CN109380085A - 一种望江南组织培养再生体系构建方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种望江南组织培养再生体系构建方法,通过无性快繁技术获得株性稳定望江南种苗的技术方法。本发明以望江南未成熟胚为外植体,经过种子消毒、胚愈伤组织诱导、分化培养、生根培养、炼苗及移栽等步骤构建了望江南组织培养再生体系,既解决望江南优质种苗缺乏的问题,又可为今后开展望江南遗传转化工作奠定基础。
Description
技术领域
本发明涉及农业生物技术中植物组织培养的方法,具体地说,涉及一种望江南组织培养再生体系构建方法。
背景技术
望江南为豆科植物,取其干燥成熟种子。主产广东、广西。秋季采收成熟种子晒干。味微苦。具有清热明目,润肠。 用于肝热头痛,眩晕,目赤肿痛,便秘。望江南植物组织培养技术具有加速育种进程、缩短繁殖时间、改良植物品质、节省空间、减少劳动、可终年生产、不受自然条件限制等特点,可有效解决望江南品种选育耗时长的问题。近年来望江南组织培养研究方面取得了一定的进展,但依然存在一些问题,如外植体褐化现象严重、出梢率低、生根困难、移栽大田成活率低等,使组织培养技术在望江南中的应用受到很大的限制。因此,非常有必要建立系统的望江南离体快繁体系,为今后对望江南进行品质遗传改良奠定基础。
发明内容
本发明的目的在于提供出一种望江南组织培养再生体系构建方法,本发明以望江南未成熟胚为外植体,经过种子消毒、胚愈伤组织诱导、分化培养、生根培养、炼苗及移栽等步骤构建了望江南组织培养再生体系,从而实现了本发明的目的。
本发明的一种望江南组织培养再生体系构建方法,包括以下的步骤:
步骤(1),种子消毒:选择未成熟果子,去叶后于洗衣粉水浸泡34min,刷净后自来水冲洗3h,取出尚未成熟的乳白或略带棕色的种子,在超净工作台中,剥开外种皮,先用75%乙醇消毒35s后用无菌水洗10次,再用0.1%升汞溶液消毒29min,用无菌水冲洗7次后备用;
步骤(2),胚愈伤组织诱导:将经步骤(1)处理后未成熟种胚切成0.6cm×0.6cm×0.6cm接种到诱导培养基上,先在25~28℃条件下全暗培养46天,然后置于每天光照16小时,光照强度为3300lx,直至诱导形成胚性愈伤组织;诱导培养基为:ER+6-BA1.0mg/L+NAA0.5mg/L+GA35 mg/L+蔗糖20g/L+琼脂6.5g/L,pH为5.7。
步骤(3),分化培养:将步骤(2)培养获得的呈绿色的子叶愈伤组织转入分化培养基上进行分化培养,接种后先在25~28℃条件下全暗培养15天,然后置于每天光照18小时,光照强度为2800lx,置于培养温度为25~28℃的条件下培养直至形成丛生芽;分化培养基为:ER+6-BA1.0mg/L+IBA0.1mg/L+蔗糖19g/L+琼脂5.5g/L,pH为5.7;
步骤(4),生根培养:将步骤(3)过程获得的高度约为5.5cm的丛生芽分切接种到生根培养基上进行生根培养,接种后先在25~28℃条件下全暗培养15天,然后置于每天光照17小时,光照强度为1800lx,培养温度为25~28℃的条件下培养至生根;生根培养基为:1/2MS+IBA0.2mg/L+GGR1.0mg/L+KT1.0mg/L+蔗糖20g/L+琼脂6.5g/L,pH为5.7。
步骤(5),炼苗移栽:将步骤(4)获得的高约9cm的生根试管苗去瓶盖置于自然光照下炼苗8天后,将试管苗从培养瓶中取出,洗掉根部培养基,栽入由泥炭土和黄沙泥混合成的基质中并定植于大田中。
与现有技术相比本发明的优点是:目前国内关于望江南组培快繁技术尚未成熟,而本发明具有简单、易行、经济的特点。通过本发明育成的望江南试管苗移栽成活率达到90%以上,可以有效解决望江南种苗缺乏的问题。
具体实施方式
以下实施例是对本发明的进一步说明,不是对本发明的限制。
实施例1:
(1)种子消毒:选择未成熟果子,去叶后于洗衣粉水浸泡15min,刷净后自来水冲洗2h,取出尚未成熟的乳白或略带棕色的种子,在超净工作台中,剥开外种皮,先用75%乙醇消毒6s后用无菌水洗6次,再用0.1%升汞溶液消毒12min,用无菌水冲洗5次后备用,接种一周后统计污染率可低至3%。
(2)胚愈伤组织诱导:将经步骤(1)处理后未成熟种胚切成0.5cm×0.5cm×0.5cm接种到诱导培养基上,先在28℃条件下全暗培养30天,然后置于每天光照12小时,光照强度为1400x,直至诱导形成胚性愈伤组织,愈伤组织诱导率为67%。所述的诱导培养基为ER+6-BA1.0mg/L+NAA0.5mg/L+GA35 mg/L+蔗糖20g/L+琼脂6.5g/L,pH为5.7。
(3)分化培养:将步骤(2)培养获得的呈绿色的子叶愈伤组织转入分化培养基上进行分化培养,接种后先在28℃条件下全暗培养8天,然后置于每天光照13小时,光照强度为2900lx,置于培养温度为28℃的条件下培养直至形成丛生芽。所述的分化培养基为ER+6-BA1.0mg/L+IBA0.1mg/L+蔗糖19g/L+琼脂5.5g/L,pH为5.7。
(4)生根培养:将步骤(3)过程获得的高度约为6.5cm的丛生芽分切接种到生根培养基上进行生根培养,接种后先在28℃条件下全暗培养9天,然后置于每天光照15小时,光照强度为1900lx,培养温度为28℃的条件下培养至生根,生根率为89%。所述的生根培养基为1/2MS+IBA0.2mg/L+GGR1.0mg/L+KT1.0mg/L+蔗糖20g/L+琼脂6.5g/L,pH为5.7。
(5)炼苗移栽:将步骤(4)获得的高约9cm的生根试管苗去瓶盖置于自然光照下炼苗8天后,将试管苗从培养瓶中取出,洗掉根部培养基,栽入由泥炭土和黄沙泥混合成的基质中并定植于大田中,移栽成活率可达92.6%。
实施例2:
(1)种子消毒:选择未成熟果子,去叶后于洗衣粉水浸泡16min,刷净后自来水冲洗3h,取出尚未成熟的乳白或略带棕色的种子,在超净工作台中,剥开外种皮,先用75%乙醇消毒8s后用无菌水洗9次,再用0.1%升汞溶液消毒11min,用无菌水冲洗9次后备用,接种一周后统计污染率可低至6%。
(2)胚愈伤组织诱导:将经步骤(1)处理后未成熟种胚切成0.5cm×0.5cm×0.5cm接种到诱导培养基上,先在28℃条件下全暗培养31天,然后置于每天光照13小时,光照强度为1400x,直至诱导形成胚性愈伤组织,愈伤组织诱导率为63%。所述的诱导培养基为ER+6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L+GA33 mg/L+蔗糖20g/L+琼脂6.5g/L,pH为5.7。
(3)分化培养:将步骤(2)培养获得的呈绿色的子叶愈伤组织转入分化培养基上进行分化培养,接种后先在28℃条件下全暗培养9天,然后置于每天光照13小时,光照强度为2800lx,置于培养温度为28℃的条件下培养直至形成丛生芽。所述的分化培养基为ER+6-BA1.2mg/L+IBA0.5mg/L+蔗糖20g/L+琼脂6.5g/L,pH为5.7。
(4)生根培养:将步骤(3)过程获得的高度约为6.5cm的丛生芽分切接种到生根培养基上进行生根培养,接种后先在28℃条件下全暗培养9天,然后置于每天光照15小时,光照强度为2400lx,培养温度为28℃的条件下培养至生根,生根率为85.2%。所述的生根培养基为1/2MS+IBA0.4mg/L+GGR1.5mg/L+KT1.0mg/L+蔗糖20g/L+琼脂6.5g/L,pH为5.7。
(5)炼苗移栽:将步骤(4)获得的高约12cm的生根试管苗去瓶盖置于自然光照下炼苗9天后,将试管苗从培养瓶中取出,洗掉根部培养基,栽入由泥炭土和黄沙泥混合成的基质中并定植于大田中,移栽成活率可达90%。
Claims (1)
1.一种望江南组织培养再生体系构建方法,其特征在于包括以下步骤:
步骤(1),种子消毒:选择未成熟果子,去叶后于洗衣粉水浸泡34min,刷净后自来水冲洗3h,取出尚未成熟的乳白或略带棕色的种子,在超净工作台中,剥开外种皮,先用75%乙醇消毒35s后用无菌水洗10次,再用0.1%升汞溶液消毒29min,用无菌水冲洗7次后备用;
步骤(2),胚愈伤组织诱导:将经步骤(1)处理后未成熟种胚切成0.6cm×0.6cm×0.6cm接种到诱导培养基上,先在25~28℃条件下全暗培养46天,然后置于每天光照16小时,光照强度为3300lx,直至诱导形成胚性愈伤组织;诱导培养基为:ER+6-BA1.0mg/L+NAA0.5mg/L+GA35 mg/L+蔗糖20g/L+琼脂6.5g/L,pH为5.7;
步骤(3),分化培养:将步骤(2)培养获得的呈绿色的子叶愈伤组织转入分化培养基上进行分化培养,接种后先在25~28℃条件下全暗培养15天,然后置于每天光照18小时,光照强度为2800lx,置于培养温度为25~28℃的条件下培养直至形成丛生芽;分化培养基为:ER+6-BA1.0mg/L+IBA0.1mg/L+蔗糖19g/L+琼脂5.5g/L,pH为5.7;
步骤(4),生根培养:将步骤(3)过程获得的高度约为5.5cm的丛生芽分切接种到生根培养基上进行生根培养,接种后先在25~28℃条件下全暗培养15天,然后置于每天光照17小时,光照强度为1800lx,培养温度为25~28℃的条件下培养至生根;生根培养基为:1/2MS+IBA0.2mg/L+GGR1.0mg/L+KT1.0mg/L+蔗糖20g/L+琼脂6.5g/L,pH为5.7;
步骤(5),炼苗移栽:将步骤(4)获得的高约9cm的生根试管苗去瓶盖置于自然光照下炼苗8天后,将试管苗从培养瓶中取出,洗掉根部培养基,栽入由泥炭土和黄沙泥混合成的基质中并定植于大田中。
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