CN109402203A - 一种表达o型口蹄疫包涵体工程菌的培养基 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了属于生物技术领域的一种表达O型口蹄疫包涵体工程菌的培养基。本发明包括基础培养基及补料培养基,不含速效碳源,通过流加60%葡萄糖来缓慢补充碳源,能够降低乙酸的产生,也防止了氨水调节pH导致活菌数下降的发生。本培养基补料培养基通过菌体合成所需氨基酸比例,合理添加不同种类氨基酸,避免了营养过剩的浪费。本培养基能显著提高大肠杆菌工程发酵密度,同时保证高密度下有高的活菌数,不降低每单位菌体蛋白表达量。提高目的蛋白表达总量,提高生产效率,降低生产成本。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种表达O型口蹄疫包涵体工程菌的 培养基。
背景技术
随着生物制药的发展,利用重组DNA技术克隆大肠杄菌制得的工程菌,生 产生物药物数量越来越多,为生物技术获得生物药物产品的主要途径。
一般情况下,生物药物的产率与大肠杆菌发酵密度密切相关,大肠杆菌的收 率直接关系到生物药物的产率。所以在菌体表达蛋白效率相当的情况下,大肠 杆菌的发酵密度直接影响到生物药物的效率和成本。特别是在同样的纯化技术 条件下,不断有学者进行这方面的研究,如根据化学计量模式(stoichiometric mode1)的方法重新对培养基配方进行设计和优化。在发酵策略方面,为了提高 细菌发酵密度,发酵工艺普遍采用补料-分批发酵(fed-batch)的方式提高 菌体生长密度和目标产物的表达总量。开发出一种适用于工程菌高密度发酵培 养的培养基是非常有必要的。
发明内容
为了解决工程菌的高密度发酵培养问题,本发明提出了一种表达O型口蹄 疫包涵体工程菌的培养基。
一种表达O型口蹄疫包涵体工程菌的培养基,包括基础培养基及补料培养 基;
所述基础培养基每升包含下列配比组分:酵母提取物2~6g/L,胰蛋白胨 1~4g/L,七水硫酸镁0.5~1.5g/L,六水氯化钴0.1~0.3g/L,四水氯化锰0.1~0.2g/L,磷酸二氢钾0.3~0.6g/L,磷酸氢二钾1.2~1.6g/L,泛酸钙0.1~0.4g/L, 生物素0.05~0.15g/L,叶酸0.05~0.15g/L;
所述补料培养基每升包含下列配比组分:酵母提取物30~50g/L,胰蛋白 胨20~30g/L,磷酸二氢钾4~5g/L,磷酸氢二钾13~16g/L,天冬酰胺4~7g/L, 丝氨酸4~7g/L,甘氨酸1.5~2.2g/L,谷氨酸3~4g/L,丙氨酸3~4g/L,精氨酸 1.5~2.1g/L,亮氨酸1.5~2.1g/L,赖氨酸1.1~1.8g/L,L-甲硫氨酸0.5~1.2g/L, L-异亮氨酸0.5~1.2g/L,L-缬氨酸0.5~1.2g/L,组氨酸0.2~0.6g/L。
一种表达O型口蹄疫包涵体的工程菌制的备方法,包括如下步骤:
(1)摇瓶培养:所用培养基为权利要求1所述的基础培养基,用冻存菌种 于摇瓶培养基中,在摇床中37℃,180~220rpm条件下培养6~10h至对数生 长期;
(2)基础培养阶段:取500ml菌液接种到发酵罐的发酵培养基中,温度 控制在37℃;通过流加60%葡萄糖控制pH在7.2;溶氧控制在30%,开始阶 段搅拌速度为40~60rpm,通气量为4~6L/min;当溶氧水平低于阈值30%时, 搅拌速度和溶氧与溶氧30%偶联,发酵阶段转速设为400~600rpm,通气量设 为80~100L/min;
(3)补料培养阶段:当A600值达到15时,基础培养基营养快消耗完, 开始进入补料培养阶段,根据菌量和生长速度,呈指数增加变化流加权利要求 1所述补料培养基,当菌生长到预定的密度时开始加入诱导剂进行诱导,诱导 4~6小时后进行收菌。
有益效果:本发明的培养基成分较为明确,不含速效碳源,通过流加60% 葡萄糖来缓慢补充碳源,能够降低乙酸的产生,也防止了氨水调节pH导致活 菌数下降的发生。本培养基补料培养基通过菌体合成所需氨基酸比例,合理添 加不同种类氨基酸,避免了营养过剩的浪费。本培养基能显著提高大肠杆菌工 程发酵密度,同时保证高密度下有高的活菌数,不降低每单位菌体蛋白表达量。 提高目的蛋白表达总量,提高生产效率,降低生产成本。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作详细描述,但本发明的实施不仅限于此。
下述实施例所用O型口蹄疫包涵体工程菌由中国农业科学院兰州兽医研究 所构建表达。菌种形态:在含75μg/ml卡那霉素的LBA琼脂平板上生长的菌落应 为圆凸起、光滑、边缘整齐的灰白色菌落。菌体培养物结晶紫染色后,呈红色, 在显微镜下观察为无芽孢的直杆菌,两端钝圆。生化特性:可发酵乳糖和山梨 醇;吲哚和甲基红试验均为阳性,VP试验和枸橼酸盐利用试验均为阴性。
实施例1
按照本发明配方配制的培养基大规模发酵工艺研究实验
(1)发酵采用fed-batch模式,发酵罐50L(沃力信),配制20L基础培养 基,发酵罐原位灭菌后备用,配制补料培养5L,灭菌备用。
基础培养基按如下配方配制:酵母提取物4g/L,胰蛋白胨2.5g/L,七水硫酸 镁1g/L,六水氯化钴0.2g/L,四水氯化锰0.15g/L,磷酸二氢钾0.45g/L,磷酸氢二 钾1.45g/L,泛酸钙0.25g/L,生物素0.1g/L,叶酸0.1g/L,培养基用NaOH等碱性 溶液调至合适pH值。
补料培养基按如下配方配制:酵母提取物40g/L,胰蛋白胨25g/L,磷酸二氢 钾4.5g/L,磷酸氢二钾14.5g/L,天冬酰胺5.4g/L,丝氨酸5.4g/L,甘氨酸1.62g/L, 谷氨酸3.6g/L,丙氨酸3.6g/L,精氨酸1.89g/L,亮氨酸1.89g/L,赖氨酸1.35g/L,L- 甲硫氨酸0.96g/L,L-异亮氨酸0.96g/L,L-缬氨酸0.72g/L,组氨酸0.47g/L。
(2)实验过程:
(1)摇瓶培养:所用培养基为所述的基础培养基,用冻存菌种于摇瓶培养 基中,在摇床中37℃200rpm条件下培养8h至对数生长期;
(2)基础培养阶段:取500ml菌液接种到发酵罐的发酵培养基中,温度 控制在37℃;通过流加60%葡萄糖控制pH在7.2;溶氧控制在30%,开始阶 段搅拌速度为50rpm,通气量为5L/min;当溶氧水平低于阈值30%时,搅拌速 度和溶氧与溶氧30%偶联,发酵阶段转速设为500rpm,通气量设为90L/min;
(3)补料培养阶段:当A600值达到15时,基础培养基营养快消耗完, 开始进入补料培养阶段,根据菌量和生长速度,呈指数增加变化流加补料培养 基,当菌生长到预定的密度时开始加入诱导剂进行诱导,诱导5小时后进行收 菌。
(4)在发酵过程中,每隔1h取样,检测菌量。主要采用紫外分光光度计 测定600nm波长的A值,同时测量菌的湿重和cfu进行辅助分析。
表达产物的SDS-PAGE电泳图谱表明,所有的重组蛋白均以包涵体的形式存 在。且经Western blot分析证实,重组蛋白能够与口蹄疫O型阳性血清发生特异 性反应。传代稳定性实验表明传代代次限定在9代以内。
实施例2
在变指数流加补料策略培养大肠杆菌工程菌时,采用葡萄糖溶液和氨水两 种方式调节pH值实验。
1.发酵参数控制
A罐和B罐都是2L基础培养基+1L补料培养基,流加补料培养基的策略也 一样,不同的是,A罐在发酵罐中糖不够时加入一定量的葡萄糖溶液,再通过 25%氨水来调控pH;B罐通过60%葡萄糖溶液来调节pH,具体发酵参数如表 1、表2所示:
表1 A罐发酵控制参数
表2 B罐发酵控制参数
说明:1.A罐和B罐都是2L基础培养基+1L补料培养基。
2.A罐和B罐流加补料培养基的策略完全一样。
3.A罐分多次在当发酵罐中糖不够时加入一定量的葡萄糖溶液,再通过 25%氨水来调控pH;B罐通过60%葡萄糖溶液来调节pH。
2.检测OD600、菌体湿重、活菌数(cfu)、乙酸、血糖,实验数据如表3、 表4所示:
表3 A罐实验数据
表4 B罐实验数据
由实验结果可知,采用60%葡萄糖溶液调控pH值的方法能取得较高生物 量的同时保证较高的活菌数。
C罐是2L基础培养基+1L补料培养基,流加补料培养基的策略也同B罐 一样,所不同的是C罐的补料培养基中还加入扭口藓提取物2g/L;所述扭口藓 提取物的提取方法为:将扭口藓晒干,磨成粉末,加3-8被重量份数的水回流 提取3次,合并滤液,蒸干制成。检测OD600、菌体湿重、活菌数(cfu)、乙 酸、血糖,实验数据如表5所示。
表5 C罐实验数据
由表5可以看出,加入扭口藓提取物后,可以显著提高发酵菌体的湿重,活 菌数,降低乙酸含量。
Claims (2)
1.一种表达O型口蹄疫包涵体工程菌的培养基,其特征在于,包括基础培养基及补料培养基;
所述基础培养基每升包含下列配比组分:酵母提取物2~6g/L,胰蛋白胨1~4 g/L,七水硫酸镁0.5~1.5 g/L,六水氯化钴0.1~0.3 g/L,四水氯化锰0.1~0.2 g/L,磷酸二氢钾0.3~0.6 g/L,磷酸氢二钾1.2~1.6 g/L,泛酸钙0.1~0.4 g/L,生物素0.05~0.15 g/L,叶酸0.05~0.15 g/L;
所述补料培养基每升包含下列配比组分:酵母提取物30~50 g/L,胰蛋白胨20~30 g/L,磷酸二氢钾4~5 g/L,磷酸氢二钾13~16 g/L,天冬酰胺4~7g/L,丝氨酸4~7 g/L,甘氨酸1.5~2.2 g/L,谷氨酸3~4 g/L,丙氨酸3~4 g/L,精氨酸1.5~2.1 g/L,亮氨酸1.5~2.1 g/L,赖氨酸1.1~1.8 g/L,L-甲硫氨酸0.5~1.2 g/L,L-异亮氨酸0.5~1.2 g/L,L-缬氨酸0.5~1.2 g/L,组氨酸0.2~0.6g/L。
2.一种表达O型口蹄疫包涵体的工程菌制备的方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)摇瓶培养:所用培养基为权利要求1所述的基础培养基,用冻存菌种于摇瓶培养基中,在摇床中37℃,180~220rpm 条件下培养6~10h至对数生长期;
(2)基础培养阶段:取500ml菌液接种到发酵罐的发酵培养基中,温度控制在37℃;通过流加60%葡萄糖控制pH在7.2;溶氧控制在30%,开始阶段搅拌速度为40~60rpm,通气量为4~6L/min;当溶氧水平低于阈值30%时,搅拌速度和溶氧与溶氧30%偶联,发酵阶段转速设为400~600rpm,通气量设为80~100L/min;
(3)补料培养阶段:当A600值达到15时,基础培养基营养快消耗完,开始进入补料培养阶段,根据菌量和生长速度,呈指数增加变化流加权利要求1所述补料培养基,当菌生长到预定的密度时开始加入诱导剂进行诱导,诱导4~6小时后进行收菌。
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