CN109287961A - 一种辅助降血糖脆片及其制备方法 - Google Patents
一种辅助降血糖脆片及其制备方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明涉及一种辅助降血糖脆片,其包括以下重量份的原料:塔尔米粉40~60份,鹰嘴豆粉20~30份,桑叶粉20~30份,糙米粉20~30份,菊粉6~10份,小麦粉10~30份,食用碱0.05~0.15份,食盐1~1.4份,谷朊粉2~4份,羧甲基纤维素钠0.1~0.3份,水45~65份。相对于现有技术,本发明所述的辅助降血糖脆片通过同时添加具有清除自由基作用的塔尔米粉、鹰嘴豆粉、桑叶粉和糙米粉,从而显著提升了脆片降血糖的能力;同时,通过采用超高压工艺处理脆片以及添加具有抗老化作用的菊粉,从而使得脆片经历低温保藏之后仍具有良好的硬度,没有过度老化,有助于脆片的低温保藏。
Description
技术领域
本发明涉及食品加工技术领域,特别是涉及一种辅助降血糖脆片及其制备方法。
背景技术
随着生活节奏的日益加快、肥胖人群的日渐增加以及老龄化加剧等原因,糖尿病患者的数量也迅速增长,糖尿病死亡率逐年增多。糖尿病一般可分为I型糖尿病、II型糖尿病和其他糖尿病,其中90%以上为II型糖尿病。II型糖尿病是一种慢性、全身代谢性疾病,表现为胰岛素分泌相对缺乏,从而不能及时有效降低血糖的浓度。
为了避免罹患糖尿病,人们会在日常饮食中注意经常食用具有降血糖功能的食物。但是,由于近年来随着工作节奏日益加快,人们经常没有时间和精力做健康营养、能够降血糖的饭菜,即食方便食品更适合于上班族的选择。为了满足人们对于健康和便捷食物的需求,市场迫切需要研发具有辅助降血糖功能的即食方便食品。
脆片是以果蔬为原料,通过一定的脱水技术加工而成的口感酥脆的即食方便食品。其口感酥脆、风味各异、有益健康且老少皆宜,是一种深受人们喜爱的即食方便食品。
发明内容
基于此,本发明的目的在于,提供一种具有辅助降血糖作用的脆片及其制备方法。
本发明所述的辅助降血糖脆片,其包括以下重量份的原料:塔尔米粉40~80份,鹰嘴豆粉20~30份,桑叶粉20~30份,糙米粉20~30份,菊粉6~13份,小麦粉10~35份,食用碱0.05~0.16份,食盐1~2.0份,谷朊粉2~5份,羧甲基纤维素钠0.1~0.35份,水45~88份。
相对于现有技术,本发明所述的辅助降血糖脆片通过同时添加具有清除自由基作用的塔尔米粉、鹰嘴豆粉、桑叶粉和糙米粉,从而显著提升了脆片降血糖的能力;同时,通过添加具有抗老化作用的菊粉,从而使得脆片经历低温保藏之后仍具有良好的硬度,没有过度老化,有助于脆片的低温保藏。
进一步地,包括以下重量份的原料:塔尔米粉40~60份,鹰嘴豆粉20~30份,桑叶粉20~30份,糙米粉20~30份,菊粉6~10份,小麦粉10~30份,食用碱0.05~0.15份,食盐1~1.4份,谷朊粉2~4份,羧甲基纤维素钠0.1~0.3份,水45~65份。
优选地,包括以下重量份的原料:塔尔米粉50份,鹰嘴豆粉10份,桑叶粉10份,糙米粉10份,菊粉8份,小麦粉20份,食用碱0.1份,食盐1.2份,谷朊粉3份,羧甲基纤维素钠0.2份,水55份。
本发明所述的辅助降血糖脆片的制备方法,包括以下步骤:
S1和面:将塔尔米粉、鹰嘴豆粉、糙米粉、桑叶粉、菊粉和小麦粉混合后,加入食盐、食用碱、羧甲基纤维素钠、谷朊粉按比例混合,并搅拌均匀,然后边倒水边和面得到面团,并将面团密封于保鲜膜中静置;
S2超高压处理:面团在100~400MPa压力下,超高压处理10~20min;
S3切条、辊压:将面团切条后,用擀面杖辊压数次,得到厚薄均匀的面带;
S4切片:将面带切成大小均一的面片;
S5变温压差膨化:将面片平铺于托盘置于膨化罐中,密封;然后通入热蒸汽,使膨化罐中温度慢慢升至膨化温度90~105℃,调整膨化压力到0.2~0.3MPa,开启真空泵到-0.098~0.01MPa,停滞5~10min后,开启泄压阀,面片瞬间膨胀并被抽真空;接着迅速通入冷水,将温度降至75~80℃,真空干燥150min~180min;然后通入冷却水,将水温降至20~25℃,维持5~10min;打开通气阀门,恢复常压后开罐取出含水率低于5%的脆片。
相对于现有技术,本发明所述的辅助降血糖脆片通过同时添加具有清除自由基作用的塔尔米粉、鹰嘴豆粉、桑叶粉和糙米粉,从而显著提升了脆片降血糖的能力;同时,通过添加具有抗老化作用的菊粉以及超高压处理,从而使得脆片经历低温保藏之后仍具有良好的硬度,没有过度老化,有助于脆片的低温保藏。
优选地,步骤S2中,所述超高压处理的条件为室温下,300MPa压力处理10min。
进一步地,步骤S2中,所述面团放入真空包装袋中真空封口后,进行超高压处理。
优选地,步骤S1中,所述水的温度为28~30℃,面团在保鲜膜中静置的时间为25~30min。
优选地,步骤S2中,所述面带的厚度为2.5~3mm。
优选地,步骤S3中,所述面片的大小为3~5cm×4~6cm。
为了更好地理解和实施,下面结合附图详细说明本发明。
附图说明
图1为塔尔米粉添加量对辅助降血压脆片品质影响的折线图;
图2为桑叶粉添加量对辅助降血压脆片品质影响的折线图;
图3为鹰嘴豆粉添加量对辅助降血压脆片品质影响的折线图;
图4为糙米粉添加量对辅助降血压脆片品质影响的折线图;
图5为脆片提取物的总抗氧化能力折线图;
图6为脆片提取物的清除DPPH·自由基能力折线图;
图7为脆片提取物的清除ABTS+·自由基能力折线图;
图8为脆片提取物的抑制α-葡萄糖苷酶活性能力折线图;
图9为脆片提取物影响高糖果蝇的总蛋白质含量的条形图;
图10为脆片提取物影响高糖果蝇的甘油三酯含量的条形图;
图11为脆片提取物影响高糖果蝇的海藻糖含量的条形图;
图12为脆片提取物影响高脂果蝇的总蛋白质含量的条形图;
图13为脆片提取物影响高脂果蝇的甘油三酯含量的条形图;
图14为脆片提取物影响高脂果蝇的海藻糖含量的条形图。
具体实施方式
实施例一
本发明提供一种辅助降血糖脆片,其包括以下重量份的原料:塔尔米粉40~60g,鹰嘴豆粉8~12g,桑叶粉8~12g,糙米粉8~12g,菊粉6~10g,小麦粉10~30g,食用碱0.05~0.15g,食盐1~1.4g,谷朊粉2~4g,羧甲基纤维素钠0.1~0.3g,水45~65g。
实施例二
本发明提供一种辅助降血糖脆片,其包括以下重量份的原料:塔尔米粉60~80g,鹰嘴豆粉12~16g,桑叶粉12~16g,糙米粉12~16g,菊粉9.6~12.8g,小麦粉24~32g,食用碱0.12~0.16g,食盐1.4~1.9g,谷朊粉3.6~4.8g,羧甲基纤维素钠0.24~0.32g,水66~88g。
实施例三
本发明提供一种辅助降血糖脆片,其包括以下重量份的原料:塔尔米粉50g,鹰嘴豆粉10g,桑叶粉10g,糙米粉10g,菊粉8g,小麦粉20g,食用碱0.1g,食盐1.2g,谷朊粉3g,羧甲基纤维素钠0.2g,水55g。
实施例四
实施例1~实施例3所述的辅助降血糖脆片,采用以下方法制备而成。
S1和面:将塔尔米粉、鹰嘴豆粉、糙米粉、桑叶粉、菊粉和小麦粉混合后,加入食盐、食用碱、羧甲基纤维素钠、谷朊粉按比例混合,并搅拌均匀,然后倒入28~30℃的水,边倒水边和面得到面团,并将面团密封于保鲜膜中静置25~30min;
S2超高压处理:面团在100~400MPa压力下,超高压处理10~20min;
S3切条、辊压:将面团切条后,用擀面杖辊压数次,得到厚度均匀为2.5~3mm的面带;
S4切片:将面带切成大小均一的,面积为3~5cm×4~6cm的面片,成型;
S5变温压差膨化:将面片平铺于托盘置于膨化罐中,密封;然后通入热蒸汽,使膨化罐中温度慢慢升至膨化温度90~105℃,调整膨化压力到0.2~0.3MPa,开启真空泵到-0.098~0.01MPa,停滞5~10min后,开启泄压阀,面片瞬间膨胀并被抽真空;接着迅速通入冷水,将温度降至75~80℃,真空干燥150min~180min;然后通入冷却水,将水温降至20~25℃,维持5~10min;打开通气阀门,恢复常压后开罐取出含水率低于5%的脆片。
实施例五:脆片主要原料的营养成分分析
塔尔米粉、鹰嘴豆粉、糙米粉、桑叶粉和小麦粉是本发明的辅助降血糖脆片的主要原料,其各自的营养成分如表1所示:
表1辅助降血糖脆片主要原料基本成分表(x±s)
实施例六:脆片主要原料对脆片品质影响的单因素分析
在单因素实验中,分别以塔尔米粉、鹰嘴豆粉、糙米粉、桑叶粉为试验因素,以脆片的蒸煮损失、TPA质构特性(Texture Profile Analysis,即对硬度、弹性和咀嚼性等进行分析)以及脆片水提物和醇提物的DPPH·自由基清除率(即抗氧化性)为考察指标,对辅助降血糖脆片的品质,即蒸煮损失、进行研究。
单因素实验所用的脆片配方为:以塔尔米粉+鹰嘴豆粉+糙米粉+桑叶粉+小麦粉的总质量为基数100%计,添加水55%、食盐1.2%、食用碱0.1%、羧甲基纤维素钠(CMCNa)0.2%、谷朊粉3%。
脆片水提物的制备:称取10g脆片、粉碎→加100mL蒸馏水→90℃水浴5h→离心→过滤取滤液→定容到100mL→0.1g/mL脆片水提物溶液。
脆片醇提物的制备:称取10g脆片、粉碎→加100mL无水乙醇→均质15min→摇床震荡5h→离心→过滤取滤液→定容到100mL→0.1g/mL脆片醇提物溶液。
脆片水/醇提物的DPPH·自由基清除率测定过程如下所示:
精确量取100μL脆片水提物溶液与100μL浓度为2×10-4DPPH·溶液混合,避光反应30min后,517nm下测定吸光值。
根据吸光度,按下式计算样品的DPPH·自由基清除率:
DPPH·自由基清除率(%)=[1-(A1-A2)/A0]×100%
其中,A0为100μL水/无水乙醇与100μL DPPH·溶液反应后的吸光度值;A1为100μL样品与100μL DPPH·溶液反应后的吸光度值;A2为100μL样品与100μL无水乙醇混合后的吸光度值。
脆片TPA质构特性测定过程如下所示:
取1片熟脆片进行测量,将其放在承重平台上,脆片与平台之间不要隔空隙,选用TA10圆柱形探头,测试参数为测试前速度:1.00mm/s;测试参数为测试中、后速度:0.80mm/s;起始距离:80.00cm;时间间隔:2.00s;记录脆片的硬度、弹性、咀嚼性。重复上述实验至少三次,求得脆片的硬度、弹性、咀嚼性的平均值。
对于上述实验的测量结果采用综合评分法。由于脆片咀嚼性、弹性、硬度、脆片水提物和醇提物的DPPH·自由基清除率这五个指标的数值越大,脆片的品质越好;而脆片蒸煮损失的数值越大,脆片的品质越差。因此,根据各指标对脆片品质的影响程度设定综合评分的公式如下:
Y=0.2×咀嚼性+0.1×弹性+0.1×硬度+0.3×脆片水提物DPPH·自由基清除率+0.3×脆片醇提物DPPH·自由基清除率-0.2×烹煮损失
上述综合评分公式中,各结果得分均为无量纲化后得到的无量纲化值。
无量纲化公式为:X=100×(Xi-Xmin)/(Xmax-Xmin)
其中:X为无量纲化值;Xi为实际测得值;Xmax为该指标对应实际测得值中最大值;Xmin该指标对应实际测得值中最小值。
1.塔尔米粉添加量对脆片品质的影响
按照实施例4所述制备方法,添加10~20%鹰嘴豆粉、10~20%糙米粉、4~8%桑叶粉和2~56%小麦粉,分别测量研究塔尔米粉添加量为10%、20%、30%、40%、50%时,所制得的脆片的蒸煮损失、TPA质构(硬度、弹性和咀嚼性)以及脆片水提物和醇提物DPPH·自由基清除率(抗氧化性),并计算代表脆片品质的综合评分。结果如表2和图1所示。
表2塔尔米粉添加量对脆片品质影响的试验结果
注:表中各结果为无量纲化前数据,综合评分为无量纲化后数据。
由表2和图1可知,随着塔尔米粉添加量的增加,脆片的硬度和咀嚼性逐渐增加、水提物和醇提物对DPPH·自由基的清除率均逐渐增大、蒸煮损失也逐渐增大,而脆片的弹性与塔尔米粉的添加量无线性关系,且当塔尔米粉添加量超过40%后,脆片的硬度和咀嚼性有下降的趋势。脆片品质的综合评分在塔尔米粉添加量为40%时达到最大值66.165。因此,脆片中塔尔米粉的最适添加量为40%。
2.桑叶粉添加量对脆片品质的影响
按照实施例4所述制备方法,添加10~20%鹰嘴豆粉、10~20%糙米粉、27~54%塔尔米粉和2%~49%小麦粉,分别测量研究桑叶粉添加量为2%、4%、6%、8%、10%时,所制得的脆片的品质。结果如表3和图2所示。
表3桑叶粉添加量对面片品质影响的试验结果
注:表中各结果为无量纲化前数据,综合评分为无量纲化后数据。
由表3和图2可知,脆片品质的综合评分在桑叶粉添加量为8%时达到最大值65.619。因此,脆片中桑叶粉的最适添加量为8%。
3.鹰嘴豆粉添加量对脆片品质的影响
按照实施例4所述制备方法,添加6~10%桑叶粉、10~20%糙米粉、20~30%塔尔米粉和15~59%小麦粉,分别测量研究鹰嘴豆粉添加量为5%、10%、15%、20%、25%时,所制得的脆片的品质。结果如表4和图3所示。
表4鹰嘴豆粉添加量对面片品质影响的试验结果
注:表中各结果为无量纲化前数据,综合评分为无量纲化后数据。
由表4和图3可知,脆片品质的综合评分在鹰嘴豆粉添加量为15%时达到最大值61.276。因此,脆片中鹰嘴豆粉的最适添加量为15%。
4.糙米粉添加量对脆片品质的影响
按照实施例4所述制备方法,添加6~10%桑叶粉、10~20%鹰嘴豆粉、30~50%塔尔米粉和2~49%小麦粉,分别测量研究鹰嘴豆粉添加量为5%、10%、15%、20%、25%时,所制得的脆片的品质。结果如表5和图4所示。
表5糙米粉添加量对面片品质影响的试验结果
注:表中各结果为无量纲化前数据,综合评分为无量纲化后数据。
由表5和图4可知,脆片品质的综合评分在糙米粉添加量为10%时达到最大值58.927。因此,脆片中糙米粉的最适添加量为10%。
实施例七:正交优化脆片配方
根据实施例六的单因素实验结果,分别选取塔尔米粉、鹰嘴豆粉、糙米粉和桑叶粉添加量所制得脆片综合评分较高的三组,进行正交试验,以研究塔尔米粉、鹰嘴豆粉、糙米粉和桑叶粉多因素综合作用时,对脆片品质的影响。
以蒸煮损失、TPA质构(硬度、弹性和咀嚼性)以及脆片水提物和醇提物DPPH·自由基清除率(抗氧化性)为指标,选用L9(34)正交表进行正交优化试验,每个实验组合重复三次,结果取其平均值。用正交设计助手Ⅱv3.1.1统计软件进行结果分析,结果如表6所示。
表6正交试验综合评分结果
注:均值1(K1)、均值2(K2)、均值3(K3)及极差(R)中的三组数据分别对应因素A、B、C、D。
由表6可知,桑叶粉添加量对脆片品质综合评分的影响显著,塔尔米粉、鹰嘴豆粉和糙米粉对面片的综合评分影响均不显著,因此,对脆片品质综合评分的因素顺序为桑叶粉>糙米粉>塔尔米粉>鹰嘴豆粉。第7组试验组合A3B1C3D2所制得的脆片品质综合评分达到最高,为81.939;并且对按照A3B1C3D2组合方式制得的脆片重复进行上述六种指标的测量,所得的综合评分更是高达82.135。因此,脆片的最优配方为A3B1C3D2,即塔尔米粉50%、鹰嘴豆粉10%、桑叶粉10%、糙米粉10%。且在按照此组合所制得的脆片的水提物和醇提物,对DPPH·自由基的清除率分别为50.24%和49.82%。
为了进一步确定塔尔米粉、鹰嘴豆粉、桑叶粉和糙米粉四种因素综合对脆片综合评分的影响,对表6中的数据进行方差分析和显著性检验,结果如表7所示。
表7正交试验方差分析
实施例八:脆片抗氧化能力检测
II型糖尿病是由于胰岛素相对不足或绝对不足而引发的疾病,而机体中的氧自由基会侵害产生胰岛素的β细胞。可见,具有能够清除氧自由基,即具有抗氧化能力的食品有助于胰岛素的生成,从而有助于避免和缓解糖尿病。本实施例对本发明的降血糖脆片的抗氧化能力从总抗氧化能力、清除DPPH·自由基能力、清除ABTS+·自由基能力和抑制α-葡萄糖苷酶活性能力四个方面进行检测。
1.总抗氧化能力检测
以维生素C(VC)、基础脆片水提物和醇提物作为对照,检测样品脆片水提物和醇提物的总抗氧化能力,检测结果请见于图5所示。其中,基础脆片的配方是:以面粉总质量为基数,添加水(45~65%)、食盐(1~1.5%)、食碱(0.05~0.15%)、CMCNa(0.1~0.3%)、谷朊粉(2~4%);样品脆片,即本发明的辅助降血糖脆片的配方见于实施例三。
总抗氧化能力检测方法:吸取不同浓度样液1mL,加入磷酸盐缓冲液(pH6.6)和1%K3Fe(CN)6溶液各2.5mL,混合后于50℃放置20min,加入10%TCA溶液2.5mL混匀,吸取2.5mL,加入蒸馏水和0.1%FeCl3溶液各2.5mL,混匀,室温下静置10min,于700nm处测定吸光度(A),根据公式计算清除率。
WA=A-A0
其中,WA为总抗氧化能力;A为样品吸光度;A0为空白对照。
脆片样品溶液的配制:将原来浓度为0.1g·mL-1脆片提取物稀释到浓度为10mg·mL-1的供试液,冰箱4℃保存备用,使用时按不同浓度稀释。
由图5可知,样品脆片提取物的总抗氧化能力弱于VC的总抗氧化能力,强于基础脆片的总抗氧化能力,且样品脆片醇提物的总抗氧化能力高于其水提物的。当浓度为2.5mg/mL时,样品脆片的总抗氧化能力最强,具体地,此时醇提物的总抗氧化能力最强为0.293,样品水提物总抗氧化能力最强为0.193。
2.清除DPPH·自由基能力检测
以维生素C(VC)、基础脆片水提物和醇提物作为对照,检测样品脆片水提物和醇提物的清除DPPH·自由基能力,检测结果请见于图6所示。
清除DPPH·自由基能力的检测和清除率的计算方法与实施例六方法相同,此处不再赘述。
由图6可知,样品脆片醇提物清除DPPH·自由基能力强于其水提物,且均明显强于基础脆片提取物的清除能力。当浓度为2.5mg/mL时,样品脆片对DPPH·自由基清除能力最强,具体地,此时醇提物的DPPH·自由基清除率为44.24%,水提物的DPPH·自由基清除率为26.85%。
3.清除ABTS+·自由基能力检测
以维生素E(VE)、基础脆片水提物和醇提物作为对照,检测样品脆片水提物和醇提物的清除ABTS+·自由基能力,检测结果请见于图7所示。
清除ABTS+·自由基能力检测方法:将2.2’-联氨-双(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二胺盐(ABTS+·)用蒸馏水配制成7.4mmol/L溶液。取0.2mL上述溶液与0.2mL 2.6mmol/LK2S2O8溶液混合均匀,避光放置12~16h后,稀释40~50倍,用磷酸盐缓冲液将ABTS+·溶液稀释至吸光度为0.70±0.02得到工作液。将脆片提取液用水/无水乙醇稀释为5个不同浓度溶液。取0.2mL脆片提取液加入1.9mL ABTS+·工作液混匀,震荡10s,静置6min后,于波长734nm处测定吸光度。按下式计算各待测样品对ABTS+·自由基的清除率。以95%乙醇作为空白对照,测吸光度A0。
清除率(%)=[1-(A1-A2)/A0]×100%
其中,A0为100μL水/无水乙醇与100μL ABTS+·溶液反应后的吸光度值;A1为100μL样品与100μL ABTS·+溶液反应后的吸光度值;A2为100μL样品与100μL无水乙醇混合后的吸光度值。
0.1mol·L-1柠檬酸缓冲液的配制:称取4.2026g柠檬酸用蒸馏水定容于200mL,即为A液;称取5.8820g柠檬酸钠用蒸馏水定容至200m L,即为B液;取A液82mL,B液118mL混合即为0.1mol·L-1pH 5.0的柠檬酸缓冲液。
由图7可知,样品脆片醇提物清除ABTS+·自由基能力强于其水提物,且均明显强于基础脆片提取物的清除能力。当浓度为2.5mg/mL时,样品脆片对ABTS+·自由基清除能力最强,具体地,此时醇提物的ABTS+·自由基清除率为42.31%,水提物的ABTS+·自由基清除率为25.55%。
4.抑制α-葡萄糖苷酶活性能力的检测
以阿卡波糖、基础脆片水提物和醇提物作为对照,检测样品脆片水提物和醇提物的清除ABTS+·自由基能力,检测结果请见于图8所示。
抑制α-葡萄糖苷酶活性能力的检测方法:α-葡萄糖苷酶催化PNPG底物水解,释放对硝基酚(PNP)。通过检测405nm PNP的量计算α-葡萄糖苷酶活性。在96孔板中,加入不同浓度的脆片多糖样品溶液40μL,0.355mg·mL-1α-葡萄糖苷酶40μL,50℃保温5min后,加入0.754mg·mL-1PNPG溶液20μL,反应30min,用0.1mol·L-1Na2CO3溶液100μL终止反应。空白对照用缓冲液代替供试液。将反应液置于酶标仪405nm波长下测定吸光度,每个样品同时作3个平行试验。酶活性抑制率的计算公式如下:
酶活性抑制率=[A空白-(A样品-A背景)]/A空白×100%
其中,A空白为不加待测样品反应后的吸收值;A样品为加入待测样品反应后的吸收值;A背景为只加待测样品的吸收值。
α-葡萄糖苷酶的配制:称取0.0355gα-葡萄糖苷酶用柠檬酸缓冲液定容至100m L,即浓度为0.355mg·mL-1的标准液,冰箱4℃保存备用。
PNPG底物的配制:称取0.0754g PNPG用柠檬酸缓冲液定容至100mL,即浓度为0.754mg·mL-1的标准液,冰箱4℃保存备用。
Na2CO3终止液的配制:称取0.50g无水碳酸钠用蒸馏水定容至50mL即为1mol·L-1的碳酸钠终止液。
由图8可知,样品脆片提取物对α-葡萄糖苷酶活性抑制作用明显大于基础脆片提取物。当浓度为10mg/mL时,样品脆片对α-葡萄糖苷酶活性抑制率最高,具体地,醇提物的α-葡萄糖苷酶活性抑制率为32.67%,水提物的α-葡萄糖苷酶活性抑制率为20.67%。
由上述四组实验结果可知,相对于基础脆片,本发明的辅助降血糖脆片具有更好的抗氧化能力,从而更加有助于改善胰岛素的分泌,缓解糖尿病。
实施例九:脆片对II型糖尿病果蝇糖脂代谢的影响
本实施例通过喂食患有II型糖尿病果蝇,从而在活体实验中检测本发明的辅助降血糖脆片是否有利于缓解糖尿病,具体地,分别检测本发明的脆片对高糖果蝇机体中海藻糖、甘油三酯和总蛋白含量的影响,以及高脂果蝇机体中海藻糖、甘油三酯和总蛋白含量的影响。
实验所用的雄性黑檀体果蝇(Ebony Flies),由新疆大学生命科学与技术学院阿里木老师提供。
果蝇基础培养基配方:蒸馏水1L,酵母25g,大豆粉9.18g,玉米粉67.05g,蔗糖40g,麦芽糖42.4g,琼脂粉6g,对羟基苯甲酸甲酯/无水乙醇0.25/2.5mL,苯甲酸钠1g,丙酸6.875g。
果蝇高糖培养基配方:在基础培养基配方基础上,增加20%蔗糖。
果蝇高脂培养基配方:在基础培养基配方基础上,增加20%棕榈酸。
表7高糖果蝇模型实验分组
将3d雄性果蝇进行分组,其分组培养方式如表7所示。正常对照组的果蝇自3d起,直到检测前一直使用基础培养基,得到正常果蝇。模型对照组、阳性对照组、基础脆片组、样品脆片低剂量组以及样品脆片高剂量组的果蝇则是自3d起均先在高糖培养基中饲养一周,得到高糖果蝇,然后,模型对照组的高糖果蝇继续在高糖培养基中饲养;基础脆片组、样品脆片低剂量组以及样品脆片高剂量组的高糖果蝇分别移至对应的培养基中饲养。一周后,测定上述六组果蝇的海藻糖、甘油三酯和总蛋白指标,实验结果见于表8和图9、10、11。其中,基础脆片和样品脆片的配方与实施例八相同。
表8高糖模型组果蝇的总蛋白质含量、甘油三酯含量、海藻糖含量(x±s)
注:“*”表示与空白组比较P<0.05,“**”表示与空白组比较P<0.01;“#”表示与模型组比较P<0.05,“##”表示与空白组比较P<0.01
由表8和图9、10、11可知,基础脆片组与模型对照组的高糖果蝇相比,无论是总蛋白含量还是甘油三酯和海藻糖的含量均无显著差别,说明基础脆片不能降低高糖果蝇的总蛋白、甘油三酯以及海藻糖的含量。而样品脆片低剂量组和高剂量组与模型对照组的高糖果蝇相比,虽然总蛋白含量无显著变化,但是,甘油三酯和海藻糖的含量均显著降低,且高剂量组的含量降低更加明显,说明本发明的辅助降血糖脆片能够降低高糖果蝇体内的甘油三酯以及海藻糖含量,且高剂量喂食效果更好。
表9高脂果蝇模型试验分组
表9所示的高脂果蝇的分组饲养方式与表7相同,此处不再赘述,其实验结果见于表10和图12、13、14。
表10高脂模型组果蝇的总蛋白质含量、甘油三酯含量、海藻糖含量(x±s)
注:“*”表示与空白组比较P<0.05,“**”表示与空白组比较P<0.01;“#”表示与模型组比较P<0.05,“##”表示与空白组比较P<0.01。
由表10和图12、13、14可知,基础脆片组与模型对照组的高脂果蝇相比,无论是总蛋白含量还是甘油三酯和海藻糖的含量均无显著差别,说明基础脆片不能降低高脂果蝇的总蛋白、甘油三酯以及海藻糖的含量。而样品脆片低剂量组和高剂量组与模型对照组的高脂果蝇相比,虽然总蛋白含量无显著变化,但是,甘油三酯和海藻糖的含量均显著降低,且高剂量组的含量降低更加明显,说明本发明的辅助降血糖脆片能够降低高脂果蝇体内的甘油三酯以及海藻糖含量,且高剂量喂食效果更好。
可见,本发明的辅助降血糖脆片能够降低生物体内脂类和糖类的含量,从而缓解糖尿病。
实施例十:检测超高压处理和菊粉添加量对脆片低温储藏的影响
由于面制品在低温储藏过程中易发生老化断裂,其老化的表现之一为硬度值下降。本实施例对影响辅助降血糖脆片低温储藏后老化的因素——超高压处理和菊粉添加量进行研究。1.脆片硬度检测
脆片在低温冷冻前(0d)测量硬度,然后与-18℃冰箱中低温冷冻保存,并在低温冷冻过程中检测冷冻1、3、5和7d的脆片自然解冻后的硬度。实验重复三次,取平均值。实验所用脆片的配方请参照实施例三,制备方法参照实施例四。
硬度测定方法:选用P50探头,测试参数为测试前速度:2.00mm/s;测试参数为测试中、后速度:0.80mm/s;压缩率50%;起点感应力5g;两次压缩之间的时间间隔:5s。
表11超高压处理组面片-18℃储存过程中自然解冻后的硬度(x±s)
注:“*”表示与13号对照组比较P<0.05,“**”表示与13号对照组比较P<0.01。
由表11可知,相对于不经过步骤S1中的超高压处理的对照组脆片,制备过程中进行了超高压处理的实验组1~12脆片在冷冻保藏后硬度更高,说明超高压处理有助于改善脆片的老化。其中,实验组7号,即经过300MPa、10min超高压处理后的脆片在低温储存一周后,硬度最大,表明300MPa、10min超高压处理条件对脆片的抗老化效果最好。
表12菊粉处理组面片-18℃储存过程中自然解冻后的硬度(x±s)
注:“*”表示与对照组比较P<0.05,“**”表示与对照组比较P<0.01。
由表12可知,相对于不添加菊粉的对照组脆片,添加了菊粉的脆片在冷冻保藏一周后硬度更高,说明添加菊粉有助于改善脆片的老化。其中,脆片的菊粉添加量为10%时,低温储存一周后,硬度最大,表明菊粉添加量为10%对脆片的抗老化效果最好。
表13菊粉和超高压联合处理实验分组
表14菊粉-超高压联合处理组面片-18℃储存过程中自然解冻后的硬度(x±s)
注:表中样品编号对应表13;“*”表示与对照组比较P<0.05,“**”表示与对照组比较P<0.01。
由表13和14可知,相对于超高压和菊粉单独处理的脆片,超高压和菊粉联合处理的脆片在冷冻保藏一周后硬度更高,说明超高压和菊粉联合处理更有助于改善脆片的老化。
相对于现有技术,本发明所述的辅助降血糖脆片通过同时添加具有清除自由基作用的塔尔米粉、鹰嘴豆粉、桑叶粉和糙米粉,从而显著提升了脆片降血糖的能力;同时,通过添加具有抗老化作用的菊粉以及超高压处理,从而使得脆片经历低温保藏之后仍具有良好的硬度,没有过度老化,有助于脆片的低温保藏。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。
Claims (9)
1.一种辅助降血糖脆片,其特征在于,包括以下重量份的原料:塔尔米粉40~80份,鹰嘴豆粉20~30份,桑叶粉20~30份,糙米粉20~30份,菊粉6~13份,小麦粉10~35份,食用碱0.05~0.16份,食盐1~2.0份,谷朊粉2~5份,羧甲基纤维素钠0.1~0.35份,水45~88份。
2.根据权利要求1所述的辅助降血糖脆片,其特征在于,包括以下重量份的原料:塔尔米粉40~60份,鹰嘴豆粉20~30份,桑叶粉20~30份,糙米粉20~30份,菊粉6~10份,小麦粉10~30份,食用碱0.05~0.15份,食盐1~1.4份,谷朊粉2~4份,羧甲基纤维素钠0.1~0.3份,水45~65份。
3.根据权利要求1所述的辅助降血糖脆片,其特征在于,包括以下重量份的原料:塔尔米粉50份,鹰嘴豆粉10份,桑叶粉10份,糙米粉10份,菊粉8份,小麦粉20份,食用碱0.1份,食盐1.2份,谷朊粉3份,羧甲基纤维素钠0.2份,水55份。
4.根据权利要求1~3任意一种所述的辅助降血糖脆片的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1和面:将塔尔米粉、鹰嘴豆粉、糙米粉、桑叶粉、菊粉和小麦粉混合后,加入食盐、食用碱、羧甲基纤维素钠、谷朊粉按比例混合,并搅拌均匀,然后边倒水边和面得到面团,并将面团密封于保鲜膜中静置;
S2超高压处理:面团在100~400MPa压力下,超高压处理10~20min;
S3切条、辊压:将面团切条后,用擀面杖辊压数次,得到厚薄均匀的面带;
S4切片:将面带切成大小均一的面片;
S5变温压差膨化:将面片平铺于托盘置于膨化罐中,密封;然后通入热蒸汽,使膨化罐中温度慢慢升至膨化温度90~105℃,调整膨化压力到0.2~0.3MPa,开启真空泵到-0.098~0.01MPa,停滞5~10min后,开启泄压阀,面片瞬间膨胀并被抽真空;接着迅速通入冷水,将温度降至75~80℃,真空干燥150min~180min;然后通入冷却水,将水温降至20~25℃,维持5~10min;打开通气阀门,恢复常压后开罐取出含水率低于5%的脆片。
5.根据权利要求4所述的辅助降血糖脆片的制备方法,其特征在于:步骤S2中,所述超高压处理的条件为室温下,300MPa压力处理10min。
6.根据权利要求5所述的辅助降血糖脆片的制备方法,其特征在于:步骤S2中,所述面团放入真空包装袋中真空封口后,进行超高压处理。
7.根据权利要求4所述的辅助降血糖脆片的制备方法,其特征在于:步骤S1中,所述水的温度为28~30℃,面团在保鲜膜中静置的时间为25~30min。
8.根据权利要求4所述的辅助降血糖脆片的制备方法,其特征在于:步骤S2中,所述面带的厚度为2.5~3mm。
9.根据权利要求4所述的辅助降血糖脆片的制备方法,其特征在于:步骤S3中,所述面片的大小为3~5cm×4~6cm。
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