CN109247235A - 一种蕙兰快速繁殖育苗方法 - Google Patents

一种蕙兰快速繁殖育苗方法 Download PDF

Info

Publication number
CN109247235A
CN109247235A CN201811052092.2A CN201811052092A CN109247235A CN 109247235 A CN109247235 A CN 109247235A CN 201811052092 A CN201811052092 A CN 201811052092A CN 109247235 A CN109247235 A CN 109247235A
Authority
CN
China
Prior art keywords
orchid
culture medium
seed
transplanting
seedling
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201811052092.2A
Other languages
English (en)
Other versions
CN109247235B (zh
Inventor
王喆之
刘帅
牛俊峰
王世强
吴小强
张淑柯
胡喜风
胡晓瑜
黄飞
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shaanxi Normal University
Original Assignee
Shaanxi Normal University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shaanxi Normal University filed Critical Shaanxi Normal University
Priority to CN201811052092.2A priority Critical patent/CN109247235B/zh
Publication of CN109247235A publication Critical patent/CN109247235A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN109247235B publication Critical patent/CN109247235B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01H—NEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00—Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • A01H4/008—Methods for regeneration to complete plants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01G—HORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
    • A01G24/00—Growth substrates; Culture media; Apparatus or methods therefor
    • A01G24/10—Growth substrates; Culture media; Apparatus or methods therefor based on or containing inorganic material
    • A01G24/12—Growth substrates; Culture media; Apparatus or methods therefor based on or containing inorganic material containing soil minerals
    • A01G24/15—Calcined rock, e.g. perlite, vermiculite or clay aggregates
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01G—HORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
    • A01G24/00—Growth substrates; Culture media; Apparatus or methods therefor
    • A01G24/20—Growth substrates; Culture media; Apparatus or methods therefor based on or containing natural organic material
    • A01G24/22—Growth substrates; Culture media; Apparatus or methods therefor based on or containing natural organic material containing plant material
    • A01G24/23—Wood, e.g. wood chips or sawdust
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01G—HORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
    • A01G24/00—Growth substrates; Culture media; Apparatus or methods therefor
    • A01G24/20—Growth substrates; Culture media; Apparatus or methods therefor based on or containing natural organic material
    • A01G24/28—Growth substrates; Culture media; Apparatus or methods therefor based on or containing natural organic material containing peat, moss or sphagnum
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01G—HORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
    • A01G31/00—Soilless cultivation, e.g. hydroponics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01H—NEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00—Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • A01H4/001—Culture apparatus for tissue culture

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Ecology (AREA)
  • Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
  • Forests & Forestry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Soil Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Cultivation Of Plants (AREA)
  • Cultivation Receptacles Or Flower-Pots, Or Pots For Seedlings (AREA)

Abstract

本发明公开了一种蕙兰快速繁殖育苗方法，该方法将蕙兰种子经过消毒后用赤霉素GA3处理，然后在无菌条件下播种于无菌萌发培养基中进行育苗，待长出2～3片真叶且根系发育完整后移栽至转接培养基中进行转接培养，培养2～3个月后进行驯化，最后移栽至移栽基质中生长。本发明方法简单易行，成本低廉，种子萌发率高，可达到30％～50％，萌发周期短，移栽成活率高，可达到90％以上，能够快速且大量获得蕙兰种苗，能满足大面积、规模化育苗的需要。

Description

一种蕙兰快速繁殖育苗方法
技术领域
本发明属于珍稀濒危植物人工种植技术领域，具体涉及一种兰科植物蕙兰的快速繁殖育苗方法。
背景技术
蕙兰(Cymbidium faberi)是兰科兰属的地生草本植物，假鳞茎不明显。作为传统意义上中国兰花的一大种类，其香气馥郁纯洁，花形淡雅优美，株形优雅刚毅，深受人们的喜爱。目前主产于陕西南部、甘肃南部、安徽、浙江、江西、福建、湖北、湖南、贵州、云南等地。蕙兰栽培历史悠近久，且有许多传统的优良品种。其中一些栽培历史可达数百年之久。
蕙兰自然生长在山坡树林中，多数栽培品种都是由野生种自然变异筛选而来。由于人类长期的滥采乱挖和兰花赖以生存环境的不断恶变，再加上自身繁殖速度极其缓慢，我国野生蕙兰资源日趋紧缺，有些珍稀品种已濒危灭绝。
通过研究与调查发现，蕙兰种子细小，无胚乳，只有发育不完全的胚和一层单细胞构成的种皮，若在自然条件下或采用常规育种方式，种子根本无法萌发。现有的蕙兰繁育主要以分株方式进行繁殖，繁殖率低、繁殖速度慢，目前的生产量远远满足不了市场的需求。同时据研究显示，一株发育良好的蕙兰，每根花葶每年可产5～10枚果荚，并且每个果荚内有几万到十几万粒种子。但由于蕙兰种子难萌发这一不争的事实使得蕙兰繁殖问题一直未能得到有效解决，因此也阻碍了蕙兰相关下游产业的发展。所以只要打破蕙兰种子萌发这一瓶颈，就可以创出一条节本增效的新型育苗方式。
目前，利用无菌播种和组织培养的方式对兰科植物进行快速繁殖的方法虽然已有报道，如申请(专利)号为200910101739.0、名称为“一种适宜蕙兰种子无菌萌发培养基组合物及其方法”，申请(专利)号为201610648641.7、名称为“一种蕙兰种子萌发快繁方法”等，但其种子萌发率均较低，最高仅为20％。同时，这些报道仅提供了蕙兰种子在无菌条件下萌发的方法，并未进一步将其推广到大田种植，因此其移栽后的成活率尤未可知，从而阻碍了蕙兰规模化生产。
发明内容
本发明的目的是针对蕙兰种子细小，没有胚乳，在自然条件下极难萌发的问题，以及传统的蕙兰分株繁殖方式繁殖率低、繁殖速度慢、成本高的缺点，提供一种利用蕙兰种子快速、高效繁殖育苗方法。
针对上述目的，本发明所采用的技术方案由下述步骤组成：
1、种子的处理
选择授粉后胚龄18～24周且发育饱满的蕙兰果荚，装入牛皮袋中阴干后埋在细沙中，在4～20℃干燥、避光处保存处理4～16周，然后将蕙兰果荚用无菌水冲洗3～5次洗去表面杂物，剥开蕙兰果荚倒出种子，在无菌条件下用体积浓度为75％的乙醇水溶液消毒处理种子0.5～3min，用无菌水冲洗3～5次，再加入体积浓度为0.1％～0.2％的升汞水溶液消毒处理5～10min，用无菌水冲洗3～5次，得到消毒处理后的种子；将消毒处理后的种子浸泡于0.1～2.0mg/L赤霉素GA3水溶液，放入摇床中在20℃～30℃条件下振荡处理24～72h。
2、播种与培养
在无菌条件下将步骤1中处理好的种子与赤霉素GA3水溶液混合物播种到无菌萌发培养基上，放置于20～30℃、光照强度3000lx、光照8h/天的人工智能培养箱内培养。其中所述的无菌萌发培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.1～2.0mg/L萘乙酸、0.1～2.0mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、2～10g/L活性炭，调整pH至5.5～6.5，115～121℃高压灭菌15～25min，在培养基冷却到40～60℃时加入0.1～2.0mg/L赤霉素GA3混匀，冷却凝固。
3、幼苗的转接培养
选取株高为1～3cm、长出2～3片真叶且根系发育完整的蕙兰幼苗，在超净工作台上转接至转接培养基上，置于温度为25±2℃、光照强度2000～3000lx、光照12h/天的人工智能培养箱内培养。其中所述的转接培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.1～2.0mg/L萘乙酸、0.1～2.0mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、30～100mL/L香蕉汁，调整pH至5.5～6.5，121℃高压灭菌20min，冷却凝固。
4、种苗的驯化与移栽
将转接培养8～12周的蕙兰种苗放入驯化室驯化3～7周后，取出蕙兰种苗，用清水清洗蕙兰种苗根系周围培养基后放在避光处阴干3～6小时至蕙兰种苗根系表面发白；然后将蕙兰种苗移栽至12～20cm厚的移栽基质中，移栽时将3～7苗栽入同一穴中，穴深5～10cm，填埋后在移栽基质表面放置一层松树皮，用水浇透后放置于温室中生长，并在上方搭建拱形支架，盖薄膜保湿；其中所述的移栽基质由腐殖质、发酵过的树皮粉、珍珠岩按体积比为1:3～6:0.3～0.7配制。
上述步骤1中，优选在无菌条件下用体积浓度为75％的乙醇水溶液消毒处理种子0.75～1min，用无菌水冲洗3～5次，再加入体积浓度为0.1％～0.2％的升汞水溶液消毒处理7～8min，用无菌水冲洗3～5次，得到消毒处理后的种子。
上述步骤1中，进一步优选将消毒处理后的种子浸泡于0.5～1.5mg/L赤霉素GA3水溶液，放入摇床中在20℃～30℃条件下振荡处理36～48h。
上述步骤2中，所述的无菌萌发培养基优选：以MS培养基为基础培养基，加入0.5～1.0mg/L萘乙酸、0.5～1.5mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、3～5g/L活性炭，调整pH至5.8～6.0，121℃高压灭菌20min，在培养基冷却到45～50℃时加入0.5～1.0mg/L赤霉素GA3混匀，冷却凝固。
上述步骤3中，所述的转接培养基优选：以MS培养基为基础培养基，加入0.5～1.0mg/L萘乙酸、0.5～1.5mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、50～70mL/L香蕉汁，调整pH至5.5～6.5，121℃高压灭菌20min，冷却凝固。
上述步骤4中，所述的移栽基质优选由腐殖质、发酵过的树皮粉、珍珠岩按体积比为1:5:0.5配制。
本发明的有益效果如下：
1、本发明先将蕙兰种子经过消毒后用赤霉素GA3处理，促进种子萌发；然后以MS培养基为基础培养基，并加入植物生长调节剂萘乙酸、6-苄氨基腺嘌呤、赤霉素GA3进行种子的无菌萌发培养，大大提高了种子萌发率，可达到30％～50％，且萌发周期短，克服了蕙兰因种子细小，没有胚乳，在自然条件下极难萌发的难题。
2、本发明通过选择转接培养基和移栽基质，给予蕙兰有性繁殖幼苗和种苗生长所必须的营养物质，并通过控制生长的温度和相对湿度，进行蕙兰幼苗的转接培养、驯化、移栽，使蕙兰幼苗快速生长，且种苗成活率可达90％以上，快速获得蕙兰种苗，并通过移栽的方式得到蕙兰植株即能有效解决蕙兰繁殖难题。
3、本发明方法简单易行，成本低廉，效率高，能满足大面积、规模化育苗的需要，不但具有生产与经济上的双重意义，同时还能够解决传统栽培方法繁殖率低、繁殖速度慢的现状。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明进一步详细说明，但本发明的保护范围不仅限于这些实施例。
实施例1
1、种子的处理
选择授粉后胚龄18～24周且发育饱满的蕙兰果荚，装入牛皮袋中阴干后埋在细沙中，在15℃干燥、避光处保存处理8周，然后将蕙兰果荚用无菌水冲洗3～5次洗去表面杂物，剥开蕙兰果荚倒出种子，在无菌条件下用体积浓度为75％的乙醇水溶液消毒处理种子0.75min，用无菌水冲洗3～5次，再加入体积浓度为0.15％的升汞水溶液消毒处理7min，用无菌水冲洗3～5次，得到消毒处理后的种子；将消毒处理后的种子浸泡于1.0mg/L赤霉素GA3水溶液，放入摇床中在25℃条件下180r/min振荡处理48h。
2、播种与培养
在无菌条件下将步骤1中处理好的种子与赤霉素GA3水溶液混合物播种到无菌萌发培养基上，放置于25℃、光照强度3000lx、光照8h/天的人工智能培养箱内培养，其中所述的无菌萌发培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.5mg/L萘乙酸、1.0mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、3g/L活性炭，调整pH至5.8，121℃高压灭菌20min，在培养基冷却到45℃时加入1.0mg/L赤霉素GA3混匀，冷却凝固。培养4～5个月后，种子长出胚芽，萌发率可达到50％左右。
3、幼苗的转接培养
培养6～8个月后，选取株高为1～3cm、长出2～3片真叶且根系发育完整的蕙兰幼苗，在超净工作台上转接至转接培养基上，置于温度为25±2℃、光照强度3000lx、光照12h/天的人工智能培养箱内培养，其中所述的转接培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.5mg/L萘乙酸、1.0mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、70mL/L香蕉汁，调整pH至5.8，121℃高压灭菌20min，冷却凝固。
4、种苗的驯化与移栽
将转接培养2～3个月的蕙兰种苗放入驯化室驯化1个月后，取出蕙兰种苗，用清水清洗蕙兰种苗根系周围培养基后放在避光处阴干4小时至蕙兰种苗根系表面发白；然后选择高12cm、内直径18cm小花盆，加入15cm厚移栽基质，用水浇透移栽基质，所述的移栽基质由腐殖质、发酵过的树皮粉、珍珠岩按体积比为1:5:0.5配制。将驯化后的幼苗移栽至移栽基质中，移栽时将3～7苗栽入同一穴中，穴深5～10cm，填埋后在移栽基质表面放置一层松树皮，用水浇透后放置于温室中生长，并在上方搭建拱形支架，盖薄膜保湿。移栽成活率可达90％以上。
对比例1
1、种子的处理
选择授粉后胚龄18～24周且发育饱满的蕙兰果荚，装入牛皮袋中阴干后埋在细沙中，在15℃干燥、避光处保存处理8周，然后将蕙兰果荚用无菌水冲洗3～5次洗去表面杂物，剥开蕙兰果荚倒出种子，在无菌条件下用体积浓度为75％的乙醇水溶液消毒处理种子0.75min，用无菌水冲洗3～5次，再加入体积浓度为0.15％的升汞水溶液消毒处理7min，用无菌水冲洗3～5次，得到消毒处理后的种子；将消毒处理后的种子浸泡于无菌水中，放入摇床中在25℃条件下180r/min振荡处理48h。
2、播种与培养
在无菌条件下将步骤1中处理好的种子与赤霉素GA3水溶液混合物播种到无菌萌发培养基上，放置于25℃、光照强度3000lx、光照8h/天的人工智能培养箱内培养，其中所述的无菌萌发培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.5mg/L萘乙酸、1.0mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、3g/L活性炭，调整pH至5.8，121℃高压灭菌20min，冷却凝固。培养12个月后，种子长出胚芽，萌发率为5％。
3、幼苗的转接培养
培养14个月后，选取株高为1～3cm、长出2～3片真叶且根系发育完整的蕙兰幼苗，在超净工作台上转接至转接培养基上，置于温度为25±2℃、光照强度3000lx、光照12h/天的人工智能培养箱内培养，其中所述的转接培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.5mg/L萘乙酸、1.0mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、70mL/L香蕉汁，调整pH至5.8，121℃高压灭菌20min，冷却凝固。
4、种苗的驯化与移栽
将转接培养2～3个月的蕙兰种苗放入驯化室驯化1个月后，取出蕙兰种苗，用清水清洗蕙兰种苗根系周围培养基后放在避光处阴干4小时至蕙兰种苗根系表面发白；然后选择高12cm、内直径18cm小花盆，加入15cm厚移栽基质，用水浇透移栽基质，所述的移栽基质由腐殖质、发酵过的树皮粉、珍珠岩按体积比为1:3:0.5配制。将驯化后的幼苗移栽至移栽基质中，移栽时将3～7苗栽入同一穴中，穴深5～10cm，填埋后在移栽基质表面放置一层松树皮，用水浇透后放置于温室中生长，并在上方搭建拱形支架，盖薄膜保湿。移栽成活率为70％左右。
实施例2
1、种子的处理
选择授粉后胚龄18～24周且发育饱满的蕙兰果荚，装入牛皮袋中阴干后埋在细沙中，在15℃干燥、避光处保存处理8周，然后将蕙兰果荚用无菌水冲洗3～5次洗去表面杂物，剥开蕙兰果荚倒出种子，在无菌条件下用体积浓度为75％的乙醇水溶液消毒处理种子0.75min，用无菌水冲洗3～5次，再加入体积浓度为0.15％的升汞水溶液消毒处理7min，用无菌水冲洗3～5次，得到消毒处理后的种子；将消毒处理后的种子浸泡于0.5mg/L赤霉素GA3水溶液，放入摇床中在25℃条件下180r/min振荡处理48h。
2、播种与培养
在无菌条件下将步骤1中处理好的种子与赤霉素GA3水溶液混合物播种到无菌萌发培养基上，放置于25℃、光照强度3000lx、光照8h/天的人工智能培养箱内培养，其中所述的无菌萌发培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入1.0mg/L萘乙酸、1.5mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、5g/L活性炭，调整pH至5.8，121℃高压灭菌20min，在培养基冷却到45℃时加入0.5mg/L赤霉素GA3混匀，冷却凝固。培养6～7个月后，种子长出胚芽，萌发率为30％左右。
3、幼苗的转接培养
培养8～10个月后，选取株高为1～3cm、长出2～3片真叶且根系发育完整的蕙兰幼苗，在超净工作台上转接至转接培养基上，置于温度为25±2℃、光照强度3000lx、光照12h/天的人工智能培养箱内培养，其中所述的转接培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入1.0mg/L萘乙酸、1.5mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、70mL/L香蕉汁，调整pH至5.8，121℃高压灭菌20min，冷却凝固。
4、种苗的驯化与移栽
将转接培养2～3个月的蕙兰种苗放入驯化室驯化1个月后，取出蕙兰种苗，用清水清洗蕙兰种苗根系周围培养基后放在避光处阴干4小时至蕙兰种苗根系表面发白；然后选择高12cm、内直径18cm小花盆，加入15cm厚移栽基质，用水浇透移栽基质，所述的移栽基质由腐殖质、发酵过的树皮粉、珍珠岩按体积比为1:5:0.7配制。将驯化后的幼苗移栽至移栽基质中，移栽时将3～7苗栽入同一穴中，穴深5～10cm，填埋后在移栽基质表面放置一层松树皮，用水浇透后放置于温室中生长，并在上方搭建拱形支架，盖薄膜保湿。移栽成活率为80％左右。

Claims (6)

1.一种蕙兰快速繁殖育苗方法，其特征在于该方法由下述步骤组成：
(1)种子的处理
选择授粉后胚龄18～24周且发育饱满的蕙兰果荚，装入牛皮袋中阴干后埋在细沙中，在4～20℃干燥、避光处保存处理4～16周，然后将蕙兰果荚用无菌水冲洗3～5次洗去表面杂物，剥开蕙兰果荚倒出种子，在无菌条件下用体积浓度为75％的乙醇水溶液消毒处理种子0.5～3min，用无菌水冲洗3～5次，再加入体积浓度为0.1％～0.2％的升汞水溶液消毒处理5～10min，用无菌水冲洗3～5次，得到消毒处理后的种子；将消毒处理后的种子浸泡于0.1～2.0mg/L赤霉素GA3水溶液，放入摇床中在20℃～30℃条件下振荡处理24～72h；
(2)播种与培养
在无菌条件下将步骤(1)中处理好的种子与赤霉素GA3水溶液混合物播种到无菌萌发培养基上，放置于20～30℃、光照强度3000lx、光照8h/天的人工智能培养箱内培养；
上述无菌萌发培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.1～2.0mg/L萘乙酸、0.1～2.0mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、2～10g/L活性炭，调整pH至5.5～6.5，115～121℃高压灭菌15～25min，在培养基冷却到40～60℃时加入0.1～2.0mg/L赤霉素GA3混匀，冷却凝固；
(3)幼苗的转接培养
选取株高为1～3cm、长出2～3片真叶且根系发育完整的蕙兰幼苗，在超净工作台上转接至转接培养基上，置于温度为25±2℃、光照强度2000～3000lx、光照12h/天的人工智能培养箱内培养；
上述的转接培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.1～2.0mg/L萘乙酸、0.1～2.0mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、30～100mL/L香蕉汁，调整pH至5.5～6.5，121℃高压灭菌20min，冷却凝固；
(4)种苗的驯化与移栽
将转接培养8～12周的蕙兰种苗放入驯化室驯化3～7周后，取出蕙兰种苗，用清水清洗蕙兰种苗根系周围培养基后放在避光处阴干3～6小时至蕙兰种苗根系表面发白；然后将蕙兰种苗移栽至12～20cm厚的移栽基质中，移栽时将3～7苗栽入同一穴中，穴深5～10cm，填埋后在移栽基质表面放置一层松树皮，用水浇透后放置于温室中生长，并在上方搭建拱形支架，盖薄膜保湿；
上述的移栽基质由腐殖质、发酵过的树皮粉、珍珠岩按体积比为1:3～6:0.3～0.7配制。
2.根据权利要求1所述的蕙兰快速繁殖育苗方法，其特征在于：步骤(1)中，在无菌条件下用体积浓度为75％的乙醇水溶液消毒处理种子0.75～1min，用无菌水冲洗3～5次，再加入体积浓度为0.1％～0.2％的升汞水溶液消毒处理7～8min，用无菌水冲洗3～5次，得到消毒处理后的种子。
3.根据权利要求1或2所述的蕙兰快速繁殖育苗方法，其特征在于：步骤(1)中，将消毒处理后的种子浸泡于0.5～1.5mg/L赤霉素GA3水溶液，放入摇床中在20℃～30℃条件下振荡处理36～48h。
4.根据权利要求1所述的蕙兰快速繁殖育苗方法，其特征在于：步骤(2)中，所述的无菌萌发培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.5～1.0mg/L萘乙酸、0.5～1.5mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、3～5g/L活性炭，调整pH至5.8～6.0，121℃高压灭菌20min，在培养基冷却到45～50℃时加入0.5～1.0mg/L赤霉素GA3混匀，冷却凝固。
5.根据权利要求1所述的蕙兰快速繁殖育苗方法，其特征在于：步骤(3)中，所述的转接培养基是：以MS培养基为基础培养基，加入0.5～1.0mg/L萘乙酸、0.5～1.5mg/L 6-苄氨基腺嘌呤、50～70mL/L香蕉汁，调整pH至5.5～6.5，121℃高压灭菌20min，冷却凝固。
6.根据权利要求1所述的蕙兰快速繁殖育苗方法，其特征在于：步骤(4)中，所述的移栽基质为腐殖质、发酵过的树皮粉、珍珠岩按体积比为1:5:0.5配制。
CN201811052092.2A 2018-09-10 2018-09-10 一种蕙兰快速繁殖育苗方法 Active CN109247235B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201811052092.2A CN109247235B (zh) 2018-09-10 2018-09-10 一种蕙兰快速繁殖育苗方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201811052092.2A CN109247235B (zh) 2018-09-10 2018-09-10 一种蕙兰快速繁殖育苗方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN109247235A true CN109247235A (zh) 2019-01-22
CN109247235B CN109247235B (zh) 2021-09-14

Family

ID=65047136

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201811052092.2A Active CN109247235B (zh) 2018-09-10 2018-09-10 一种蕙兰快速繁殖育苗方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN109247235B (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110384027A (zh) * 2019-07-08 2019-10-29 西安文理学院 一种蕙兰林下栽培方法
CN113080001A (zh) * 2021-04-19 2021-07-09 福建坤加建设有限公司 一种园林兰花育苗方法

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2009284815A (ja) * 2008-05-29 2009-12-10 Seisan Ryu 「青山６０１」という名のドリテノプシス蘭
CN101622955A (zh) * 2009-08-11 2010-01-13 浙江省农业科学院 一种适宜蕙兰种子无菌萌发培养基组合物及其方法
CN103202234A (zh) * 2013-04-28 2013-07-17 陕西师范大学 铁皮石斛的快速繁殖方法
CN103270863A (zh) * 2013-04-27 2013-09-04 陕西师范大学 白及快速繁殖育苗的方法
CN103299911A (zh) * 2013-07-16 2013-09-18 葛建 一种高效获得素心建兰脱毒幼苗的方法
CN104521713A (zh) * 2014-12-31 2015-04-22 吴中区金庭小美华家庭农场 一种蕙兰的栽培方法
KR20150103879A (ko) * 2014-03-04 2015-09-14 고려대학교 산학협력단 난 유묘의 생산방법
CN105359970A (zh) * 2015-10-15 2016-03-02 南宁旺弘生物科技有限公司 一种蕙兰培养基及制备方法
CN106258960A (zh) * 2016-08-10 2017-01-04 山东省农作物种质资源中心 一种蕙兰种子萌发快繁方法

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2009284815A (ja) * 2008-05-29 2009-12-10 Seisan Ryu 「青山６０１」という名のドリテノプシス蘭
CN101622955A (zh) * 2009-08-11 2010-01-13 浙江省农业科学院 一种适宜蕙兰种子无菌萌发培养基组合物及其方法
CN103270863A (zh) * 2013-04-27 2013-09-04 陕西师范大学 白及快速繁殖育苗的方法
CN103202234A (zh) * 2013-04-28 2013-07-17 陕西师范大学 铁皮石斛的快速繁殖方法
CN103299911A (zh) * 2013-07-16 2013-09-18 葛建 一种高效获得素心建兰脱毒幼苗的方法
KR20150103879A (ko) * 2014-03-04 2015-09-14 고려대학교 산학협력단 난 유묘의 생산방법
CN104521713A (zh) * 2014-12-31 2015-04-22 吴中区金庭小美华家庭农场 一种蕙兰的栽培方法
CN105359970A (zh) * 2015-10-15 2016-03-02 南宁旺弘生物科技有限公司 一种蕙兰培养基及制备方法
CN106258960A (zh) * 2016-08-10 2017-01-04 山东省农作物种质资源中心 一种蕙兰种子萌发快繁方法

Non-Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JUN TAO ET AL.: "Effects of plant growth regulators on in vitro propagation of Cymbidium faberi Rolfe", 《AFRICAN JOURNAL OF BIOTECHNOLOGY》 *
YONGQIN CHEN ET AL.: "In vitro plant regeneration from the immature seeds of Cymbidium faberi", 《PLANT CELL, TISSUE AND ORGAN CULTURE》 *
周辉明 等: "国兰无菌萌发的研究进展", 《江西农业学报》 *
孙崇波 等: "蕙兰种子无菌萌发及植株再生", 《浙江农业学报》 *
徐立华 等: "《花卉繁育与栽培（上下）》", 30 April 2009, 宁夏人民出版社 *
李望: "种子休眠的机理及其破除方法", 《中国农学通报》 *
杨宁生 等: "蕙兰CYMBIDIUM FABERI ROLFE种子无菌培养的研究", 《江西科学》 *
毛丹 等: "《农作物科学用药手册（2017年新版）》", 28 February 2018, 中原农民出版社 *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110384027A (zh) * 2019-07-08 2019-10-29 西安文理学院 一种蕙兰林下栽培方法
CN110384027B (zh) * 2019-07-08 2021-06-29 西安文理学院 一种蕙兰林下栽培方法
CN113080001A (zh) * 2021-04-19 2021-07-09 福建坤加建设有限公司 一种园林兰花育苗方法
CN113080001B (zh) * 2021-04-19 2023-04-07 福建坤加建设有限公司 一种园林兰花育苗方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN109247235B (zh) 2021-09-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102577976B (zh) 一种构树简便组培方法
CN112931202B (zh) 一种德氏兜兰种子非共生萌发的方法
CN102499088B (zh) 一种利用广西金线莲蒴果快速繁育其种苗的方法
CN102668959A (zh) 一种蓝莓组培苗的快速瓶外生根方法及生根培养基质
CN101889547A (zh) 齿瓣石斛种子无菌快速繁殖方法
CN102960245A (zh) 一种铁皮石斛人工培育栽培方法
CN103718966B (zh) 一种紫玉兰组织培养方法
CN106376328A (zh) 野生白芨种子快速繁殖方法
CN103718969B (zh) 一种诗琳通含笑离体培养再生植株方法
CN106305417A (zh) 一种截形十二卷瓶外生根组培育苗方法
CN106258960B (zh) 一种蕙兰种子萌发快繁方法
CN105075858A (zh) 一种白及种子的液体快速繁殖方法
CN104982333A (zh) 一种春兰种苗繁殖方法
CN109247235A (zh) 一种蕙兰快速繁殖育苗方法
CN107018905B (zh) 一种酒瓶兰试管苗种质保存方法
CN105706872A (zh) 白芨种子直播自然繁殖育苗方法
CN103039363B (zh) 油茶组培苗繁殖用生根培养基及其繁殖方法
CN108575746A (zh) 一种芍药离体再生体系建立方法
CN105028213A (zh) 铁皮石斛组培快繁方法
CN105309301A (zh) 鼓槌石斛种苗商品化生产方法
CN1631102A (zh) 独蒜兰的试管种球生产技术
CN100391333C (zh) 安祖花无菌苗组织培养和试管苗炼苗移栽方法
CN104026011A (zh) 银叶薜荔的组织培养快速繁殖的培养基及繁殖方法
CN103621400A (zh) 一种香椿芽菜无土栽培方法
CN107410033A (zh) 民族香料植物麻根的快速繁殖方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant