CN109954292A - 药材的提取工艺 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及药物提取领域,特别涉及药材的提取工艺。该工艺取药材预处理后冷冻、粉碎、过筛,取粉碎后的药材与水混合,匀浆、浸提,过滤,离心,收集上清液;提取工艺的温度不超过60℃。该提取工艺通过对工艺全程的温度控制,得到一种提取率高、工艺路线简单、保存生理活性热敏成分的低温提取方式。

Description

药材的提取工艺
技术领域
本发明涉及药物提取领域,特别涉及药材的提取工艺。
背景技术
药材提取,是中药生产过程重要的单元操作,其工艺方法、工艺流程的选择和设备配置都将直接关系到中药的质量和临床效果。传统提取方法包括煎煮法、浸渍法、渗漉法、改良明胶法、回流法、溶剂提取法、水蒸气蒸馏法和升华法等。其中煎煮法是最常用的方法,最常用的溶剂是水和乙醇。
煎煮法常见、成本较低,操作方便,是目前最广谱的一种提取方式,但无法保存具有生理活性的热敏成分,易损失挥发物质。
近年来,应用于中药提取分离还发展了新技术,有:超临界流体萃取法、膜分离技术、超微粉碎技术、中药絮凝分离技术、半仿生提取法、超声提取法、旋流提取法、加压逆流提取法、酶法、大孔树脂吸附法、超滤法、分子蒸馏法等。这些方法对提取相对传统方法,可以提高提取效率,保存活性成分,产品质量高,但具有成本高、周期长的缺陷。
发明内容
有鉴于此,本发明提供一种药材的提取工艺。本发明提供了一种新的、可以保存热敏性物质的、较简单、成本较低的提取工艺,尤其可以保存具有生理活性的热敏成分,并可以对药材全成分进行提取。
为了实现上述发明目的,本发明提供以下技术方案:
本发明提供了一种药材的提取工艺,取药材预处理后冷冻、粉碎、过筛,取粉碎后的药材与水混合,匀浆、浸提,过滤,离心,收集上清液;
所述提取工艺的温度不超过60℃。
在本发明的一些具体实施方案中,所述提取工艺的温度为-273℃~40℃。
在本发明的一些具体实施方案中,所述冷冻的温度不高于-20℃。
在本发明的一些具体实施方案中,所述冷冻的温度为-196℃~-40℃。
作为优选,冷冻使用低温冰箱,至少低于-20℃,多使用-40℃、-60、-80,或者液氮(-196℃)温度冷冻,冷冻温度越低,速度越快,冷冻药材后粉碎起来效果越好。
在本发明的一些具体实施方案中,粉碎的粒径≤1cm,粉碎后过80-100目筛。
在本发明的一些具体实施方案中,所述粉碎后的药材与水的质量比为1:(1~10)。
在本发明的一些具体实施方案中,所述浸提为超声浸提,超声的频率为1~500Hz,超声的时间为5~60min。
在本发明的一些具体实施方案中,所述超声的时间为5~30min。
作为优选,超声的时间为15min。
作为优选,过滤采用挤压过滤、抽滤、纱网、多次离心等,凡是本领域能够达到过滤效果的操作均在本发明的保护范围之内,本发明在此不做限定。
在本发明的一些具体实施方案中,所述离心的转速为1000~10000rpm,所述离心的时间为5~60min。
在本发明的一些具体实施方案中,所述离心的转速为3000~8000rpm,所述离心的时间为5~30min。
作为优选,所述离心的时间为5~20min。
在本发明的一些具体实施方案中,所述真空干燥的温度为-35℃~30℃,所述真空干燥的真空度为1Pa~50Pa。
作为优选,所述真空干燥的真空度为1Pa~20Pa。更有选的,所述真空干燥的真空度为1Pa~15Pa。
本发明提供了一种药材的提取工艺,取药材预处理后冷冻、粉碎、过筛,取粉碎后的药材与水混合,匀浆、浸提,过滤,离心,收集上清液;提取工艺的温度不超过60℃。该提取工艺通过对工艺全程的温度控制,得到一种提取率高、工艺路线简单、保存生理活性热敏成分的低温提取方式。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。
图1示实施例1中人参皂苷标准品1的HPLC图;
图2示实施例1中人参皂苷标准品2的HPLC图;
图3示实施例1中人参皂苷标准品3的HPLC图;
图4示实施例1中鲜人参的HPLC图;
图5示实施例1中鲜人参提取物的HPLC图;
图6示比较例1回流后人参提取物的HPLC图。
具体实施方式
本发明公开了一种药材的提取工艺,本领域技术人员可以借鉴本文内容,适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明。本发明的方法及应用已经通过较佳实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法和应用进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。
本发明提供了一种新的、可以保存热敏性物质的、较简单、成本较低的提取工艺,尤其可以保存具有生理活性的热敏成分,并可以对药材全成分提取的工艺。为此,本申请人锐意创新,进行了大量深入的研究和实验工作,通过对工艺全程的温度控制,得到一种提取率高、工艺路线简单、保存生理活性热敏成分的低温提取方式,完成了本发明。
对本发明进行详细阐述。
一种药材的提取工艺,包含以下步骤:
A、药材清洗、去泥沙;
B、低温冷冻;
C、使用粉碎设备,对速冻后的鲜药材进行粗粉和/或细粉,过筛;
D、将冷水加入搅拌机,与粉碎后的鲜药材进行匀浆,得到匀浆液;
E、匀浆液进行超声浸提;
F、超声后的匀浆液挤压过滤,滤液离心,留上清液;
G、上清液进行真空冷冻干燥,得到鲜提物。
所述药材可以为鲜药材或干药材,优选鲜药材;可以来源于动物和植物中的一种或多种组合。
其中动物药材,优选但不限于鹿茸、鹿胎、海参、海参花、燕窝、牡蛎、林蛙油。
其中植物药材,优选但不限于新鲜的人参、三七、西洋参、党参、铁皮石斛、东革阿里、玛咖、西红花、辣木籽、天麻、黑枸杞、枸杞、藿香、马鞭才、车前草、姜、地黄、白芍、黄芩。
还可以涉及到鲜果,可以是但不限于欧洲越橘、蔓越莓、巴西黑酶、葡萄、卡姆果、榄仁果。
所述超低温冷冻,其温度低于0℃,方式可以选自冰箱冷冻、超低温冰箱冷冻、液氮和/或其他冷媒喷淋或浸入方式中的一种或多种组合。
所述滤液离心环节,可以重复多次,并合并上清液。
上述工艺全程对温度控制,全程温度不超过60℃,最优选-273℃~40℃。
本发明提供的药材的提取工艺中所用原料及试剂均可由市场购得。
本发明涉及的含义:
提取率:指提取物总质量:原药材总质量*100%;
对于热敏成分的保护性:评价是否检出,以及检出量差异。
下面结合实施例,进一步阐述本发明:
实施例1:鲜人参的提取工艺
A、鲜人参清洗、去泥沙,使用纯净水润洗三次;
B、液氮(-196℃)喷洒低温冷冻;
C、使用破骨机对冷冻后的鲜人参进行粗粉至粒径1cm以下,后将粗粉使用万能粉碎机进行细粉,过80目筛;
D、将25℃纯水1.3倍加入搅拌机,与粉碎后的鲜人参细粉进行匀浆,匀浆时间5min,得到匀浆液;
E、匀浆液进行超声(500Hz)浸提10min;
F、超声后的匀浆液挤压过滤,滤液5000转离心15min,留上清液;离心残渣再次进行匀浆、超声浸提、离心,留上清液,并合并两次离心后的上清液;
G、上清液进行真空冷冻干燥(-35℃~30℃,真空度15pa,时间16h),得到人参鲜提物。
上述人参鲜提物:鲜人参药材的提取率为10.98%(鲜人参1005g,产出提取物198.99g)。
使用液质联用法检测丙二酸单酰基-人参皂苷Rb1,条件为:
液相色谱条件:Agilent 1200高效液相色谱仪,色谱柱Chromolith FastGradient反相色谱柱(50×2.0mm),梯度洗脱,流速0.2mL/min,A相为水溶液(含有2.5×10-3mol/L醋酸铵以及1/200000氨水w/w),B相为90%乙腈水溶液(含2.5×10-3mol/L醋酸铵以及1/200000氨水w/w)。流动相梯度0-3min 90%A和10%B,7min 15%B,40min 40%B,45min65%B。进样体积2μl;
质谱条件:Agilent 6310离子阱质谱,电喷雾离子源,负离子模式;导入洗脱液,流速0.1mL/min。
在鲜人参和鲜提物中,检出丙二酸单酰基-人参皂苷Rb1。
比较例1:采用常规煎煮法对鲜人参进行提取
A、加10倍水煎煮,加热回流提取;
B、将水提液趁热抽滤,收集滤液;
C、按照上述方法进行二次提取,合并滤液,减压浓缩得人参浸膏;
D、浸膏喷干为提取物。
上述人参提取物,提取率为6.54%(鲜人参1010g,产出提取物66.054g)。
使用液质联用法检测检测丙二酸单酰基-人参皂苷Rb1,在鲜人参中有检出,在人参提取物中未检出。
效果例1:
原始数据见表1。
表1
注:*示与对比例1相比具有显著差异(P<0.05);#示与对比例1相比具有极显著差异(P<0.01)。
图谱如图1~图6所示。可见常规煎煮法,无论是水提还是醇提,都既不能保留热敏成分丙二酸单酰基-人参皂苷Rb1,其提取率也没有优势。实验组与对照组相比,提取率和有效成分的保留率均具有极显著差异(P<0.01)。
实施例2欧洲越橘鲜果的提取工艺
A、鲜果清洗、去泥沙,使用纯净水润洗三次;
B、超低温冰箱-40℃低温冷冻8h;
C、使用破骨机对冷冻后的鲜欧洲越橘进行粗粉至粒径3mm,后将粗粉使用万能粉碎机进行细粉,过100目筛;
D、将10℃、1倍纯水加入搅拌机,与粉碎后的鲜欧洲越橘细粉进行匀浆,得到匀浆液;
E、匀浆液进行超声(1Hz)浸提30min;
F、超声后的匀浆液挤压过滤,滤液3000转离心5min,留上清液;离心残渣再次进行匀浆、超声浸提、离心,留上清液,并合并两次离心后的上清液;
G、上清液进行真空冷冻干燥(-35℃~30℃,真空度10pa,时间15h),得到欧洲越橘鲜提物。
飞燕草素测试方法:
精密称取欧洲越橘鲜果、欧洲越橘鲜提提取物及欧洲越橘煮提提取物分别为500、24、24mg(精确至0.01mg)放入烧瓶中,加入60mL 2%盐酸-甲醇溶液(m/V),在80℃水浴中回流水解0.5小时后冷却至室温,用2%盐酸-甲醇溶液(m/V)转移完全并定容至100mL,摇匀,得试液A。然后精密吸取5mL到50mL容量瓶中,用2%盐酸-甲醇溶液(m/V)定容至刻度,摇匀,得待测试液B;溶液应澄清透明。若混浊,则用滤纸过滤,开始的滤液约10mL弃去,之后的滤液用作检测。
以2%盐酸-甲醇溶液(m/V)作空白,在540nm吸收波长、1cm比色杯条件下测吸光度A。
以飞燕草素的质量分数w3计,数值以%表示,按下式计算:
式中:
A——供试品溶液B在吸收波长540nm下的吸光度;
f——供试品溶液A至试液B的稀释倍数;
m——供试品质量,单位为克(g);
1020——飞燕草素的百分吸光系数,既在540nm吸收波长下,飞燕草素的溶液浓度为
1g/100mL、比色杯厚度为1cm时,溶液的吸光度;
1——百分吸光系数定义规定的,在100mL溶液中溶解溶质(飞燕草素)的质量,单位为克(g)。
上述鲜提物,提取率为4.8%(300.4g鲜果,得到14.42g提取物),工艺全程呈现鲜果的紫红色,紫外法检测飞燕草素含量为鲜果中的83.25%,说明提取工艺对功效花色苷成分没有破坏。
对比例2
采用常规煎煮法对鲜欧洲越橘进行提取
A、加10倍水煎煮,加热回流提取(欧洲越橘变色为棕色);
B、将水提液趁热抽滤,收集滤液;
C、按照上述方法进行二次提取,合并滤液,减压浓缩得浸膏;
D、浸膏喷干为提取物。
上述人参提取物,提取率为4%(301.1g鲜果,得到12.04g提取物),工艺中呈现为棕色;
紫外法检测飞燕草素含量为鲜果中的0.5%,说明提取工艺对功效花色苷成分被破坏。
效果例2
原始数据见表2。
表2
注:*示与对比例2相比具有显著差异(P<0.05);#示与对比例2相比具有极显著差异(P<0.01)。
可见常规煎煮法不适合于欧洲越橘鲜果,热敏色素成分因高温而破坏。实验组与对照组相比,有效成分的保留率极显著提高(P<0.01),显著(P<0.05)降低了生产成本。
实施例3黑枸杞鲜果的提取工艺
A、鲜果清洗、去泥沙,使用纯净水润洗三次;
B、超低温冰箱-273℃低温冷冻8h;
C、使用破骨机对冷冻后的黑枸杞进行粗粉至粒径3mm,后将粗粉使用万能粉碎机进行细粉,过100目筛;
D、将10℃、10倍纯水加入搅拌机,与粉碎后的黑枸杞细粉进行匀浆,得到匀浆液;
E、匀浆液进行超声(100Hz)浸提60min;
F、超声后的匀浆液挤压过滤,滤液8000转离心30min,留上清液;离心残渣再次进行匀浆、超声浸提、离心,留上清液,并合并两次离心后的上清液;
G、上清液进行真空冷冻干燥(-35℃~30℃,真空度50pa,时间15h),得到黑枸杞鲜提物。
有效成分测定方法:
取提取物0.2g溶于100ml纯水中,4000rpm离心10min,取上清液。35℃恒温真空旋蒸30min。称量浓缩液,用纯化水定容至100ml。精密量取1ml浓缩液,置于10ml容量瓶中(样液稀释10倍),分别加入pH1.0、pH4.5的缓冲液,暗处平衡15min。
紫外分光光度计在250~600nm范围扫描,分别测定黑果枸杞花色苷在pH 4.5和pH1.0缓冲液中的最大吸收波长及其最大吸收波长处的吸光度值Aλmax。总花色苷含量(以矢车菊素-3-葡萄糖苷计)的计算公式:
A=AλmaxpH1.0-AλmaxpH4.5
C=(A×103×MW×DF)/(ε×l)
总花色苷含量(mg/100g)=(C×V)/M/10
式中,Aλmax:最大吸收波长处的吸光度值;MW:矢车菊-3-葡萄糖的分子质量(449.2g/mol);DF:待测液稀释倍数;ε:消光系数(29600L/mol·cm);l:光路长度(cm);C:花色苷质量浓度(mg/L);V:待测液的体积(mL);M:样品质量(g)。
数据记录如下:
表3
根据算式,结果为:
表4
上述鲜提物,提取率为4.8%,工艺全程呈现鲜果的紫红色,紫外法检测鲜果中花色苷含量为19.02%,提取物中花色苷含量为17.75%,花色苷保存率93.3%,说明提取工艺对功效花色苷成分没有破坏。
比较例3
将黑枸杞采用常规煎煮法提取物,如下:
A、对黑枸杞进行粉碎,加水;
B、加热至50℃时,果粉液体完全变色,紫外法检测花色苷含量0%,花色苷被完全破坏。
比较例4
将黑枸杞采用溶剂浸提法,如下:
A、对黑枸杞粉碎至80目,取4g,加入200ml0.5%TFH-MeOH浸渍;
B、均匀浆2min,低温超声30min,置于7℃冰箱,避光6天,得到浸提物。
取浸提物,4000rpm离心10min,取上清液。35℃恒温真空旋蒸30min。称量浓缩液,用纯化水定容至100ml。精密量取1ml浓缩液,置于10ml容量瓶中(样液稀释10倍),分别加入pH1.0、pH4.5的缓冲液,暗处平衡15min。同上,紫外法检测花色苷含量,数据记录如下:
表5
根据算式,浸提物结果为:
表6
上述提取物提取率同样为4.8%,提取物有少量变色,紫外法检测花色苷含量为12.17%,检测花色苷成分有一定损失。
表7
注:*示与对比例3、4相比具有显著差异(P<0.05);#示与对比例3、4相比具有极显著差异(P<0.01)。
本发明提供的提取工艺与常规煎煮法、浸提法相比,极显著(P<0.01)提高了热敏色素成分的保留率,极显著(P<0.01)降低了生产成本。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。

Claims (10)

1.药材的提取工艺,其特征在于,取药材预处理后冷冻、粉碎、过筛,取粉碎后的药材与水混合,匀浆、浸提,过滤,离心,收集上清液;
所述提取工艺的温度不超过60℃。
2.根据权利要求1所述的提取工艺,其特征在于,所述提取工艺的温度为-273℃~40℃。
3.根据权利要求1或2所述的提取工艺,其特征在于,所述冷冻的温度不高于-20℃。
4.根据权利要求1至3任一项所述的提取工艺,其特征在于,所述冷冻的温度为-196℃~-40℃。
5.根据权利要求1至4任一项所述的提取工艺,其特征在于,所述粉碎后的药材与水的质量比为1:(1~10)。
6.根据权利要求1至5任一项所述的提取工艺,其特征在于,所述浸提为超声浸提,超声的频率为1~500Hz,超声的时间为5~60min。
7.根据权利要求6所述的提取工艺,其特征在于,所述超声的时间为5~30min。
8.根据权利要求1至7任一项所述的提取工艺,其特征在于,所述离心的转速为1000~10000rpm,所述离心的时间为5~60min。
9.根据权利要求1至8任一项所述的提取工艺,其特征在于,所述离心的转速为3000~8000rpm,所述离心的时间为5~30min。
10.根据权利要求1至9任一项所述的提取工艺,其特征在于,所述真空干燥的温度为-35℃~30℃,所述真空干燥的真空度为1Pa~50Pa。
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