主要分布在黑龙江、吉林、辽宁,国外朝鲜北部、俄罗斯远东地区也有分布。该树种耐阴,抗寒、抗旱,生长快,耐修剪,萌发力强,根系发达,可孤植、丛植、群植于公园、广场等绿地,也可作绿篱,在园林绿化中具有良好的应用前景,是东北地区观花赏果的优良绿化树种。
暖木条荚蒾枝叶茂盛,花色素雅,气味清香,是良好的蜜源植物;果实可食;种子含油约17%,供制肥皂用;枝条柔韧性好可供编织。荚蒾属植物药用价值极高,具有清热解毒、祛风除湿、健脾消食、强身、抗衰老等作用。现已研究表明,暖木条荚蒾茎枝的水煎液具有一定的抗炎镇咳祛痰作用。
暖木条荚蒾具有较高的园林应用价值和经济价值,但目前多处于野生状态,未得到很好地开发和利用。现存野生资源也较少,因此培育大量优质苗木势在必行。目前暖木条荚蒾主要通过播种繁殖。但其种子具有形态生理休眠特性,播种繁殖比较困难,制约了暖木条荚蒾的推广种植及应用。因此采用组织培养方法开展离体快繁的研究是一种有效的途径。因此,建立一种暖木条荚蒾的离体快繁方法,可实现规模化育苗,为其良种快速繁育提供技术支撑,从而促进其进一步综合开发利用。
发明内容
本发明的目的在于提供一种暖木条荚蒾的离体快繁方法,实现规模化育苗。通过外植体选择及消毒、启动诱导培养、继代增殖培养、生根诱导培养、炼苗移栽等过程实现了暖木条荚蒾离体快繁。
本发明提供一种暖木条荚蒾离体快繁方法,包括以下步骤:
(1)外植体的消毒及启动诱导培养:选择生长健壮的无病虫害的幼嫩枝条为外植体,先用流水冲洗30min,剪去幼枝上的叶片,然后用滴加少量吐温80的0.1%HgCl2溶液灭菌5min左右,无菌水漂洗5次。将嫩枝修剪成1cm左右带芽茎段接种于启动诱导培养基上,置于每天光照10~12h,光照强度为15001x,培养温度为23~25℃条件下培养,直至诱导腋芽萌发生长;
(2)继代增殖培养:将腋芽萌发伸长生长的芽苗转入增殖培养基上进行继代增殖培养,置于每天光照12h,光照强度为1500 1x,培养温度为23~25℃条件下培养,直至腋芽萌发或形成丛生芽,继代周期为40d;
(3)生根诱导培养:将高度约为3cm生长健壮的无根苗接种到生根培养基上进行生根诱导,置于每天光照12h,光照强度为2000~25001x,培养温度为23~25℃条件下培养至生根;
(4)炼苗移栽:暖木条荚蒾在生根培养基中培养25~30d后,挑选生长健壮、根系发达的组培苗,先打开封口膜置于自然光照下炼苗3~5d,然后用清水洗净组培苗根部残留的培养基,然后用800倍多菌灵溶液浸泡20~30min,再移栽到已消毒的等体积比的珍珠岩、蛭石和腐殖土的混合基质中。
上述步骤(1)所述的启动诱导培养基为MS+1.0mg/L 6-BA(6-苄氨基腺嘌呤)+0.1~0.3mg/L IBA(吲哚丁酸)+30g/L蔗糖+6g/L琼脂,pH值为5.8。经过20d左右的诱导培养,腋芽萌发抽枝,35d时枝长2cm左右。
上述步骤(2)所述的增殖培养基为MS+1.0mg/L 6-BA+0.3mg/L IBA+0.5mg/L GA3(赤霉素)+30g/L蔗糖+6g/L琼脂,pH值为5.8;平均增殖系数达6以上。
上述步骤(3)所述的生根培养基为1/2MS+0.3mg/L IBA+0.3mg/L NAA(萘乙酸)+15g/L蔗糖+6g/L琼脂,pH值为5.8。大约15d开始生根,30d左右时已分化8~12条粗壮的不定根,根长为1.5~2cm,生根率达到100%。
上述步骤(4)移栽前将基质用0.3%高锰酸钾溶液淋透消毒,然后再用清水冲淋2~3遍。移栽前期覆盖塑料薄膜保湿并用遮荫网适当遮阴,每天喷雾1次,移栽后期逐渐降低湿度,增加光照。移栽15d左右长出新根,移栽成活率达85%以上。保证温湿度平衡和光照需求是移栽成功的关键。
本发明的有益效果
目前国内外还未见暖木条荚蒾离体快繁的相关报道,本发明采用植物组织培养技术,通过诱导腋芽萌发和形成丛生芽的途径,可在短时间内繁育大量苗木。本发明具有增殖系数高、移栽成活率高、生长周期短等特点,大大提高了暖木条荚蒾的育苗效率,利于工厂化生产。
具体实施方式
以下实施例是对本发明的进一步说明,不是对本发明的限制。
具体实施
(1)外植体的消毒及启动诱导培养:选择生长健壮的无病虫害的当年萌发的幼嫩枝条或萌发条为外植体,先用流水冲洗30min,然后剪去幼枝上的叶片,留2~3mm叶柄。采用两种消毒方法:一种是用10%Ca(ClO)2灭菌20min,无菌水漂洗3次;另一种是在0.1%HgCl2溶液中滴加少量吐温80灭菌5min,无菌水漂洗5次。将嫩枝剪成1cm左右带芽茎段接种于启动诱导培养基上,置于每天光照10~12h,光照强度为15001x,培养温度为23~25℃条件下培养。采用以下4种诱导培养基:MS+1.0mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA;MS+1.0mg/L 6-BA+0.3mg/L IBA;MS+1.0mg/L 6-BA+0.1mg/L NAA;MS+1.0mg/L 6-BA+0.3mg/L NAA;每种培养基的蔗糖浓度均为30g/L,琼脂浓度均为6g/L,pH值均为5.8。经过20d的诱导培养,添加IBA的培养基中,外植体腋芽萌发生长快,两个对生侧芽分别萌发长出2片小叶;而添加NAA的培养基中腋芽诱导较慢,腋芽刚刚萌动。采用10%Ca(ClO)2灭菌效果差,污染率达70%;而采用在0.1%HgCl2溶液中滴加少量吐温80灭菌效果好,污染率仅为10%。
(2)继代增殖培养:将腋芽萌发伸长生长的芽苗转入增殖培养基上进行继代增殖培养,置于每天光照12h,光照强度为15001x,培养温度为23~25℃条件下培养。采用以下3种增殖培养基:MS+1.0mg/L6-BA+0.3mg/L IBA;MS+1.0mg/L 6-BA+0.3mg/L IBA+0.5mg/LGA3;MS+1.0mg/L 6-BA+0.5mg/L IBA;每种培养基的蔗糖浓度均为30g/L,琼脂浓度均为6g/L,pH值均为5.8。继代培养35d观察发现添加赤霉素的培养基中,在暖木条荚蒾腋芽部位形成大量丛生芽,增殖系数大于6。而未加赤霉素的只通过腋芽萌发实现增殖,同时生长素IBA浓度为0.5mg/L时,经过3次继代培养,基部形成愈伤组织。
(3)生根诱导培养:将高度约为3cm生长健壮的无根苗接种到生根培养基上进行生根诱导,置于每天光照12小时,光照强度为2000~25001x,培养温度为23~25℃条件下培养。采用以下4种生根培养基:1/2MS+0.5mg/L NAA;1/2MS+0.5mg/L IBA;1/2MS+0.3mg/LNAA+0.3mg/L IBA;1/2MS+0.5mg/L NAA+0.5mg/L IBA。每种培养基的蔗糖浓度均为15g/L,琼脂浓度均为7g/L,pH值均为5.8。培养30d,观察并统计不同处理的生根率、生根数量及根长。
植物生长素对暖木条荚蒾生根的影响
(4)炼苗移栽:暖木条荚蒾在生根培养基中培养35d后,挑选生长健壮、根系发达的组培苗,先打开封口膜置于自然光照下炼苗3~5d,然后用清水洗净根部残留的培养基,移栽到已消毒的基质中(V珍珠岩:V蛭石:V腐殖土=1:1:1),移栽期间保证温湿度条件,精心管护,移栽成活率达85%以上。
Claims (1)
1.一种暖木条荚蒾的离体快繁方法,其特征在于包括以下步骤:
(1)外植体的消毒及诱导培养:选择生长健壮的无病虫害的当年萌发的幼嫩枝条为外植体,先用流水冲洗30min,剪掉幼枝上的叶片,然后用滴加少量吐温80的0.1%HgCl2溶液灭菌5 min左右,无菌水漂洗5次,将嫩枝修剪成1cm左右带芽茎段接种于启动诱导培养基上,置于每天光照10~12h,光照强度为15001x,培养温度为23~25℃条件下培养,直至诱导腋芽萌发生长;
(2)继代增殖培养:将腋芽萌发伸长生长的芽苗转入增殖培养基上进行继代增殖培养,置于每天光照12 h,光照强度为1500 1x,培养温度为23~25 ℃条件下培养,直至腋芽萌发或形成丛生芽,继代周期为40d;
(3)生根诱导培养:将高度约为3cm的生长健壮的无根苗接种到生根培养基上进行生根诱导, 置于每天光照12 h,光照强度为2000~25001x,培养温度为23~25℃条件下培养至生根;
(4)炼苗移栽: 暖木条荚蒾在生根培养基中培养25~30d后,挑选生长健壮、根系发达的组培苗, 先打开封口膜置于自然光照下炼苗3~5 d, 然后用清水洗净根部残留的培养基, 移栽到已消毒的等体积比的珍珠岩、蛭石和腐殖土的混合基质中;
步骤(1)所述的启动诱导培养基为 MS+1.0 mg/L 6-BA(6-苄氨基腺嘌呤)+0.1~0.3mg/L IBA(吲哚丁酸)+30g/L蔗糖+6g/L琼脂,pH值为5.8;
步骤(2)所述的增殖培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.3mg/L IBA+0.5mg/L GA3(赤霉素)+30 g/L蔗糖+6 g/L琼脂,pH值为5.8;
步骤(3)所述的生根培养基为1/2MS+0.3 mg/L IBA+0.3mg/L NAA(萘乙酸)+15 g/L蔗糖+6g/L琼脂,pH值为5.8。
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