CN108707696A - 一种基于恒温隔绝式荧光pcr平台的基因c型鸭甲肝病毒检测试剂盒及应用 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒及应用，该试剂盒由反应缓冲液、荧光定量PCR反应液冻干管、阳性对照品和阴性对照品冻干管组成。荧光定量PCR反应液冻干管由Taq酶、反转录酶、检测用引物、探针和dNTPs混合冻干而成。本发明试剂盒检测时间短(反应时间仅42分钟)、特异性强、灵敏度高、便于储存(4℃保存)，配合恒温隔绝式PCR仪使用，非常适合对基因C型鸭甲肝病毒的现场快速检测，可以在基层广泛推广。

Description

一种基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测 试剂盒及应用

技术领域

本发明属于生物技术领域，具体地说，涉及一种基于恒温隔绝式荧光 PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒及应用。

背景技术

基因C型鸭甲肝病毒(Duck hepatitis A virus type C,DHAV-C) 以引起鸭的肝炎及多器官出血为特征。近年来在亚洲地区广泛流行并导致经济损失(任丽倩,李晶,毕玉海,等.鸭甲型病毒性肝炎的研究进展[J].生物T程学报,2012,28(7):789～799)。鸭病毒性肝炎1945年在美国首次被发现，DHAV最终被归为小RNA病毒科、禽肝炎病毒属、鸭甲型肝炎病毒、血清l型鸭甲型肝炎病毒(Levine p，Hofstad M.Duck disease investigation[J].Annual Report of the New York State Veteri nary College,Ithaca,1945,55～56)，之后被鉴定出三种基因型即DHAV -A、DHAV-B、DHAV-C，其中A型和C型在中国及韩国鸭场的发生的频率较高。近年我国流行病学调查结果显示，在以往防控政策的影响下， DHAV-A型病毒的流行趋势得到有效控制，而DHAV-C在我国诸多养殖场被检出(Lin SL,Cong RC,Zhang RH,et a1.Circulation and in v ivo distribution of duck hepatitis Avirus types 1and 3in infected d ucklings[J].Archives of virology,2015,l-12)，表明DHAV-C已日渐成为我国鸭病毒性肝炎的主要病原，因此对该病原流行病学调查和有效监测具有重要意义.

能引起鸭肝炎的病原较多，包括基因A型鸭甲肝病毒，新城疫病毒，鹅细小病毒，番鸭细小病毒，禽流感病毒，禽腺病毒，鸭星状病毒1 型，鸭星状病毒2型，鸭源巴氏杆菌、大肠杆菌O46、沙门氏菌、鸭疫里默氏菌等，且临床上感染引起的症状多不典型，仅凭临床症状较难区分，故早期的鉴别诊断尤为重要，病原检测可以提供感染的直接证据，是最可靠的诊断手段，PCR、荧光定量PCR是最为常用的病原学检测手段，尤其荧光定量PCR具有灵敏度高、特异性强、稳定性好等优点，已经成为动物疫病诊断的主流手段。但是普通的荧光定量PCR方法由于需要大型设备、操作复杂、反应时间长等因素制约了其在现场快速检测方面的应用。

因此针对基因C型鸭甲肝病毒建立一种快速、敏感、特异、适用于现场的检测方法迫在眉睫。

发明内容

有鉴于此，本发明针对上述的问题，提供了一种基于恒温隔绝式荧光 PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒及应用，本发明是基于恒温隔绝式荧光PCR的一种简单、快速、灵敏度高和特异性强的检测方法，可以为基因C型鸭甲肝病毒的现场检测提供科学依据，对保障水禽养殖业健康发展具有重要意义。

为了解决上述技术问题，本发明公开了一种基于恒温隔绝式荧光PCR 平台的基因C型鸭甲肝病毒检测的引物和探针，所述引物和探针包括：基因C型鸭甲肝病毒上游引物、基因C型鸭甲肝病毒下游引物和基因C型鸭甲肝病毒探针，其中，所述基因C型鸭甲肝病毒上游引物的核苷酸序列如 SEQ ID NO.1所示；所述基因C型鸭甲肝病毒下游引物的核苷酸序列如 SEQ ID NO.2所示；所述基因C型鸭甲肝病毒探针的核苷酸序列如SE Q ID NO.3所示；基因C型鸭甲肝病毒探针的核苷酸序列的5'端连接有 FAM标记，3'端连接有非荧光淬灭基团和BHQ1。

本发明还公开了一种上述的引物和探针在制备基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒方面的应用。

本发明还公开了一种基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒，包括反应缓冲液、荧光定量PCR反应液冻干管、阳性对照品冻干管和阴性对照品冻干管；所述荧光定量PCR反应液冻干管包括T aq酶1.5μL、反转录酶1.5μL、上述的基因C型鸭甲肝病毒上游引物、基因C型鸭甲肝病毒下游引物各2.5μL、基因C型鸭甲肝病毒探针0.5μL、dNT Ps 2.5μL。

可选地，所述Taq酶的终浓度为5U·μL^-1，反转录酶的终浓度为20U·μ L^-1，基因C型鸭甲肝病毒上游引物和基因C型鸭甲肝病毒下游引物的终浓度均为10μmol·μL^-1，基因C型鸭甲肝病毒探针的终浓度为10μmol·μL ^-1，dNTPs的终浓度为2.5mM。

可选地，所述荧光定量PCR反应液冻干管通过以下方法制备得到：将上述的Taq酶、反转录酶、基因C型鸭甲肝病毒上游引物、基因C型鸭甲肝病毒下游引物和基因C型鸭甲肝病毒探针、dNTPs混合加入0.5ml的PC R管中降至-50℃，然后在10pa气压下冻干24h，形成干粉状后闭管，制得荧光定量PCR反应液冻干管。

可选地，所述荧光定量PCR反应液冻干管设置有50管。

可选地，所述反应缓冲液由以下组分构成：500mM KCl、pH 8.3、1 00mM Tris-HCl、15mM MgCl₂，余量为ddH₂O，以上体积总量为3ml。

可选地，阳性对照品冻干管通过以下方法制备得到：将含有基因C型鸭甲肝病毒RNA片段的RNA样品100μL装入PCR管内，降至-50℃，然后在10pa气压下冻干24h，形成干粉状后闭管制备而成；

阴性对照品冻干管通过以下方法制备得到：将无基因C型鸭甲肝病毒 RNA片段的样品100μL装入PCR管内，降至-50℃，然后在10pa气压下冻干24h，形成干粉状后闭管制备而成。

可选地，该试剂盒保存于4℃下。

本发明还公开了一种基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒的使用方法，包括以下步骤：

1)制备RNA模板：取粪便样本上清液200μL，参考金瑞泓捷(厦门) 生物科技有限公司的PetNAD试剂盒提取说明书提取被检样本上清总RN A，制备得到RNA模板；

2)荧光PCR反应体系的制备：荧光PCR反应体系的制备于冰上操作；取100μL反应缓冲液加入到阳性对照品冻干管中混合，制备得到阳性对照品，然后取50μL反应缓冲液和5μL阳性对照品加入荧光定量PCR反应液冻干管中，制备得到阳性对照反应体系；取100μL反应缓冲液加入阴性对照品冻干管中，制备得到阴性对照品，然后取50μL反应缓冲液和5μL阴性对照品加入荧光定量PCR反应液冻干管中，制备得到阴性对照反应体系；取50μL反应缓冲液和5μL检测样本RNA加入荧光定量PCR反应液冻干管中，制备得到检测样本RNA反应体系；然后分别从各个反应体系中取5 0μL混合物移入恒温隔绝式荧光PCR反应管中；加样时注意避光操作；将制备好的荧光定量PCR反应管瞬时高速离心5s，避免出现气泡；

3)扩增检测：把PCR反应管放置于恒温隔绝式荧光PCR仪器内，按运行键，即开始反应；

4)检测结果判定：“+”表示阳性，“-”表示阴性。

与现有技术相比，本发明可以获得包括以下技术效果：

1)本发明提供了一种基因C型鸭甲肝病毒的荧光PCR检测试剂盒，其优点是特异性强、灵敏度高、检测时间短、无污染、无需电泳，可在现场快速检测。

2)本发明能快速、准确地检测出被检样本中的基因C型鸭甲肝病毒R NA，可用于基因C型鸭甲肝病毒的分子流行病学调查。

3)本发明的荧光定量PCR反应液中包括反转录酶和PCR扩增酶，使核酸的反转录和扩增在同一管中进行，简化了操作，节省了试剂同时闭管操作降低了RNA的降解和污染的可能性。

4)荧光定量PCR反应液、阳性和阴性对照品均采用冻干方式制备，降低了试剂盒的保存条件，可4℃保存一年时间，便于运输，方便储存，同时提高了试剂的稳定性。

当然，实施本发明的任一产品并不一定需要同时达到以上所述的所有技术效果。

附图说明

此处所说明的附图用来提供对本发明的进一步理解，构成本发明的一部分，本发明的示意性实施例及其说明用于解释本发明，并不构成对本发明的不当限定。在附图中：

图1是本发明POCKIT Micro仪器的结构图；

图2是本发明阳性样本灵敏度检测结果，其中，1：3.85×10²copies/μ L；2：3.85×10¹copies/μL；3：3.85×10⁰copies/μL；4：3.85×10^-1copies/μL。

具体实施方式

以下将配合实施例来详细说明本发明的实施方式，藉此对本发明如何应用技术手段来解决技术问题并达成技术功效的实现过程能充分理解并据以实施。

实施例1基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒

一种基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒，包括以下组分：

(1)反应缓冲液：3ml，由500mM KCl、100mM Tris-HCl(pH 8. 3)、15mM MgCl₂和ddH₂O(余量)组成。

(2)荧光定量PCR反应液冻干管(50管)：

荧光定量PCR反应液包括Taq酶1.5μL/管(5U·μL^-1)、反转录酶1. 5μL/管(20U·μL^-1)、检测用上下游引物各2.5μL/管(10μmol·μL^-1)和探针0.5μL/管(10μmol·μL^-1)、dNTPs2.5μL/管(2.5mM)；将以上混合物加入0.5ml的PCR管中降至-50℃，然后在10pa气压下冻干24h，形成干粉状后闭管，制得荧光定量PCR反应液冻干管。其中，检测基因C型鸭甲肝病毒的上下游引物和探针共3条，扩增出基因C型鸭甲肝病毒VP3基因片段的长度为149p，其核苷酸序列如SEQ ID NO:4所示。

其中，上游引物序列:5’-GTGCTTAGACGCTGGCAGAT-3’，其核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示；下游引物序列:5’-AGGGACCCTCTCCAATAT TG-3’；其核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示；SEQ ID NO:3探针序列： FAM-TCAGTGGGCTAACACAGTGACCCCTG-BHQ1；其核苷酸序列如S EQID NO:3所示。

(3)阳性对照品冻干管(1管)：将含有基因C型鸭甲肝病毒RNA 片段的RNA样品100μL装入PCR管内，降至-50℃，然后在10pa气压下冻干24h，形成干粉状后闭管制备而成。

(4)阴性对照品冻干管(1管)：将无基因C型鸭甲肝病毒RNA片段的样品100μL装入PCR管内，降至-50℃，然后在10pa气压下冻干24h，形成干粉状后闭管制备而成。

本试剂盒保存于4℃，运输需加冰袋。

实施例2基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒的使用方法

该方法包括以下步骤：

1)RNA模板：用无菌1M PBS缓冲液对病鸭肝脏组织按1:5(m/v)比例稀释并匀浆，冻融2次，2000g离心10分钟，取上清液200μL，参考金瑞泓捷(厦门)生物科技有限公司的PetNAD试剂盒提取说明书提取被检样本上清总RNA，制备得到RNA模板；

2)荧光PCR反应体系的制备：荧光PCR反应体系的制备于冰上操作；

取100μL反应缓冲液加入到阳性对照品冻干管中混合，制备得到阳性对照品，然后取50μL反应缓冲液和5μL阳性对照品加入荧光定量PCR反应液冻干管中，制备得到阳性对照反应体系；取100μL反应缓冲液加入阴性对照品冻干管中，制备得到阴性对照品，然后取50μL反应缓冲液和5μ L阴性对照品加入荧光定量PCR反应液冻干管中，制备得到阴性对照反应体系；取50μL反应缓冲液和5μL检测样本RNA加入荧光定量PCR反应液冻干管中，制备得到检测样本RNA反应体系；然后分别从各个反应体系中取50μL混合物移入恒温隔绝式荧光PCR反应管中。加样时注意避光操作。将制备好的荧光定量PCR反应管瞬时高速离心5s，避免出现气泡。

3)扩增检测：把PCR反应管放置于恒温隔绝式荧光PCR仪器内(P OCKIT Micro)(如图1所示)，按运行键，即开始反应；

4)检测结果判定：“+”表示阳性，“-”表示阴性。

实施例3标准品制备和灵敏度的测定

用无菌1M PBS缓冲液对病鸭肝脏组织按1:5(m/v)比例稀释并匀浆，冻融2次，2000g离心10分钟，取上清液200μL，参考金瑞泓捷(厦门) 生物科技有限公司的PetNAD试剂盒提取说明书提取被检样本上清总RN A，然后参照宝生物工程(大连)有限公司的反转录试剂盒说明书将总RNA 反转录成cDNA。

用基因C型鸭甲肝病毒的引物分别对上述制备的cDNA进行PCR扩增，以相应病原cDNA为阳性对照，无模板为阴性对照。反应体系为：c DNA 1.5μL，2×Taq PCR Master Mix12.5μL，上、下游引物各0.5μL， ddH₂O 10μL,总体积共25μL。PCR扩增条件为:94℃5min，95℃30s， 53℃30s，72℃30s，35次循环，72℃10min。PCR产物经2％琼脂糖凝胶电泳鉴定，用胶回收试剂盒回收目的片段，并将其克隆至pMD19-T载体(宝生物工程有限公司)，并转化大肠杆菌DH5α感受态细胞，筛选出阳性克隆接入含氨苄青霉素的LB液体培养基中，37℃培养8h，用质粒提取试剂盒提取重组质粒，送生工生物有限公司测序。测序正确的阳性质粒作为基因C型鸭甲肝病毒阳性标准品，核酸蛋白检测仪测定其浓度，按照下述公式计算核酸浓度：阳性标准品浓度(copies/μL)＝(6.02×10²³copies/m ol)×(60ng/μl)×10^-9/(9.38×10⁵g/mol)＝3.85×10¹⁰copies/μL。将阳性标准品10倍梯度稀释(10^-1～10^-10)，对10³、10²、10¹和100四个稀释度样本进行检测，各反应管放入POCKIT Micro反应孔，按“运行键”即可，42分钟后反应结束，阳性结果为“+”，阴性结果为“-”，结果如图2所示，其中10²、1 0¹、10⁰结果为“+”10^-1结果为“-”，说明本试剂盒的最低检测限为3.85c opies/μL。

目前PCR常用的2×Taq PCR Master Mix已经在生产过程中将Mg、d NTP和buffer等预混在一起，大大简化和方便了PCR加样操作，同时也提高了反应的稳定性。使用时只需要将其浓度稀释至工作浓度即可，故如果总体系25μL不变的情况下，其加样量是固定的12.5μL，此外，对模板量和引物量的优化常用的体积也是相对一致的。但是这并不影响一个PCR检测方法的独立性。PCR检测法的特异性决定于其引物和探针的特异性，本方法用于检测基因C型鸭甲肝病毒的引物仅针对该病毒核酸的某个基因片段，而不会针对猪、狗或其他病原。

实施例4特异性和稳定性检验

用本发明研制的试剂盒对30份基因C型鸭甲肝病毒阳性样本、10份阴性样本以及12种相关病原基因C型鸭甲肝病毒，新城疫病毒，鹅细小病毒，番鸭细小病毒，禽流感病毒，禽腺病毒，鸭星状病毒1型，鸭星状病毒2型，鸭源巴氏杆菌、大肠杆菌O46、沙门氏菌、鸭疫里默氏菌进行检测，并设立基因C型鸭甲肝病毒阳性标准品作为对照，以评价试剂盒的特异性，结果显示对30份基因C型鸭甲肝病毒阳性核酸样本的检测为阳性，10份阴性样本、和12种相关病原检测结果为阴性，证明该方法特异性好。

用研制的试剂盒对基因C型鸭甲肝病毒的6个稀释度的阳性标准品分别检测3次，以评价该试剂盒的稳定性，结果显示3次检测结果一致，表明试剂盒的稳定性良好。

实施例5试剂盒的临床应用及与普通荧光定量PCR方法比较

用本发明试剂盒和李井新(李井新.鸭甲肝病毒1型和3型实时荧光定量RT-PCR检测方法的建立及其在雏鸭体内动态分布规律的研究[D].山东农业大学,2013.)

报道的荧光定量PCR方法对提取的30份基因C型鸭甲肝阳性样本和 10份阴性样本核酸进行检测，比较两种PCR方法的符合率。结果显示30 份基因C型鸭甲肝病毒阳性样本中，本发明试剂盒检出的阳性样本数为3 0个，符合率为100％；而李井新报道的荧光定量PCR方法对总RNA检出的阳性样本数为25个，符合率为83.3％。两种方法对10份阴性样本检出结果均为阴性，符合率为100％。将荧光定量PCR未检出的而试剂盒检出为阳性的PCR产物测序，测序结果证实为基因C型鸭甲肝病毒VP3基因的特异序列。证明该试剂盒对基因C型鸭甲肝病毒的检出效果优于现有的荧光定量PCR方法，同时又比现有PCR方法操作简单、便携，更适用于现场检测诊断，为基因C型鸭甲肝病毒的诊断和流行病学调查提供了一种有力便捷的工具。

本试剂盒与POCKIT Micro仪器配合使用，操作简单，便携，适用于临床检出，目前还没有市售的试剂盒。

本发明对反应试剂进行了冻干，降低了试剂盒保存条件，便于运输和临床应用。

本发明建立了一种基于POCKIT Micro荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒的新型诊断试剂盒，该试剂盒的引物和探针针对基因C型鸭甲肝病毒的VP3基因序列，对多种鸭相关病原均不产生非特异性扩增。敏感性和检出效果优于现有的荧光定量PCR方法，同时又比现有PCR方法操作简单、便携，非常适用于现场检测诊断，为基因C型鸭甲肝病毒的诊断和流行病学调查提供了一种有力便捷的工具。

上述说明示出并描述了发明的若干优选实施例，但如前所述，应当理解发明并非局限于本文所披露的形式，不应看作是对其他实施例的排除，而可用于各种其他组合、修改和环境，并能够在本文所述发明构想范围内，通过上述教导或相关领域的技术或知识进行改动。而本领域人员所进行的改动和变化不脱离发明的精神和范围，则都应在发明所附权利要求的保护范围内。

序列表

<110> 西南民族大学

<120> 一种基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒及应用

<130> 2017

<160> 4

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial sequence)

<400> 1

gtgcttagac gctggcagat 20

<210> 2

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial sequence)

<400> 2

agggaccctc tccaatattg 20

<210> 3

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial sequence)

<400> 3

tcagtgggct aacacagtga cccctg 26

<210> 4

<211> 114

<212> DNA

<213> 基因C型鸭甲肝病毒 (Duck hepatitis A virus type C)

<400> 4

gtgcttagac gctggcagat tgtgggtgat tttcagtggg ctaacacagt gacccctggc 60

aacaggatta gtaggtttca ggtggttttt aatcggatgc caacttttgc tctcttcttt 120

gataagttcc aatattggag agggtccct 149

Claims (10)

1.一种基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测的引物和探针，其特征在于，所述引物和探针包括：基因C型鸭甲肝病毒上游引物、基因C型鸭甲肝病毒下游引物和基因C型鸭甲肝病毒探针，其中，所述基因C型鸭甲肝病毒上游引物的核苷酸序列如SEQ IDNO.1所示；所述基因C型鸭甲肝病毒下游引物的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示；所述基因C型鸭甲肝病毒探针的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示；基因C型鸭甲肝病毒探针的核苷酸序列的5'端连接有FAM标记，3'端连接有非荧光淬灭基团和BHQ1。

2.权利要求1所述的引物和探针在制备基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒方面的应用。

3.一种基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒，其特征在于，包括反应缓冲液、荧光定量PCR反应液冻干管、阳性对照品冻干管和阴性对照品冻干管；所述荧光定量PCR反应液冻干管包括Taq酶1.5μL、反转录酶1.5μL、权利要求1所述的基因C型鸭甲肝病毒上游引物、基因C型鸭甲肝病毒下游引物各2.5μL、基因C型鸭甲肝病毒探针0.5μL、dNTPs 2.5μL。

4.根据权利要求3所述的基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒，其特征在于，所述Taq酶的终浓度为5U·μL^-1，反转录酶的终浓度为20U·μL^-1，基因C型鸭甲肝病毒上游引物和基因C型鸭甲肝病毒下游引物的终浓度均为10μmol·μL^-1，基因C型鸭甲肝病毒探针的终浓度为10μmol·μL^-1，dNTPs的终浓度为2.5mM。

5.根据权利要求3或4所述的基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒，其特征在于，所述荧光定量PCR反应液冻干管通过以下方法制备得到：将权利要求3或4所述的Taq酶、反转录酶、基因C型鸭甲肝病毒上游引物、基因C型鸭甲肝病毒下游引物和基因C型鸭甲肝病毒探针、dNTPs混合加入0.5ml的PCR管中降至-50℃，然后在10pa气压下冻干24h，形成干粉状后闭管，制得荧光定量PCR反应液冻干管。

6.根据权利要求5所述的基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒，其特征在于，所述荧光定量PCR反应液冻干管设置有50管。

7.根据权利要求3所述的基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒，其特征在于，所述反应缓冲液由以下组分构成：500mM KCl、pH 8.3、100mM Tris-HCl、15mM MgCl₂，余量为ddH₂O，以上体积总量为3ml。

8.根据权利要求3所述的基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒，其特征在于，阳性对照品冻干管通过以下方法制备得到：将含有基因C型鸭甲肝病毒RNA片段的RNA样品100μL装入PCR管内，降至-50℃，然后在10pa气压下冻干24h，形成干粉状后闭管制备而成；

阴性对照品冻干管通过以下方法制备得到：将无基因C型鸭甲肝病毒RNA片段的样品100μL装入PCR管内，降至-50℃，然后在10pa气压下冻干24h，形成干粉状后闭管制备而成。

9.根据权利要求3所述的基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒，其特征在于，该试剂盒保存于4℃下。

10.一种基于恒温隔绝式荧光PCR平台的基因C型鸭甲肝病毒检测试剂盒的使用方法，其特征在于，包括以下步骤：

1)制备RNA模板：取粪便样本上清液200μL，参考金瑞泓捷(厦门)生物科技有限公司的PetNAD试剂盒提取说明书提取被检样本上清总RNA，制备得到RNA模板；

2)荧光PCR反应体系的制备：荧光PCR反应体系的制备于冰上操作；取100μL反应缓冲液加入到阳性对照品冻干管中混合，制备得到阳性对照品，然后取50μL反应缓冲液和5μL阳性对照品加入荧光定量PCR反应液冻干管中，制备得到阳性对照反应体系；取100μL反应缓冲液加入阴性对照品冻干管中，制备得到阴性对照品，然后取50μL反应缓冲液和5μL阴性对照品加入荧光定量PCR反应液冻干管中，制备得到阴性对照反应体系；取50μL反应缓冲液和5μL检测样本RNA加入荧光定量PCR反应液冻干管中，制备得到检测样本RNA反应体系；然后分别从各个反应体系中取50μL混合物移入恒温隔绝式荧光PCR反应管中；加样时注意避光操作；将制备好的荧光定量PCR反应管瞬时高速离心5s，避免出现气泡；

3)扩增检测：把PCR反应管放置于恒温隔绝式荧光PCR仪器内，按运行键，即开始反应；

4)检测结果判定：“+”表示阳性，“-”表示阴性。